Yöntem makalesi

Dinamik Maske Projeksiyon Fotolitografi kullanarak Sinir Kültür Sistemleri Micropatterned Hidrojeller Fabrikasyon

20.7K görüntüleme

⸱

DOI:

10.3791/2636

⸱

11 Şubat 2011

 ,  , 
1Biomedical Engineering, Tulane University

Bu makalede

Özet

Hızlı, düzenli hücre kültürü yüzeylerde dinamik maske projeksiyon litografi için bir dijital micromirror cihaz kullanarak microfabricated sinir kültür sistemleri üretimi için basit teknikleri açıklanmıştır. Bu kültür sistemleri doğal biyolojik mimarisi daha iyi temsil olabilir, ve açıklanan teknikleri çok çeşitli uygulamalar için adapte olabilir.

Özet

Giderek, desenli hücre kültürü ortamları hücresel özelliklerini incelemek için, ilgili bir teknik haline, ve birçok araştırmacı, 3 boyutlu ortamlar için 1-3 in vivo nitelikleri daha iyi taklit in vitro deneylerde temsil etmek için ihtiyaç inanıyoruz. Kanser araştırma 4, sinir mühendislik 5, kalp fizyolojisi 6, ve hücre-matriks etkileşimini 7,8 gibi alanlarda yapılan çalışmalar, hücre davranış, geleneksel monolayer kültür ve 3D yapıları arasında önemli farklılıklar göstermiştir.

Hidrojeller nedeniyle çeşitli, çok yönlülük ve 9-12 işlevsellik ile terzi moleküler kompozisyon yeteneği 3D ortamlar olarak kullanılır. Elektrospinning 13, elastomer pulları 14 da dahil olmak üzere hücre destekleyici matrisler olarak yapıları oluşturulması için çok sayıda teknikleri vardır, mürekkep püskürtmeli baskı 15, katkı photopatterning 16, statik photomask projeksiyon-litografi 17, dinamik ve maske microstereolithography 18. Ne yazık ki, bu yöntemlerin birden fazla üretim adımları ve / veya geleneksel hücre ve doku kültürü yöntemleri kolayca adapte ekipman içerir. Bu protokol istihdam tekniği kullanarak UV başlatılan serbest radikal polimerizasyonu yoluyla uyarılan crosslinking geometrik özel poli (etilen glikol) (PEG) hidrojeller, dinamik photomasks oluşturmak için bir dijital micromirror cihazı (DMD), son iki yöntemden uyarlar. "2.5D" yapıları, sinir büyüme için kısıtlı 3D ortamı sağlar. Biz PEG Puramatrix veya agaroz yapılan bir başka şekilsiz ama hücre izin kendinden montaj jel hücre kısıtlayıcı bir bölgedeki tedarik yapısı olarak hizmet veren bir çift-hidrojel yaklaşımı, istihdam. Bu süreç, konvansiyonel hücre kültürü yöntemleri ve substratları ile kullanmak için son derece tekrarlanabilir ve kolay adapte olan bir hızlı, basit bir adım imalat.

Tüm doku embriyonik dorsal kök gangliyon (DRG) eksplantlar, neurite akıbet gibi deneysel testleri için çift hidrojel yapıları içine dahil edilebilir. Ayrıca, ayrışmış hücreleri photocrosslinkable veya kendi kendine polimerize hidrojel kapsüllü olabilir, ya da seçici geçirgen destek zarı, hücre kısıtlayıcı photopatterning kullanarak yapıştırılır. DMD kullanarak, hidrojel, kalın ~ 1mm kadar yapıları, ancak ince bir film tabakası (<200 mikron) PEG yapıları serbest radikal polimerizasyon reaksiyonu oksijen su verme ile sınırlı kalmıştır yarattı. Biz daha sonra ince PEG yapısı polimerizasyon izin polimerizasyon sıvı üzerindeki yağ tabakası kullanan bir teknik geliştirdi.

Bu protokol, biz microfabricated sinir hücre ve doku kültürleri üretimi için 3D hidrojel sistemleri süratli yaratılmasını anlatmak. Burada gösterdi çift hidrojel yapıları nörobilim hücre sağkalım, göç, ve / veya neurite büyüme ve rehberlik içeren çalışmalar için faydalı in vitro modeller çok yönlü temsil eder . Ayrıca, protokol hidrojeller ve hücrelerin birçok türleri için çalışmak gibi, potansiyel uygulamalar çeşitli ve geniş, her ikisi de.

Protokol

1. DMD Kurulum

  1. DMD kurulu, UV ışık kılavuzu (kolimatör) ve 4x objektif lens titreşim izolasyonu masaya dikey olarak monte edilir.
  2. UV ışık kılavuzu ışık 45 ° aynalar, 24 ° aynalar düzleminin altında (Şekil 1) düzlemine göre açıyla ayna dizisi vurur şekilde ayarlanmış olmalıdır.
  3. DMD uzaklık objektif lens odak uzaklığı lens ile ilgili karşılık gelir, böylece objektif lens monte edilir.
  4. Objektif lens, mikroskop aracılığıyla odaklanmış ışık DMD yansıyan görülebilmesi gibi ters bir mikroskop altında yerleştirilir. Polimerizasyon yüzey objektif lens arasındaki mesafe yaklaşık olarak objektif çalışma mesafesi uygun olmalıdır. Mikroskop aşamasında sonra ince Görüntüye odaklanmak için bu mesafeyi ayarlamak için kullanılabilir. Bu mesafe, seçilen polimerizasyon yüzeye bağlı olarak değişebilir.

2. Doku Eksplant Kültürler Çift Hidrojel oluşturur

A. DRG eksplant yapışma

  1. Kat membran kendisi özen Yağmur-X ile 6-kuyu kollajen kaplı hücre kültürü ekler (Corning), duvarları. (Alternatif olarak, hidrofobik bir bariyer kalem olabilir.)
  2. 37 ° C ve% 5 CO 2 'de bir kuluçka yapışma orta 1.5 mL gecede Hidrat ekler. Yapışma orta,% 10 fetal sığır serumu,% 1 Penisilin / streptomisin, 0.5mm L-glutamin ve 20 mcg / ml NGF neurobasal orta.
  3. E-15 sıçan yavrular hasat embriyonik dorsal kök gangliyon (DRG). DRG dörde kadar eklemek için, kollajen kaplı 6-iyi ekler üzerine kaplanmış olmalıdır.
  4. Membran bağlılık DRG izin vermek için, 2 saat süreyle ekler inkübe edin.

B. Dinamik maske fotopolimerizasyon

Dijital micromirror cihazı (DMD), seçici ayna pozisyonu dayalı ışığı yansıtan projeksiyon televizyonlarda buna benzer bireysel aynalar, 1024 x 768 dizi. Bizim amaçlarımız için, DMD Belirtilebilen hidrojel geometrileri basit ve hızlı bir şekilde oluşturarak, photocrosslinkable hidrojeller üzerine desen ultraviyole (UV) ışık kullanılır. Şekil 1 DMD ve UV ışık yolu kurulumu anlatıyor. DMD bağımsız bir birim olmasına rağmen, cihaz aynı zamanda birçok mevcut mikroskopları ile kullanım için entegre edilebilir.

  1. Tüm aşırı sıvı eklemek çıkarın ve polimerizasyon orta eklemek içinde 500 mcL ekleyin. Polimerizasyon orta,% 10 PEG (MW 1000) ve 0.5% Irgacure 2959 20 mcg / ml NGF ve% 1 Kalem / Strep ile desteklenmiş neurobasal ortamda çözünmüş içerir.
  2. Yağmur-X işlenmiş cam slayt DMD cihaz altındaki ekleme yerleştirin.
  3. ALP-3 temel GUI programı kullanmak suretiyle, DMD "photomask" olarak kullanılmak üzere uygun siyah-beyaz görüntü yükleyin. Bizim amaçlarımız için, çatallanan şekli neurite rehberlik sistemlerinin uygulanması için izin seçildi.
  4. Ters bir görünüm için mikroskop kullanarak, photomask DMD yansıtan bir görünür ışık kaynağı kullanılarak uygun bir konuma sahip doku eksplantlar hizalayın.
  5. UV ışık kaynağı görünür ışık kaynağı Switch ve crosslinking yeterli kadar PEG çözüm aydınlatmak. (Koşulları için verilen ve 5.0 Watt / cm 2 olayın DMD, crosslinking az 55 saniye içinde tamamlanabilir.) Eklemek dört DRG için tekrarlayın.
  6. Her ekleme, steril DPBS ve% 1 Kalem-Strep ile üç kez yıkayın.
  7. 1.5mL besi hücre kültürü ekler altına ekleyin ve 30 dakika için bir kuluçka gelmesini sağlayınız. Büyüme orta,% 2 B-27,% 1 Kalem / Strep, 0.5mm L-glutamin ve 20 mikrogram / ml NGF içeren neurobasal orta.

C. Sekonder hidrojel

Puramatrix

  1. Nöronal uygulamaları için,% 1 Puramatrix steril H 2 O% 0.15 üreticinin talimatlarına göre seyreltilir ve 1 mcg / mL çözünen laminin ile desteklenebilir.
  2. Tüm fazla medya, steril bir pamuk uçlu aplikatör, Kimwipe ya da mikropipet kullanarak, DRG eksplantlar içeren PEG boşlukları, kaldırılması gerekir.
  3. Puramatrix mikropipet ile PEG boşlukları dışına taşırmadan boş alanı doldurmak amacıyla eklenir. Boşluk hacmi bağlı olarak genellikle 1 mcL inşa başına kullanılan ~.
  4. Puramatrix fizyolojik tuz çözeltisi ile temas halinde hemen kendini montaj işlemi başlar, yani şişmiş PEG, ancak 1.5 mL besi toplam jelleşme sağlamak için ekleme altına eklenir ve bir saat süreyle inkübatör yerleştirilir.
  5. Başlangıçta, Puramatrix hafif asidik pH denge izin bir saat sonra ortamı değiştirmek.
  6. Medya değişiklikler yaklaşık olarak her 48 saat gereklidir. Tüm medya olduğunu, dikkatli olunmekanik olarak zayıf Puramatrix bütünlüğünü korumak için, ekleme altına eklendi.

Agaroz

  1. Nöronal uygulamalar için, agaroz% 1'lik bir büyüme ortamında çözüm seyreltilmiş ve agaroz tamamen eriyene kadar (~ 1 saat) 60 ° C su banyosuna yerleştirilir. Çözüm, sonra 1 mcg / mL çözünen laminin ile tamamlanmaktadır.
  2. Tüm aşırı medya PEG boşlukları uzaklaştırılmalıdır.
  3. Agaroz PEG boşlukları dışına taşırmadan boş alanı doldurmak için eklenir. Boşluğun hacmi bağlı olarak genellikle 1 mcL inşa başına kullanılan ~.
  4. Büyüme ortamının 1.5 mL 6 plaka önceden soğutulmuş (8 ° C), ve agaroz içeren ekler agaroz izin soğutulmuş ortama aktarılır ve 8 ° C'de en az üç dakika boyunca buzdolabında muhafaza edilir jel.
  5. Son olarak, ekler, 1.5 ml (37 ° C), önceden ısıtılmış büyüme orta transfer ve 37 kuvöz muhafaza ° C, her 48 saatte gerekli ortam değişiklikleri ile.

3. Çift Hidrojel 3D Hücre Kapsüllemesi

Çift hidrojel encapsulation kendi montaj jel kullanırken uygundur. Photocrosslinkable jel, bu durumda PEG, örneğin Puramatrix veya agaroz, öz-montaj jel geometrik tanıtımı için yapısal bir destek olarak hizmet vermektedir. Bu yöntemlerden bazıları, özellikle photomask jel ve seçim türü, özellikle istediğiniz uygulamayı bağlı olacaktır.

  1. DMD uygun bir maske yükleyin. Bizim uygulama, hücre hayatta kalmak için, biz sadece hücre görüntüleme yardım Puramatrix silindirik bir sunum seçti. Araştırmacılar, hücre sinyal eğitim kemotaktik moleküllerin difüzyon izin bölmeli bir geometri ilginizi çekebilir. Ayrıca, bir arter kaba bir yaklaşım, kan damarı araştırma olası uygulama temsil etmek için gösterilmiştir.
  2. Yağmur X kaplı slayt DMD altında polyester hücre kültürü Yağmur X ile insert, yer ve duvarları davranın.
  3. Eklemek için polimerizasyon orta 500 mcL ekleyin. 55 saniye süreyle UV ışınlarına maruz PEG crosslinking uyarır.
  4. Steril DPBS ve% 1 Kalem-Strep ile üç kez yıkayın.
  5. PEG boşlukları tüm Fazla medyayı çıkartın.
  6. Pelet içine istenilen yoğunlukta hücre aşağı spin. Bakım Puramatrix bir tuz çözeltisi ile temas halinde hemen kendini montaj başlar başlamaz, önce karıştırma hücre pelletini tüm orta kaldırmak için alınması gerekir. Askıya Alma steril H 2 O seyreltilmiş% 0,15 Puramatrix içinde hücrelerin% 10 sakaroz ile desteklenmelidir.
  7. PEG içinde boşluklar içinde Puramatrix / hücre / sakaroz karışımı enjekte edilir.
  8. 1.5 mL eklemek altında büyümenin orta ekleyin ve bir saat için kuvöz içinde jel izin.
  9. Bir saat sonra ortam değiştirin, ve bundan sonra her 48 saatte ~.

4. Tek Hidrojel 3D Hücre Kapsüllemesi

Tek bir hidrojel kapsülleme hücreleri photocrosslinkable hidrojel içinde incelenebilir bir durum için uygun olacaktır.

  1. DMD uygun bir maske yükleyin. Hücre sağkalım çalışmalar için, yine bir silindir temsil edecek bir temel dairesel maske seçti. Metodu 4 gösterilen benzer Maskeler tekrar uygun bir araştırma alanı için uygulanabilir.
  2. Yağmur X kaplı slayt DMD altında polyester hücre kültürü Yağmur X ile insert, yer ve davranın.
  3. Herhangi istenilen konsantrasyonda hücreler homojen dağılımını sağlamak için iyice karıştırılması,% 10 PEG solüsyonu direkt olarak ilave edilebilir.
  4. Eklemek için polimerizasyon orta 500 mcL ekleyin. 55 saniye süreyle UV ışınlarına maruz PEG crosslinking uyarır.
  5. Steril DPBS ve% 1 Kalem-Strep ile üç kez yıkayın.
  6. Değişen her ~ 2 gün, altına ve üstüne ekleme bir büyüme ortamı ile doldurun.

5. İnce Film Hidrojel Polimerizasyon

  1. DMD uygun bir maske yükleyin.
  2. Yağmur X kaplı slayt kollajen kaplı polyester hücre kültürü Yağmur-X ile insert, yer ve davranın.
  3. Insert (6 plaka ekler ~ 250-300 mcL) sadece alt kapağı için yeterli polimerizasyon orta ekleyin. Medya, oda sıcaklığında 30-45 dakika ekleme membran girmesine izin verin.
  4. Mikropipet veya Kimwipe insert fazla polimerizasyon orta çıkarın. Eklemek tamamen alt kapağı için yeterli miktarda UV-şeffaf yağ ekleyin. Eklemek polimerizasyon orta doyurarak ekleme membran üzerinde ayrı bir tabaka oluşturur petrol için, yeterince uzun süre oda sıcaklığında 15-30 dakika oturmak için izin verin.
  5. DMD altında ekleme ve slayt yerleştirin. UV ışınlarına maruz kalma PEG crosslinking neden. Çünkü PEG tabakasının inceliği, crosslinking DMD 5.0 Watt / cm 2 olayın en az 15 saniye içinde tamamlanmalıdır.
  7. 6-iyi doku kültürü plakası ekleme saklayın. Istenilen konsantrasyonda askıda hücrelere büyüme orta ekle ve istenilen hücre yoğunluğu, hücre kültürü eklemek içinde hücre süspansiyonu elde etmek için yeterli bir hacmi pipetle. Sonra, tamamen hücre canlılığını korumak için (~ 1.5 mL) eklemek için aşağıdaki yeterli büyüme ortamı ekleyin.
  8. 48 saat geçtikten sonra herhangi bir unadhered hücreleri çıkarmak için, steril DPBS ve% 1 Kalem-Strep eklemek üç kez yıkayın. Yaklaşık olarak her 48 saatte bir ortam değiştirin.

6. Temsilcisi Sonuçlar

Çift hidrojel örnekleri içeren DRG eksplantlar Şekil 2'de gösterilmiştir oluşturur. Hücresel göç ve neurite uzantısı hücre müsamahakar çift hidrojel bölgeye inşa sınırlı olduğunu dikkat edin. Şekil 3 çift hidrojel yapıları içinde benzer bir kapsüllü ayrışmış hücreleri gösteriyor. DMD photomask dinamik yapısı nedeniyle, kapsülleme kullanılabilir geometri, optik boyutları ve çözünürlüğü sınırlıdır. Hücre kapsülleme tek bir photopolymerizable hidrojel, PEG içinde de mümkün olduğunu, ölü / canlı canlılığı testi Şekil 4'te kanıtladığı gibi yapıldı. PEG içinde kapsüller PEG sinir hücreleri için ideal bir ortamı temsil etmiyor, sadece bir örnek olarak geliyordu. Bu nedenle, PEG yapıları gerçekleştirilen hücre canlılığı anlaşılır düşük. Son olarak, ince PEG filmler, hücre kültürü ekler, hücre yapışması için desenli sınırlayıcı bir tabaka olarak kullanan örnekler Şekil 5'te gösterilmiştir. Ayrıca, olası bir "kötü" sonuçlarının örnekleri Şekil 6'da sunulmaktadır.

Sonuçlar, olası kullanımlarının laboratuvarda geliştirilen yöntemlerden yalnızca küçük bir bölümünü temsil eder. Onlar bizim yaklaşımımız kolaylığı, çok yönlülük ve canlılığı göstermek amacıyla, araştırmacılar kendi olası adaptasyonlar geliştirmek için "prensip kanıtı" olarak tedavi edilebilir.

Şekil 1
Şekil 1 fotolitografi için kullanılan ışık yolu şematik gösterimi. Ankastre: 45 ° ve 24 ° ayna dizi uçağın altında bir açıyla DMD UV ışık yanar.

Şekil 2
Şekil 2 çift hidrojel yapıları içeren DRG Etiketli büyümesi ve yayılması. AD), Beta III tubulin (yeşil), DAPI boyanan hücre çekirdeğine (mavi) ile etiketlenmiş neurites ile polimerize PEG yapıları (gri) tasvir görüntüler. DRG eksplantlar Puramatrix bulunan ve çatallanma (ler) doğru büyüyen neurites desen dairesel bölgelerinde bulunmaktadır.

Şekil 3
Şekil 3 büyüme ortamında 48 saat sonra canlı bir hücre belirteci ile Calcein AM etiketli hücreleri içeren Çift hidrojel oluşturur. AD) Çeşitli PEG şekiller, ayrışmış DRG nöron (~ 5x10 3 hücre / ml) içeren Puramatrix ile dolu.

Şekil 4
Şekil 4 Tek hidrojel içeren büyüme ortamında 24 saat sonra (5x10 3 hücre / ml) ethidium homodimer-1 (kırmızı) ile etiketlenmiş Calcein AM (yeşil) ve ölü hücreleri ile etiketlenmiş canlı hücreler inşa.

Şekil 5
Şekil 5 Hücre kısıtlayıcı PEG ayrışmış hücrelerin seçici geçirgen destekleyen kollajen kaplı membran uymak için bir "test deseni" kullanılarak ince bir film olarak polimerize. Ethidium homodimer-1 (kırmızı) ile ölü hücrelerden etiketli ise A, B) Canlı hücreler, Calcein AM (yeşil) ile 48 saat sonra etiketlenir. Minimum hücre adezyon ince PEG filmi içeren alan oluşur.

Şekil 6
Şekil 6 istenmeyen sonuçlar Temsilcisi görüntüleri. A) PEG Kısmi polimerizasyon, kullanışsız bir PEG yapı. Yanlış polimerizasyon menisküs, ön-polimer orta, yetersiz miktarda polimerizasyon orta, yetersiz UV ışınlarına maruz kalma ya da optik yanlış odak varlığı nedeniyle oluşabilir. B) Beta III tubulin (yeşil), DAPI boyanan hücre çekirdeğine (mavi) ile etiketlenmiş neurites ile polimerize PEG yapıları (gri) tasvir Resim. Neurites desenli PEG kanalların dışında da büyümeyi başardık. Bu durum sık sık oluşur Puramatrix enjeksiyon sırasında PEG kısmının üstüne taşıyor.

Tartışma

Burada açıklanan yöntem basit ve tekrarlanabilir bir hücre kültürü sistemleri isteyen herhangi bir araştırmacı tarafından kullanılan olabilir. Teorik olarak, mevcut photopolymerizable hidrojeller çok çeşitli nedeniyle, çevre tüm doku eksplantlarında da dahil olmak üzere herhangi bir hücre tipi, kullanmak için izin için uygun olabilir. Ayrıca, çift hidrojel sistemi, kendi amorf şekiller oluşturma eğilimindedir kendini polimerize hidrojeller, sunumu gelişmiş mekansal kontrolü için olanak sağlar. Ortaya çıkan "2.5D" micropatterned hidrojel yapıları uygun mikroskopik değerlendirme sağlayan bir 2D yapılandırma sunulan sinir büyüme için 3 boyutlu bir matris sağlar. Substrat jeller polimerize olan, aynı zamanda, deneysel tasarım daha fazla kontrol için izin, çeşitli olabilir. Yöntemleri cam slaytlar (veriler gösterilmemiştir) polimerizasyonu ile karşılaştırıldığında geliştirilmiş canlılığı (Şekil 4) Görüldüğü gibi, hücre kültürü geçirgen destekler ile kullanım için optimize edilmiş. Ancak, diğer polimerizasyon yüzeyler farklı uygulamalar için daha uygun olabilir: cam üzerine imalat örneğin Mikroakiskan deneyleri veya hücre agrega oluşumları, kullanılan slaytlar.

Bu kültür sistemleri ile tecrübemiz zorluk potansiyel alanların belirlenmesine yol açmıştır. İlk olarak, dikkatli teknikleri, yapıları kısırlık korumak için gereklidir. DMD kurulum hantal doğası nedeniyle, steril koşullar altında polimerizasyon adımları çalıştırmak için zordur. Bu konuda mücadele etmek için, yöntemleri açıklanan durulama adım yardımcı olur ve tüm medya antibiyotik kullanılmalıdır. Ayrıca, polimerize inşasının son şekli kalınlığı ve ön-polimer karışımı sıvı davranışı son derece bağımlı ve jel oluşturur (Şekil 6) çok ince ya da eksik polimerize bir menisküs varlığı neden olabilir. Iki adım, hücre kültürü ekler içinde bir menisküs oluşumunu en aza indirmek için alınabilir. Kalın hidrojeller (> 200 mm), Yağmur-X eklemek iç duvar etrafında basit bir kaplama yeterli. Ancak, ince yapıları (<200 mikron) kısaca, yukarıda açıklanan, bir yağ tabakası hem menisküs en aza indirmek ve serbest radikal polimerizasyonu oksijen su verme reddetmek için gereklidir. Çözünürlük özelliği boyutu giderek daha kalın jeller ile gerçekleştirilen bir azalma ile, kalınlığına bağlı olarak tespit edildi. Kararda ayrıca özellik hidrojel olumlu ya da olumsuz bir rahatlama temsil edip etmediğini bağlı olarak değişmiştir. Ancak, minimum özellik boyutları ile ~ 100 mm optik odaklama gibi sadece mikroskop hedefleri kullanarak ölçekli yapıları için yeterli bir çözünürlük elde etti.

Burada açıklanan çift hidrojel yapıları neurite büyüme ve rehberlik temel in-vitro modellerin oluşumu için mükemmel bir temeli temsil ettiği deneyler göstermiştir. Istihdam micropatterning tekniği, mevcut yöntemleri 18,19 bir adaptasyon, ama bizim set-up, tasarlamak, uygulamak için basit bir vurguladı ve, çift hücre kültürü ekler hidrojel yapıları üretimi için optimize edilmiş hücre kültürü ekler de hücre canlılığı geliştirmek için hayati önem önceden yapışık doku eksplantlar etrafında crosslinking. Sonuçların gösterildiği laboratuar kapsamı ile sınırlı olmakla birlikte, bu yayında açıklanan yöntemleri 3D hücre kültürü imalatı için nispeten ucuz, hızlı ve kullanımı kolay bir yöntem arıyor araştırmacılar için yararlı olacağına inanıyoruz modelleri.

Açıklamalar

Çıkar çatışması ilan etti.

Teşekkürler

Yazarlar, Prof. Anthony Windebank laboratuar diseksiyon ve kültür DRG kendi uzmanlık paylaşımı için teşekkür etmek, hem de DMD kurulumu ile ilgili yararlı tartışmalar için Prof. Shaochen Chen. Bu araştırma, Tulane Üniversitesi ve hibeler Louisiana Regents Kurulu'ndan tarafından kısmen finanse edildi (LEQSF [2009-10]-RD-A-18) ve NIH (NS065374).

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
Dijital Mikroayna CihazıTexas InstrumentsDLPD4X00KIT
Kolajen Kaplı Transwell Geçirgen DestekCorning3491Makalede Hücre Kültürü İnserti olarak da adlandırılmıştır
Polyester Transwell Geçirgen DestekCorning3412Makalede Hücre Kültürü İnserti olarak da adlandırılmıştır
Neurobasal MedyumInvitrogen21103-049
Fetal Bovine SerumInvitrogen16000-036
L-glutaminInvitrogen25030-164
Sinir Büyüme FaktörüInvitrogen13257-019
Pen/StrepInvitrogen15140-122
B-27 SuplementiInvitrogen17504-044
DPBSInvitrogen14190-250
PuramatrixBD Biosciences354250
PEG 1000Polysciences, Inc.15178
Irgacure 2959Ciba Specialty Chemicals0298913AB
YağHem kanola yağı hem de silikon yağı kullanılmıştırUV geçirgen olması ve +/- menisküs oluşumunu minimize etmesi gerekir
OmniCure Series 1000EXFO
Rain-X

Kaynaklar

  1. Abbott, A. Cell culture: biology's new dimension. Nature. 424, 870-872 (2003).
  2. Schindler, M. Living in three dimensions: 3D nanostructured environments for cell culture and regenerative medicine. Cell Biochem Biophys. 45, 215-227 (2006).
  3. Maltman, D. J., Przyborski, S. A. Developments in three-dimensional cell culture technology aimed at improving the accuracy of in vitro analyses. Biochemical Society Transactions. 38, 1072-1075 (2010).
  4. Smalley, K. S., Lioni, M., Herlyn, M. Life isn't flat: taking cancer biology to the next dimension. In Vitro Cell Dev Biol Anim. 42, 8-9 (2006).
  5. Irons, H. R. Three-dimensional neural constructs: a novel platform for neurophysiological investigation. Journal of Neural Engineering. 5, 333-341 (2008).
  6. Bursac, N. Cultivation in rotating bioreactors promotes maintenance of cardiac myocyte electrophysiology and molecular properties. Tissue Eng. 9, 1243-1253 (2003).
  7. Cukierman, E., Pankov, R., Stevens, D. R., Yamada, K. M. Taking cell-matrix adhesions to the third dimension. Science. 294, 1708-1712 (2001).
  8. Cushing, M. C., Anseth, K. S. Materials science. Hydrogel cell cultures. Science. 316, 1133-1134 (2007).
  9. Kloxin, A. M., Kasko, A. M., Salinas, C. N., Anseth, K. S. Photodegradable hydrogels for dynamic tuning of physical and chemical properties. Science. 324, 59-63 (2009).
  10. Geckil, H., Xu, F., Zhang, X., Moon, S., Demirci, U. Engineering hydrogels as extracellular matrix mimics. Nanomedicine (Lond). 5, 469-484 (2010).
  11. Luo, Y., Shoichet, M. S. A photolabile hydrogel for guided three-dimensional cell growth and migration. Nature Materials. 3, 249-253 (2004).
  12. Wylie, R. G., Shoichet, M. S. Two-photon micropatterning of amines within an agarose hydrogel. Journal of Materials Chemistry. 18, 2716-2721 (2008).
  13. Ji, Y. Electrospun three-dimensional hyaluronic acid nanofibrous scaffolds. Biomaterials. 27, 3782-3792 (2006).
  14. Moeller, H. C., Mian, M. K., Shrivastava, S., Chung, B. G., Khademhosseini, A. A microwell array system for stem cell culture. Biomaterials. 29, 752-763 (2008).
  15. Xu, T. Viability and electrophysiology of neural cell structures generated by the inkjet printing method. Biomaterials. 27, 3580-3588 (2006).
  16. Liu Tsang, V. Fabrication of 3D hepatic tissues by additive photopatterning of cellular hydrogels. FASEB J. 21, 790-801 (2007).
  17. Beebe, D. J. Microfluidic tectonics: A comprehensive construction platform for microfluidic systems. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 97, 13488-13493 (2000).
  18. Lu, Y., Mapili, G., Suhali, G., Chen, S. C., Roy, K. A digital micro-mirror device-based system for the microfabrication of complex, spatially patterned tissue engineering scaffolds. Journal of Biomedical Materials Research Part A. 77, 396-405 (2006).
  19. Naiser, T., Mai, T., Michel, W., Ott, A. Versatile maskless microscope projection photolithography system and its application in light-directed fabrication of DNA microarrays. Review of Scientific Instruments. 77, 063711-063711 (2006).

Yeniden basım ve izinler

Etiketler

Dijital Mikroayna CihazPolietilen Glikol Hidrojelleriift Hidrojel Yap larEmbriyonik Dorsal K k GanglionlarN rit Uzama AnaliziUV Ba latmal PolimerizasyonH cre K s tlay c Fotodesenleme
Dinamik Maske Projeksiyon Fotolitografi kullanarak Sinir Kültür Sistemleri Micropatterned Hidrojeller Fabrikasyon
Bize ulaşın
Kütüphaneye tavsiye et

Gizlilik

Kullanım Şartları

İlkeler

Telif hakkı © 2026 MyJoVE Corporation. Tüm hakları saklıdır.