Method Article

İmmün Boyama Birleştirilmiş Hücre Ayırma ile Mikroglia İzolasyonu: Floresan Aktif Hücre Sıralaması Kullanarak Zebra Balığı Beyin Hücrelerinden Mikroglia'yı İzole Etmek İçin Bir İmmün Boyama Yöntemi

April 30th, 2023

In This Article

Abstract

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Kaynak: Mazzolini, J. et al. Larva Zebra Balığı Beyinlerinden Nöronların, Makrofajların ve Mikrogliaların İzolasyonu ve RNA Ekstraksiyonu. J. Vis. Uzm. (2018)

Bu videoda, zebra balığı mikroglial hücrelerini, immün boyamaya bağlı hücre sıralama yoluyla izole ediyoruz. İzole edilmiş mikroglia, beyin patolojilerindeki rollerini anlamak için aşağı akış deneylerinde kullanılabilir.

Protocol

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Hayvan modellerini içeren tüm prosedürler, yerel kurumsal hayvan bakım komitesi ve JoVE veteriner inceleme kurulu tarafından gözden geçirilmiştir.

1. Mikroglia İmmün Boyama

NOT: Tüm adımlar 4 °C'de gerçekleştirilir.

  1. Beyin kültürü hücrelerinden elde edilen hücre peletini 0.3 mL Media A +% 2 normal keçi serumu veya NGS ile yeniden süspanse edin. Bunları 3 x 1.5 mL'lik tüplere bölün: biri ilgilenilen hücrelerden otomatik floresanı ölçmek için boyanmamış hücreler için, ikincisi ikincil antikorun mikrogliaya spesifik olmayan bağlanmasını ölçmek için ikincil antikor (1/200) için ve üçüncüsü bir test olarak (4C4 fare monoklonal antikoru (mikrogliaya özgü) (1/20) + ikincil antikor (1/200)).
    1. İmmünoglobulinlerin Fc alanı ile CD16 / CD32 etkileşimlerini bloke etmek için hücrelere (tüm tüpler) %1'de Düşük Endotoksin, Azid İçermeyen (LEAF) ekleyin. Her 5 dakikada bir hafif çalkalama ile hücreleri 10 dakika inkübe edin.
    2. 4C4 antikorunu (1/20) hücrelere (tüp 3) ekleyin ve her 10 dakikada bir hafif çalkalama ile 30 dakika inkübe edin.
    3. Tüpleri 300 g'da 4 °C'de 10 dakika döndürün, ardından süpernatanı atın.
    4. 0,5 mL Media A +% 2 NGS ile bir kez yıkayın, ardından tüpleri 300 x g'da 4 ° C'de 10 dakika döndürün.
    5. Hücre peletini 0.5 ml Media A +% 2 NGS ile yeniden süspanse edin ve hücreleri her 5 dakikada bir hafif çalkalama ile 10 dakika boyunca% 1'de LEAF ile inkübe edin.
    6. Hücrelere (tüp 2 ve 3) ikincil antikor (1/200) ekleyin. Her 10 dakikada bir hafif çalkalama ve ışık koruması ile hücreleri 30 dakika inkübe edin.
    7. Tüpleri 300 g'da 4 ° C'de 10 dakika döndürün, ardından süpernatanı atın.
    8. 0,5 mL Media A +% 2 NGS ile iki kez yıkayın, ardından 1 mL Media A +% 2 NGS ile hücre peletini yeniden süspanse edin.
  2. Hücre süspansiyonunu 35 μm'lik bir hücre süzgeci kapağından geçirin ve bunları ışıktan korunan buz üzerinde soğuk 5 mL floresanla aktive edilen hücre sınıflandırmasına veya FACS tüplerine aktarın.

2. Hücre Sıralama (FACS)

NOT: Tüm adımları 4 °C'de gerçekleştirin.

  1. Nöronları, makrofajları/mikrogliaları ve mikrogliaları bir FACS.
    kullanarak sıralayın NOT: Bu adım genellikle FACS tesisinin bir personeli tarafından gerçekleştirilir ve ayarlar kullanılan ekipmanın türüne bağlıdır.
    1. Ölü hücreleri etiketlemek için her FACS tüpüne 1 μg / mL konsantrasyonda DAPI ekleyin.
    2. FACS'ı kurun ve tüm beyin hücrelerinden nöronları, makrofajları/mikrogliaları veya mikrogliaları sıralayın. Hücreleri büyüklüklerine ve taneciklerine göre döküntülerden ayırın, ardından tek hücreleri ileri saçılma ve yan saçılma ile kapılayın. Canlı hücrelerden DAPI etiketlemesi ile ölü hücreleri hariç tutun. Nöronları, makrofajları/mikrogliaları veya mikrogliaları kendi pozitif boyamalarıyla tanımlayın.
  2. Buz üzerinde 1 mL buz gibi soğuk Medya A +% 2 NGS içeren 1.5 mL'lik tüplerde hücreleri toplayın. Her hücre tipi için farklı tüpler kullanın.
    1. Tüpleri 300 ° C'de 10 dakika boyunca 4 x g'da döndürün ve ardından süpernatanı atın.
    2. 0,5 mL Medya A ile bir kez yıkayın, ardından maksimum süpernatanı atın.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Disclosures

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
Herhangi bir çıkar çatışması beyan edilmedi.

Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
Hepes BelediyesiGibco (Gibco)15630-056
D-GlikozSigmaG8644-100ML
HBSS 1XGibco (Gibco)14170-088
Normal keçi serumu (NGS)Hücre Sinyalizasyonu5425S Serisi
35 μm hücre süzgeç kapağıBd352235
FACS tüpleriBd352063
Düşük Endotoksin, Azid İçermeyen (LEAF)Biyoefsane101321
Alexa Fluor 647 Keçi Anti-Fare IgG (H+L)Yaşam TeknolojileriA11008
Anti-4C4Catherina Becker'in (Edinburgh Üniversitesi) izniyle
FACS sıralayıcı FACSAria IIBdQMRI, FACS tesisi
Serisi Serisi

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Tags

Microglia IsolationImmunostaining MethodFluorescent Activated Cell SortingZebrafish Brain CellsCell Size SortingFluorescence SortingPrimary AntibodiesSecondary AntibodiesBlocking ReagentFACS Sorting

Related Articles