1. Ön kaplamalı plakaların hazırlanması
- Transfeksiyondan bir gün önce veya transfeksiyondan birkaç saat önce, 1 mg / mL'lik bir stok çözeltisinden% 30 etanol içinde 100 μg / mL'de bir kollajen tip I çözeltisi hazırlayın. 12 oyuklu bir plakanın oyuğu başına 250 μL ve 24 oyuklu bir plakanın oyuğu başına 125 μL ekleyin ve çözeltiyi kuyu yüzeyine yayın.
- Kollajen kuruyana kadar plakayı kültür başlığının altında kapaksız bırakın. Dulbecco'nun fosfat tamponlu tuzlu su (D-PBS) ile iki kez yıkayın.
NOT: Önceden kaplanmış plakalar satın alınabilir.
2. Transfeksiyon karışımının hazırlanması
NOT: siRNA'nın nihai konsantrasyonu 1 ila 100 nM arasındadır (12 oyuklu bir plakanın oyuğu başına 1 ila 100 pmol siRNA). MiR taklidinin son konsantrasyonu 10 nM'dir (10 pmol / kuyu). Hedef dışı etkilerden kaçınmak için deneye başlamadan önce her bir siRNA, miR taklidi veya diğer oligonükleotidin en iyi konsantrasyonunu belirleyin. Sonuçların istatistiksel analizini kolaylaştırmak için transfeksiyon deneylerini üç kopya halinde gerçekleştirin. Pipetleme sırasında normal kaybı hesaba katmak için tüm reaktifleri fazla hazırlayın.
- siRNA'yı (veya diğer oligonükleotidleri) geliştirilmiş Minimal Esansiyel Ortam ile pipetleyerek (hacim/hacim) karıştırın (Tablo 1). Oda sıcaklığında 5 dakika inkübe edin.
- Transfeksiyon reaktifini ve geliştirilmiş Minimal Esansiyel Ortamı siRNA'ya ekleyin ve karıştırmak için pipetleyin (Tablo 1). Oda sıcaklığında 20 dakika inkübe edin (bu süre zarfında bölüm 3'e geçin). Transfeksiyon karışımını kollajen kaplı plakanın her bir oyuğuna ekleyin.
3. 3T3-L1 adipositlerinin hazırlanması
- 100 mm'lik Petri kabındaki hücreleri D-PBS ile iki kez yıkayın. Hücrelere 5x tripsin ekleyin (100 mm'lik tabak başına 1 mL), tüm yüzeyi tripsin ile kapladığınızdan emin olun. 30 saniye bekleyin ve tripsini dikkatlice çıkarın.
- Petri kabını inkübatörde 37 °C'de 5-10 dakika inkübe edin. Hücreleri ayırmak için 100 mm'lik çanağa hafifçe vurun.
- Tripsini nötralize etmek için piruvat, 25 mM glikoz,% 10 FCS ve% 1 penisilin ve streptomisin içermeyen 10 ml DMEM ekleyin. Hücreleri ayırmak ve hücre süspansiyonunu homojenize etmek için ortamı dikkatlice yukarı ve aşağı pipetleyin.
- Bir Malassez sayma odası veya otomatik bir hücre sayacı kullanarak hücreleri sayın ve hücrelerin konsantrasyonunu 6.25 x 105 hücre / mL ortama ayarlayın. 12 oyuklu bir plakanın (5 x 105 hücreli) 800 μL'lik hücre süspansiyonunun/kuyucuğunun veya transfeksiyon karışımını içeren 24 oyuklu bir plakanın (2.5 x 105 hücreli) hücre süspansiyonunun/kuyucuğunun 400 μl'sini tohumlayın.
not: Bir adet 100 mm'lik Petri adiposit kabı, bir adet 12 oyuklu plakanın veya bir adet 24 oyuklu plakanın hazırlanmasına izin verecektir. 100 mm'lik bir tabak genellikle 6-7 x 106 adiposit içerir, bu da 12 oyuklu bir plakanın oyuğu başına 5 x 105 adipositlere karşılık gelir.
- Plakaları bir hücre kültürü inkübatöründe (% 7 CO2 ve 37 ° C) inkübe edin ve hücreleri 24 saat boyunca rahatsız etmeyin. Ertesi gün, süpernatanı piruvat, 25 mM glikoz,% 10 FCS ve% 1 penisilin ve streptomisin içermeyen taze DMEM ile dikkatlice değiştirin.
NOT: Hücreleri kollajen önceden kaplanmış 48 ve 96 oyuklu plakalara tohumlamak da mümkündür, ancak adipositlerin ayrılmasını önlemek için ortamı değiştirirken daha fazla önlem alın.
| Kuyu başına (12 oyuklu plaka) | Kuyu başına (24 oyuklu plaka) |
| Oligonükleotidler | 20 μL | 10 μL |
| (si-RNA, miR...) |
| Geliştirilmiş Minimal Esansiyel Orta | 20 μL | 10 μL |
| Transfeksiyon reaktifi | 5,6 μL | 2,8 μL |
| Geliştirilmiş Minimal Esansiyel Orta | 154,4 μL | 77,2 μL |
| Transfeksiyon karışımının toplam hacmi | 200 μL | 100 μL |
Tablo 1: 12 oyuklu ve 24 oyuklu plaka formatları için gerekli transfeksiyon reaktifleri.