Hayvan modellerini içeren tüm prosedürler, yerel kurumsal hayvan bakım komitesi ve JoVE veteriner inceleme kurulu tarafından gözden geçirilmiştir.
1. Hemositlerin Boyanması
- Anti-Croquemort antikoru ile immün boyama
- Cam slaytları seri olarak 10 dakika metanol içinde, %0,2 (h/h) Triton X-100 içeren PBS'de 10 dakika ve ardından PBS'de 10 dakika bekletin.
- Bloke etmek için hücrelere% 0.2 (h / h) Triton X-100 içeren PBS'ye 20 μL% 5 (h / v) tam domuz serumu monte edin. Slaytları oda sıcaklığında 20 dakika inkübe edin.
- Çözeltiyi cam slaytlardan çıkarın ve hücrelere% 0.2 (h / h) Triton X-100 içeren PBS'ye 20 μL anti-Croquemort antiserum (% 0.1 (h / h)) monte edin. Slaytları gece boyunca 4 °C'de inkübe edin.
- % 0.2 (h / h) Triton X-100 içeren PBS'de 10 dakika 5 kez ıslatın.
- Cam slaytları PBS'de 10 dakika bekletin.
- %0,2 (h/h) Triton X-100 ve %5 (h/h) tam domuz serumu içeren PBS'ye 20 μL alkalin fosfataz etiketli anti-sıçan IgG (%0,5 (h/h)) monte edin.
- % 0.2 (h / h) Triton X-100 içeren PBS'de 10 dakika 5 kez ıslatın.
- Cam slaytları 100 mM Tris-HCl, pH 9.5, 100 mM NaCl ve 50 mM MgCl2 içeren tamponda 10 dakika bekletin.
- 0.23 mg / mL 5-bromo-4-kloro-3-indolil-fosfat (BCIP), 0.35 mg / mL nitro mavi tetrazolyum (NBT), 100 mM Tris-HCl, pH 9.5, 100 mM NaCl ve 50 mM MgCl2 içeren fosfataz substrat çözeltisini hücreler üzerinde monte edin.
- Uygun boyama için hücreleri mikroskop altında gözlemleyin. Hemosit granüllerinde güçlü mor sinyaller göründüğünde, substrat çözeltisini çıkarın ve cam slaytları 10 mM Tris-HCl, pH 8.5 ve 1 mM EDTA'dan oluşan tampona batırın. Yaklaşık 5 - 10 dakika boyama önerilir.
2. Apoptotik Hücreleri TUNEL ile Stain
- Cam slaytları PBS'de 5 dakika bekletin.
- Yeni PBS ile tekrarlayın.
- Dengeleme tamponunu (Malzeme Tablosuna Bakın) hücrelere 10 dakika boyunca monte edin.
- Çözeltiyi cam slaytlardan çıkarın ve 5 μL terminal deoksinükleotidil transferaz ve 15 μL Reaksiyon Tamponu içeren 20 μL TdT çözeltisini 37 ° C'de 1 saat boyunca hücrelere monte edin.
- Çözeltiyi cam slaytlardan çıkarın ve slaytları 0,5 mL STOP/Wash tamponu ve 17 mL sudan oluşan tampona batırın.
- Slaytları PBS'de 3 kez 5 dakika bekletin.
- 20 μL Anti-Digoksigenin-Peroksidaz'ı oda sıcaklığında 30 dakika boyunca hücrelere monte edin.
- Cam slaytları PBS'de 5 dakika 4 kez bekletin.
- Cam slaytları 30 mL 50 mM Tris-HCl, 3,3'-diaminobenzidin tetrahidrklorür (DAB) tam bir mikro spatula içeren pH7.5 ve 30 saniye boyunca %0.002 (h/h) H2O2'den oluşan peroksidaz substrat çözeltisine batırın.
- Apoptotik hücreler kahverengiye boyanana kadar yukarıdaki adımı tekrarlayın. Peroksidaz reaksiyonunu durdurmak için cam slaytları suya batırın.
- Gözlem için hücreleri suyla kapatın.
3. Apoptotik Hücrelerin Fagositoz Seviyesini Ölçün
- Fagositoz seviyesini değerlendirmek için numuneleri ışık mikroskobu altında gözlemleyin. Croquemort pozitif hücreleri veya GFP pozitif hücreleri hemositler, TUNEL pozitif hücreleri apoptotik hücreler ve çift pozitif hücreleri fagositoz hemositler olarak sayın.
- Fagositik indeks, çift pozitif hücrelerin sayısının toplam Croquemort pozitif hücre veya GFP pozitif hücre sayısına oranı olarak tanımlanır. 300'den fazla hemosit görülmesi önerilir.