1. Damlacık üretimi ve PCR
>NOT: Tablo 1, demetillenmiş gen hedeflerinin multipleks amplifikasyonu için gerekli olan C-LESS, CD3Z ve Foxp3 genleri için çift söndürülmüş hidroliz probları ile birlikte ileri ve geri primerler hakkındaki bilgileri özetlemektedir.
- Ana karışımı Tablo 2'de anlatıldığı gibi hazırlayın.
- Enzim karışımı hariç ana karışımın tüm bileşenlerini çözün. Ana karışımı yukarı-aşağı pipetleyerek iyice karıştırın ve kısa bir süre aşağı döndürün.
- Uygun hacimde (1 μL) bisülfite dönüştürülmüş DNA'yı bir PCR tüpündeki ana karışıma ekleyin. Reaksiyonu yukarı-aşağı pipetleyerek karıştırın ve kısa bir süre aşağı döndürün.
- Tek kullanımlık akışkan borularını (ID 0.25 mm, OD 1.6 mm) PEEK bağlantı parçalarını kullanarak iki hassas cam şırıngaya (250 μL hacim) bağlayın.
- Bir hassas cam şırıngayı %5 floro-yüzey aktif madde içeren 250 μL taşıyıcı yağ ile önceden doldurun.
- Emülsifikasyon sırasında tüm numune hacminin dağıtılmasını sağlamak için 100 μL PCR karışımını yüklemeden önce başka bir hassas cam şırıngayı 50 μL taşıyıcı yağ ile önceden doldurun.
- Damlacık oluşumunu gerçek zamanlı olarak gözlemlemek ve kaydetmek için yüksek hızlı bir kamera ile donatılmış dik ışık mikroskobunun bir aşamasına bir damlacık mikroakışkan cihazı kurun.
- Önceden doldurulmuş şırıngaları programlanabilir şırınga pompasına yerleştirin ve bağlantı parçalarıyla PEEK rakorunu kullanarak (Malzeme Tablosuna bakın), şırıngaların borusunu damlacık mikroakışkan cihazının ilgili giriş kanallarının borusuna bağlayın.
- Boruyu damlacık üretecinin çıkışından 0.5 mL'lik bir PCR tüpünün içine yerleştirin.
- Şırınga pompasının akış hızını 2 μL/dk'ya ayarlayın ve elde edilen emülsiyonu toplamadan önce damlacık boyutunun stabilize olmasına izin verin.
- Emülsiyonu toplayın ve termal döngü için 75 μL'yi 0.2 mL'lik bir PCR tüpüne aktarın.
- Termal döngü sırasında damlacıkların birleşmesini önlemek için PCR tüpündeki yağ içeriğinin dağılmış fazın hacmiyle yakından eşleştiğinden emin olun.
- 0.2 mL PCR tüpünü bir termal döngüleyiciye yerleştirin ve döngü protokolünü aşağıdaki gibi gerçekleştirin: 95 °C'de 5 dakika ön ısıtma, ardından 15 saniye boyunca 95 °C'de 45 döngü denatürasyon ve 60 °C'de 30 saniye tavlama/uzatma.
Tablo 1: Primer ve hidroliz probu tasarımı.
| FOXP3 İleri | GGG TTT TGT TGT TAT AGT TTT TG |
| FOXP3 Ters | TTC TCT TCC TCC ATA ATA TCA |
| CD3Z İleri | GGA, TGG, TTG, TGG, TGA, AAA, GTG |
| CD3Z Ters | CAA, AAA, CTC, CTT, TTC, TCC, TAA, CCA |
| C-LESS İleri | TTG TAT GTA TGT GAG TGT GGG AGA GA |
| C-LESS Ters | TTT CTT CCA CCC CTT CTC TTC C |
| FOXP3 Probu | /56-FAM/CA ACA CAT C/ZEN/C AAC CAC CAT /3IABkFQ/ |
| CDZ3 Probu | /56-HEX/CC AAC CAC C/ZEN/A CTA CCT CAA /3IABkFQ/ |
| C-Less Prob | /56-CY5/CT CCC CCT C/ZEN/T AAC TCT AT/3IABkFQ/ |
Tablo 2: mdPCR için ana karışım tarifi.
| reaktif | Stok Çözümü | Ana Karışım Hacmi | Çalışma Konsantrasyonu |
| Tris-HCl | 1 AYLIK | 2 μL | 20 milyon |
| Kartal | 1 AYLIK | 10 μL | 100 milyon |
| MgCl2 | 25 milyon | 16 μL | 4 milyon |
| C-LESS Astarlar | 10 μM | 10 μL | Her biri 1 μM |
| CD3Z Astarlar | 10 μM | 10 μL | Her biri 1 μM |
| FOXP3 Primerler | 10 μM | 10 μL | Her biri 1 μM |
| C-LESS probu | 10 μM | 5 μL | 500 deniz mili |
| CD3Z probu | 10 μM | 5 μL | 500 deniz mili |
| FOXP3 probu | 10 μM | 5 μL | 500 deniz mili |
| HotStarTaq DNA Polimeraz | 5 Birim/μL | 8 μL | 0,4 Birim/μL |
| Bisülfit ile muamele edilmiş DNA Hedefi | değişken | değişken | değişken |
| Nükleaz İçermeyen Su | | değişken | |
| Toplam Hacim | | 100 μL | |