Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliğiniz gereklidir. Giriş yapın veya ücretsiz denemenizi bugün başlatın.

Yöntem makalesi

Murin Pankreatik Drenaj Lenf Nodlarından Düzenleyici T Hücresi Alt Kümelerinin Belirlenmesi

1.1K görüntüleme

8 Temmuz 2025

Bu makalede

Özet

Kaynak: Luo, Z., et al. Murin timus, pankreas drenajlı lenf nodu ve dalakta düzenleyici T hücresi alt kümelerinin akış sitometrisi kullanılarak belirlenmesi. J. Vis. Uzm.(2019)

Bu videoda, murin pankreas drenaj lenf düğümlerinden (PDLN'ler) tek hücreleri izole etmek için bir protokolü ve akış sitometrisi kullanarak tek hücreli popülasyondan düzenleyici T hücrelerinin (Treg'ler) karakterizasyonunu açıklıyoruz. Treg'ler, hücre yüzeyi belirteçleri CD4, CD25 ve Nrp1'in pozitif ekspresyonuna ve nükleer transkripsiyon faktörleri Foxp3 ve Helios'a dayanarak tanımlanır.

Protokol

Hayvan modellerini içeren tüm prosedürler, yerel kurumsal hayvan bakım komitesi ve JoVE veteriner inceleme kurulu tarafından gözden geçirilmiştir.

1. PDLN'den Tek Hücre İzolasyonu

  1. Bir raftaki 15 mL'lik konik bir tüpün üzerine 250 μm'lik steril bir metal ağ yerleştirin. Ağı 1 mL RPMI ile durulayın.
  2. Lenf düğümlerini metal ağa aktarın ve bir cımbız kullanarak ağdan öğütün. Hücreleri tüpe akıtmak için metal ağ üzerine 1 mL RPMI uygulayın. 3 kez daha tekrarlayın ve ağı çıkarın.
  3. Tüpleri 433 x g'da 4 ° C'de 5 dakika santrifüjleyin. Süpernatanı atın.
  4. Hücre peletini yaklaşık 5 mL RPM'de yeniden süspanse edin. Tüpleri RPMI ile doldurun.
  5. Tüpleri 433 x g'da 4 ° C'de 5 dakika santrifüjleyin. Süpernatanı atın.
  6. Hücre peletini yaklaşık 5 mL RPM'de yeniden süspanse edin. Tüpleri RPMI ile doldurun.
  7. Tüpleri 433 x g'da 4 ° C'de 5 dakika santrifüjleyin. Süpernatanı atın.
  8. Hücre peletini 2 mL RPM'de yeniden süspanse edin. 2 mL hücre süspansiyonunu, hücre süzgeci kapakları olan 5 mL yuvarlak tabanlı tüplere aktarın. Hücre süspansiyonunu hücre süzgeci kapaklarına uygulayın.

2. Akış Sitometrisi

  1. PDLN'lerden hücre süspansiyonlarını 433 x g'da 4 ° C'de 5 dakika boyunca santrifüjleyin. Süpernatanı atın.
  2. Hücreleri 100 μL akış sitometrisi boyama tamponunda (FACS tamponu) aşağıdaki yüzey antikorları ile boyayın: 0.75 μg / 100 μL FITC konjuge CD4 antikoru, 0.60 μg / 100 μL APC-H7 konjuge CD8 antikoru, 0.30 μg / 100 μL PE konjuge CD25 antikoru, 5 μL (1: 20) APC konjuge Nrp1 antikoru. Tüpleri buz üzerinde 40 dakika inkübe edin.
  3. Her tüpe 200 μL FACS tamponu ekleyin. Tüpleri 433 x g'da 4 ° C'de 5 dakika santrifüjleyin. Süpernatanı atın. Bir kez daha tekrarlayın.
  4. Hücre peletini 500 μL Geçirgenleştirme Fiksasyon Tamponu (PFB) içinde yeniden süspanse ederek hücreleri sabitleyin ve geçirgen hale getirin.
    not: PFB, 1 kısım Fiksasyon/Geçirgenleştirme Konsantresi ile 3 kısım Fiksasyon/Geçirgenleştirme Seyrelticisi karıştırılarak hazırlanır.
  5. Tüpleri gece boyunca buzdolabında 4 °C'de saklayın.
    not: 1 saatlik bir inkübasyon da işe yarar.
  6. Tüpleri 433 x g'da 4 ° C'de 5 dakika santrifüjleyin. Süpernatanı atın.
  7. Hücre peletini 500 μL Geçirgenleştirme Yıkama Tamponu (PWB) içinde yeniden süspanse edin. Tüpleri 433 x g'da 4 °C'de 5 dakika santrifüjleyin. Süpernatantı atın.
    not: PWB, Geçirgenleştirme Tamponunun (10x) distile suda 1:10 oranında seyreltilmesiyle hazırlanır.
  8. Hücreleri 100 μL PWB'de aşağıdaki hücre içi antikorlarla boyayın: 0.30 μg / 100 μL PE-Cy7-konjuge Foxp3 antikoru, 4 μL (1: 25) PacificBlue konjuge Helios antikoru. Tüpleri 1 saat buz üzerinde inkübe edin.
  9. Her tüpe 500 μL PWB ekleyin. Tüpleri 433 x g'da 4 ° C'de 5 dakika santrifüjleyin. Süpernatanı atın.
  10. Hücre peletini 500 μL PWB'de yeniden süspanse edin. Tüpleri 433 x g'da 4 ° C'de 5 dakika santrifüjleyin. Süpernatanı atın.
  11. Hücre peletini 300 μL FACS tamponunda yeniden süspanse edin.
  12. Hücreleri bir akış sitometresinde analiz edin.
  13. Tek hücreleri Yan Saçılma Alanı, Yükseklik ve Genişlik ve İleri Saçılma Alanı, Yükseklik ve Genişlik'e göre geçirin. Analiz için bir milyon olay çalıştırın.
  14. Deneylerin FCS dosyalarını dışa aktarın ve akış sitometrisi analizörü yazılımını kullanarak analiz edin.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

Herhangi bir çıkar çatışması beyan edilmedi.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
dev/dak-1640 dev/dakSigma-AldrichR0883-500ML
eBioscience Foxp3 / Transkripsiyon Faktörü-Boyama Tampon SetiThermoFisher (Termo Balıkçı)00-5523-00Fiksasyon / Geçirgenleştirme konsantresi, Fiksasyon / Geçirgenleştirme seyreltici ve geçirgenleştirme tamponu (10x) içerir
eBioscience Akış Sitometrisi Boyama TamponuThermoFisher (Termo Balıkçı)00-4222-26
CD4 Monoklonal Antikor (RM4-5), FITC, eBioscienceThermoFisher (Termo Balıkçı)11-0042-85
CD25 Monoklonal Antikor (PC61.5), PE, eBioscienceThermoFisher (Termo Balıkçı)12-0251-83
BD Pharmingen APC-H7 Sıçan antiMouse CD8aBD Biyolojik Bilimler560182
Fare Nöropilin-1 APC konjuge antikoruAr-Ge SistemleriFAB5994A
FOXP3 Monoklonal Antikor (FJK-16s), PE-Siyanin7, eBioscienceThermoFisher (Termo Balıkçı)25-5773-82
Pasifik Mavisi anti-fare/insan Helios AntikoruBiyo Efsane137220
Falcon 5 mL Yuvarlak Tabanlı Polistiren Test Tüpü, Hücre Süzgeci Geçmeli KapaklıCorning35223535 μm'lik bir naylon ağ, çift konumlu yaylı kapağa dahil edilmiştir
Tüp 15 mL, 120 mm x17 mm, PPSarstedt62.554.002
Akış sitometrisiBd
Akış sitometrisi analiz yazılımıInivai TeknolojileriAkış Mantık
Gazetesi Serisi Belediyesi adet

Etiketler

D zenleyici T H creleriAk SitometrisiH cre Y zey MarkerlarH cre i AntikorlarTek H cre S spansiyonuDoku DisosyasyonuPermeabilizasyon FiksasyonuCD4 CD25 Nrp1Foxp3 Helios