Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliğiniz gereklidir. Giriş yapın veya ücretsiz denemenizi bugün başlatın.

Yöntem makalesi

Primer Mast Hücrelerini Murin Periton Boşluğundan İzole Etme Tekniği

1.9K görüntülenme

8 Temmuz 2025

Bu makalede

Özet

Kaynak: Tsvilovskyy, V., et al. Periton Kaynaklı Mast Hücrelerinin İzolasyonu ve Ca2+-görüntüleme ve Degranülasyon Testleri ile Fonksiyonel Karakterizasyonu. J. Vis. Uzm. (2018).

Bu video, yetişkin farelerin periton boşluğundan olgun bağ dokusu tipi mast hücrelerini izole etmek için bir periton lavaj yöntemini göstermektedir. Periton boşluğundan primer immün hücrelerin bir karışımı izole edildikten sonra, uygun kültür koşulları altında mast hücrelerinin seçici proliferasyonu gerçekleştirilir.

Protokol

Hayvan modellerini içeren tüm prosedürler, yerel kurumsal hayvan bakım komitesi ve JoVE veteriner inceleme kurulu tarafından gözden geçirilmiştir.

>1. İntraperitoneal lavaj ile PMC izolasyonu

  1. Hücre izolasyonundan önce, Tablo 1'de listelenen malzemeleri hazırlayın.
  2. PMC izolasyonu için 8 ila 14 haftalık erkek fareler kullanın. Bir fareyi CO2 soluyarak ötenazi yapın ve refleks kaybıyla ölümü doğrulayın. Fareye %70 etanol püskürtün ve pimleri kullanarak (sırt tarafı aşağı) bir köpük blok üzerine sabitleyin. Künt kenar makası kullanarak farenin ventral derisini çıkarın. Periton boşluğuna zarar vermekten kaçının.
    not: Tipik olarak bu protokolü, C57BL / 6N suşu genetik geçmişine sahip fareler için kullanırız.
  3. 27 G iğne ile donatılmış 10 mL'lik bir şırınga kullanarak periton boşluğuna 7 mL buz gibi soğuk RPMI ortamı ve 5 ml hava enjekte edin. İğneyi peritonda dikkatlice itin ve herhangi bir organı delmeyin. Organ perforasyonu riskini azaltmak için epididimal yağ bölgesinde bir nokta kullanın.
  4. Enjeksiyondan sonra, periton hücrelerini RPMI ortamına ayırmak için fareyi 1 dakika sallayın. İç organlara zarar vermemek ve periton boşluğunu kanla kirletmemek için fareyi çok güçlü bir şekilde sallamayın.
  5. 10 mL'lik şırıngayı yeni bir 20 G kanül ile donatarak yeniden kullanın. Köpük bloğu eğerek ve diğer taraftan orta aspirasyonu kolaylaştırmak için tezgahın üzerine hafifçe vurarak iç organları bir tarafa kaydırın. 20 G'lik bir iğne yerleştirin, eğim verin ve iç organların tıkanmasını önlemek için sıvıyı karın bölgesinden nazikçe ve yavaşça (~ 0.5 mL / s) aspire edin. Mümkün olduğunca fazla sıvı toplayın (tipik olarak 5-6 mL).
  6. İğneyi şırıngadan çıkarın ve toplanan hücre süspansiyonunu buz üzerindeki bir toplama tüpüne aktarın. Görünür kan kontaminasyonu varsa bir numune tüpünü atın.
  7. Tüpleri hücre süspansiyonu ile ~ 300 x g'da 5 dakika santrifüjleyin. Steril bir başlık altında süpernatanı aspire edin. Her fare için, numune peletlerini 4 mL soğuk (4–10 °C) PMC Ortamında birleştirin ve hücre süspansiyonunu 25cm2'lik bir kültür şişesine aktarın. Büyüme faktörleri IL-3 ve SCF'yi sırasıyla 10 ng / mL ve 30 ng / mL'lik nihai konsantrasyonlara ekleyin. Hücreleri içeren şişeyi bir inkübatöre (37 °C ve% 5 CO2) yerleştirin ve bir sonraki prosedüre kadar ~ 48 saat inkübe edin.

Tablo 1: Adım 1 için malzemeler.

1buz
210 mL şırınga
327 G iğneler
420 gr iğne
5Strafor blok ve pimler
6Toplama tüpleri (50 mL Plastik Santrifüj Tüpleri)
7% 70 etanol
8RPMI Medium (Önceden soğutulmuş ve buz üzerinde tutulmuş)
9PMC Ortamı: RPMI Orta +% 20 FCS (Fetal Buzağı Serumu) +% 1 Penisilin Streptomisin çözeltisi (Kalem-Strep)
10Dulbecco'nun fosfat tamponlu salin - DPBS (Ca2 + ve Mg2 + olmadan)
11Kültür Mataraları (25 cm)
12Büyüme faktörleri stok çözeltileri (IL-3: 1 μg/μL; SCF: 2,5 μg/mL)
13Serolojik pipetler (10 mL)
14Pipet uçları steril (20–200 μL)
15Hemositometre
16Tezgah Üstü Santrifüj
17Makas ve forseps
18Fareler için CO2 odası
19Açık steril başlık
20Kapalı steril başlık
21Hücre inkübatörü (37 °C ve %5 CO2)
22Transfer pipetleri (20–200 μL)

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

Herhangi bir çıkar çatışması beyan edilmedi.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
RPMI OrtaTermo Bilimsel21875034
DPBS (DPBS)Sigma-Aldrich14190144
FcsTermo BilimselR92157
IL-3 (İngilizceAr-Ge Sistemleri403-ML
ScfTermo BilimselPMC2115
Penstrep BelediyesiTermo Bilimsel15140122
Kültür Mataraları (25 cm)Greiner Bio-Bir69160
15 mL Plastik Santrifüj TüpleriSarstedt6,25,54,502
Tezgah Üstü SantrifüjHeraeus (Heraeus)Megafüj 1.0R
Gazetesi Serisi ) Serisi Belediyesi

Etiketler

Mast Hücresi İzolasyonuPeritoneal LavajHücre KültürüSitokin UygulamasıSantrifüj ProsedürüIL3 SCF Büyüme FaktörleriHücre Proliferasyonuİmmün Hücre İzolasyonu