NOT: Bu protokol için uygun bir memeli ifade vektörü kullanılmalıdır. Burada, iki ifade kaseti içeren tek bir yapı kullanılır (yani, ağır ve hafif zincir ifadesi ayrı destekleyiciler tarafından yönlendirilir). Trastuzumab ağır ve hafif zincirleri daha önce vektöre klonlanmıştı. Bu vektör, Andrew Beavil'in kar amacı gütmeyen bir plazmid deposu aracılığıyla elde ettiği bir hediyeydi.
1. Vektör DNA'nın Kurtarılması ve Ölçek Büyütme
NOT: Vektör DNA, Escherichia coli XL-1 Blue suşunda yumuşak bir agar bıçak kültürü olarak alındı; vektör higromisin direnci taşır.
- Bıçak kültürünün yumuşak agarına steril bir aşılama bıçağı veya halkası yerleştirin, ardından izole koloniler için 75 μg / ml higromisin ile hazırlanmış bir Luria Bertani (LB) agar plakası çizin. Plakayı 37 °C'de 18-24 saat inkübe edin.
- Tek bir koloniyi 75 μg/ml higromisin içeren 5 ml Müthiş et suyuna (TB) aşılayın. Kültürü 37 ° C'de 18-24 saat boyunca 225 rpm'de çalkalayarak inkübe edin.
- 800 μl kültürü 200 μl %80 gliserol ile bir kriyoviyalde nazikçe karıştırarak ve -80 °C'de dondurarak bir vektör DNA gliserol stoğu hazırlamak için gece boyunca kültürü kullanın.
- Şaşkın bir çalkalayıcı şişesinde 75 μg / ml higromisin içeren 100 ml TB'ye 100 μl gece kültürü ekleyin (ör., 1 / 1.000 seyreltme). Kültürü 37 ° C'de 18-24 saat boyunca 225 rpm çalkalama ile inkübe edin.
- Gece boyunca kültürden sonra, deoksiriboz nükleik asidi (DNA), aşağıdaki istisna dışında, üreticinin midi / maxi hazırlama kiti talimatlarına göre ekstrakte edin ve saflaştırın; son adımda, DNA'yı su ile elüte edin veya yeniden süspanse edin (pH 7.0-8.5).
- 260 ve 280 nm'de absorbans okumaları ile DNA'nın konsantrasyonunu ve saflığını kontrol edin, ardından DNA'yı -20 °C'de saklayın.
NOT: İsteğe bağlı (şiddetle tavsiye edilir): Kimliği doğrulamak için vektöre özgü primerler kullanarak DNA dizisi.
2. HEK-293 Hücrelerinin Kararlı Transfeksiyonu
- HEK-293 hücrelerini (süspansiyon hücreleri) Erlenmeyer şişelerinde %0.1 iyonik olmayan yüzey aktif madde ile desteklenmiş serumsuz ortamda standart protokollere göre büyütün ve koruyun. Her dört günde bir 2 x 105 hücre / ml ve alt kültürde muhafaza edin. 37 °C'de %5 karbondioksit (CO2) ve 120 rpm dönüş ile kültür hücreleri.
NOT: Hücreler, transfeksiyondan en az 4 gün ve en fazla 4 hafta boyunca kültürde kalmış olmalıdır. Serum içerikli besiyerlerinde tek tabaka halinde büyütülen HEK-293 hücreleri de bu işlem için kullanılabilir.
- Transfeksiyondan bir gün önce,% 10 ısıyla inaktive edilmiş fetal sığır serumu (FBS) ile desteklenmiş 2 ml Dulbecco'nun Modifiye Kartal Ortamı (DMEM) içinde 12 oyuklu bir plakanın kuyucuklarında 3 x 105 hücre / ml'de HEK-293 hücrelerini tohumlayın. Transfeksiyon gününde, hücrelerin% 80-90 birleşme noktasına ulaştığını kontrol edin
- DNA ve polietilenimi (PEI) transfeksiyon ortamında ayrı ayrı seyreltin ve ardından bunları karıştırın.
- Oyuk başına 1.25 μg vektör DNA'yı (12 kuyu için 15 μg) 300 μl transfeksiyon ortamında seyreltin. Oda sıcaklığında 5 dakika inkübe edin.
- 2.5 μl 1 mg / ml PEI çözeltisini (12 kuyu için 30 μl, yani DNA'nın PEI'ye 1: 2 oranı) 300 μl transfeksiyon ortamında seyreltin. Oda sıcaklığında 5 dakika inkübe edin.
- Seyreltilmiş PEI'ye seyreltilmiş DNA ekleyin, hafifçe karıştırın ve oda sıcaklığında 15 dakika inkübe edin.
- Plakanın her bir oyuğuna damla damla 50 μl DNA / PEI karışımı ekleyin. Transfeksiyon karışımını dağıtmak için plakayı hafifçe sallayın, ardından plakayı 24 saat boyunca 37 °C, %5CO2'ye yerleştirin.
- Kuyucuk başına 50 μg / ml higromisin B ekleyin ve plakayı 10 gün boyunca 37 ° C,% 5 CO2'ye getirin.
NOT: 10. Günde, transfekte edilmemiş hücreler ölmüş ve plakanın yüzeyinden ayrılmış olacak, oysa stabil şekilde transfekte edilmiş hücreler canlı olacak ve plakaya bağlanacaktır.
- Kuyucuklardaki ortamı 1/4 hacim serumsuz ortam ve% 10 FBS ile desteklenmiş 3/4 hacim DMEM ile değiştirin (ör. 0.5 ml serumsuz ortam + 1.5 ml DMEM =% 7.5 nihai serum konsantrasyonu) ve 4 gün boyunca inkübe edin.
- Kuyucuklardaki ortamı 1/2 hacim serumsuz ortam ve% 10 FBS ile desteklenmiş 1/2 hacim DMEM ile değiştirin (ör. 1 ml serumsuz ortam + 1 ml DMEM =% 5 nihai serum konsantrasyonu) ve 4 gün boyunca inkübe edin.
- Kuyucuklardaki ortamı 3/4 hacim serumsuz ortam ve% 10 FBS ile desteklenmiş 1/4 hacim DMEM ile değiştirin (ör. 1.5 ml serumsuz ortam + 0.5 ml DMEM =% 2.5 nihai serum konsantrasyonu) ve 4 gün inkübe edin.
- Kuyucuklardaki ortamı% 0.1 iyonik olmayan yüzey aktif madde (yani% 0 nihai serum konsantrasyonu) ile takviye edilmiş 2 ml serumsuz ortam ile değiştirin ve 4 gün inkübe edin.
NOT: Serumsuz adaptasyon sırasında hücreler üzerinde 50 μg / ml higromisin B seçici basıncını koruyun. Serumsuz ortama adapte edilen hücreler, kuyucukların yüzeyinden ayrılır ve süspansiyon halinde kümelenebilir. 50 μg/ml higromisin B ek takviyesi ile kültür koşulları için adım 2.1'e bakın.
- Bir pipet kullanarak, 12 oyuklu plaka ve havuz hücrelerindeki süspansiyon kültürlerini ayrı bir tüpe nazikçe karıştırın.
- Bir hemositometre kullanarak, havuzlanmış hücreleri ve tohumları 30 ml serumsuz ortamda 2 x 105 hücre / ml'de bir Erlenmeyer şişesinde numaralandırın. 37 ° C'de% 5 CO2 ve 120 rpm rotasyon ile kültür hücreleri. Alt kültür ve her dört günde bir genişleyin.
- Sıvı nitrojende kriyoprezervasyon için 1 x 107 hücre/flakonda 10 flakon elde etmek için kültür boyutunu gerekli hücre yoğunluğuna genişletmeye devam edin. Hücreleri% 10 dimetilsülfoksit (DMSO) içeren serumsuz ortamda dondurun.
NOT: Antikor içeren şartlandırılmış ortam, protein üretimini doğrulamak için her bir alt kültürde hasat edilebilir veya saflaştırma koşullarını optimize etmek için kullanılabilir. Şartlandırılmış ortamı hasat etmek ve alt kültür için hücreleri korumak için, kültürü 5 dakika boyunca 300 x g'da santrifüjleyin, ardından süpernatanı 0.22 μm'lik bir filtreden filtreyle sterilize edin. Filtrelenmiş süpernatant, 1-2 hafta boyunca 4 ° C'de veya daha uzun süreli depolama için -20 ° C'de tutulabilir.
3. Toplu Aşırı Büyüme Kültüründen Büyük Ölçekli Antikor Üretimi
NOT: Antikor üretimi, mevcut hücrelerin, kurulacak toplu aşırı büyüme kültürü hacmine bağlı olarak gerekli hücre yoğunluğuna genişletildiği 2.11 adımından itibaren takip edilebilir. Aksi takdirde, kriyoprezervasyondan çözülen hücreler, uygun bir hücre yoğunluğuna ve hacmine genişletildikten sonra bu aşamada başlar. Antikor üretimini optimize etmek için çeşitli kültür takviyeleri kullanılabilir; Antikor verimini artırmak için tripton kullanımı bu protokolde gösterilmiştir.
- İki Erlenmeyer şişesinde 100 ml serumsuz ortamda 2 x 105 hücre / ml'lik tohum hücreleri (takviye edilmemiş ve besin takviyeli kültürlerden elde edilen antikor verimlerini karşılaştırmak için). 37 °C, %5 CO2 ve 120 rpm'de kültür.
- 24 saat sonra, besin takviyesi yapılan kültüre% 0.5'lik bir nihai konsantrasyona tripton ekleyin. Takviye edilmemiş kültürün hacmini serum içermeyen medya ile eşitleyin.
- 8. günden itibaren, hücre canlılığını izlemek için bir hemositometre kullanarak kültürlerin hücre sayımlarını günlük olarak gerçekleştirin. Hücre canlılığı% 80'den az olduğunda kültür süpernatantlarını hasat edin.
- Kültürlerin 15 dakika boyunca 3.000 x g'da santrifüjlenmesiyle süpernatanı hasat edin, ardından süpernatanı (antikor içeren) 0.22 μm'lik bir filtreden filtreyle sterilize edin. Süpernatanları 4 °C'de (kısa süreli) saklayın veya -20 °C'de (uzun süreli) dondurun.