$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
1. Sabit hücrelerde MRC (mitokondriyal solunum zinciri) kompleks alt birimlerinin ve TFAM'ın (mitokondriyal transkripsiyon faktörü A) akış sitometrisi ölçümü
- Kültür periyodunun sonunda, hücre ayrışma reaktifini ekleyerek hücreleri (~ 10 6 ) ayırın; daha sonra hücreleri 15 mL'lik bir tüpte toplayın ve toplayın. Hücreleri fosfat tamponlu salin (PBS) (1x) ile santrifüjleyerek 300 × g'da 5 dakika santrifüjleyerek iki kez yıkayın.
- Hücreleri oda sıcaklığında (RT) 10 dakika boyunca% 1.6 paraformaldehit (PFA) (15 mL'lik bir tüpte 1.6 mL% PFA) içinde sabitleyin. Hücreleri PBS (1x) ile santrifüjleyerek 300 × g'da 5 dakika santrifüjleyerek iki kez yıkayın.
- Hücreleri buz gibi %90 metanol (15 mL'lik bir tüpte 1 mL %90 metanol) ile -20 °C'de 20 dakika boyunca geçirgen hale getirin.
- Numuneleri 0.3 M glisin,% 5 keçi serumu ve% 1 sığır serum albümini (BSA) - PBS'de (1x) Fraksiyon V (15 mL'lik bir tüpte 1 mL bloke edici tampon) içeren bloke edici tamponda bloke edin. Hücreleri PBS (1x) ile iki kez santrifüj ederek yıkayın.
- Hücreleri aşağıdaki birincil antikorlarla 30 dakika boyunca inkübe edin: kompleks I alt biriminin ölçümü için anti-NDUFB10 (1: 1.000), kompleks II alt biriminin ölçümü için anti-süksinat dehidrojenaz kompleksi flavoprotein alt birimi A (SDHA, 1: 1.000) ve kompleks IV alt biriminin ölçümü için anti-COX IV (1: 1.000) ve Alexa Fluor 488 (1: 400) ile konjuge anti-TFAM (mitokondriyal transkripsiyon faktörü A) antikoru. Alexa Fluor 488 (1:400) ile konjuge edilmiş anti-TOMM20 (dış mitokondriyal membran 20'nin translokazı) antikoru ile 30 dakika boyunca aynı sayıda hücreyi ayrı ayrı boyayın (15 mL'lik bir tüpte 1 mL birincil antikor çözeltisi; antikorlar hakkında ayrıntılar için Malzeme Tablosuna ) bakın).
- Hücreleri PBS (1x) ile bir kez santrifüjleme ile 300 × g sıcaklıkta 5 dakika boyunca yıkayın. NDUFB10, SDHA ve COX IV tüplerine ikincil antikor (1:400) ekleyin ve hücreleri bu solüsyonlarla 30 dakika inkübe edin.
- Hücreleri 300 × g sıcaklıkta 5 dakika santrifüjleyerek PBS (1x) ile bir kez yıkayın. Tüplerde yaklaşık 100 μL bırakarak süpernatanları aspire edin. Hücre peletlerini 300 μL PBS'de (1x) yeniden süspanse edin. Hücreleri buz üzerinde karanlıkta tutulan 1.5 mL mikrosantrifüj tüplerine aktarın.
- Akış sitometresindeki hücreleri analiz edin (3 mavi ve 1 kırmızı lazer konfigürasyonu ile). 1/1 bant geçiren filtre kullanarak filtre 530'deki (FL30) sinyalleri algılayın.