Yöntem makalesi

Fare Beyin Dokusundan Hücre Zarı Proteinlerinin Palmitoilasyon Durumunun Değerlendirilmesi

8 Temmuz 2025

Bu makalede

Özet

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Kaynak: Speca, D. J., et al. Beyin zarı proteinlerinin palmitoilasyonunun kantitatif tayini için asil-PEGyl değişim jel kaydırma testi. J. Vis. Uzm. (2020).

Video, fare beyin dokusundan izole edilen hücre zarı proteinlerinin palmitoilasyon durumunun analizini göstermektedir. İşlem, palmitoillenmemiş sisteinlerin açığa çıkarılmasını ve bunların bloke edilmesini, daha sonra palmitoillenmiş sisteinlere bağlanan ve izole edilen proteinlerin palmitoilasyon durumunun değerlendirilmesine yardımcı olan bir polimer kullanılmasını içerir.

Protokol

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Hayvan örneklerini içeren tüm prosedürler, uygun hayvan etik inceleme komitesi tarafından gözden geçirilmiş ve onaylanmıştır.

1. Fare beyin zarlarının hazırlanması

  1. Bir giyotin aparatı kullanarak farenin kafasını kesin ve beynini hızlı bir şekilde inceleyin (diseksiyon işlemi sırasında meydana gelebilecek palmitoilasyon değişikliklerini en aza indirmek için mümkünse <1 dakika içinde). Buz üzerinde bir cam homojenizatörde (~12 vuruş) 10 mL homojenizasyon tamponunda (Tablo 1) hemen homojenize edin.
  2. Lizatları 4 ° C'de 1.400 x g'da 15 dakika santrifüjleyin. Süpernatanı buz üzerindeki yeni bir tüpe aktarın. Peleti (~ 6 vuruş) eşit hacimde homojenizasyon tamponunda yeniden süspanse edin ve 4 ° C'de 10 dakika boyunca 710 x g'da santrifüjleyin.
  3. Adım 1.2'deki süpernatanları birleştirin ve 4 ° C'de 20 dakika boyunca 40.000 x g'da santrifüjleyin.
  4. Süpernatanı (sitozolik fraksiyon) atın ve peletlenmiş membran (P2) fraksiyonunu homojenizasyon tamponunda yeniden süspanse edin.
    not: Numuneler hızlı dondurulabilir ve daha sonra kullanılmak üzere -80 °C'de saklanabilir.
  5. Protein seviyelerini ölçmek için bir bikinkoninik asit (BCA) testi yapın. Asil-PEGil değişim jel kayması (APEGS) testi için, 1.5 mL'lik bir tüpte 470 μL tampon A (Tablo 1) hacminde ~ 100−200 mg protein (maksimum 250 mg) ile başlayın. Çözünmeyen proteini çıkarmak için 25 ° C'de 10 dakika boyunca >13.000 x g'da sonikat ve santrifüjleyin. Çözünmüş proteini yeni bir 1.5 mL tüpe aktarın.

2. Asil-PEGil değişimi jel kayması (APEGS) testi

  1. Disülfür bağlarını bozun ve serbest sisteinleri bloke edin.
    1. 25 mM tris (2-karboksietil) fosfin (TCEP; 25 μL, bir stok çözeltisinden eklenir; Tablo 1) 55 ° C'de 60 dakika boyunca.
    2. 50 mM N-etilmaleimid (NEM; 12.5 μL, bir stok çözeltisinden eklenir; Tablo 1) 3 h.
      için oda sıcaklığında not: Reaksiyon gece boyunca uzatılabilir.
  2. Kloroform metanol (CM) çökeltme işlemini gerçekleştirin.
    1. Protein çözeltisini 1.5 mL'lik tüpten, sallanan bir kova rotorunda mütevazı bir hızda santrifüjlenebilen bir polipropilen veya cam tüpe aktarın. 5 mL'lik bir tüp idealdir. Dört hacim (2 mL) metanol (MeOH) ekleyin ve kısaca girdap yapın.
    2. İki hacim (1 mL) kloroform ekleyin ve kısaca girdap yapın.
    3. Üç hacim (1.5 mL) deiyonize su (dH2O) ekleyin ve kısaca girdaplayın.
    4. Numuneleri 3.000 x g'da 30 °C'de 25 dakika boyunca sallanan bir kova rotorunda santrifüjleyin.
    5. Üst fazı dikkatlice çıkarın ve atın.
    6. 3 hacim (1.5 mL) MeOH ekleyin ve opak proteinli krepi parçalamamaya dikkat ederek nazikçe ama iyice karıştırın.
    7. Sallanan bir kova rotorunda 25 ° C'de 10 dakika boyunca 3.000 x g'da santrifüjleyin.
    8. Bir cam serolojik pipet kullanarak, protein krepini bozmadan üst fazın mümkün olduğunca çoğunu çıkarın.
    9. Peleti 1 mL MeOH ile dikkatlice durulayın.
    10. Peleti en az 10 dakika havayla kurutun
      not: Kurutulmuş pelet -20 °C'de saklanabilir.
  3. Hidroksilamin (NH2OH, HAM) ile palmitoil-tiyoester bağlarının bölünmesini gerçekleştirin.
    1. Protein çökeltisini 125 μL tampon A'da yeniden süspanse edin ve kısaca sonikat yapın. Çözünmeyen materyali çıkarmak için >13.000 x g'da 25 ° C'de 10 dakika santrifüjleyin. Çözünmüş proteini yeni bir 1.5 mL tüpe aktarın.
    2. 375 μL tampon H (HAM +; Tablo 1) veya tampon T (HAM-; Tablo 1) ve numuneleri 25 ° C'de 60 dakika inkübe edin.
  4. Adım 2.2.
    'da açıklanan CM çökelmesini tekrarlayın not: Kurutulmuş pelet -20 °C'de saklanabilir.
  5. Korumasız sisteinlere mPEG ekleyin.
    1. Pelet, 10 mM TCEP içeren 100 μL tampon A'da yeniden süspanse edin. 1,5 mL'lik bir tüpe aktarın.
      not: CM çökeltme adımları sırasında önemli miktarda protein kaybının meydana gelmesi normaldir. Sonraki tüm adımlar, protein hacmini maksimum ~ 120−130 μL ile sınırlayan 1.5 mL'lik bir tüpte gerçekleştirilecektir. Bu, son CM çökeltmesi sırasında protein kaybını azaltacaktır.
    2. 20 mM mPEG-5k (25 μL, bir stok çözeltisinden eklenir; Tablo 1) protein örneğine ve pipetleme ile karıştırın. Uçtan uca rotasyonla 25 ° C'de 60 dakika inkübe edin.
    3. Dahil edilmemiş mPEG-5k'yi çıkarmak için, bu ayarlanmış hacimleri kullanarak adım 2.2'de açıklandığı gibi CM çökeltmesini gerçekleştirin: 4 hacim MeOH (500 μL), 2 hacim kloroform (250 μL) ve 3 hacim dH2O(375 μL). 25 ° C'de 10 dakika boyunca >13.000 x g'da santrifüjleyin.
    4. Kalın, topaklanan kreplerden kaçınarak üst fazı daha önce olduğu gibi dikkatlice çıkarın. 1 mL MeOH ekleyin ve nazikçe ama iyice karıştırın. 25 ° C'de 10 dakika boyunca >13.000 x g'da santrifüjleyin.
    5. Süpernatanı dikkatlice çıkarın ve peleti 1 mL MeOH ile durulayın. 25 ° C'de 10 dakika boyunca >13.000 x g'da santrifüjleyin. Havayla kuruyan pelet.
      >not: Kurutulmuş pelet -20 °C'de saklanabilir.
    6. Kurutulmuş peleti 50 μL tampon A içinde (TCEP veya herhangi bir indirgeyici madde olmadan) yeniden süspanse edin.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Tablo 1: APEGS testi için kullanılan çözeltiler. Homojenizasyon tamponu ve tampon A önceden hazırlanabilir; bununla birlikte, kullanmadan hemen önce proteaz inhibitörleri ve fenilmetilsülfonil florür (PMSF) ekleyin. Diğer tüm çözeltiler taze olarak hazırlanmalıdır.

TamponBileşenlerÇalışma conc.<...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
Herhangi bir çıkar çatışması beyan edilmemiştir.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
Hidroksilamin (HAM) ThermoFisher 26103
Metoksi-PEG-(CH2)3NHCO(CH2)2-MAL (mPEG)NOFME-050MAMW ~5000 kDa
MikrofüjEppendorf5415R veya eşdeğer ekipman
N-etilmalamid (NEM)Calbiochem34115Son derece toksik
Dansitometri için optik görüntüleyiciAzure BiosystemsSafir Biyomoleküler Görüntüleyici veya eşdeğer ekipman
Kapaklı polipropilen tüplerFisher Bilimsel14-956-1D
Serolojik pipetler (cam)Fisher Bilimsel13-678-27D
Masa üstü santrifüjBeckmanAllegra X-15R veya eşdeğer ekipman
Tris(2-karboksietil)fosfinhidroklorür (TCEP)EMD Millipore580560

Yeniden basım ve izinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya şekillerini yeniden kullanmak için izin iste

İzin iste

Etiketler

Kloroform Metanol kt rmeSistein ModifikasyonuPolimer Ba lanma DeneyiProtein zolasyonuTiyoester KesimiTranslasyon Sonras ModifikasyonBiyokimyasal Analiz

İlgili makaleler