Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliğiniz gereklidir. Giriş yapın veya ücretsiz denemenizi bugün başlatın.

Yöntem makalesi

Akım Sitometri ve Otomatik Manyetik Aktif Hücre Sıralama (AutoMACS) kullanarak Naive ve Pankreas Tümör taşıyan fareler ile myeloid türevi bastırıcı hücreler (MDSC) hazırlanması

25.8K görüntüleme

⸱

DOI:

10.3791/3875

⸱

18 Haziran 2012

 ,  ,  , 
1Department of Molecular Medicine, University of South Florida Morsani College of Medicine

Bu makalede

Özet

Bu myeloid türevi bastırıcı hücreler (MDSC) işaretleyicidir ve Gr-1 zenginleştirmek için hızlı ve kapsamlı bir yöntemdir + lökositlerin. Bu yöntem uygulanabilir Gr-1 için zenginleştirmek için sıralama akım sitometri ve AutoMACS Hücre kullanır + lökositlerin In vivo Ve In vitro Deneyleri.

Özet

MDSC olgunlaşmamış makrofajlar, dendritik hücreler ve paraziter enfeksiyon, inflamasyon, travmatik stres, Graft-versus-host hastalığı, diyabet ve kanser de dahil olmak üzere 1-7 patolojik durumlarda lenfoid organlarda birikir granülosit heterojen bir nüfus vardır. Farelerde, MDSC ekspres Mac-1 (CD11b) ve Gr-1 (Ly6G ve Ly6C) yüzey antijeni 7. Bu MDSC de önemli ölçüde genişletilmiş, çeşitli tümör taşıyan konaklar incelenmektedir dikkat ve 7-10 naif muadillerine göre anti-tümör immün yanıtı bastırmak için önemlidir. Ancak, patolojik durumuna bağlı olarak, bastırma 11,12 ile farklı mekanizmaları ve hedefleri ile MDSC farklı alt nüfusları vardır. Bu nedenle, canlı MDSC popülasyonlarının etkin bir yöntem izole etmek için in vitro ve in vivo bastırma onların farklı moleküler mekanizmalar durulaştırmada önemlidir.

Son zamanlarda, Ghansah grubu, bir mürin pankreas kanseri modelinde MDSC genişlemesi rapor etmiştir. Bizim tümör taşıyan MDSC homeostazının kaybı görüntülemek ve naif MDSC 13 oranla baskılayıcı fonksiyonu artmıştır. MDSC yüzdeleri naif vs tümörü taşıyan farelerin lenf bölümlerinde önemli ölçüde azdır. Bu genellikle bu MDSC doğru karşılaştırmalı analizleri engellemektedir büyük bir uyarı vardır. Bu nedenle, önceden Floresans Aktif Hücre Sıralama (FACS) kadar naif farelerden Gr-1 + lökositleri zenginleştiren saflık, canlılığı artırır ve önemli ölçüde sıralama zamanı azaltır. Bu sıralama hızlı FACS için bolca bulunur Ancak, tümör taşıyan farelerin Gr-1 + lökositlerin zenginleştirme isteğe bağlıdır. Bu nedenle, bu protokol, biz MDSC işaretleyicidir ve zamanında MDSC sıralama için naif farelerin dalak gelen Gr-1 + lökositleri zenginleştiren son derece etkili bir yöntem tarif. İmmünokompetent C57BL / 6 fare mürin Panc02 ce ile inoküle edilmiştirLLS subkutan naif fareler 1XPBS alırsınız oysa. Yaklaşık 30 gün aşılama sonrası; dalak hücre ayrışma elek kullanarak tek hücre süspansiyonları içine hasat ve işlenir. Splenositlerin sonra Eritrosit (RBC) parçalanır ve bu lökositlerin bir kısım Akım Sitometri kullanarak immünfenotip MDSC yüzdeleri Mac-1 ve Gr-1 karşı florokrom-konjuge antikor kullanılarak boyandı edilir. Paralel bir deneyde, naif farelerin tüm lökositlerin otomatik Manyetik Aktif Hücre Sıralama (autoMACS) Pro Separator kullanarak PE-mikro inkübe ve olumlu seçilen floresan konjuge Gr-1 antikorları ile boyanan. Sonra, Gr-1 + lökositlerin bir kısım Akım Sitometri kullanarak MDSC oranlarda artış tanımlamak için Mac-1 antikorları ile boyanan. Şimdi, bu Gr1 + zenginleştirilmiş lökositler in vivo ve in vitro (naif vs tümör taşıyan) karşılaştırmalı analizlerde kullanılmak üzere MDSC sıralama FACS hazır

Protokol

Başlamadan önce, aşağıdaki çözümleri hazırlamak:

% 3 Boyama Media (SM):

1X Phosphate Buffer Saline -3% Fetal Bovine Serum (FBS) (PBS)

MACS Buffer (MB):

- 1XPBS içinde Bovine Serum (BSA) 0.5% Albumin

1. Fare ile Hasat dalak

  1. (; TB tümör taşıyan) subkutan 1.5 x Panc02 10 5 fare hücrelerini 100 ul 1x PBS asılı olan yaş C57BL 6-8 hafta / 6 fareleri (Harlan) enjekte edilir. Kontrol fareler (naif) 100 ul 1XPBS alırsınız.
  2. Yaklaşık 4 hafta sonra enjeksiyon, karbon dioksit asfiksisi ile farelerde euthanize.
  3. Forseps ve makas kullanılarak künt diseksiyon ile farelerin Hasat dalak sonra denge ağırlıklarından yararlanılarak. Ayrı yerde dalak, 1 x PBS içeren 50 ml'lik konik tüpler etiketli.

2. Tek hücreli Suspensio üretdalak gelen lökositler n

Tüm işlemler bir Biyolojik Güvenlik Hood ve buz üzerinde tutulmalıdır hücreleri ve antikorların altında steril bir ortamda yapılmalıdır.

  1. Dibe doğru bardağı ağzına örgü ekran ekleyerek hücre ayrışma elek birleştirin. Sonra, oluklu tarafı dişli alana istinat halkası eklemek ve böylece yerinde ekranı tutan istinat bileziğini sıkmak için halka tuşunu kullanın. 10 ml 1 x PBS içeren Petri içinde monte elek yerleştirin.
  2. Havuz dalak ve kullanım cam havaneli hücre ayrışma elek mesh ekrana ve Petri kabına dalak öğütmek için. Farelerin her tedavi grubu için tekrarlayın.
  3. Bir 70 um hücre süzgecinden ve 5 ml serolojik pipet kullanılarak bir 50 ml konik tüpe Filtre hücre süspansiyonu. 5 dakika 12.000 rpm (250-300 xg) santrifüjleyin.
  4. Dalak başına 5 ml 1 x RBC parçalama tamponunda süpernatan ve Pastör pipetiyle pelet Kaldır. Pipet yukarı ve aşağı şiddetle. 5 dk için oda sıcaklığında inkübe edilir. 1 x 20 ml PBS ilave edilerek reaksiyon durdur. Pipet yukarı ve aşağı şiddetle. 5 dakika 12.000 rpm (250-300 xg) santrifüjleyin.
  5. 20 ml steril 1 x PBS süpernatan ve Pastör pipetiyle pelet çıkarın. Pipet yukarı ve aşağı şiddetle.
  6. 50 ul 5x10 5-1x10 6 hücreleri (- 2x10 7 hücre / ml 1x10 7 hücre / ml) 'e denk olacak şekilde tripan mavi ve% 3 SM istenen konsantrasyonda bir hemasitometre ile Pastör pipetiyle kullanılarak hücreleri hesaplama.

3. Akım Sitometri kullanarak MDSC Hücre yüzey Boyama / İmmünofenotipleme

  1. (; Mac-1-FITC; Gr-1-APC ve DAPI No Leke, NS) kontrolü ve dengeleme kontroller için deneysel örnekleri ve tek bir leke için bir 96-kuyucuklu V alt levhanın kuyuları etiketlemek.
  2. 96-kuyulu plakalı V-altlı in / kuyu kendi kuyucuklara splenositlerin 50 ul eşdeğer 5x10 5-1x10 6 hücreleri ekleyin. Santrifüj5 dakika 12.000 rpm (250-300 xg) plakası.
  3. Buz üzerinde 1.5 ml mikrosantrifüj tüp,% 3 SM inceltilmiş Fare BD Fc Bloğu (Sıçan anti-fare CD16/32 monoklonal antikor) ve "Master Mix" (MM) hazırlayın. Bir başlangıç ​​noktası olarak, başına iyi, 50 ul son bir birim için% 3 SM 1 mikrogram Fc Blok kullanın.
  4. Dikkatle hücre peletlerin kesinti olmadan bir atık konteyner veya lavabo üzerinde, üzerinde hızla geri ters plakası tarafından 96-kuyucuklu V-altlı plakanın her gelen süpernatan kaldırmak ve.
  5. Vortex, kısaca 5 saniye Fc Blok MM santrifüj ve 96-V-alt plaka tüm peletlerine 50 ul ekleyin. Yavaşça kendi kuyularında örnekler bırakarak, aşağı yukarı pipetleme tarafından iyice karıştırınız. Buz üzerinde karanlıkta 15 dakika süreyle plaka inkübe. 5 dakika 12.000 rpm (250-300 xg) plakası santrifüjleyin.
  6. Örnekleri Fc Blok ile inkübe ise, buz üzerinde bir 1.5ml mikrosantrifüj tüp içinde% 3 SM inceltilmiş florokrom-konjuge antikor "Master Mix" (MM) hazırlayın. Antikorlar titre edilmelidirboyama işlemleri için optimal seyreltme belirlemek için. Bir başlangıç ​​noktası olarak, iyi örnek başına 50 ul son hacim% 3 SM bir 1:25 Mac-1-FITC seyreltme ve Gr-1-APC 01:20 seyreltme birleştirir.
  7. Daha önce tarif edildiği gibi dikkatli bir şekilde 96-kuyucuklu V-altlı her bir yanı ile süpernatan kaldırın.
  8. Vortex, kısaca 5 saniye için floresan-konjuge antikor boyama MM santrifüj ve kontrol ve deney peletlerine 50 ul ekleyin. Hafifçe yukarı ve aşağı pipetleme ile iyice karıştırın. Tek-leke tazminatlar için, oyuk başına 50 ul son hacim% 3 SM yağmurluk-1-FITC ile 1:25 seyreltme, Gr-1-APC ve 75 ng / ml 'lik DAPI 01:20 seyreltme, ekleme kendi kuyucuklara. (Hayır Leke) iyi lekesiz için 50 ul% 3 SM ekleyin. İyice karıştırılır ve buz üzerinde koyu içinde 30 dakika süreyle 96-kuyulu plakalı V-altlı hücreleri inkübe edilir.
  9. Etiket FACS borular (5 ml, 12 mm x 75 mm polistiren tabanı yuvarlak bir tüp) 96-kuyulu plakalı V-altlı her bir kuyucuğa karşılık. Her FACS üzere 200 ul% 3 SM eklemetüp.
  10. 5 dakika 12.000 rpm (250-300 xg) plakası santrifüjleyin ve süpernatantlar çıkarın. Her pelet için 100 ul% 3 SM ekleyerek pelet yıkayın ve yavaşça yukarı ve aşağı pipetleme ile iyice karıştırın. 5 dakika 12.000 rpm (250-300 xg) plakası santrifüjleyin. Bir kez daha adım yıkayın tekrarlayın.
  11. Daha önce tarif edildiği gibi dikkatli bir şekilde 96-kuyucuklu V-altlı her bir yanı ile süpernatan kaldırın. 100 ul% 3 SM her pelletini ve iyice karıştırın.
  12. Bunların sırasıyla etiketli FACS tüpe 96-kuyucuklu V-altlı plakanın her 100 ul tekrar süspanse pelet transfer edin.
  13. Flow sitometri analizi öncesinde, 75 ng / ml DAPI kontrol etmek ve deneysel örnekler ve DAPI tek bir leke kompanzasyon kontrolü ekleyin.
  14. MDSC yüzdeleri flow sitometri veri toplama gerçekleştirin. Negatif (hiç leke kontrol) ve tek pozitif kontrolleri kullanarak tazminat gerçekleştirin. Böylece günlük ölçekte ileri (FSC) karşı tarafında dağılım (SSC) görüntüleyen bir nokta komplo kurmak ve lökositilgi tespit edilebilir. Enkaz ve en ileri ve yana yayılım ile topaklar hariç tüm lökositlerin büyük bir kapı çizin. Bu ana kapıdan, DAPI-(canlı) hücreleri üzerine SSC karşı DAPI ve kapı görüntüleyen yeni bir nokta arsa oluşturun. Bu yeni bağımlı nüfus seçin ve çift pozitif Mac-1 karşı Gr-1 ve kapı görüntüleyen bir nokta komplo oluşturmak (Mac-1 + Gr-1 +) MDSC.

4. Gr-1 + Lökosit Manyetik Zenginleştirme

  1. 5 dakika 12.000 rpm (250-300 xg) de uygun şekilde etiketlenmiş FACS tüpleri ve santrifüj içine tablet 1x10 7 kalan boyasız lökositlerin.
  2. 1.5 ml mikrosantrifüj tüp Gr-1-PE antikor MM hazırlayın. 10 7 hücre için, numune başına, 50 ul MB Gr-1-PE antikor 1:10 seyreltme kullanın. Daha fazla hücre sayıları için, buna göre hacimleri büyütmek. Kısaca, 5 saniye süreyle santrifüj FACS tüpler lökositlerin eklemek ve 4 15 dakika ° C'de karanlıkta inkübe edin.
  3. 5 dakika 12.000 rpm (250-300 xg) de FACS tüpleri, santrifüj MB 2 ml ekleyin ve supernatant atın.
  4. 1.5 ml mikrosantrifüj tüpü Anti-PE mikroboncuk MM hazırlayın. 10 7 hücre için, numune başına, 200 ul MB anti-PE mikroboncuk bir 1:4 dilüsyonu kullanın. Daha fazla hücre sayıları için, buna göre hacimleri büyütmek. Kısaca, 5 saniye süreyle santrifüj FACS tüpler lökositlerin eklemek ve 4 15 dakika ° C'de karanlıkta inkübe edin.
  5. 5 dakika 12.000 rpm (250-300 xg) de FACS tüpleri, santrifüj MB 2 ml ekleyin ve supernatant atın. SB 3 ml Pastör pipetiyle pelet. Yeni, etiketli 50 ml konik bir tüpe 70 mikron süzgeç süzülür.
  6. Hazırlayın ve prime Otomatik MACS Pro Separator. Uygun çözümler ve boş atık şişe ile Dolum tüm şişeler, gerekirse. Enstrüman açın ve sıvı kapları ve başlatmasından sonra kolon (lar) ın durumunu incelemek. Bütün semboller yeşil renkte olmalıdır. Menüsünde, üst gelen "Ayrılık" ı seçinardından menü çubuğu alt menü çubuğundan "Şimdi yıkayın". Astarlama işlemini başlatmak için "Çalıştır" ardından pop-up seçeneği "yıkayın" seçeneğini seçin. Çimlendirme süreci başarıyla tamamlandığında, cihaz o Durum menüsü altında "Ayrılık için hazır" olduğunu gösterecektir.
  7. Satır B negatif fraksiyon toplama ve satır C. pozitif fraksiyon toplanması için 15 ml konik tüp için bir satır, 50 ml konik tüp manyetik etiketli hücreleri ile tüp boyutları ve yeri için uygun soğutulmuş tüpü rakı 50 ml konik tüp seçin
  8. Örneklerinden duyarlı modda etiketli hedef hücrelerin pozitif seçimi için "POSSEL_S" hücre ayırma programı seçin. Manyetik etiketli hedef hücreler otomatları sütun üzerinde korunur; etiketsiz hücrelerin mıknatısın otomatik çekilmesi üzerine satır B'de negatif fraksiyon toplama tüpüne bırakılır, etiketli hedef hücreler tüp satır C pozitif toplama tüpüne çıkacak raf.

5. Gr-1 + Zenginleştirilmiş Lökositler Post-Sıralama Analizi

  1. Gr-1 Recount + ve Gr-1 - tripan mavi ve hemasitometre kullanarak kesirler. % 3 boyama ortam içinde istenen konsantrasyonda Pastör pipetiyle hücreleri 50 ul 5x10 5-1x10 6 hücreleri (1x10 7 hücre / ml - 2x10 7 hücre / ml) 'e denk olacak şekilde ve buna uygun olarak etiketlenmiş FACS tüpler 50 ul transfer.
  2. Örnek başına 50 ul'lik bir son hacim% 3 SM bir 01:25 seyreltildiğinde, sadece Mac-1 bir MM hazırlayın. Hücreleri Leke ve akım sitometri analizi için Gr-PE, Mac-1 FITC ve DAPI tek leke tazminatlar hazırlamak. 200 ul% 3 SM ve DAPI canlılığı boya maddesi olarak daha önce tarif ekleyin.
  3. Yüzdeler ve ayrıca pre ve post-autoMACS zenginleştirme MDSC yüzdeleri karşılaştırmak için - Gr-1 + ve Gr-1 belirlemek için akım sitometri veri toplama gerçekleştirin.

6. Temsilcisi Sonuçlar

Burada r göstermek MDSC (Şekil 1) sıralama sonraki FACS için toplandı, naif dalak gelen Gr-1 + lökositlerin autoMACS zenginleşmesi için epresentative sonuçlar. 1x10 6 naif lökositlerin önce autoMACS sıralama, BD LSRII alet kullanarak MDSC yüzdeleri tespit etmek Mac-1-FITC ve Gr-1-APC antikorları ile boyandı. 1x10 7 naif lökositlerin sonra bir autoMACS Pro Ayırıcı kullanarak Gr-1 + lökositlerin zenginleştirilmesi için anti-Gr-1-PE antikorlar ve PE-mikro ile boyandı. Post-autoMACS zenginleştirme, Gr-1 Gr-1 yüzdeleri + ve Gr-1 - Toplanan kesirler akım sitometri kullanılarak değerlendirildi. 1x10 6 Gr-1 + lökositleri akım sitometri ile tümör taşıyan lökositlerin toplanmış olmayan zenginleştirilmiş için naif lökositlerin toplanmış zenginleştirilmiş MDSC yüzdeleri, analiz etmek ve karşılaştırmak için Mac-1-FITC antikoru ile çıkarıldı ve boyandı.

fig1.jpg "/>
Sıralama MDSC FACS için naif Gr-1 + lökositlerin Şekil 1. AutoMACS zenginleştirme. Dalak pankreas tümörü taşıyan ve naif farelerin hasat ve tek hücre süspansiyonları içine işlendi. Naif lökosit yüzey Flow sitometri analizi öncesinde autoMACS zenginleştirme (A), Mac-1 ve Gr-1 floresan-konjuge antikor ile boyandı. Akış sitometrisi Gr-1 analizi + (B) ve Gr-1 - Gr-1-PE antikor ve anti-PE mikro-küreler ile boyanmış havuzlanmış saf leuckocytes gelen Gr-1 + hücrelerinin (C) fraksiyonlar post-autoMACS zenginleştirme. MDSC ve Gr-1 Flow sitometri analizi Gr-1 + yüzdeleri sonrası autoMACS zenginleştirme Tümör taşıyan farelere (E) olmayan zenginleştirilmiş toplanmış lökosit (naif fareler, n = 5 göre toplanmış naif lökosit (D) + hücre ; tümörü taşıyan farelere, n = 3). MDSC ve Gr-1 yüzdeleri temsilcisi kontur araziler ve histogramları ortasında korunaklı vardır.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

Bu, çeşitli hayvan modellerinde farklı lenf dokuları için de geçerlidir MDSC popülasyonlarının işleme ve immunophentyping için ayrıntılı bir yöntemdir. Özellikle, autoMACS zenginleştirme splenositlerin 4 Gr-1 azalması, dalak ve lenf düğümleri 5 ila myeloid alt saflaştırılması, CD8 kemik iliği nötrofiller 14 izolasyonu ve saflaştırılması + dalak den T hücreleri dahil olmak üzere çeşitli lökosit izolasyonu için kullanılabilir ve lenf düğümleri 15. Bağımsız olarak ilgi...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

Çıkar çatışması ilan etti.

Teşekkürler

Biz USF Akım Sitometri Çekirdek Tesisi kabul ediyorsunuz. Biz kaynaklarının paylaşımı için Dr Denise Cooper teşekkür etmek istiyorum. Ayrıca kurma ve bu video filme kendi yardım için Maya Cohen, Laura Pendleton ve Diana Latour teşekkür etmek istiyorum. NN Doktora Bursu HRD # 0929435 NSF FG-LSAMP Köprüsü tarafından desteklenmektedir. Bu çalışma TG verilen Amerikan Kanser Derneği Kurumsal Araştırma Bursu # 93-032-13/Moffitt Kanser Merkezi tarafından finanse edildi.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
REAKTİF ŞİRKET # KATALOG YORUMLAR
1X Fosfat Tamponlu Salin Thermo Scientific Hyclone SH30028.02 Ca 2 + / Mg 2 + / Fenol Kırmızı-free
Bovine Serum (BSA) ile Albümin Sigma-Aldrich A7906 BSA PBS içinde rahatsız edilmeden çözmek edelim; Steril Çevre
Fetal bovin serumu (FBS) Thermo Scientific Hyclone SV3001403HI İnaktive Isı; Steril Çevre
Sıçan anti-fare monoklonal antikor CD16/32 (Fc Blok) BD Biosciences 553142 Steril Ortam
Anti-fare CD11b (Mac-1) FITC eBiosciences 11-0112 SterilÇevre
Anti-fare Ly6G (Gr-1) APC eBiosciences 17-5931 Steril Ortam
Anti-fare Ly6G (Gr-1) PE eBiosciences 12-5931 Steril Ortam
DAPI Invitrogen D1306 Seri Seyreltme Steril Ortam
Hücre Ayrılma Elek Sigma-Aldrich CD1-1KT Kullanmadan önce Otoklav
70-mikron süzgeç BD Biosciences 352350 Steril Ortam
1X RBC Lizis Tamponu eBiosciences 00-4333-57 Steril ortam; kullanımdan önce oda sıcaklığına ısınmaya
Petri Fisher Scientific 08-757-12 Steril Ortam
50ml conical tüpler Thermo Scientific 339652 Steril Ortam
5ml 12X75mm polistiren tabanı yuvarlak tüpler BD Biosciences 352054 FACS tüpleri olarak da bilinen; Steril Çevre
96-kuyucuklu plaklar V-altlı Corning 3897 Steril Ortam
Tripan Mavi Cellgro 25-900-CI Steril Ortam
PE mikroküreler Miltenyi Biotec 130-048-801 Steril Ortam
AutoMACS Pro Ayırıcı Miltenyi Biotec 130-092-545
AutoMACS Sütunlar Miltenyi Biotec 130-021-101
Tampon Koşu AutoMACS Miltenyi Biotec 130-091-221

Kaynaklar

  1. Goni, O., Alcaide, P., Fresno, M. Immunosuppression during acute Trypanosoma cruzi infection: involvement of Ly6G (Gr1(+))CD11b(+) immature myeloid suppressor cells. Int. Immunol. 14, 1125-1134 (2002).
  2. Zhu, B. CD11b+Ly-6C(hi) suppressive monocytes in experimental autoimmune encephalomyelitis. J. Immunol. 179, 5228-5237 (2007).
  3. Makarenkova, V. P., Bansal, V., Matta, B. M., Perez, L. A., Ochoa, J. B. CD11b+/Gr-1+ myeloid suppressor cells cause T cell dysfunction after traumatic stress. J. Immunol. 176, 2085-2094 (2006).
  4. Ghansah, T. Expansion of myeloid suppressor cells in SHIP-deficient mice represses allogeneic T cell responses. J. Immunol. 173, 7324-7330 (2004).
  5. Paraiso, K. H., Ghansah, T., Costello, A., Engelman, R. W., Kerr, W. G. Induced SHIP deficiency expands myeloid regulatory cells and abrogates graft-versus-host disease. J. Immunol. 178, 2893-2900 (2007).
  6. Yin, B. Myeloid-derived suppressor cells prevent type 1 diabetes in murine models. J. Immunol. 185, 5828-5834 (2010).
  7. Gabrilovich, D. I., Nagaraj, S. Myeloid-derived suppressor cells as regulators of the immune system. Nat. Rev. Immunol. 9, 162-174 (2009).
  8. Gallina, G. Tumors induce a subset of inflammatory monocytes with immunosuppressive activity on CD8+ T cells. J. Clin. Invest. 116, 2777-2790 (2006).
  9. Zhao, F. Increase in frequency of myeloid-derived suppressor cells in mice with spontaneous pancreatic carcinoma. Immunology. 128, 141-149 (2009).
  10. Greten, T. F., Manns, M. P., Korangy, F. Myeloid derived suppressor cells in human diseases. Int Immunopharmacol. 11, 802-806 (2011).
  11. Youn, J. I., Nagaraj, S., Collazo, M., Gabrilovich, D. I. Subsets of myeloid-derived suppressor cells in tumor-bearing mice. J. Immunol. 181, 5791-5802 (2008).
  12. Ribechini, E., Greifenberg, V., Sandwick, S., Lutz, M. B. Subsets, expansion and activation of myeloid-derived suppressor cells. Med. Microbiol. Immunol. 199, 273-281 (2010).
  13. Pilon-Thomas, S. Murine Pancreatic Adenocarcinoma Dampens SHIP-1 Expression and Alters MDSC Homeostasis and Function. PLoS One. 6, (2011).
  14. Panopoulos, A. D. STAT3 governs distinct pathways in emergency granulopoiesis and mature neutrophils. Blood. 108, 3682-3690 (2006).
  15. Preynat-Seauve, O. Extralymphatic tumors prepare draining lymph nodes to invasion via a T-cell cross-tolerance process. Cancer Res. 67, 5009-5016 (2007).
  16. Davies, D. Cell separations by flow cytometry. Methods Mol. Med. 58, 3-15 (2001).
  17. Maecker, H., Trotter, J. Selecting reagents for multicolor BD flow cytometry. Postepy Biochem. 55, 461-467 (2009).
  18. Bagwell, C. B., Adams, E. G. Fluorescence Spectral Overlap Compensation for Any Number of Flow Cytometry Parameters. Annals of the New York Academy of Sciences. 677, 167-184 (1993).
  19. Perfetto, S. P. Amine reactive dyes: an effective tool to discriminate live and dead cells in polychromatic flow cytometry. J. Immunol. Methods. 313, 199-208 (2006).
  20. Safarik, I., Safarikova, M. Use of magnetic techniques for the isolation of cells. J. Chromatogr. B. Biomed. Sci. Appl. 722, 33-53 (1999).
  21. Collazo, M. M. SHIP limits immunoregulatory capacity in the T-cell compartment. Blood. 113, 2934-2944 (2009).
  22. Mack, E., Neubauer, A., Brendel, C. Comparison of RNA yield from small cell populations sorted by flow cytometry applying different isolation procedures. Cytometry. A. 71, 404-409 (2007).
  23. Strauss, L., Czystowska, M., Szajnik, M., Mandapathil, M., Whiteside, T. L. Differential responses of human regulatory T cells (Treg) and effector T cells to rapamycin. PLoS One. 4, e5994(2009).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Etiketler

AutoMACS Ay r mGr 1 Pozitif L kositlerMac 1 Gr 1 BoyamaDalak H cre S spansiyonuEritrosit LiziziFloresanla Aktive Edilmi H cre Ay klama
Akım Sitometri ve Otomatik Manyetik Aktif Hücre Sıralama (AutoMACS) kullanarak Naive ve Pankreas Tümör taşıyan fareler ile myeloid türevi bastırıcı hücreler (MDSC) hazırlanması
Bize ulaşın
Kütüphaneye tavsiye et

Gizlilik

Kullanım Şartları

İlkeler

Telif hakkı © 2026 MyJoVE Corporation. Tüm hakları saklıdır.