Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliğiniz gereklidir. Giriş yapın veya ücretsiz denemenizi bugün başlatın.

Yöntem makalesi

T hücre gerçek zamanlı Canlı Görüntüleme Kompleks Oluşum Sinyal

13.2K görüntülenme

⸱

DOI:

10.3791/50076

⸱

23 Haziran 2013

 ,  , 
1The Mina and Everard Goodman Faculty of Life Sciences, Bar-Ilan University

* These authors contributed equally

Bu makalede

Özet

Biz T-hücre aktivasyonu işlemi sırasında protein dinamiği içgörü sağlayan bir canlı hücre görüntüleme yöntem açıklanmaktadır. Bu kantitatif sonuçlar T-hücresi aktivasyonu boyunca kompleks oluşumu sinyalizasyon takip vermek üzere T-hücresi yayılmasını tahlilinde, konfokal mikroskopi ve görüntü analizi, kombine kullanımını göstermektedir.

Özet

Bulaşıcı hastalıklara karşı koruma bağışıklık sistemi 1,2 aracılık eder. T lenfositleri birden fazla bağışıklık hücrelerinin 3,4 aktivasyonu ve yanıtları düzenleyen, bağışıklık sisteminin ana koordinatör vardır. T-hücresi aktivasyonu antijen sunan hücreler (APC) tarafından gösterilen spesifik antijen tanınması bağlıdır. T-hücresi antijen reseptörü (TCR), her T-hücresi klonu özgüdür ve antijen özgüllüğü 5 belirler. Antijene TCR bağlayıcı TCR kompleksinin bileşenlerinin fosforilasyonu neden olur. T-hücresi aktivasyonunu teşvik etmek için, bu sinyali gibi TCR proteinlerin sinyal alımı gibi çeşitli önemli tepkiler başlatarak, zardan sitoplazma ve çekirdeğe transduse olmalıdır, APC Alanı (bağışıklık sinaps), molekül aktivasyonu, sitoskeletal düzenlenmesi, hücre içi kalsiyum konsantrasyonunun yükselmesi ve gen ekspresyonu 6,7 değişiklikler. Doğruaktive sinyallerin itiation ve sonlandırılması uygun T hücre yanıtları için çok önemlidir. Sinyal proteinlerinin aktivitesi protein-protein etkileşimleri oluşumu ve sonlandırma bağlıdır, bu tür protein fosforilasyonu, protein kompleksleri, ve protein ubiquitylation çeşitli hücresel sitelerinin 8 proteinlerin işe oluşumu gibi translasyon sonrası modifikasyonlar. T-hücre aktivasyonu sürecinin iç işleyişini anlamak immünolojik araştırma ve klinik uygulamaları için çok önemlidir.

Çeşitli testler protein-protein etkileşimleri araştırmak için geliştirilmiştir, ancak bu yaygın olarak kullanılan ortak immunoprecipitation yöntemi olarak biyokimyasal testleri, böylece hücresel dinamikleri içine değerli bilgiler gözlem engelleyen, protein konumu ayırt izin yok mekanizmaları. Ayrıca, bu toplu testlerin genellikle t farklı aşamalarında olabilir birçok farklı hücrelerden protein birleştirmeko hücresel süreci incelenmiştir. Bu zamansal çözünürlüğe üzerinde zararlı etkisi olabilir. Canlı hücrelerin gerçek zamanlı görüntülemenin kullanımı dolayısıyla sürecin 9,10 dinamikleri üzerinde ışık tutan, proteinlerin mekansal izleme ve geçici olarak sinyal olayları birbirinden ayırt etmek yeteneği hem de sağlar. Biz T-hücre aktivasyonu sırasında sinyal-kompleks oluşumunun gerçek zamanlı görüntüleme bir yöntem mevcut. Primer T-hücreleri veya bu gibi Jurkat T-hücre, fizyolojik olmayan bir oligomerizasyon 11 önlenmesi, monomer cinsi floresan proteinleri ile kaynaşmış ilgi proteinleri için kodlayan plazmid ile transfekte edilir. • Canlı hücreler, spesifik antijen için aktive ihtiyacının üstesinden gelinir ise T-hücresi aktivasyonunu uyaran, CD3/TCR kompleksine bağlanan T-hücresi aktive edici antikor 8,9, bir lamel ile önceden kaplanmış üzerinde bırakılır. Aktif hücreleri sürekli konfokal mikroskopi kullanımı ile görüntülü. Görüntüleme veriler, col gibi kantitatif sonuçlar, verim için analiz edilirsinyal proteinlerinin ocalization katsayısı.

Protokol

1. T hücre transfeksiyonu

  1. Nucleofector Çözüm için sette en "Ek" çözüm karıştırılarak aktive Amaxa Nucleofector çözüm hazırlayın. Etkinleştirilmiş çözelti üç ay boyunca 4 ° C'de muhafaza edilebilir.
  2. Kültür ortamı içinde, Jurkat T hücrelerinin çoğalmasını [% 10 fetal dana serumu (FCS),% 1 penisilin-Streptomisin çözeltisi ve 2 RPMI mM L-glutamin]. Optimal olarak, hücreler 1-2 hafta sonra çözülme kullanılmalıdır. Logaritmik büyüme hücre kültürleri kullanılarak yüksek transfeksiyon verimi ve hücre canlılığı açısından önemlidir. Alternatif olarak, küçük değişiklikler yapılarak, bu protokol, birincil T-hücreleri ile birlikte kullanılabilir, daha önce tarif edildiği 8. Bu, birincil T-hücreleri aktivasyonu sürecinin süresi daha uzun Jurkat T hücreleri (~ 30 dakika), bu daha olduğunu vurgulamak gerekir, bir mikroskop aşamasında inkübasyon sistemi, CO2, boyunca nem ve sıcaklığı muhafaza etmek için kullanılması gereken monte etkinleştirme işlemi.
  3. 5 toplayın15 ml tüp içine transfeksiyon başına × 10 6 günlük fazlı T hücreleri.
  4. 400 7 dak × g oda sıcaklığında için hücreler santrifüj.
  5. Santrifüj sırasında, 6 oyuklu plaka hazırlanması. 37 5 ml kültür ortamı ve önceden inkübe ile her bir transfeksiyon için iyi bir doldurmak ° C
  6. Santrifüj tüpleri toplamak ve supernatant atın. 1 ml RPMI hücre pelletini.
  7. 400 7 dak × g oda sıcaklığında için hücreler santrifüj.
  8. Santrifüj sırasında transfeksiyon solüsyon hazırlanır. 96 oyuklu bir plaka iyi birinde, bir floresan etiketli proteini kodlayan ilgi 5 ug plazmid DNA'sı ile adım 1 'de hazırlanan aktive 100 ul Amaxa Nucleofector çözeltisi karıştırın. Optimal olarak, DNA konsantrasyonu transfeksiyon solüsyonu seyreltilmesi önlemek için 1 mg / ml 'den daha büyük olmalıdır.
  9. Nazik pipetleme ile iyice karıştırın.
  10. Hücrelerin santrifüje edilmesinden sonra, dikkatli bir şekilde tüm süpernatant kaldırmak d değil ikenpelet isturbing.
  11. DNA / transfeksiyon çözüm iki kez pipetle.
  12. Pelet DNA / transfeksiyon solüsyonu eklenir.
  13. Amaxa küvete hücre transfer edin.
  14. Amaxa Nucleofector cihazın içine küvet yerleştirin.
  15. Elektroporasyon için H-10 Amaxa transfeksiyon ayarı (Jurkat için) ya da T-23 (primer T-hücreleri için).
  16. Inkübatör 6 plaka çıkarın.
  17. Elektroporasyon ardından dikkatli bir Pasteur pipeti kullanılarak 6-plaka hücre süspansiyonu ile süpernatantı aktarın. Hücre artıkları oluşan pelet oluşturabilmektedir. Pelet transfer kaçının.
  18. 37, 24 saat boyunca inkübe hücreleri ° C
  19. Yeni bir kuyuya her bir hücre süspansiyonu 2.5 ml aktarın. Her kuyuya 2.5 ml sıcak bir kültür ortamı (adım 2'de açıklandığı) ekleyin.
  20. 72 saat sonra, 400 x g 7 dakika, oda sıcaklığında bir steril tüp ve santrifüj hücreleri aktarmak. Süpernatantı atın ve wi yerineKullanılan plazmit için uygun olan memeli hücre seçimi antibiyotik (, ​​biz, sırasıyla, 1.3 mg / ml, ve / ya da 0.2 mg / ml 'lik konsantrasyonlarda, G418 ve / veya Higromisin kullanılan kullanılan antibiyotiklere için uygun bir konsantrasyonda uygulanır) ile desteklenmiş inci kültür ortamı. Yeni bir kuyuda Kültür hücre süspansiyonu. Alternatif olarak hücreler, geçici olarak transfekte edilmiş ve transfeksiyondan 48 saat sonra görüntülenebilir. Geçici olarak transfekte edilmiş hücreleri hazırlamak için, adım 20 ile devam normal adım 8, eş zamanlı olarak her iki plazmid ile ko-transfekte hücreler, ve daha sonra 23 doğrudan adım geçin. Bu senaryoya göre, hücreler hemen kullanılması gerektiğini not edin ve genel olarak floresans yoğunluğunu ve heterojen bir düzeyde olmayabilir.
  21. Uygun seçimi antibiyotik ile desteklenmiş kültür ortamı ile hücreleri büyütün. Hücreleri Split ve gerektiği gibi antibiyotik-takviye kültür ortamı ile ek.
  22. 2 hafta sonra, FACS kullanımı (grip ile başarılı transfeksiyon doğrulamakolarak orescence ile aktive olan hücre sıralama) aşağıdaki gibidir:
  23. 10 6 transfekte edilmiş hücreler, 10 6 sahte transfekte edilmiş hücreler (negatif kontrol) ve stabil bir şekilde floresan etiketli protein ifade etmek için bilinen 10 6 hücre toplayın. Hücrelerinin birden fazla flüoresan protein (adım 27) ile transfekte edilir ise, pozitif kontroller olarak birden fazla tek başına, etiketli hücre hatları kullanın.
  24. 400 7 dak × g oda sıcaklığında için hücreler santrifüj.
  25. Süpernatantı atın. 500 ul FACS tampon maddesi (PBS w / o Ca 2 + ve Mg2 +,% 5 FCS,% 0.05 sodyum azid) içinde süspanse hücreleri.
  26. Hücresel floresan doğrulamak için analitik bir FACS kullanın. Negatif ve pozitif kontroller arasında bu için transfekte edilmiş hücrelerin floresans karşılaştır.
  27. Transfekte hücreler kullanarak ilave olarak, flüoresan etiketli protein, tekrar adımları 3-26 ile hücreleri transfekte etmek için.
  28. Floresans yüksek seviyeli Hücreler kullanılmalıdır. Arasında Optimal olarak, en azından% 50kültür hücreleri yüksek floresan olmalıdır. Hücre floresan FACS ile hücre sıralama artırılabilir.

Her türlü ilave etiketli proteinlerin farklı fluorophores için sigortalı olmalıdır ve farklı bir seçim antibiyotikler için kodlama plazmid üzerinde kodlanmış. Birden fazla plazmid ile transfekte edilmiş hücreler için seçim ortamı tüm uygun antibiyotikler ile takviye edilmelidir.

2. T hücre Yayılma Testi Hazırlık

  1. Lab-Tek II Alman coverglass sistemi 4 oda slaytlar kullanın. Yanlışlıkla hazırlanması veya kullanım sırasında bir pipet ile örneğin odaları iç yüzeyi, sıfırdan değil emin olun.
  2. 50-ml slayt hazırlama çözeltisi hazırlayın: 12 M (37%) HCl 4.6 ml alın, 38.5 ml% 100 etanol ve 6.9 ml iki kat distile su ekleyin.
  3. 500 ul slayt hazırlık çözüm ile slayt her odası doldurun.
  4. 10 dakika oda sıcaklığında inkübe edin.
  5. Odası aspires, tamamen kurutulması.
  6. ° C kadar tamamen kuru 45 1 saat için ortaya çıkarılan slaytlar inkübe edin.
  7. Iki kez damıtılmış su içinde% 0.1 poli-L-lisin (Sigma-Aldrich) seyreltilerek% 0.01 poli-L-lizin çözeltisi hazırlayın.
  8. Her iki mecliste de 500 ul uygulayın.
  9. Oda sıcaklığında 15 dakika için slayt inkübe edin.
  10. Tamamen kurutma, odaları aspire.
  11. ° C kadar tamamen kuru 45 az 3 saat inkübe edin.
  12. Kaplı slaytlar, oda sıcaklığında birkaç ay boyunca kuru saklanabilir.
  13. Bir aktive edici antikor çözüm hazırlayın. HIT3a (BD Pharmingen # 555337) veya UCHT1 (BD Pharmingen # 555330), oda başına 400 ul PBS içinde 10 ug / ml ya da: bir anti-CD3 antikoru kullanın. Bu çözüm kısa bir süre slayt hazırlama önce hazırlanmalıdır.
  14. Aktive edici antikor çözeltisi 400 ul her bir göze doldurulabilir.
  15. Gece boyunca 4 °, tercihen 37 ° C veya daha, önceki 2 saat için slayt inkübe ° C.
  16. Aktive antikor sol kaldırmaution ve hemen 300 ul PBS ile iki kez odasına yıkayın. Bu noktadan sonra, odaları tampon dolu kalır emin olun.
  17. 4 ° C de PBS-dolu bir slayt Mağaza Biz 1 hafta içinde hazırlanan slayt odaları kullanmanızı öneririz.

3. T hücre aktivasyonu ve Görüntüleme

  1. [1,25 ml HEPES (1 M) ile, 10 mL FCS, 38.75 ml RPMI fenol kırmızısı olmadan] görüntüleme tamponu hazırlayın. Görüntüleme tampon 4 ° C'de süzülerek saklanabilir.
  2. Zeiss LSM 510 Meta mikroskop etkinleştirin. 37 için mikroskop ısıtılabilir montaj çerçevesi Sıcak ° C "Uzman modu" seçeneğini seçin.
  3. "Edinme" sekmesine tıklayın ve aşağıdaki sekmeler açın: Lazerler, Mikroskopi, Yapılandırma, Tarama, Zaman Serisi.
  4. Gerekli lazerler etkinleştirin. AÇSAP ağırlıklı ve mYFP, uyarma için daha sonra "açık" 5 dakika "bekleme" için Argon / 2 lazer, ayarlayın.
  5. Aynı fluorophores kullanarak önce bu canlı hücre görüntüleme testi gerçekleştirdiyseniz, ortaya çıkan LSM dosyayı açmak, i "yeniden" tıklayıncon ve adım 9 yerden devam. Aksi takdirde adım 6 devam edin.
  6. Kullanılan floresan proteinlerin uyarma ve emisyon için uygun filtreleri kullanarak kanalları tanımlayın.
  7. "Tarama kontrol" penceresinde, Z yığını seçeneğini seçin.
  8. 0.5 mikron; Şu dilim: 3;: dilim sayısı: Aralığı 5 aşağıdaki tarama parametreleri girin.
  9. Mikroskop yakın 37 bir Accublock Dijital Kuru Banyo (Labnet) ° C hazırlayın.
  10. 37 ° C'ye ısıtın görüntüleme tampon
  11. Sıcak görüntüleme tampon 600 ul ile değiştirilmesi, PBS aspire saklanan slayt hazırlayın.
  12. 37 slayt inkübe ° C Adım 13 kadar, en az 15 dakika için inkübatör slayt tutun.
  13. 5 toplayın x 10 5 transfekte edilmiş T hücreleri.
  14. 400 × g 2 dakika hücreleri santrifüj.
  15. Süpernatantı atın.
  16. 1 ml sıcak görüntüleme tampon tekrar süspansiyon hücreleri ve 1.5 ml Eppendorf tüp aktarabilirsiniz.
  17. T yerleştirinAccublock Dijital Kuru Bath ile ilgili est tüp.
  18. Inkübatör ısıtılmış slayt alın ve ısıtılmış mikroskop montaj çerçevesi üzerine monte.
  19. "VIS" simgesine tıklayın.
  20. Hücre süspansiyonu karıştırın ve 1-2 ul çıkarın.
  21. Slayt alt üzerinde görüntüleme tampona pipet ucu yerleştirin. Slayt çizilmesini önlemek.
  22. Amacı en diyafram üzerinde tohum hücreleri.
  23. Onlar iner gibi hemen görsel floresan hücreleri izlemeye başlar. Iki kanal yüksek floresan görüntüleyen bir hücre seçin.
  24. Hücre slayt yüzeyine ulaşmadan önce, LSM modunu etkinleştirin.
  25. Sadece bir uyarma lazer geçiş. Bir DIC kanal sahip olduğunuz bir lazer seçin.
  26. 1 Zoom ayarlayın. "Hızlı XY" simgesine tıklayın. "Dur" simgesine tıklayın. Kırpma aracını kullanarak, hücre merkezli bir yatırım getirisi seçin.
  27. 3 Zoom ayarlayın. "Hızlı XY" simgesini tıklatın, sonra el en iyi şekilde hücre görmek için odağı ayarlayın. "Dur" ico tıklayınn.
  28. Tüm gerekli uyarma lazerler geçiş.
  29. "StartT" ikonuna tıklayarak kayıt başlayın. Resim yayılma süreci (genellikle 5 dakika) bütünlüğü için hücre. Bittiğinde, "Dur" simgesini tıklatın.
  30. Dosyayı kaydedin.
  31. Ek hücreleri elde etmek için, "VIS" simgesini tıklatın. Henüz slayt alt temas gelmedi hücre varsa, adım 23 devam. Zaten yayılma süreci başladı görüntüleme hücreleri kaçının. Aksi halde 32 adıma geçin.
  32. Gözlemlenen slayt alan hücreler çoğunlukla yoksun ise, hücreler (adım 20 ile devam edin) başka bir kısım ekleyin. Aksi halde 33 adıma geçin.
  33. Ek hücreler elde etmek için, objektif en açıklık üzerindeki alana hücrelerinden yoksun olduğunu kaydırmak.
  34. Hücreleri (ve adım 20 ile devam eder) bir başka kısım ekleyin.
  35. Tüm istenen görüntüleme yaptıktan sonra, kaydedilmiş bir EKK dosyasını açın.
  36. "Galeri", "Zaman + Z" ve "alt kümesi" tıklayın.
  37. Relevan seçint zaman aralığı ve Z yığını.
  38. Yeni dosyayı kaydedin.
  39. Tüm görüntüleme dosyalar için adımları 35-38 gerçekleştirin.

4. Görüntüleme Veri Analizi

  1. Imaris yazılım (Bitplane AG, Zürih İsviçre) kullanarak LSM dosyaları açın.
  2. "Aşan" tıklayın. "Görüntü İşleme" menüsüne tıklayın ve "Zaman ve Z Swap" seçin. Bu, görüntünün doğru kırpma yardımcı olacaktır.
  3. "Düzenle" araç çubuğu tıklayın ve açılan menüde "Kes 3D" seçeneğini seçin. Hücre çevresindeki sadece alanı bulunmaktadır görüntü kırpın. Biz hücre merkezli bir 300 × 300 piksel kare kırpma öneririz. Hücresinin şekli ve yeri zamanla değişebilir unutmayın. T ekseni Gözlem, hücre her zaman noktalarında kırpılmış bölge içinde olduğundan emin olun.
  4. "Görüntü İşleme" menüsüne tıklayın ve resmin orijinal zamansal ayrılık geri yüklemek için "Zaman ve Z Swap" seçin.
  5. Ana araç çubuğunda "COLOC" düğmesine basın. "De Zaman Yapı seçins. COLOC ". Imaris otomatik olarak her zaman noktasında her kanal için yoğunluk eşik hesaplar.
  6. "Kanal İstatistik" seçerek ko analiz sonuçlarını görüntülemek. "İhracat" tıklayarak veri verir.
  7. Her görüntülü hücre için 6 Adım 1 tekrarlayın. Biz en az 50 hücre bu şekilde analiz edilmesi önerilir.
  8. Ortalama Pearson ko katsayısı ve standart hata veya sapma hesaplayın.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

Biz canlı T-hücre görüntüleme ve analiz bir örnek sunuyoruz. Görüntüleme deney öncesinde, SLP76 eksikliği T hücreleri (J14) floresan protein (Şekil 1) ifadesinin saptanması için FACS kullanımı ile analiz edilmiştir. Etiketli sinyal proteinleri AÇSAP ağırlıklı-Nck ve SLP76-mYFP ile transfekte T hücreleri aktive slaytlar üzerinde biriken ve T-hücre yayılan (Şekil 2) sırasında görüntülendi. Toplanan görüntüleri aktivasyon ve (Şekil 3) yayılan boyunca protein yerelleştirme ...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

Çoklu hücresel süreçlerin düzenlenmesi ve fonksiyonu protein-protein etkileşimleri oluşumu ve sonlandırma bağlıdır. Mikroskobik görüntüleme canlı hücrelerde floresan etiketli proteinlerin gerçek zamanlı izleme sağlar. Işaretlenmiş olan proteinlerin ko proteinler arasında doğrudan veya dolaylı olarak etkileşime önerebilir ve bu immüno-çökeltme gibi biyokimyasal yöntemler ile elde edilen bulguların güçlendirmek için kullanılabilir. Biyokimyasal yöntemler farklı olarak, canlı hücre görüntüleme bu arası protein etkileşimler...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

Biz ifşa hiçbir çıkar çatışması var.

Teşekkürler

Yazarlar teknik yardım için Sophia Fried teşekkür ederim. Hibe no.1659/08, 971/08 1503/08 491/10, hiçbir hibe Sağlık ve Bilim Bakanlıkları için İsrail Bilim Vakfı: MBS araştırma destek için aşağıdaki kurumlar teşekkür. 3-4.114 ve 3-6.540, geç Alexander Smidoda ve Emlak aracılığıyla İsrail Kanser Derneği ve Bio-tıp mükemmellik hibe için Taubenblatt Aile Vakfı.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
Reaktif/Malzeme
Amaxa insan T Hücresi nükleofektör kitiLonzaVCA-1002
Anti CD3 (UCHT1 klonu) BioLegend300432
Falcon FACS TüpleriBecton Dickinson352058
FCSHyCloneSV30160.03
G418Calbiochem345810
Alman kapak camı sistemi 4 odacıklı slaytlar Lab-Tek II155382
HClBio Lab8410501
Hepes Biyolojik Endüstriler03-025-1B
HipomisinEnzoALX-380-306
L-glutamin SigmaG7513
PBS (10X)SigmaD1408
Penisilin-Streptomisin SigmaP0781
Poli-L-lizin H2OSigmaP8920
RPMISigmaR87589
Sodyum azidSigmaS2002
Equipment
Accublock dijital kuru banyoLabnetD1105A
SantrifüjEppendorfSantrifüj 5810 R
Konfokal mikroskopZeissLSM 510 Meta
Isıtılabilir montaj çerçevesi - Isıtma Ek Parçası P S PeCon130-800-031
TempModule S (ısıtılabilir montaj çerçevesi için gereklidir)Zeiss411860-9010-000
Elektroporasyon cihazıAmaxaNucleofector I
Floresanla aktive edilmiş hücre sıralayıcıBecton DickinsonFACSVantage SE
Görüntü analiz yazılımıBitplane7.0.0
içinde %0,1 (a/h)

Kaynaklar

  1. Viret, C., Janeway, C. A. MHC and T cell development. Rev. Immunogenet. 1, 91-104 (1999).
  2. Risso, A. Leukocyte antimicrobial peptides: multifunctional effector molecules of innate immunity. J. Leukoc. Biol. 68, 785-792 (2000).
  3. Doherty, P. C. Cytotoxic T cell effector and memory function in viral immunity. Curr. Top Microbiol. Immunol. 206, 1-14 (1996).
  4. Jager, D., Jager, E., Knuth, A. Immune responses to tumour antigens: implications for antigen specific immunotherapy of cancer. J. Clin. Pathol. 54, 669-674 (2001).
  5. Davis, M. M., Bjorkman, P. J. T-cell antigen receptor genes and T-cell recognition. Nature. 334, 395-402 (1988).
  6. Burkhardt, J. K., Carrizosa, E., Shaffer, M. H. The actin cytoskeleton in T cell activation. Annu. Rev. Immunol. 26, 233-259 (2008).
  7. Reicher, B., Barda-Saad, M. Multiple pathways leading from the T-cell antigen receptor to the actin cytoskeleton network. FEBS Lett. 584, 4858-4864 (2010).
  8. Barda-Saad, M., et al. Dynamic molecular interactions linking the T cell antigen receptor to the actin cytoskeleton. Nat. Immunol. 6, 80-89 (2005).
  9. Bunnell, S. C., Kapoor, V., Trible, R. P., Zhang, W., Samelson, L. E. Dynamic actin polymerization drives T cell receptor-induced spreading: a role for the signal transduction adaptor LAT. Immunity. 14, 315-329 (2001).
  10. Balagopalan, L., Sherman, E., Barr, V. A., Samelson, L. E. Imaging techniques for assaying lymphocyte activation in action. Nat. Rev. Immunol. 11, 21-33 (2011).
  11. Zacharias, D. A., Violin, J. D., Newton, A. C., Tsien, R. Y. Partitioning of lipid-modified monomeric GFPs into membrane microdomains of live cells. Science. 296, 913-916 (2002).
  12. Adler, J., Parmryd, I. Quantifying colocalization by correlation: the Pearson correlation coefficient is superior to the Mander's overlap coefficient. Cytometry A. 77, 733-742 (2010).
  13. Costes, S. V., et al. Automatic and quantitative measurement of protein-protein colocalization in live cells. Biophys. J. 86, 3993-4003 (2004).
  14. Fang, N., Motto, D. G., Ross, S. E., Koretzky, G. A. Tyrosines 113, 128, and 145 of SLP-76 are required for optimal augmentation of NFAT promoter activity. J. Immunol. 157, 3769-3773 (1996).
  15. Wunderlich, L., Faragó, A., Downward, J., Buday, L. Association of Nck with tyrosine-phosphorylated SLP-76 in activated T lymphocytes. Eur. J. Immunol. 29, 1068-1075 (1999).
  16. Pauker, M. H., Reicher, B., Fried, S., Perl, O., Barda-Saad, M. Functional cooperation between the proteins Nck and ADAP is fundamental for actin reorganization. Mol. Cell Biol. 31, 2653-2666 (2011).
  17. Barda-Saad, M., et al. Cooperative interactions at the SLP-76 complex are critical for actin polymerization. EMBO J. 29, 2315-2328 (2010).
  18. Pauker, M. H., Hassan, N., Noy, E., Reicher, B., Barda-Saad, M. Studying the Dynamics of SLP-76, Nck, and Vav1 Multimolecular Complex Formation in Live Human Cells with Triple-Color. 5, rs3(2012).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Etiketler

Konfokal MikroskopiProtein-protein EtkileşimleriFloresan ProteinlerT-hücresi Aktivasyonuİmmün SinapsKolokalizasyon AnaliziJurkat HücreleriTCR Kompleksi
T hücre gerçek zamanlı Canlı Görüntüleme Kompleks Oluşum Sinyal
Bize Ulaşın
Kütüphaneye Öner

Gizlilik

Kullanım Koşulları

Politikalar

Telif Hakkı © 2026 MyJoVE Corporation. Tüm hakları saklıdır.