Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliğiniz gereklidir. Giriş yapın veya ücretsiz denemenizi bugün başlatın.

Yöntem makalesi

Fare Kortikal astrositlerde İzolasyon ve Kültür

94.7K görüntülenme

⸱

DOI:

10.3791/50079

⸱

19 Ocak 2013

 ,  ,  , 
1Institute of Anatomy and Cell Biology, University of Freiburg , 2Centre of Chronic Immunodeficiency (CCI), University Medical Centre Freiburg, University of Freiburg

Bu makalede

Özet

Astrositler normal beyin gelişimi ve işlevi, ve merkezi sinir sistemi onarımı için gerekli olan temel biyolojik süreçler katılan yönlü hücreler olduğu kabul edilmiştir. Burada santral sinir sistemi hücrelerinin bu büyük sınıf biyoloji eğitimi saf fare astrosit kültürleri elde etmek için hızlı bir prosedürdür.

Özet

Astrositler memeli beyin içinde bol bir hücre tipi, henüz çok moleküler ve işlevsel özellikleri öğrendik gerekmektedir. Astrosit in vitro hücre kültürü sistemlerinde detaylı olarak bu glial hücrelerin biyolojik fonksiyonları incelemek için kullanılabilir. Bu video protokol fare yavrular karışık kortikal hücrelerin izolasyonu ve kültürü ile saf astrositler edinme gösterir. Yöntem, canlı nöronların ve astrositlerin yokluğunda, oligodendrosit ve mikroglia, kültür içinde merkezi sinir sistemi üç ana glial hücre popülasyonları, ayrılmasına dayanır. Kültürün ilk günlerinde Örnek görüntüleri karışık bir hücre popülasyonunun varlığına göstermek ve astrositler konfluent haline ve mikroglia ve oligodendrosit ayrılmalıdır zaman timepoint göstermektedir. Ayrıca, saflık ve iyi kurulmuş için immünohistokimyasal boyamalar kullanarak kültürlü astrositlerde astrositik morfolojisi göstermek veYeni astrosit belirteçler nitelendirdi. Bu kültür sistemi kolaylıkla astrosit biyolojinin çeşitli yönlerini araştırmak için saf fare astrosit ve astrosit-şartlı ortam elde etmek için de kullanılabilir.

Giriş

Astrositler merkezi sinir sistemi (MSS) bir çok bol hücre tipi vardır. İnsanda korteksin 1 nöron başına 1,4 astrositler vardır oysa nöronlara astrositlerde oranı, fareler ve sıçanların kortekste 01:03 olduğunu. Astrosit fonksiyonu ilgi son yıllarda önemli ölçüde artmıştır. Astrositlerde bir anahtar işlevi nöronlar 2,3 yapısal ve metabolik destek sağlayarak onların rolüdür. Astrositlerin Yeni keşfedilen rolleri işlevleri geniş bir yelpazesini kapsar. Bu gelişim 4-6 esnasında gelişen aksonlar ve bazı nöroblast göç rehberlik, sinaptik iletim fonksiyonları, nöral devreleri 7-9 ile sinaps gücü ve bilgi işleme, kan-beyin bariyeri roller (BBB) ​​oluşumu 10 ve bütünlük 11-13 içerir serebrovasküler tonu 14 ve düzenlenmesi. Astrositlerde bir diğer önemli özelliği yaralanma onların yanıttır. Patolojik koşullar altında, astrocytes reaktif hale gelir ve daha fazla ara filaman glial fibriler asidik protein (GFAP) ve inhibitör ekstrasellüler matriks (ECM) proteinleri 15,16 ekspresyonunu upregüle. Reaktif astrositler kondroitin sülfat proteoglikan (CSPG) ailesinin astrosit salgılanan ECM proteinleri çoğunlukla oluşan bir glial skar oluşması, sağlıklı doku hasarı sitesi ayırmak, bu önemli faktörler MSS yaralanması 15-17 sonrasında aksonal rejenerasyon inhibe ederler.

Astrositler geç embriyogenez ve erken postnatal ömrü boyunca radyal glial (RG) hücrelerden kaynaklanır. Astrosit belirtim oluştu sonra astrosit habercileri son konumlarına göç, onlar terminal farklılaşma süreci başlar nerede. İn vivo olarak, astrositler bunların tipik morfoloji 18,19 ile gösterildiği gibi üç ila dört hafta doğumdan sonra olgun görünmektedir. RG hücre subpopülasyonu subventricular dilimi astrositler (tip B hücreleri) dönüştürmek. Both, RG ve B tipi hücrelerin sırasıyla, geliştirme sırasında ve yetişkin astrosit benzeri nöral kök hücreler (NSC'lerde) olarak işlev. Astrositler, RG ve B tipi hücreler gibi de bu belirteçler sadece özellikle yetişkin astrositler etiketlemek için kullanılamaz belirten astrosit özgü glutamat taşıyıcısı (GLAST), beyin lipid-bağlayıcı protein (BLBP) ve GFAP ifade. Sağlıklı beyin, RG ve böyle kendini yenilemek için kapasite olarak B tipi hücreler sergi kök hücre potansiyeli bölmek değil yetişkin parankimal astrositler, aksine. Astrosit düzensizliği Alzheimer hastalığı 20,21, 22, Huntington hastalığı, Parkinson hastalığı 23, Rett sendromu, 24 ve 25 Alexander hastalığı da dahil olmak üzere, çeşitli patolojiler kapsamına dahil edilmiştir. Ayrıca, astrositler astrosit aktivasyonu ve astrositik glial skar 16,26 yol MSS tüm hakaretlerini tepki. Aşağıdaki beyin tr oluşturan astrositik glial skarauma veya spinal kord yaralanması nöronal rejenerasyon 15 engelleyen ana engel olarak düşünülmektedir.

Hücrelerin saflaştırılmış popülasyonları ayırmak ve korumak için güvenilir yöntemler geliştirilmesi sinir sisteminin anlayışımıza önemli olmuştur. McCarthy ve de Vellis tarafından öncülük çalışmaları yenidoğan sıçan doku 27'den astrositlerde neredeyse saf kültürleri hazırlamak için bugüne kadar araştırmacılar sağlar. Much fare kortikal astrositler izole etmek için biraz değiştirilmiş bir formu burada sunulan bu yöntemle, astrosit biyoloji öğrendi olmuştur. Vivo çalışmalar, astrositler yanı sıra klimalı ortamda elde edilen in vitro kültür açıklanan kullanarak tamamlayan, daha astrosit işlevleri içgörüler kazanmak için değerli araçlardır.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Protokol

1. Karışık Kortikal Hücre İzolasyonu ve Kaplama

Astrosit kültürleri için Karma kortikal hücre izolasyonu P4 fare yavruları P1 kullanılarak yapılabilir. Uygun astrosit yoğunluğu elde etmek için, her iki T75 doku kültürü şişesi başına 4 fare korteksi pup kullanmak gereklidir. Bu nedenle, aşağıdaki protokol miktarlar 4 fare yavru kullanarak bir hücre hazırlama için hesaplanmıştır.

  1. Diseksiyon işlemine başlamadan önce, kültür ortamı astrosit prewarm 30 ml (DMEM, yüksek glikoz +% 10 ısı ile inaktive edilmiş fetal bovin serumu +% 1 penisilin / streptomisin; tabloya bakınız) 37 ° C'ye kadar 37, 1 saat boyunca hücre kültür dereceli su içinde 50 mg / ml 'lik bir konsantrasyon ° CO2 kuluçka makinesi içinde C, poli-D-lizin (PDL) 20 ml T75 ile kaplayın bir flask.
  2. Diseksiyon işlemi için gerekli tüm reaktifleri ve malzemeleri hazırlamak. İhtiyacınız olanlar: cerrahi makas, düz ince forseps, düz meme forseps, kağıt havlu, çöp torbası,% 70 etanol birbuz üzerinde d 2 diseksiyon yemekleri (3.5 cm çapında) 2 ml HBSS her ile doldurulur.
  3. Hafifçe tutun ve% 70 etanol ile yavru fare baş ve boyun püskürtün. Hayvan makas kullanarak hayvanlar feda edilir.
  4. Kafatası ortaya çıkarmak için kafa derisi boyunca anterior posterior orta hat kesi, gerçekleştirin.
  5. Boyun burun dikkatli kafatası kesin. İki ek kesikler beyne daha fazla erişim sağlamak için yapılır: İlk kesik olfaktor, kafatası tabanından kafatası kesmek için serebellumun alt diğeri anterior yapılır.
  6. Düz uç forseps kullanılarak, kafatası kanatlar hafifçe yana doğru çevrilmiş ve beyin HBSS ile dolu birinci kesme çanak içine alınır ve yerleştirilir. Buz üzerinde yemeğin geri yerleştirin ve tüm 4 beyinleri hasat devam ediyor.
  7. Disseksiyon Prosedürün geri kalan bir stereomikroskop altında gerçekleştirilir. Birincisi, olfaktor ve beyincik ince kullanarak kaldırılırdiseksiyon forseps (Şekil 1B).
  8. , Korteksleri almak ince forseps ile beyin arka ucunu yakalamak için, hemisfer arasında orta hattan bir kesik gerçekleştirmek oluşturulan koru ile forseps ikinci bir dizi eklemek ve soyma uzağa dan korteksin plaka benzeri bir yapıya beyin.
  9. Dikkatlice ince forseps (Şekil 1D ') ile çekerek korteks hemisferden meninksler teşrih. Bu adım, meningeal hücreler ve fibroblastlar tarafından nihai astrosit kültürünün kirletmeyecek. HBSS ile dolu ikinci yemeğin içine hazırlanmış korteks hemisferlerin aktarın ve buz üzerine geri. Tüm 4 korteksleri buna göre devam edin.
  10. Son olarak, keskin bıçakları (yaklaşık 4 ila 8 kez) kullanarak küçük parçalar halinde her korteks yarımkürede kesti.
  11. Steril koşullar altında, transfer korteks bir 50 ml Falcon tüp içine parçalar ve 22.5 ml toplam hacmi ile HBSS ekleyin.
  12. % 2.5 tripsin, karışımı 2.5 ml ekleyin ve inkübe37 su banyosunda doku ° C'de 30 dakika süre ile. Her 10 dakikada sallayarak arada çevirerek karıştırın.
  13. Pelet korteks doku parçaları için 300 xg'de 5 dakika boyunca santrifüjleyin.
  14. Dikkatle dekantasyon ile süpernatant kaldırmak. Doku pelet kaybetmemek için size mekanik bir pipet kullanarak tutabiliriz. Doku parçaları tek hücreler (20-30 defa) içine ayrılamaz oluncaya kadar bir 10 ml plastik pipet kullanılarak 10 mL astrosit kaplama orta ve şiddetli pipetleme eklenmesi ile tek bir hücre süspansiyonu içine doku ayrışır. Astrosit kaplama orta kullanarak 20 ml ses seviyesini ayarlayın. Bir hematocytometer kullanarak sayarak tek hücre içine kanıtı korteks doku ayrışma olabilir. 4 fare yavru korteks biri hazırlanması 10-15 x10 6 disosiye tek hücre boyun eğmek zorundadır.
  15. T75 kültür şişelerinde gelen PDL aspire plakası 37 disosiye tek bir hücre süspansiyonu ve inkübe ° CO 2 inkübatör C.

2. Bir Enr Edinmeiched astrosit Kültür

  1. Bundan sonra karışık kortikal hücreleri ve tüm 3 gün sonra kaplama orta 2 gün değiştirin.
  2. Astrositler konfluent ve bindirilirken mikroglia vardır astrosit katmanda maruz oturmak veya zaten astrosit tabakası (Şekil 2) ayrılmış olan 7 ila 8 gün sonra, mikroglia kaldırmak için orbital çalkalayıcı üzerinde 30 dakika boyunca 180 rpm'de T75 çalkalanır. Süpernatant içeren mikroglia atın veya kültür isteyen ve mikroglia tetkik edersek, aşağı doğru döndürün ve kültür 28,29 için plaka.
  3. 20 ml taze astrosit besiyeri ekleyin ve oligodendrosit prekürsör hücrelerinin (OPC) kaldırmak için 6 saat boyunca 240 rpm'de şişeyi sallayarak devam. Bazı OPCs tamamen astrosit katmanından terketmez yana, OPC kirlenmesini önlemek amacıyla 1 dakika boyunca elle şiddetle sarsmaya devam ediyor. Süpernatantı atın veya kültür OPCs 29 isterseniz, aşağı ve plaka dönerler.
  4. Kalan conflue DurulamaPBS ile iki kere nt astrosit tabaka, 37 CO2 kuluçka makinesi içinde 5 ml tripsin-EDTA ile inkübe eklemek ° C'de, PBS aspire Astrositlerde dekolmanı her 5 dakikada kontrol edin ve elinizi (2-3 kez) ve palmiye karşı şişeyi vurarak astrositlerde dekolmanı zorlamak.
  5. Astrositler kültürü şişesi ayrılmış, sonra, astrosit kültür ortamı, 5 dakika boyunca 180 xg'de sıkma hücreler, 5 ml eklemek süpernatan aspire ve 40 ml taze ortam astrosit kaplama ekleyin. Bir T75 doku kültürü şişesi ilk hücre bölünmesinden sonra 6 1x10 çevresindeki hücreleri boyun eğmek zorundadır. 37 iki T75 kültür şişeleri ve inkübe Levha hücreleri ° CO 2 inkübatör C. Her 2 ila 3 gün orta değiştirin.
  6. Ilk split astrositler sonra 12-14 gün deneme gerçekleştirmeden önce uygun hücre konsantrasyonu 24-48 saat içinde kaplanır. Bir T75 doku kültürü şişesi ikinci hücre bölünmesinden sonra 1.5-2 çevresindeki x10 6 hücre boyun eğmek zorundadır.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

Tam fare beyin (Şekil 1A), serebellum ve olfaktor (Şekil 1B) kaldırılması gerekir izolasyonu üzerine. Korteksleri fare beyin sapı (Şekil 1C) ve bireysel korteks (Şekil 1D ') arasında menenjlerin soyulmuş özenle (Şekil 1E) kaldırılır. Meninksler meningeal arter sistemi ve meningeal hücreler ve fibroblastlar tarafından nihai astrosit kültür kirlenmesine eksik kaldırma sonuçları ortada.

Mikst kortikal hücre...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

Burada belirtilen yöntem, ilk olarak 1980 de 27 McCarthy ve De Vellis tarafından tarif kemirgen neonatal beyin gelen astrosit kültür hazırlanması dayanmaktadır. Postnatal P1 P4 fare beyin kortikal astrositlerde izolasyonu ve kültür modifiye metodu Burada sunulan, verimleri saf primer astrosit hızlı ve son derece tekrarlanabilir olduğunu. Bu teknik kolaylıkla böyle sıçan veya domuz ve böyle omurilik gibi diğer beyin bölgelerinden gibi diğer türler, gelen astrositler yalıtmak için transfer edilebilir. McCarthy ...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

Çıkar çatışması ilan etti.

Teşekkürler

SS, KB ve Avrupa Komisyonu FP7 Hibe PIRG08-GA-2010-276989, NEUREX için Eğitim ve Araştırma Federal Bakanlığı (BMBF 01 EO 0803), ve / Alman Araştırma Vakfı Hibe scha 1442 için Fazit Vakfı Lisansüstü bursu tarafından desteklenir CS 3-1 yazarlar çakışan mali çıkarları var.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
Çalışma solüsyonu Adı Şirket Katalog numarası Nihai konsantrasyon
Astrosit kültür besiyeri
DMEM, yüksek glukoz Yaşam Teknolojileri 31966-021
Isı inaktive FBS, Yaşam Teknolojileri 10082-147 Nihai konsantrasyon:% 10
Penisilin-Streptomisin Yaşam Teknolojileri 15140-122 Nihai konsantrasyon:% 1
Beyin dokusu kazmak için Çözümestion
HBSS Yaşam Teknolojileri 14170-088
% 2.5 tripsin Yaşam Teknolojileri 15090-046 Nihai konsantrasyon:% 0.25
Diğer
% 70 (hacim / hacim) etanol Roth 9065.2
Poli-D-Lizin Millipore A-003-E 50 mg / ml
Su PAA S15-012 hücre kültürü notu
PBS PAA H15-002 hücre kültürü notu
0.05% deneyinpsin-EDTA Yaşam Teknolojileri 25300-062
0.45 mikron Steril filtre Sartorius 16555
3,5 cm petri BD Falcon 353001
15 ml Falcon tüp BD Falcon 352096
50 ml Falcon tüp BD Falcon 352070
75 cm 2 doku kültürü şişesi BD Falcon 353136
Forseps, ince Dumont 2-1032, 2-1033 # 3c; # 5
Forseps, düz meme KLS Martin 12-120-11
13 cm cerrahi makas Aesculap BC-140-R
Stereomikroskopta Leica MZ7.5
Stereomikroskopta + Kamera Leica MZ16F; DFC320
Mikroskop + Kamera Zeiss; Canon Primo Vert; PowerShot A650 IS
Santrifüj Eppendorf 5805000.017 Centrifuge5804R
Orbital Çalkalayıcı Thermo Scientific SHKE 4450-1CE Maxq 4450
Su banyosu JULABO SW20; 37 ° C

Kaynaklar

  1. Nedergaard, M., Ransom, B., Goldman, S. A. New roles for astrocytes: redefining the functional architecture of the brain. Trends Neurosci. 26, 523-530 (2003).
  2. Belanger, M., Allaman, I., Magistretti, P. J. Brain energy metabolism: focus on astrocyte-neuron metabolic cooperation. Cell Metab. 14, 724-738 (2011).
  3. Allen, N. J., Barres, B. A. Neuroscience: Glia - more than just brain glue. Nature. 457, 675-677 (2009).
  4. Ballas, N., Lioy, D. T., Grunseich, C., Mandel, G. Non-cell autonomous influence of MeCP2-deficient glia on neuronal dendritic morphology. Nat. Neurosci. 12, 311-317 (2009).
  5. Jacobs, S., Nathwani, M., Doering, L. C. Fragile X astrocytes induce developmental delays in dendrite maturation and synaptic protein expression. BMC Neurosci. 11, 132(2010).
  6. Kaneko, N., et al. New neurons clear the path of astrocytic processes for their rapid migration in the adult brain. Neuron. 67, 213-223 (2010).
  7. Min, R., Nevian, T. Astrocyte signaling controls spike timing-dependent depression at neocortical synapses. Nat. Neurosci. , (2012).
  8. Eroglu, C., Barres, B. A. Regulation of synaptic connectivity by glia. Nature. 468, 223-231 (2010).
  9. Sasaki, T., Matsuki, N., Ikegaya, Y. Action-potential modulation during axonal conduction. Science. 331, 599-601 (2011).
  10. Bozoyan, L., Khlghatyan, J., Saghatelyan, A. Astrocytes control the development of the migration-promoting vasculature scaffold in the postnatal brain via VEGF signaling. J. Neurosci. 32, 1687-1704 Forthcoming.
  11. Alvarez, J. I., et al. The Hedgehog pathway promotes blood-brain barrier integrity and CNS immune quiescence. Science. 334, 1727-1731 (2011).
  12. Abbott, N. J., Ronnback, L., Hansson, E. Astrocyte-endothelial interactions at the blood-brain barrier. Nat. Rev. Neurosci. 7, 41-53 (2006).
  13. Tao-Cheng, J. H., Nagy, Z., Brightman, M. W. Tight junctions of brain endothelium in vitro are enhanced by astroglia. J. Neurosci. 7, 3293-3299 (1987).
  14. Gordon, G. R., Choi, H. B., Rungta, R. L., Ellis-Davies, G. C., MacVicar, B. A. Brain metabolism dictates the polarity of astrocyte control over arterioles. Nature. 456, 745-749 (2008).
  15. Silver, J., Miller, J. H. Regeneration beyond the glial scar. Nat. Rev. Neurosci. 5, 146-156 (2004).
  16. Schachtrup, C., Moan, N. L. e, Passino, M. A., Akassoglou, K. Hepatic stellate cells and astrocytes: Stars of scar formation and tissue repair. Cell Cycle. 10, 1764-1771 (2011).
  17. Schachtrup, C., et al. Fibrinogen triggers astrocyte scar formation by promoting the availability of active TGF-beta after vascular damage. J. Neurosci. 30, 5843-5854 (2010).
  18. Bushong, E. A., Martone, M. E., Jones, Y. Z., Ellisman, M. H. Protoplasmic astrocytes in CA1 stratum radiatum occupy separate anatomical domains. J. Neurosci. 22, 183-192 (2002).
  19. Ogata, K., Kosaka, T. Structural and quantitative analysis of astrocytes in the mouse hippocampus. Neuroscience. 113, 221-233 (2002).
  20. Dabir, D. V., et al. Impaired glutamate transport in a mouse model of tau pathology in astrocytes. J. Neuroscience. 26, 644-654 (2006).
  21. Wisniewski, H. M., Wegiel, J. Spatial relationships between astrocytes and classical plaque components. Neurobiol. Aging. 12, 593-600 (1991).
  22. Shin, J. Y., et al. Expression of mutant huntingtin in glial cells contributes to neuronal excitotoxicity. J. Cell Biol. 171, 1001-1012 (2005).
  23. Wakabayashi, K., Hayashi, S., Yoshimoto, M., Kudo, H., Takahashi, H. NACP/alpha-synuclein-positive filamentous inclusions in astrocytes and oligodendrocytes of Parkinson's disease brains. Acta Neuropathol. 99, 14-20 (2000).
  24. Lioy, D. T., et al. A role for glia in the progression of Rett's syndrome. Nature. 475, 497-500 (2011).
  25. Quinlan, R. A., Brenner, M., Goldman, J. E., Messing, A. GFAP and its role in Alexander disease. Exp. Cell Res. 313, 2077-2087 (2007).
  26. Beck, K., Schachtrup, C. Vascular damage in the central nervous system: a multifaceted role for vascular-derived TGF-beta. Cell Tissue Res. 347, 187-201 (2012).
  27. McCarthy, K. D., de Vellis, J. Preparation of separate astroglial and oligodendroglial cell cultures from rat cerebral tissue. J. Cell Biol. 85, 890-902 (1980).
  28. Siao, C. J., Tsirka, S. E. Tissue plasminogen activator mediates microglial activation via its finger domain through annexin II. J. Neurosci. 22, 3352-3358 (2002).
  29. Armstrong, R. C. Isolation and characterization of immature oligodendrocyte lineage cells. Methods. 16, 282-292 (1998).
  30. Cahoy, J. D., et al. A transcriptome database for astrocytes, neurons, and oligodendrocytes: a new resource for understanding brain development and function. J. Neurosci. 28, 264-278 (2008).
  31. Anthony, T. E., Heintz, N. The folate metabolic enzyme ALDH1L1 is restricted to the midline of the early CNS, suggesting a role in human neural tube defects. J. Comp. Neurol. 500, 368-383 (2007).
  32. Skoff, R. P., Knapp, P. E. Division of astroblasts and oligodendroblasts in postnatal rodent brain: evidence for separate astrocyte and oligodendrocyte lineages. Glia. 4, 165-174 (1991).
  33. Molofsky, A. V., et al. Astrocytes and disease: a neurodevelopmental perspective. Genes Dev. 26, 891-907 (2012).
  34. Zhang, Y., Barres, B. A. Astrocyte heterogeneity: an underappreciated topic in neurobiology. Curr. Opin. Neurobiol. 20, 588-594 (2010).
  35. Foo, L. C., et al. Development of a method for the purification and culture of rodent astrocytes. Neuron. 71, 799-811 (2011).
  36. Jungblut, M., et al. Isolation and characterization of living primary astroglial cells using the new GLAST-specific monoclonal antibody ACSA-1. Glia. 60, 894-907 (2012).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Daha fazla makale keşfet

Astrosit İzolasyonuHücre KültürüDoku DisosyasyonuOrbital Çalkalamaİmmünositokimyasal BoyamaAstrosit MarkörleriKarma Kortikal HücrelerPrimer Hücre KültürüGlial Hücre Ayrıştırma
Fare Kortikal astrositlerde İzolasyon ve Kültür
Bize Ulaşın
Kütüphaneye Öner

Gizlilik

Kullanım Koşulları

Politikalar

Telif Hakkı © 2026 MyJoVE Corporation. Tüm hakları saklıdır.