Yöntem makalesi

Floresans Desenler incelenmesi için Maya Toplulukları Cryosectioning

DOI:

10.3791/50101

⸱

26 Aralık 2012

 , 
1Division of Basic Sciences, Fred Hutchinson Cancer Research Center

Bu makalede

Özet

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Biz floresan hücrelerin iç kalıplarını gözlemlemek maya topluluklar donma ve cryosectioning için bir protokol mevcut. Yöntem metanol-sabitleme dayalıdır ve bir topluluk içinde floresan proteinleri inaktive olmadan hücrelerinin mekansal dağılımını korumak için OCT-katıştırma.

Özet

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Mikroplar genellikle topluluklar yaşıyor. Bir topluluk içinde hücrelerin mekansal organizasyon topluluğu 1 hayatta kalma ve fonksiyon etkisi olduğuna inanılmaktadır. Konfokal ve iki foton mikroskopi dahil Optik kesit teknikleri, bakteri ve arke topluluklarının 2,3 mekansal organizasyon gözlemlemek için yararlı olduğu kanıtlanmıştır. Konfokal görüntüleme ve maya kolonileri fiziksel kesit kombinasyonu hücreleri 4 iç organizasyonu ortaya koymuştur. Ancak, konfokal veya iki foton mikroskopi kullanılarak doğrudan optik kesit maya kolonileri içine derin bir kaç hücre tabakaları ulaşmak için sadece mümkün olmuştur. Bu sınırlama nedeniyle maya hücreleri 4 ışık güçlü saçılma muhtemeldir.

Burada, sabitleme ve Saccharomyces cerevisiae topluluklar içinde floresan hücrelerin mekansal dağılımını elde etmek için cryosectioning dayalı bir yöntem sunuyoruz. Biz sabitleştirici ajan olarak metanol kullanımıhücrelerinin mekansal dağılımını korumak. Sabit topluluklar Kriyostaz OCT bileşiği, dondurulmuş ve cryosectioned ile infiltre edilir. Bölümlerin Floresans görüntüleme toplum içinde floresan hücrelerin iç organizasyonunu ortaya koymaktadır.

Kırmızı ve yeşil floresan protein eksprese eden maya suşu oluşan toplulukların örnekleri de mantar kolonileri 2.3 içinde gen ekspresyonunun bu gibi floresan hücrelerinin uzaysal dağılımının ortaya çıkarmak için cryosectioning yöntem potansiyellerini göstermek. Bizim odak Saccharomyces cerevisiae topluluklar olmuştur rağmen, aynı yöntem potansiyel olarak diğer mikrobiyal topluluklar incelemek için uygulanabilir.

Protokol

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. Maya Topluluklar Tespit

  1. Bir membran filtreden (; Şekil 2A, örneğin Millipore MF membran filtre) mayaya topluluklar büyütün. Bu protokol, bir 6 mm çapındaki membran filtre üzerinde daha az 2x10 8 hücrelerin, tipik bir topluluk karşılık gelir.
  2. Iyi bir 1 cm çaplı (Şekil 2B) alt kapak 541 Whatman filtre kağıdı parçası kullanın. Bu whatman kağıt sonraki aşamalarda topluluk aktarmak için bir taşıyıcı olarak kullanılacaktır. De 1 ml% 100 metanol ekleyin ve dengelemek için sıcaklık -20 ° C de bırakın.
  3. Bir Dewar sıvı N 2 koyun. Sıvı içinde en az 15 saniye boyunca topluluk daldırma N 2 bir cımbız (Şekil 2C) kullanılarak sıvı azot içinde topluluk dondurun.
  4. -20 ° C metanol (Şekil 2B) ve de dondurulmuş topluluk aktarın. Metanol içinde batış zaman toplumun yatay tutulur emin olun.20 dakika bekleyin. MF Membran filtre metanol içinde parçalanmaya başlar.
  5. De metanol buharlaşma (Şekil 2E) için -20 ° C'de muhafaza soğuk bir Petri kabı metanol topluluk taşıyıcı kullanılarak Whatman 541 filtre kağıdı aktarın. Aktarırken, taşıyıcı whatman filtrenin üstüne topluluk tutmak ve soğuk Petri kabı koymadan önce kalın whatman kağıt başka bir parça kullanılarak metanol ilave damla uzaklaştıracağım. Bu buharlaşma süresi numuneden numuneye tutarlı olmasını sağlayacaktır.
  6. Taşıyıcı whatman filtre kuru görünüyor kadar buharlaşma için 4-6 saat bekleyin. Yetersiz buharlaşma kesit engelleyen kalıntı metanol bırakır. Topluluklarda nedenler çatlak ve deformasyon üzerinde kuruyan.
  7. -20 ° C dondurucu örnek çıkarın. Toplum tarafından kapsanmayan whatman 541 filtre kağıdı kesip.
  8. Numune en az ~ 2 mm kenar var böyle büyüklükte bir dikdörtgen küp alüminyum folyo konteyner Yapher iki tarafında (Şekil 2F). Alüminyum folyo konteyner alt yüzeyinde topluluk yerleştirin; hemen 3 OCT ile örnek ~ topluluk yüksekliği yukarıda 4 mm kapsamaktadır. Önemli ise, örnek yönünü kabın yanlarına ile ilgili olarak, bu adımda ayarlanabilir. 10 dakika bekleyin.
  9. Dondurmak için kuru buz üzerinde metal bir plaka üzerinde OCT-gömülü örneği yerleştirin. -20 ° C veya -80 ° C derin dondurucu da donmuş topluluklar saklayın.

2. Floresans Görüntüleme için Dondurulmuş Toplulukları Kesit

  1. -25 ° C ila cryosection odasının sıcaklığı ayarlanır ve sıcaklık odasının bir sıcaklığa ulaşıncaya kadar oda içinde örnekleri bırakın.
  2. Montaj üzerine OCT bir damla uygulandıktan sonra kriyo-montaj üzerine numune monte edin. Ekim kalınlığı 2-3 mm olacak şekilde maruz Whatman filtre kağıdı (konteynerin alt) ile numune yan tarafında eşit Ekim yayılır. Se önce kriyostat odacıkta Ekim donma edelimctioning. Örneğin her iki tarafta 2-3 mm olan bir OCT kenar bölümleri sağlanması bütünlüğünü korumaya yardımcı olur.
  3. OCT örnek bloğun iki numune hizalamak için kullanılabilir. Örnek bıçağı ile ilgili olarak hizalı değilse, kesit örnek bir köşesine veya yan başlayacaktır. Bıçak örnek blok bir mükemmel dikey (veya yatay) yüz keser emin olmak için montaj ayarlayın.
  4. Maya topluluklar için tipik bölümler ~ 14 mikron kalınlığında vardır. Bir bölüm kestikten sonra, yavaş yavaş kesik bölümüne slaydı yaklaşarak, bölüm toplamak için oda sıcaklığında bir mikroskop slaydı kullanır. Bölümü eritmek ve mikroskop lamı transfer olacak. Dakikada 18 bölüm, bir slayttan aktarılabilir.
  5. Tercihen -20 soğuğa, ° C, görüntüleme önce de slaytlar saklayın. 4 ° C'de bir hafta tutulduğunda sinyal kaybı minimal Maksimum floresans sinyali için, görüntüleme tercihen kesit hemen sonra yapılır.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Kırmızı-yeşil-etiketli rakip popülasyonları 6 içeren bira mayası toplulukların dikey kesit görüntüleri floresans Şekil 3 'de gösterilmiştir. Bu topluluklar, maya ve uzay gibi paylaşılan kaynaklar, onların rekabet iki Prototrofik suşlarının oluşur olarak düşey kesitleri gösterilir kolumnar desenleri 7, yol açar. Tek bir hücreye Kararları aşağı kesitlerde çözülebilir. Şekil 3 Şekil 1'de protokolleri takip ederek (alt) ve (üst) metanol-sabitleme olmadan elde çoğaltmak...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Burada sunulan prosedür maya toplulukların iç yapısını incelemek için bir yol sunar. Metanol sabitleme adım 8 maya kolonisi sertleştirir ve koloninin bütünlüğünü korur, ancak aynı zamanda sonuçların yorumlanmasında dikkate alınması gerektiğini büzülme 8 neden olur. Biz genellikle, doğrudan 9 düzeltmeden OCT gömülü koloniler göre maya kolonilerinin yüksekliği yaklaşık% 30 daralma, bkz.

Çekmeyi önlemek için, cryosectioning için alternatif bir yaklaşım doğrudan ...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Çıkar çatışması ilan etti.

Teşekkürler

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Biz onların kriyostat kullanma izni için Fred Hutchinson Kanser Araştırma Merkezi'nde Jonathan Cooper Lab teşekkür etmek istiyorum. Bu çalışma NIH ve WM Keck Vakfı tarafından desteklenmiştir. BM Yaşam Bilim Araştırma Vakfı, Gordon ve Betty Moore akademisyendir. Biz bize yaptığı tespit protokolü paylaşmak için Daniel Gottschling minnettarız.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
Reaktif Adı Şirket Katalog numarası Yorumlar (isteğe bağlı)
100% Metanol JT Baker 9070-01
Tissue-Tek Ekim Bileşik Andwin Bilimsel 4583
Whatman Sınıf No 541 Kantitatif Filtre Kağıdı Whatman 1541-047
Millipore-MF Membran Filtre Millipore HAWP04700
Kriyostat Leica CM 1510 S

Kaynaklar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Tolker-Nielsen, T., Molin, S. Spatial Organization of Microbial Biofilm Communities. Microbial Ecology. 40 (2), 75-84 (2000).
  2. Moller, S., et al. In Situ Gene Expression in Mixed-Culture Biofilms: Evidence of Metabolic Interactions between Community Members. Appl. Environ. Microbiol. 64 (2), 721-732 (1998).
  3. Lepp, P. W., et al. Methanogenic Archaea and human periodontal disease. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 101 (16), 6176-6181 (2004).
  4. Váchová, L., et al. Architecture of developing multicellular yeast colony: spatio-temporal expression of Ato1p ammonium exporter. Environmental Microbiology. 11 (7), 1866-1877 (2009).
  5. Mináriková, L., et al. Differentiated Gene Expression in Cells within Yeast Colonies. Experimental Cell Research. 271 (2), 296-304 (2001).
  6. Shou, W., et al. Synthetic cooperation in engineered yeast populations. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 104, 1877-1882 (2007).
  7. Momeni, B., et al. Cooperation generates a unique spatial signature in microbial communities. , Submitted (2012).
  8. Kiernan, J. Histological and Histochemical Methods: Theory and Practice. ed, , 4th, Cold Spring Harbor Laboratory Press. 4(2008).
  9. Piccirillo, S., et al. The Rim101p/PacC Pathway and Alkaline pH Regulate Pattern Formation in Yeast Colonies. Genetics. 184 (3), 707-716 (2010).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya şekillerini yeniden kullanmak için izin iste

İzin iste

Etiketler

Cryosectioning Yeast CommunitiesFluorescence ImagingSpatial DistributionMethanol FixingOCT EmbeddingFluorescent ProteinsYeast ColoniesFluorescence MicroscopyCommunity SectioningFluorescent Signal

İlgili makaleler