1. Hayvan Anestezi ve Organ Toplama
- Ketamin (200 mg / kg) ve ksilazin (20 mg / kg) intraperitoneal (ip) enjeksiyonu ile fare narkoz.
- Kan pıhtılaşması ve trombus oluşumunu önlemek için 250 IU Heparin ip enjekte antikoagülan için.
- Derin narkoz arefleksi ile karakterize olan, ulaşılana kadar bekleyin. Hafifçe kuyruk çimdikleme kornea veya test uçuşu refleks dokunarak arefleksi, test korneal refleks kontrol etmek için.
- Ameliyat masasının üzerine fare aktarın ve yatar pozisyonda sabitleyin.
- Cilt ve kılıç şeklinde aşağıda karın duvarı kesilirken ve kapaklı torakotomi gerçekleştirin: kosta kemer boyunca her iki taraf için kesme uzatın ve daha sonra medial aksiller hat kaburga kesilmiş, göğüs kafesi yukarı saptırmak.
- , Perikard aç büyük damarları bulmak. Yavaşça iyi aorta görüntülemek için kalp kaudal basın. Forseps kullanarak aort Kelepçe.
- Nin bir çift içbükeylik olarak kalp yerleştirin cissors ve tek kesim ile tüm bağlantı damarları teşrih. Langendorff kanülasyon için asendan aort yeterince büyük bir bölümünü korumak için emin olun.
- Buz gibi soğuk ve pre-Oksijenli çözümü 1 (çözümler için, bkz Tablo 1) ile dolu bir Petri kabı hemen çıkarılarak kalp aktarın.
2. Kalp ve Langendorff Perfüzyon hazırlanması
- Bir 1.8F çelik kanül ile aorta kanüle. Hava embolisi önlemek için emin olun.
- Çözelti 1 1 ml olan bir cerrahi dikiş ve çalkalama ile koroner aort kanülünün üzerinde sabitleştirmek.
- Langendorff aparatı ile kanül takın.
- Torakotomi gelen Langendorff kanülasyon için zaman emin olun miyokarda Uzamış iskemi / reperfüzyon hasarı önlemek için 120 sn aşmaz.
- Ca 2 10 ml serpmek kalp + serbest çözelti 2 (4 ml / dak.)
- 8 dak (4 mL / dak) kollagenaz için çözelti 3 ile serpmek kalp.
Kardiyak Chambers le "> 3. Mikrocerrahi Ayrışma
- Düşük Ca 2 + çözümü 4 içeren önceden ısıtılmış 100 mm Petri kabı içine Transferi kalp.
- Dikkatlice makas ile aort ve diğer non-kardiyak doku kaldırmak ve atın.
- Ayrı atriyumlar ve ventriküller ve ayrı ayrı her odası ile devam edin. Çözüm 4 dalmış hücreleri tutun. Küçük hacimli (az 5 ml) kullanın.
4. Kardiyomiyositlerin Diğer Ayrışma
- Atriyal kardiyomiyositlerde:
- Atriyal kardiyomiyositlerde ayrı önceden ısıtılmış 100-mm kültür çanak içine kulakçıklar aktarmak ve nazikçe ince forseps ile didik didik dokuya disosiye bireyselleştirmeye için. Dokusunun neredeyse tam bir ayrışma olun.
- 5 dakika boyunca çözelti 5, 1 ml hücre askıya almak için büyütülmüş bir ateş cilalı bir plastik pipet ucu ile bir 1 ml pipet kullanın.
- Bir hücre filtresi (200 mikron göz açıklığı) kullanılarak artıklardan hücreleri ayırın.
- 5 ml hücre süspansiyonu ile çözelti 5 ve oda sıcaklığında 16 x g'de 2 dakika süre ile santrifüje ekleyin.
- Aşağıdaki adımlar, bir hücre kültürü kaputu altında işletilmektedir. 6 çözelti 5 ml süpernatant ve yeniden askıya pelet atın.
- Bir 15 ml tüp içinde 10 dakika boyunca yerçekimi ile sedimantasyon sonra, oda sıcaklığında 16 xg'de 1 dakika süreyle santrifüjlenir. Süpernatantı. Solüsyonu 6 1-5 ml kendi miktar bağlı hücreleri yeniden askıya.
- Ventriküler kardiyomiyositlerde:
- 4. çözelti 5 ml ince forseps ile söz konusu sol ventrikül bölge teşrih.
- Hücrelerin en ayrılır kadar yavaşça pipetle hücreler süspanse edin. 50 ml'lik bir tüpe (200 mikron göz açıklığı) filtrelenmesinden sonra çözelti hücre transferi, 25 ml'lik bir hacme ekleyin.
- Oda sıcaklığında 16 x g'de 2 dakika süre ile santrifüje.
- Aşağıdaki adımlar, bir hücre kültürü kaputu altında işletilmektedir. Süpernatantı, 25 ml pelet yeniden askıya6 ve çözelti 10 dk için hücrelerin sedimantasyon izin verir.
- Hücreleri sayın ve süpernatant kaldırmak, 25 eklemek - 50 ml çözelti 6 hücreleri üzerinde.
5. Biyokimyasal Hücresel Elektrofizyoloji, ya Çalışmaları IF kardiyomiyositlerin hazırlanması
- Elektrofizyolojik çalışmalar için, bir 50 ml tüp içinde çözelti halinde 6 miyositleri tutmak ve sedimantasyon inhibe ederler.
- Için biyokimyasal çalışmalar, örneğin kalsiyum görüntüleme, laminin kaplı hücre kültürü çanak tabak miyositler (son konsantrasyonu 20 mg / PBS ml laminin).
- Immunofloresan boyama cam kapak slipleri ile bir hücre kültürü çanağı plaka hazırlamak ve laminin çözeltisi (nihai konsantrasyon 50 mg / ml PBS içerisinde laminin) ile kaplanmış için.
- Kaplama miyositlerin önce çözüm çıkarın. Levha hücreleri ve bir mikroskop kullanarak, hücre yoğunluğu kontrol eder.
- % 2 CO2 içinde 37, 1 saat boyunca kayma ° C kapsayacak şekilde miyositleri bağlı olsun, çözelti çıkarmakve standart bir boyama işlemi protokolü ile hemen başlayabilirsiniz.
- Oda sıcaklığında 10 dakika boyunca PBS içinde sabitleştirici, örneğin,% 4 PFA (pH 7.5) ile inkübe edin ve 5 dakika her biri için üç PBS yıkama adımları ile takip.
- Hücreler geçirgenliği ve spesifik olmayan bağlayıcı antikor% 10 serum ve% 0.3 Triton, oda sıcaklığında 30 dakika boyunca PBS içinde% 0.2 BSA ile miyositleri inkübe inhibe etmek.
- 37, 1 saat boyunca birincil antikor ile inkübe ° C ve daha önce anlatıldığı gibi yıkayın.
- Oda sıcaklığında 1 saat süreyle ikincil antikor ile inkübe edin. Çekirdekler counterstain ve α-aktinin kullanımı DAPI ve florokrom konjuge phalloidin (Alexa Fluor 488, Invitrogen) için.
- Yıkadıktan sonra, cam kapak floresans montaj orta silan tedavi mikroskop slaytlar ve embed hücreleri üzerinde dikkatle kayıyor aktarın.
6. Hücresel Elektrofizyoloji
- Fre üzerine Tüm-hücre yama klemp kayıtları yapınshly oda sıcaklığında atriyal ve ventriküler kardiyomiyositlerde izole.
- Ekstrasellüler banyo solüsyonu tanımlı ses ile dolu perfüzyon odasının içine sağlıklı görünmesini kardiyomiyositlerde aktarın. 117 mM NaCl, 4 mM KCI, 1 mM KH 2 PO 4, 4 mM NaHCO 3, 1,7 mM MgCl2, 3 mM CoCl 2, 10 mM HEPES, 10 mM glukoz, ve 0.02 mM Tetrodotoxin (TTX), (pH 7.4) . PH değeri ayarı için NaOH kullanın.
- (Yani IX71 inverted mikroskop, bir Multiclamp 700B Amplifikatör, pClamp10.3 yazılımı (Moleküler Cihazlar) ile Digidata 1440A toplama sistemi ve PC) düzgün yama kelepçe teçhizat kullanın.
- 2. CP Na 130 mM KCl, 2 mM MgCl2, 11 mM HEPES, 11 mM EGTA, 5 mM Na 2 ATP, 0.4 mM Na 2 GTP, 5 mM ihtiva eden hücre içi solüsyonu ile dolu olduğunda MΩ 3-5 arasında dirençleri ile yama pipet kullanarak ve 4.9 mM CaCl2 (pH 7.2). PH değerinin ayarlanması için KOH kullanın.
- Dışa K + akımları du Evokehalka 4.5-sn voltaj adımları -60 ve 20 ms -40 mV prepulse sonra -70 mV tutarak potansiyelinden 10 mV adımlarla +50 mV arasında potansiyelleri test etmek.
- Sızıntı akımları her zaman <100 pA olduğundan emin olun.
- , Heteropodatoxin 2 (HpTx2; Alomone) veya tetraetilamonyum (TİM, Sigma); farklı K diseksiyonu için + akımları gibi 4-aminopiridin (ICN Biomedicals, Irvine, CA, USA 4-AP) gibi spesifik inhibitörleri kullanmak. Stok çözeltileri ekstraselüler banyo solüsyonu olarak hazırlanmış ve "temel" kayıt sonra bir mikro tip yoluyla hücre olası en yakın çevresine doğrudan doğruya uygulanabilir. Dengeleme "ilaç" kayıtları önce 2-3 dakika süreyle izin verilmelidir.
- Analizi için hücre boyutu ayrı ayrı hücrelerde (tam hücre zarındaki kapasitans) akım genlikleri normalleştirmek. PClamp10.3 yazılımı (Moleküler Cihazlar) veya benzer yazılımları kullanarak çevrimdışı verileri analiz.