Yöntem makalesi

Epigenetik yeniden programlanması ile hESC itibaren Myospheres Üretimi

8.9K görüntülenme

⸱

DOI:

10.3791/51243

⸱

21 Haziran 2014

 , 
1Muscle Development and Regeneration Program, Sanford-Burnham Institute for Medical Research, 2IRCCS Fondazione Santa Lucia

Bu makalede

Özet

Burada, biz insana biyolojik özelliklerini özetlemek permisif kültür koşulları altında kasılma myofibers (myospheres) üç boyutlu kümeler oluştururlar iskelet kası atalarıdır, homojen bir nüfusa üreten doğru insan embriyonik kök hücreleri (hESC) epigenetik yeniden programlama dayalı bir protokol açıklar iskelet kasları.

Özet

Insan embriyonik kök hücreleri (hESC) ikinci iskelet kas hücrelerinin homojen ve bol nüfusun Üretimi hücre bazlı terapiler için ve insan nöromüsküler hastalıklar modeli bir "bir bulaşık hastalık" için bir gerekliliktir. Örneğin düşük yoğunlukta ve ilgi nüfus, hem de üç boyutlu kasılma yapıların oluşumu için protokoller eksikliği heterojenlik gibi büyük engel, nöromüsküler bozukluklar için kök hücrelerin kullanımı da sınırlıdır. Biz HESC tanımlanan faktörlerin ektopik getirilmesi ile bu sınırları aşan bir protokol tasarladık - kas belirleyicidir MyoD ve SWI / SNF kromatin karmaşık bileşen BAF60C biçimlenme - iskelet kası hücrelerine hESC yeniden programlamak mümkün olduğunu. Burada protokol HESC türetilmiş miyoblastları oluşturmak ve üç boyutlu minyatür yapılar (myospheres) onların kümelenmeyi teşvik için kurulan açıklayan fonksiyonel taklit minyatür iskelet kasları 7

Giriş

Pluripotensini koruyarak çünkü kendi benzersiz yeteneği kendini yenilemek, insan embriyonik kök hücreleri (hESC) rejeneratif tıpta paha biçilmez bir kaynak olarak kabul edilir. In vitro hastalık modelleme için iskelet kaslarının hastalıklı kas ve HESC-veya uyarılmış pluripotent kök hücrelerinin hücre aracılı iskânından Kök (iPSC) türetilmiş nesil tedaviler belirlenmesi ve birçok nöromüsküler hastalıkların patogenezi tanıtılması amaçlanmıştır çalışmaların önemli hedefleri vardır. Ancak bu çalışmalar iskelet kası hücrelerine dönüştürmek için hESC direnci ve iskelet Miyogenesis doğru HESC-taahhüdünün moleküler düzenlenmesi ile ilgili bilgilerin azlığı meydan olmuştur. Gerçekten de, hESC iskelet kası ata hücreleri üretmek için daha önceki girişimler sadece embriyoit gövde (EB) türetilmiş yavrularıyla veya mezenkimal hücreler transkripsiyonel aktivatör elemanının ve ektopik ifade (alttaki iskelet Miyogenesis aktif hale getirmek için yeterli olduğunu ortaya örPax3 veya Myf5) 1-3 ya da özel kültür koşulları 4-5 maruz kalma.

Daha önce (SMARCD3 tarafından kodlanan) SWI / SNF bileşen, BAF60C, kas özel lokusların 6 MyoD aracılı aktivasyonunu sağlar: transkripsiyonel makinelerin önemli bir bileşen olduğunu göstermiştir. Yakın zamanda BAF60C seçici olmaması HESC üzerine başka bir somatik hücreler 8-10 ifade BAF60C gözlenmiştir iskelet Miyogenesis 7'nin MyoD aracılı aktivasyonu için direnç kazandıran keşfettiler bir işlem genel olarak kas kaynaklı dönüştürme anılacaktır. BAF60C Zorla ifadesi doğrudan BAF60C ve miyojen soy 7 doğru hESC taahhüt epigenetik bir imza heybetli myod ile, belirli bir kültür şartlara bağlı, hESC iskelet Miyogenesis etkinleştirmek için myod sağlar. Not, önceki proteomik analiz BAF6 seçici olmadığını ortaya0C, SWI / SNF bileşenleri arasında, EKH 11. Biz üç boyutlu kasılma oluşturmak için toplanmış olabilir iskelet miyoblastların homojen bir nüfus nesil lider, miyojenik soy üzerine hESC epigenetik bir taahhüt altına bu bilgi kullanılır yapıları (myospheres), işlevsel taklit minyatür iskelet kasları 7. Nitekim, hESC iskelet kas atalarıdır üreten bizim yöntem böyle hücresi gibi hücreler farklılaşma sinyallere maruz kadar fenotipik gizildir miyogenik soyu, için hESC epigenetik taahhüt dayanır farklılaştırma ortamı içinde toplama ve kültür (belirli bir protokol bakınız). Bu strateji epigenetik iskelet kası soy kararlı ve histolojik iskelet ve fonksiyonel özellikleri özetlemek üç boyutlu kasılma myospheres oluşumuna uygun olan hESC bir homojendirler ve genişlemesine izin verenkaslar. Myospheres kas hastalıklarının modeli bir "bulaşık hastalık" için işletilebilir minyatür kasların ilk kanıt. Hasta türetilmiş iPSCs üretilen, bu myospheres tedavi edici bileşiklerin yüksek veri akışı tarama için bir araç olarak büyük potansiyel sunan ek olarak, uzun süredir devam eden gelişim soru aydınlatmak için potansiyel ve nadir hastalıkların patojenezi. Ayrıca Gomes et al. 12 ile bir JoVE protokolde tarif edildiği gibi analiz myosphere hemen tek bir okuma, bölme immünohistokimyasal olarak temin edilebilir olduğuna dikkat

Protokol

HESC 1. Enfeksiyon

Bu protokol, yüksek titre lentivirüsler kodlayan BAF60C ve MyoD 13 gerektirir. Bu yapılar istek üzerine mevcuttur.

  1. Başlamadan önce Öneriler
    1. Besleyici ücretsiz koşullarına enfeksiyon viral alımı sırasında hücresel rakiplerini ortadan kaldırmak için (Şekil 2A) için enfeksiyon, plaka hESC yüksek verim sağlamak için. Gerçekten de, MEF'ler HESC göre ve MyoD-aracılı dönüşüm için yetkin olduğu gibi enfekte herkesin bildiği gibi daha kolaydır. Bu nedenle, HESC kültürlerden MEFS ortadan enfeksiyon oranı artar.
    2. Bu enfeksiyon, yüksek verim sağlamak için yüksek titre lentivirüsler olması tavsiye edilir. Enfeksiyon verimliliğini artırmak için Seçenekler "enfeksiyon kontrol" bölümünde tartışılmıştır.
    3. Her kuyucuğa 1 mg / ml 1 ml Matrigel eklenerek Matrigel kaplı tabak hazırlayın ve en az 1 saat oda sıcaklığında (veya O bırakmak / N 4 ° C'de mühürlübir gün önce hazırlandı ise).
  2. Enfeksiyon işlemi
    1. Enfeksiyondan bir gün önce
      1. 1000 X seyreltme (2 mM nihai konsantrasyon) de ortam içinde embriyonik kök hücre Klonlama ve Kurtarma Ek ekleyin.
    2. Gün 0 - BAF60C ile enfeksiyon
      Not: İlk MyoD ile enfeksiyonu takiben BAF60C ile hESC enfeksiyon yapın.
      1. 37 ° C'de 5 dakika boyunca TrypLE 1 ml ile kuluçkalama ile tek bir hücre süspansiyonu olarak 14 koloni olarak yetiştirilen hESC bir 6-yuvalı plakanın bir kuyu ayrıştırmaları
      2. 15 ml tüp transfer süspansiyon, 1200 rpm'de 5 dakika boyunca santrifüj HESC orta ve 9 ml ekleyin.
      3. Santrifüj sırasında, 1 ml mTeSR1, polibren (6 mg / ml) ve embriyonik kök hücre Klonlama ve Kurtarma Ek (2 mM) ilave edilerek temiz bir tüp içinde enfeksiyon karışım hazırlayın.
      4. Bir c yeniden askıya hücre topağı (yaklaşık olarak 5 x 10 5 -1 x 10 6 hücreonfluent iyi hESC) plastiğe yapışmasını engelleyen bir hücreler 6-çukurlu, düşük tutturucu levha, üzerine enfeksiyon karışımı ve plakanın 1 ml.
      5. 8 10 MOl'de BAF60C-IRES-GFP virüs ekleyin ve inkübatör içinde 3 saat inkübe
      6. Virüs içeren hücre süspansiyonu toplayın ve iki Matrigel kaplı oyuklara eşit bölün. Daha sonra her bir oyuğa mTeSR1 + embriyonik kök hücre Klonlama ve Kurtarma Ek 2 ml ekleyin ve inkübatör O / N bırakın.
    3. Gün 1
      1. Dikkatle virüs içeren orta kaldırmak ve mTeSR1and iEK Hücre Klonlama ve Kurtarma Ek 2 ml ile değiştirin. Şekil 2B'de gösterildiği gibi, hücreler topaklanmış başlayacaktır.
    4. Day2 - myod ile enfeksiyon
      1. Devam önce, enfeksiyon riski yüksek verim için emin olmak için flöresanlı bir mikroskop altında, hücrelerin floresans durumunu kontrol edin. Değilse, Infect kontrol "bölümüne bakıniyonu ".
      2. Hücreler izdiham en az% 80 ulaştı varsa aşağıdaki işlemleri; Aksi önce işlem için ek bir gün bekleyin.
      3. Ortamı çıkarın ve hücreleri ayırmak için TrypLE maddesi 1 ml ekleyin. 37 ° C'de 5 dakika inkübe
      4. Tarif from1.2.2.2 gibi tekrarlayın - 1.2.2.6 10 8 MOI'da MyoD virüs ekledi.
    5. 3. Gün
      1. Dikkatle virüs içeren orta kaldırmak ve mTeSR1and iEK Hücre Klonlama ve Kurtarma Ek 2 ml ile değiştirin.
      2. Matrigel Plaka MEF'ler enfekte olmuş hücrelerin yayılmasını sağlamak için ertesi gün için 2.5 x 10 5 / cm 2 plakaları kaplı.
    6. 4. Gün
      1. Ortamı çıkarın ve hücreleri ayırmak için TrypLE maddesi 1 ml ekleyin. 37 ° C'de 5 dakika inkübe
      2. 15 ml Falcon tüpüne transfer hücreleri, 1200 rpm'de 5 dakika boyunca santrifüj HESC orta ve 9 ml ekleyin.
      3. Raldır süpernatan ve HESC orta 6 ml yeniden askıya.
      4. Her bir MEF'ler ihtiva eden 3 ml dağıtma 1:2 bir bölünme oranında MEF'ler ihtiva eden 6 oyuklu plaka ve plaka hESC orta çıkarın.
        Koloniler izdiham ulaştığınızda! TIP, MyoD/BAF60C-infected hücrelerin bazı kuyularında bir rezerv stok olarak sıvı nitrojen içinde dondurulmuş olabilir. Donma orta 90 KOSR% ve% 10 DMSO artı 2 mM iEK Hücre Klonlama ve Kurtarma Desteği içerir. Geri kalan kuyular sonra farklılaşma protokole maruz olabilir - açıklama için aşağıya bakınız. Daha hücreleri daha myospheres üretmek için gerekli aşağıdaki gibi, enfekte HESC daha çoğaltılabilir:
      5. Ortamı çıkarın ve 37 ° C'de 5 dakika boyunca 1 mg / ml kollajenaz IV, 1 ml 'si ile inkübe
      6. Kollajenaz IV çıkarın ve HESC ortamın 1 ml.
      7. Diseksiyon mikroskobu altında 10 ml ucu ile koloniler kazımak.
      8. Coloni ve parçaları toplayın, 15 ml bir tüp içinde ve 3 dakika boyunca tortu izin es. Daha sonra, bir oran 01:04 ile MEF'ler tabakalarına HESC orta ve plaka içindeki süpernatan, tekrar süspansiyon çıkarın.
  3. Enfeksiyon kontrol etme
    1. Hücreleri yayılan iken, RNA analizi için hasat ve (Temsilcisi sonuçları görmek) her aşamada doğru biyolojik durumu yansıtır biyobelirteçlere kontrol etmek için immünofloresans tarafından protein ekspresyon analizi gerçekleştirmek için daha küçük bir ölçekte enfekte hücreleri plaka tavsiye edilir. Yüksek titre lentivirüsler için beklenen enfekte olan hücrelerin yüzdesi en az% 80 olmalıdır.
    2. Yüksek verim sağlamak için, lentiviral vektörler, floresan bir seçim işaretleyicisi ve / veya bir antibiyotik direnç sokulması, modifiye edilebilir. BAF60C ifade Bizim lentiviral Plazmid aynı zamanda GFP floresan taşır.
    3. Bir floresan işaretleyici için hESC sıralama. Enfeksiyonunun düşük verimlilik durumunda floresan a kullanılması önerilirBAF60C virüs eksprese eden hücreler için zenginleştirmek ve daha sonra yüksek titre MyoD virüs ile enfekte etmek için hücreler (FACS-sıralama) sıralama ctivated hücreleri.
      1. Orta iEK Hücre Klonlama ve Kurtarma Ek sıralama gün önce ekleyin.
      2. Sıralama günü, (günde 0 açıklandığı gibi) TrypLE tarafından hücreleri ayırmak ve FACS-tüplerde KO yedek serum artı iEK Hücre Klonlama ve Kurtarma Eki'nde hücreleri tekrar süspansiyon.
      3. Sıralama sonunda, iEK Hücre Klonlama ve Kurtarma Desteği ekleyerek MEF'ler plakalar üzerinde KO yedek serum ve plakadaki hücreleri toplamak.

2.. EB-benzeri İndüksiyon ve Farklılaşma

  1. Indüksiyon ve farklılaşma prosedür
    1. Gün 0 - EB indüksiyon
      1. Kuyunun (Şekil 2C) koloni sayısının yüksek olması, BAF60C/Myod-infected hESC farklılaşma başlamadan önce, emin olun.
      2. Her bir Raldır ortam, PBS ile yıkayın ve 1 mg / ml kollajenaz IV, 1 ml. 37 ° C sıcaklıkta 5 dakika boyunca inkübe
      3. Kolajenaz çıkarın ve EB ortamın 1 ml.
      4. , Bir teşhir mikroskopu altında hızlı bir şekilde, mekanik olarak 10 ml ucu ile kazınarak 400-800 hücre agregalar halinde kolonileri ayırmak.
      5. 15 ml'lik bir tüp içinde koloni parçalarını toplamak ve 3 dakika boyunca çöktürmek için izin verir. Süpernatantı, EB ortamının 3 ml yeniden askıya ve 6-kuyulu düşük bağlanma plakanın bir çukuruna hücre süspansiyonu aktarın.
    2. Gün 1
      1. Geçmeden önce koloni büyüklüğü ve hücre ölümünü edin. Büyük parçalar varsa, bir 5 ml pipet, 3-4 kez hafifçe yukarı pipetleme ve onları yıkmak. Hücre ölümü çok yüksek ise (bir çok yüzer hücreler ve döküntüler) çekimi ile bir 15 ml'lik bir tüp içinde agregalar toplayarak orta yerine taze ortam EB 3 ml ile levha, aşağıdaki gibi başka bir devam edin.
      2. Ekle 1.5kuyu taze ortam ml EB
    3. 2. Gün
      1. 15 ml'lik bir tüp içinde kuyulardan agrega toplayarak orta değiştirin. Onları 2 dakika sakin olalım.
      2. Süpernatantı taze EB orta 3 ml ile değiştirin ve aynı kuyuların üzerinde dağıtabilir.
    4. 3. Gün
      1. Kuyularda taze EB orta 1.5 ml ekleyin.
    5. 4. Gün
      1. "2. Gün" de anlatıldığı gibi devam edin.
    6. Gün 5 - EB-benzeri kümeler (Şekil 2B) ve andMyogenic farklılaşması.
      1. 2.1.3.1 tarif edildiği gibi agrega toplayın ve 2 ml PBS ile bir kez yıkama; toplanmış çöktürmek için izin verir.
      2. PBS çıkarın ve DM orta 3 ml ekleyin; Aynı kuyu üzerinde plaka.
    7. Gün 6 - Gün 20
      1. D6 kaynaktan d20 için her 3 günde bir, taze ortam ile orta yerine. Temsilci myospheres F gösterilirŞEKIL 2E.
  2. Denetleme myosphere farklılaşma
    1. Daha fazla ilerlemeden önce, bir önceki protokol JoVE 12'de tarif edildiği gibi, OCT bileşiği içine gömülü myospheres bölümleri yaparak myospheres içinde miyojenik farklılaşma etkinliğini kontrol etmek için önerilmektedir. Böyle myognenin gibi miyojen belirteçleri (klon F5D, DSHB) ve miyozin ağır zincir (klon MF20, DSHB) (Temsilcisi sonuçları görmek) için bir imünoflüoresans lekeleme gerçekleştirin.
      Bu, 5 dakika boyunca sodyum dodesil sülfat (SDS),% 0.5 ile işlenerek antijen alma gerçekleştirmek için kritiktir EB bölümlerinde myogenin için boyama ile başarılı olmak için! Uç. Buna ek olarak, bu F5D ve MF20 antikorlar kullanılarak çift boyama için bu protokolü kullanmak mümkündür.

3.. Medya Tarifler

  1. ESC orta
    DMEM-F12
    1 mM L-glutamin
    % 20 Knockout Serum değiştirme ortamı (KOSR)
    0.1 mM esas olmayan amino asitleri (NEAA)
    50 U / ml penisilin / streptomisin (Pen / Strep)
    0.1 mM beta-merkaptoetanol
    8 ng / ml temel fibroblast büyüme faktörü (bFGF)
  2. EB orta
    DMEM F12
    1 mM L-glutamin
    % 15 FBS
    % 5 at serumu
  3. DM ortamı
    DMEF F12
    1X ITS Sıvı Medya Desteği
    1X N-2 Ek

Sonuçlar

Şekil 1A protokolünün şematik hESC myospheres oluşturmak için önerilen gösterir. (Oklar ile belirtilen) kontrol etmek için en önemli adımlar hESC enfeksiyonun etkinliği ve myospheres içindeki kas kaynaklı dönüştürme bulunmaktadır.

Deneylerde GFP floresan taşıyan lentiviral vektör kodlama BAF60C yararlanmak. Genellikle BAF60C ifade nüfus için zenginleştirmek için enfeksiyondan sonra BAF60C ve FACS-sıralama 72 saat ile hücreleri enfekte etmektedir. Hücreler izdiham yaklaşık% 70-80 ulaştığında, biz MyoD lentivirüsünün ile enfekte. İlk enfeksiyondan sonra, normal olarak bu izdiham ulaşmak için, hücreler için iki ya da üç gün sürer.

Şekil 1B bulaşmamış HESC misli indüksiyon göreceli olarak eksojen genlerin ifade seviyelerini gösterir. Şekil 1C tanıtılan faktörlerin protein seviyesinde ifade ve dağılımını gösterir. BAF60C MyoD ifade MyoD antikoru ile bağışıklık fluorışıması yoluyla tespit edilir ise ifade GFP floresan olarak gösterilir. Biz EB gibi agrega içine enfekte hESC farklılaşma başlatmak gün Günü 0 düşünün. DM ortamı içinde 15 gün sonra, myospheres bir kısmı (genelde bir bütün oyuk) bileşik 12 Ekim gömülü ve kas kaynaklı dönüştürme etkinliğini kontrol etmek için kas kaynaklı işaretleri için immünofloresan gerçekleştirmek için kesilir. Şekil 1D myogenin ve miyozin ağır zincir için temsili boyamasını göstermektedir optimal miyojen farklılaşma. Myospheres belki de daha küçük myospheres ile füzyon sonucunda, farklı ya da anormal şekillere sahip olabilir. Günün 10 başlayarak, (film 1 ve 2 bakınız) myospheres sporadik daralmayı gözlemlemek mümkündür.

43/51243fig1.jpg "/>
Şekil 1. A) hESC. B'den myospheres) BAF60C ve MyoD (H9-BM) QRT-PCR ile gözlenmiş ve katı bir endüksiyon olarak ifade ile enfekte HESC olarak dışsal genin mRNA seviyeleri üretimi için kullanılan protokol şematik olarak enfekte hESC taklit göre nedeniyle. D) immünofloresan Myogenin için boyandı myosphere bölümlerinde gerçekleştirilmiştir vektöründe IRES-GFP elemanı (MYOG için MyoD boyama (kırmızı) ve BAF60C floresan (yeşil) arası (H9-ctr). C) immünofloresan görsel ), miyozin ağır zincir (MyHC) ve DAPI için zıt (İmmünofloresan detaylarını görmek). Ölçek çubuğu 100 mikron.

figure-results-1
Şekil 2. Farklı aşamalarında hücre görünümü Temsilcisi resimlerifarklılaşması (Bölüm II) için enfeksiyon (part I) protokolü. Ölçek çubuğu 100 mikron. EB-benzeri yapıların ise d1 den d5 şekil (D) çoğunlukla dairesel, Şekil 1A şeması beklenmeyen bir şekil sunmak ve kültür heterojen göre 15 gün içinde büyüdü myospheres; E ve F iki örneklere bakın.

Tartışma

Burada önerilen protokol doğrudan hESC kasılma myofibers (myospheres) üç boyutlu kümeleri oluşturmak için nasıl açıklar. Önerilen strateji tarama deneyleri ve gelişim çalışmalarında hem modeli "bir çanak içinde hastalık" olarak uygun olabilir süspansiyon mini kasları üretmek için görülmemiş ve olağanüstü bir potansiyele sahip. Ayrıca, hESC myospheres üretmek için yöntem basittir ve tipik olarak geri kazanılan hücre verimi üzerinde olumsuz bir etkiye sahip olan farklılaşması sırasında herhangi bir FACS-ayırma adımı gerektirmez. Bu, tek hücre içine EB bir ayrışma olduğunu ima eder Bunun yanı sıra, farklılaşması sırasında bir ayırma prosedürü toplama müdahale olacaktır.

Önerilen yöntem, pluripotent kök hücrelerde ifade olmayan özel faktörlere ve MyoD BaAF60C ile hESC epigenetik reprograming dayanmaktadır. MyoD ve BAF60C "çekirdek" protein kompleksi TH sağlamakişaretleri de transkripsiyon iskelet miyojen programı etkinleştirmek için devam hangi genomik loci. Bu iki faktör lentiviral enfeksiyonların yoluyla hücrelere teslim ve bütün hücrelerde her iki faktörün enfeksiyon yüksek verim elde etmek için kritiktir edilir. Bu yüksek titreli bir virüs ya da seçim işaretçileri sahip virüs kullanılarak elde edilebilir. Kültür koşulları da kas kaynaklı farklılaşma ölçüde optimize de önemli bir rol oynamaktadır. Iskelet myotubes miyojen öncüllerinin dönüşüm elde etmek - Biz, serum serbest tanımlanmış ortamda inkübasyon (ITS insülin transferin içeren) izledi miyojen öncüleri kümeler halinde hESC ifade MyoD/BAF60C farklılaşması için bir serum bazlı farklılaşma protokol öneriyoruz. Ancak, diğer tanımlanmış medya eşit veya daha iyi miyojen farklılaşma elde etmesi mümkündür. Protokolün bir akım sınırlama yanında içeren, fetal sığır serumu, kullanımına dayanır olmasıdırbirçok hayvan proteinleri ve maddeler ing, çok partiye farklılıklar göstermektedir. Bu myospheres içinde kas kaynaklı dönüşümü daha düşük verimlilik veya heterojen neden olabilir. Notun, BAF60/MyoD-expressing hESC türetilen tüm EB-benzeri yapılar myospheres değil; yani, bazı tamamen myofibers oluşan EB gibi agrega vardır. (Sonuçlar bakınız) protokolünün sonunda gerçekleştirilen EB bölümleri üzerinde imüno-boyama ile tahmin edildiği üzere, normal BAF60C ve MyoD ifade hESC türetilen myospheres sayısı 30 ila 60% arasında değişebilir. Sadece myospheres için bir kültür çanak zenginleştirmek için olası bir yaklaşım miyojen muhabiri kullanmak olacaktır. Bu, kısmen ya da farklılaşmış EB benzeri gruplar atarak ve sadece myospheres seçerek kolaylaştıracaktır.

Son olarak, tanıtılan faktörlerin zamansal şartları altında yatan mekanizmaların daha iyi anlaşılması teslimat yöntemi geliştirmek için yararlı olacaktır. Örneğin, BAF60C ve MyoD sadece sh için gereklidirort zaman doğru yönde "tekme" hücreleri için, modifiye mRNA teslim dayalı yöntemler uygulanabilir olabilir. Faktörleri hücreler, endojen proteinler istismar önce daha uzun bir süre için gereklidir Buna karşın eğer, epizomal bir yaklaşım değişkenliği ve genomuna entegrasyonu nedeniyle kontrolsüz etkilerini ortadan kaldırmak için tavsiye edilir. Son olarak, bu önce, iskelet kas içine HESC dönüşüm elde etmek için ya da MyoD (hiçbir zaman sonra) ile aynı anda BAF60C ifade etmek için zorunlu olduğunu not edin. BAF60C önceden ekspresyonu için gereksinim muhtemelen genom 6,15 ile uygun MyoD kromatin dağıtımı için epigenetik manzara ön ayar rolü dayanır. Gibi, gelecekte protokoller bileşikler veya hESC BAF60C ifadesini destekleyen diğer manipülasyonlar tarafından geliştirilmiş olabilir.

Açıklamalar

Biz ifşa hiçbir şey yok.

Teşekkürler

PLP Sanford Çocuk Sağlığı Araştırma Merkezi'nin bir Associate Araştırmacı. R01AR056712, R01AR052779 ve Artrit ve Kas-iskelet Sağlık / Ulusal Enstitüsü Ulusal Enstitüsü ve Cilt Hastalıkları (NIAMS), MDA ve Sanford Çocuk Sağlığı Araştırma ödül gelen P30 AR061303: Bu çalışma PLP'ye aşağıdaki hibe tarafından desteklenmiştir. Bu çalışma kısmen projede Avrupa Topluluğu Yedinci Çerçeve Programı araştırma fonlarından yararlandı FP7-Sağlık - 2009 ENDOSTEM 241440 (tamir ve kas dokusunun bakımı için damar ilişkili kök hücre ve kas kök hücrelerinin aktivasyonu) SA tarafından desteklenmiştir. CIRM dostluk.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
6 oyuklu plakaCorning3506
6 oyuklu düşük bağlantı plakasıCorning3471
GFR MatrigelBD Biosciencies356231
MEF'ler (büyüme durduruldu) 14< / sup>
Kollajen IVInvitrogen17104-019
DMEM-F12Invitrogen15-090-CV
KOSRInvitrogen10828-028
1 mM L-glutamin (100X)Invitrogen35050-61
Kalem/Strep (100X)Invitrogen15070-063
2-Merkaptoetanolİnvitrogen21985-023
NEAA (100X)Invitrogen11140-050
PolibrenMilliporeTR-1003-G
ITS Sıvı Ortam TakviyesiSigmaI3146
N2-takviyesi Invitrogen17502-048
TrypLE expressInvitrogen12605-010
FBSHyCloneSH30396.03
HSInvitrogen16050114
hES Hücre Klonlama ve Kurtarma TakviyesiStemgent01-0014-100
bfgfSigma4114-TC
mTeSR1Kök Hücre Teknolojileri5850
Anti-MyoDBD Biosciences554130
Anti-MyHCDSHBMF20
Anti-miyojeninDSHBF5D

Kaynaklar

  1. Darabi, R., et al. Functional skeletal muscle regeneration from differentiating embryonic stem cells. Nat Med. 14, 134-143 (2008).
  2. Darabi, R., et al. Human ES- and iPS-derived myogenic progenitors restore DYSTROPHIN and improve contractility upon transplantation in dystrophic mice. Cell Stem Cell. 10, 610-619 (2012).
  3. Iacovino, M., et al. Inducible cassette exchange: a rapid and efficient system enabling conditional gene expression in embryonic stem and primary cells. Stem Cells. 29, 1580-1588 (2011).
  4. Barberi, T., et al. Derivation of engraftable skeletal myoblasts from human embryonic stem cells. Nat Med. 13, 642-648 (2007).
  5. Goudenege, S., et al. Myoblasts derived from normal hESCs and dystrophic hiPSCs efficiently fuse with existing muscle fibers following transplantation. Mol Ther. 11, 2153-2167 (2012).
  6. Forcales, S. V., et al. Signal-dependent incorporation of MyoD-BAF60c into Brg1-based SWI/SNF chromatin-remodelling complex. Embo J. 31, 301-316 (2012).
  7. Albini, S., et al. Epigenetic reprogramming of human embryonic stem cells into skeletal muscle cells and generation of contractile myospheres. Cell Rep. 3, 661-670 (2013).
  8. Weintraub, H., et al. Activation of muscle-specific genes in pigment, nerve, fat, liver, and fibroblast cell lines by forced expression of MyoD. Proc Natl Acad Sci U S A. 86, 5434-5438 (1989).
  9. Tapscott, S. J., et al. MyoD1: a nuclear phosphoprotein requiring a Myc homology region to convert fibroblasts to myoblasts. Science. 242, 405-411 (1988).
  10. Davis, R. L., Weintraub, H., Lassar, A. B. Expression of a single transfected cDNA converts fibroblasts to myoblasts. Cell. 51, 987-1000 (1987).
  11. Ho, L., et al. An embryonic stem cell chromatin remodeling complex, esBAF, is essential for embryonic stem cell self-renewal and pluripotency. Proc Natl Acad Sci U S A. 106, 5181-5186 (2009).
  12. Gomes, I. C., et al. Analysis of pluripotent stem cells by using cryosections of embryoid bodies. J Vis Exp. (46), (2010).
  13. Tiscornia, G., Singer, O., Verma, I. M. Production and purification of lentiviral vectors. Nat Protoc. 1, 241-245 (2006).
  14. Barcova, M., Campa, V. M., Mercola, M. Human embryonic stem cell cardiogenesis. Human Stem Cell Manual: a Laboratory Guide. Loring, J. F., Wesselschmidt, R. L., Schwartz, P. H. , Elsevier/Academic Press. Amsterdam. 227-237 (2007).
  15. Blum, R., Vethantham, V., Bowman, C., Rudnicki, M., Dynlacht, B. D. Genome-wide identification of enhancers in skeletal muscle: the role of MyoD1. Genes Dev. 26, 2763-2779 (2012).

Yeniden basım ve izinler

Etiketler

MyoD Lentivir sBAF60C Lentivir sskelet Kas DiferansiyasyonuEB benzeri AgregatlarSerumsuz Diferansiyasyonmm nofloresan BoyamaMiyojenik Markerlar
Epigenetik yeniden programlanması ile hESC itibaren Myospheres Üretimi
Bize Ulaşın
Kütüphaneye Öner

Gizlilik

Kullanım Koşulları

Politikalar

Telif Hakkı © 2026 MyJoVE Corporation. Tüm hakları saklıdır.