Yöntem makalesi

Doku Ayrışma Ve Diferansiyel süzülerek Nakli İçin Mitokondri Of Rapid İzolasyon ve saflaştırma

DOI:

10.3791/51682

6 Eylül 2014

Bu makalede

Düzeltme bildirimi

Important: There has been an erratum issued for this article. View Erratum Notice

Özet

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Memeli Doku biyopsilerinden mitokondri hızlı izole edilmesi için bir yöntem tarif edilmektedir. Sıçan karaciğer, iskelet kası ya da preparat, ticari ayrıştırıcı doku homojenize edildi ve mitokondri naylon gözenekli filtrelerden geçerek, süzme ile izole edilmiştir. Seçenek yöntemler kullanılarak da 100 dakika - Mitokondriyal izolasyon süresi 60 kıyasla <30 dk.

Özet

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Diferansiyel santrifüjleme ve / veya, Ficoll gradyan santrifüj kullanılarak daha önce anlatıldığı mitokondriyal izolasyon yöntemleri tamamlamak için 60-100 dakika gerektirir. Bir ticari doku Dissociator ve ayırıcı filtrasyon kullanılarak memeli biyopsilerinden mitokondri hızlı izolasyonu için bir yöntem tarif eder. Bu protokol, el homojenleştirme doku ayrıştırıcı, en standart homojenizasyon döngüsü ile değiştirilir. Bu düzgün ve kolay bir manuel homojenizasyon ile elde edilemez doku tutarlı bir homojenizasyon işleminin uygulanmasına izin verir. Doku ayrışma sonra, homojenat tekrarlanan santrifüj adımları ortadan naylon örgü filtreler aracılığıyla filtre edilir. Bunun bir sonucu olarak, yalıtım mitokondriyal az 30 dk içinde gerçekleştirilebilir. Bu izolasyon protokol 0.18 ± 0.04 g (ıslak ağırlık) ya da doku numunesinden yaklaşık 2 10 x 10 uygulanabilir ve solunum yetkili mitokondri verir.

Giriş

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Mitokondri kırmızı kan hücreleri hariç, vücuttaki her hücrede mevcuttur ve önemli hücresel ve metabolik süreçleri 1-4 arasında bir sayıda katılmaktadırlar. Çünkü bu birçok fonksiyonun, mitokondriyal hasar zararlı etkileri 3 olabilir. Mitokondriyal fonksiyon ve disfonksiyonu birkaç mitokondriyal izolasyon yöntemleri araştırmak amacıyla tarif edilmiştir. 1940'larda 5-8 mitokondriyal izolasyon tarihten erken yayınlanmış hesaplar. Ilk belgelenmiş girişim düşük hızda 5,8 bir tuz çözeltisi içinde ve ardından merkezkaçlama uygulanarak, bir havan içinde karaciğer doku öğüterek mitokondriyal izolasyonu gösterdi. Daha sonra, diğer gruplar orijinal prosedürü üzerine genişletilmiş ve diferansiyel santrifüj 6-8 dayalı doku ayrımlaştığını gösterdi. Bu ilk yöntemlerin sık sık homojenizasyon ve / veya diferansiyel santrifüj 9-15 dahil güncel tekniklerin temelini oluşturmuştur. Homogenizati sayısıadımlar ve santrifüj protokolleri arasında değişir. Bu tekrarlı adımlar mitokondriyal izolasyon süresini artırmak ve sonuçta canlılığını azaltır. Düzgün 10,16 kontrollü değilse Ayrıca, manuel homojenizasyon mitokondriyal hasar ve tutarsız sonuçlara neden olabilir.

Son zamanlarda, biz miyokard dokusu 17,18 içine nakli için mitokondri izole etmek için homojenizasyon ve diferansiyel santrifüj kullanılır. Bu izolasyon prosedürü, uzun, yaklaşık 90 dakika gerekli ve bu yöntemin klinik uygulanabilirliği dolayısıyla sınırlı kalmıştır. Klinik ve cerrahi tedavi akut terapötik kullanım için izin vermek için daha az bir süre, 30 dakika içinde yapılabilir hızlı bir mitokondriyal izolasyon işlemi geliştirdik.

Bu protokolün büyük faydalar standart doku ayrışma üniforma ve kolayca manuel homojenizasyon ile elde edilmez doku tutarlı homojenizasyon için izin verdiğini vardır. Additiyon, diferansiyel santrifüj yerine diferansiyel filtrasyon kullanımı zaman alıcı ve son derece saflaştırılmış yaşayabilir ve solunum yetkili mitokondri daha hızlı izolasyonu için izin tekrarlayan santrifüj adımları ortadan kaldırır.

30 dakikadan az yaşayabilen ve solunum yetkili mitokondri izole yeteneği klinik uygulanabilirlik sağlar. Bu izolasyon protokol koroner arter bypass cerrahisi (KABG) ve diğer tedavi işlemlerinde kullanılmak üzere bir potansiyele sahiptir.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Protokol

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Hazırlık

  1. 1 M K-HEPES stok çözeltisi (KOH ile pH 7.2 ayarlayın) hazırlayın.
  2. , 0.5 M EGTA K stok çözeltisi (KOH ile 8.0 pH ayarlayın) hazırlayın.
  3. 1 M KH 2 PO 4 stok çözelti hazırlayın.
  4. , 1 M MgCl2 stok çözelti hazırlayın.
  5. Homojenizasyon tampon maddesi (pH 7.2), 300 mM sakaroz, 10 mM K-Hepes ve 1 mM EGTA K hazırlayın. 4 ° C'de saklayın.
  6. Solunum Tampon 250 mM sakaroz, hazırlama 2 mM KH 2 PO 4, 10 mM MgCI2, 20 mM K-HEPES tamponu (pH 7.2) ve 0.5 mM K-EGTA (pH 8.0). 4 ° C'de saklayın.
  7. NaCl 80 g, KCl 2 g Na 2 HPO 4, 14.4 g ve 1 L'lik iki kez damıtılmış H2O (pH 7.4), KH 2 PO 4 2.4 g eritilmesi ile 10x, PBS stok çözelti hazırlayın.
  8. 1 L çift distile H 2 O içine 100 ml 10x PBS pipetleyerek 1x PBS hazırlayın
  9. Subtilisin A 4 mg dışarı ağırlığında tarafından Subtilisin bir Stok hazırlayın1.5 ml mikrofüj tüpüne. Kullanılana kadar -20 ° C'de saklayın.
  10. 1.5 ml mikrofüj tüpüne BSA 20 mg tartılarak BSA Stok hazırlayın. Kullanılana kadar -20 ° C'de saklayın.

Mitokondriyal İzolasyon (Şekil 1)

  1. Izolasyon hemen önce, homojenizasyon tampon maddesi içinde 1 ml subtilisin A çözülür.
  2. Izolasyon hemen önce, homojenizasyon tampon maddesi içinde 1 ml BSA çözülür.
  3. Buz üzerinde bir 50 ml konik santrifüj tüpüne 1x PBS içinde 6 mm biyopsi örneği yumruk ve mağaza kullanarak iki taze doku örneklerini toplar.
  4. Homojenleştirme tamponu buz gibi soğuk 5 ml ihtiva eden bir ayırma tüpüne C dokusunun iki adet 6 mm delikler aktarın.
  5. Doku dissociator üzerindeki ayrışma C tüpü takarak doku homojenize ve önceden ayarlanmış mitokondriyal izolasyon döngüsü (60 sn homojenizasyon) seçin.
  6. Bir buz kovası ayrışma C tüpü çıkarın.
  7. Subtilisin için bir stok çözeltisi 250 ulHomojenat, çevirerek karıştırın ve 10 dakika boyunca buz üzerinde inkübe Homojenat.
  8. Homojenleştirme Tamponu ile buz ve önceden nemli filtre üzerinde bir 50 mL konik santrifüj tüpü üzerine 40 mikron gözenekli bir filtre yerleştirilmesi ve buz üzerinde 50 ml konik santrifüj tüpüne Homojenat filtre.
  9. Filtrata taze hazırlanmış BSA Stok Çözüm 250 ul ekleyin ve çevirerek karıştırın.
    Not: mitokondriyal protein tayini gerekli ise, bu adımı atlayın.
  10. Homojenleştirme Tamponu ile buz ve önceden nemli filtre üzerinde 50 ml konik santrifüj tüpü üzerine bir 40 mikron filtre yerleştirin ve buz üzerinde 50 ml konik santrifüj tüpüne Homojenat filtre.
  11. Homojenleştirme Tamponu ile buz ve önceden nemli filtre üzerinde 50 ml konik santrifüj tüpü üzerine bir 10 mikron filtre yerleştirin ve buz üzerinde 50 ml konik santrifüj tüpüne Homojenat filtre.
  12. 10 dk boyunca 9000 x g'de iki önceden soğutulmuş 1.5 ml mikrofüj tüplerine ve santrifüj filtrat aktarın4 ºC.
  13. Süpernatantı ve yeniden askıya ve buz soğuk Solunum Tampon 1 ml pelet birleştirir.

ATP Deneyi

Not: bir ATP parlaklık deney ATP deney kiti kullanılarak gerçekleştirilebilir izole mitokondri metabolik aktivitesini belirlemek. Protokol, reaktifler ve standartlar deney kiti içinde temin edilmiştir. Yöntemin özeti, aşağıda tarif edilmiştir.

  1. Oda sıcaklığına kiti reaktifler dengelenmesi.
  2. Çifte damıtılmış su, 1.170 ul ATP liyofilize pelet eritilmesi ile, 10 mM ATP stok çözelti hazırlayın. ATP buz üzerinde standart Stok Çözüm ve hazırlanan mitokondriyal örnekleri saklamak.
  3. Liyofilize edilmiş alt-tabaka çözeltisinin bir şişeye Yüzey Tampon çözelti 5 ml. İyice karıştırın ve karanlıkta yerleştirin.
  4. Siyah, ışık geçirmeyen alt, 96 gözlü bir levhanın tüm oyuklara Solunum tampon 100 ul ilave edin.
  5. Her hazırlanmış örneklerinden o iyi mitokondri 10 ul eklefa Siyah, ışık geçirmeyen alt, 96 çukurlu levha. Not: Numuneler üç kopya halinde plakalanır. Standartları ve negatif kontrol (Solunum Tampon) için üç kuyu için bir satır içerir.
  6. Standartlar ve kontroller de dahil olmak üzere, tüm oyuklara memeli hücre lizis çözeltisinin 50 ul ekle.
  7. 125 rpm'de bir orbital çalkalayıcı üzerinde 5 dakika boyunca 37 ° C'de inkübe edin.
  8. İnkübasyon sırasında, 10 mM ATP stok çözeltisinden 0.1 mM, 0.05 mM, 0.01 mM, 0.005 mM, 0.001 mM ve 0.0001 mM ATP konsantrasyonlarda ATP standartlar hazırlandı. Buz üzerinde saklayın standartları.
  9. İnkübasyondan sonra, plaka haritada gösterildiği gibi karşılık gelen kuyu ATP standartların 10 ul ekle. Not: standartlar iki kopya halinde gerçekleştirilir.
  10. Her bir oyuğa substrat çözeltisinin sulandırılmış 50 ul ekle.
  11. 125 rpm'de 5 dakika boyunca orbital bir karıştırıcı üzerinde 37 ° C'de inkübe edin.
  12. Spektrofotometre ile bağlantılı bir bilgisayarda açık Gen5 1.11 yazılımı.
  13. "AltındaYeni Öğe Oluştur Experiment "", "tıklayın.
  14. "Varsayılan Protokolü" üzerine tıklayın. "Tamam" ı tıklayın.
  15. Sol sütunda, daha sonra, "Prosedür" "Protocol" seçeneğini seçin.
  16. "Gecikme" seçeneğini seçin. 00:10:00 ayarlayın. "Tamam" ı tıklayın.
  17. Seç "Oku". Açılan menüden gelen "Lüminesans" seçeneğini seçin. Aşağıdaki diğer ayarları yapın: tipi Endpoint, Entegrasyon Zaman 0 okuyun: 01.00 MM: SS.ss, Filtre 1 Takımları, Emisyon Hole, Optik Pozisyonu Top, Hassasiyet 100, En Sonda Dikey 1.00 mm Ofset.
  18. Plaka analiz hazır olduğunda, üst satırda "Plakasını oku" simgesini tıklatın. "Oku" tıklayın. Spektrofotometre açıldığında, sol üst köşede de A1 ile tepsiye tabak yerleştirin. Sıcaklığına sahip bir kutu açılacaktır. "Oku" tıklayın. Not: Daha yüksek değerler artmış ATP seviyeleri ve daha yüksek metabolik aktivite ile ilişkilidir.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Doku Ayrışma ve diferansiyel filtrasyon kullanılarak mitokondri izolasyonu ile işlem adımları özetleyen bir şekil, Şekil 1 'de gösterilmiştir. Toplam işlem süresi 30 dakikadan daha azdır.

Doku örnekleri 6 mm biyopsi zımbası kullanılarak elde edilmiştir. Doku ağırlığı 0.18 ± 0.04 g (ıslak ağırlık). Parçacık boyutu sayımı ile belirlenmiştir olarak izole mitokondri sayısı 2.4 oldu 10 x 10 x 10 ± 0.1, iskelet kası boyunca 10 mitokondri ve karaciğer prep...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Başarıyla mitokondriyal canlılığını korumak için buz üzerinde tüm çözümleri ve doku örnekleri tutmak için önemli olan bu protokolü kullanarak mitokondri izole etmek için. Buz üzerinde muhafaza bile, izole mitokondri zaman 19 vasıtasıyla işlevsel aktivitesinde bir azalma sergiler. Hepimiz çözümleri ve eklemeler önceden hazırlanmış öneririz. Biz önceden tartılır ve 1.5 ml mikrofüj tüpler 4 mg parçalar halinde saklayın ve subtilisin A -20 ° C'de saklayın. Benzer şekilde BSA önceden tartılmış ve -20 ° C'd...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Tüm hayvanlar mevcut kurumsal kurallarına uygun olarak tedavi edildi. Biz ifşa rakip mali çıkarlarını hiçbir var.

Teşekkürler

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Bu çalışma Ulusal Kalp, Akciğer ve Kan Enstitüsü Hibe HL 103542, ve CAP için BCH Anestezi Araştırma Vakfı'nın Değerli Malibu Ödülü ile desteklenmiştir.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
SükrozSigma Aldrich84100
HEPESSigma AldrichH4034
EGTASigma AldrichE4378
Substilsin ASigma AldrichP5380
BSASigma AldrichA7906
KH2PO4Sigma AldrichP5379
MgCl2Sigma AldrichM8266
NaClSigma AldrichS6191
KClFisher ScientificP2173
Na2HPO<>sub4FisherScientific S374
ATPlite Lüminesans Test Sistemi,
1.000 Test Kiti
Perkin Elmer
50 ml Konik TüplerBD352098
40 μ m Naylon FiltrelerBD 352340
GentleMACS C tüpüMiltenyl Biotech120-005-331
1.5 ml Eppendorf tüpüFisher Scientific05-408-129
6 mm biyopsi zımbasıMiltex33-36
10 μ m PluristrainerPluriselect43-500-10-03
Eppendorf Santrifüj 5415CMarshall ScientificEP-5415C 
GentleMACS Ayrıştırıcı Miltenyl Biotech130-093-235
96 oyuklu plakalar, doku kültürü ile tedavi edilmişVWR82050-732
Rotomax 120 orbital çalkalayıcıHeidolph544-41200-00
Synergy H4 Hibrit Çok Modlu
  Mikroplaka Okuyucu
BioTek
Multisizer 4 Coulter SayacıBeckman CoulterA63076
Oxytherm SistemiHansatech Instruments Hematitometre
Fisher Scientific267110
6016941

Kaynaklar

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. van Loo, G., Saelens, X., van Gurp, M., MacFarlane, M., Martin, S. J., Vandenabeele, P. The role of mitochondrial factors in apoptosis: a Russian roulette with more than one bullet. Cell Death Differ. 9 (10), 1031-1042 (2002).
  2. Szabadkai, G., Duchen, M. R. Mitochondria: the hub of cellular Ca2+ signaling. Physiology (Bethesda). 23, 84-94 (2008).
  3. Chan, D. C. Mitochondria: Dynamic Organelles in Disease, Aging, and Development. Cell. 125 (7), 1241-1252 (2006).
  4. Picard, M., et al. Mitochondrial structure and function are disrupted by standard Isolation methods. PLoS ONE. 6 (3), e18317(2011).
  5. Bensley, R. R., Hoerr, N. Studies on cell structure by freeze-drying method; preparation and properties of mitochondria. Anat Rec. 60, 449-455 (1934).
  6. Claude, A. Fractionation of mammalian liver cells by differential centrifugation II. Experimental procedures and results. J Exp Med. 84 (1), 61-89 (1946).
  7. Hogeboom, H., Schneider, W. C., Palade, G. E. Cytochemical studies of mammalian tissues; isolation of intact mitochondria from rat liver; some biochemical properties of mitochondria and submicroscopic particulate material. J Biol Chem. 172 (2), 619-635 (1948).
  8. Ernster, L., Schtaz, G. Mitochondria: a historical Review. J Cell Biol. 91 (3 Pt 2), 227s-255s (1981).
  9. Pallotti, F., Lenaz, G. Isolation and subfractionation of mitochondria from animal cells and tissue culture lines. Methods Cell Biol. 80, 3-44 (2007).
  10. Schmitt, S., et al. A semi-automated method for isolating functionally intact mitochondria from cultured cells and tissue biopsies. Anal Biochem. 443 (1), 66-74 (2013).
  11. Fernández-Vizarra, E., Ferrín, G., Pérez-Martos, A., Fernández-Silva, P., Zeviani, M., Enríquez, J. A. Isolation of mitochondria for biogenetical studies: An update. Mitochondrion. 10 (3), 253-262 (2010).
  12. Graham, J. M. Chapter 3, Unit 3.3, Isolation of mitochondria from tissues and cells by differential centrifugation. Curr Protoc Cell Biol. , (2001).
  13. Frezza, C., Cipolat, S., Scorrano, L. Organelle isolation: functional mitochondria from mouse liver, muscle and cultured fibroblasts. Nat Protoc. 2 (2), 287-295 (2007).
  14. Wieckowski, M. R., Giorgi, C., Lebiedzinska, M., Duszynski, J., Pinton, P. Isolation of mitochondria-associated membranes and mitochondria from animal tissues and cells. Nat Protoc. 4 (11), 1582-1590 (2009).
  15. Gostimskaya, I., Galkin, A. Preparation of highly coupled rat heart mitochondria. J Vis Exp. (43), (2010).
  16. Gross, V. S., et al. Isolation of functional mitochondria from rat kidney and skeletal muscle without manual homogenization. Anal Biochem. 418 (2), 213-223 (2011).
  17. Masuzawa, A., et al. Transplantation of autologously derived mitochondria protects the heart from ischemia-reperfusion injury. American J Physiol Heart and Circ Physiol. 304 (7), (2013).
  18. McCully, J. D., et al. Injection of isolated mitochondria during early reperfusion for cardioprotection. American J Physiol Heart and Circ Physiol. 296 (1), 94-105 (2009).
  19. Olson, M. S., Von Korff, R. W. Changes in endogenous substrates of isolated rabbit heart mitochondria during storage. J Biol Chem. 242 (2), 325-332 (1967).
  20. Diepart, C., et al. Comparison of methods for measuring oxygen consumption in tumor cells in vitro. Anal Biochem. 396 (2), 250-256 (2010).
  21. Lanza, I. R., Nair, K. S. Functional assessment of isolated mitochondria in vitro. Methods Enzymol. 457, 349-372 (2009).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya şekillerini yeniden kullanmak için izin iste

İzin iste

Düzeltme

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Formal Correction: Erratum: Rapid Isolation And Purification Of Mitochondria For Transplantation By Tissue Dissociation And Differential Filtration
Posted by JoVE Editors on 1/05/2016. Citeable Link.

A correction was made to: Rapid Isolation And Purification Of Mitochondria For Transplantation By Tissue Dissociation And Differential Filtration. An optional step was added to step 7 of the 'Mitochondrial Isolation' section of the protocol. The step is:

1. Optional in the case that the tissue is fibrous: Centrifuge the solution at 750 x g for 4 min.

Etiketler

Mitokondri zolasyonuMitokondriyal PurifikasyonRespirasyon Yetene i Olan MitokondrilerATP L minesans AnaliziDoku HomojenizasyonuMitokondriyal VerimMitokondriyal ViabiliteMitokondriyal Respirasyon Analizi

İlgili makaleler