Yöntem makalesi

Alternatifi olarak dilaltı immünoterapi Akut Solunum Enfeksiyonları Karşı Koruma tetikleyebilecek

18.7K görüntülenme

⸱

DOI:

10.3791/52036

⸱

30 Ağustos 2014

 ,  ,  , 
1Departamento de Desarrollo Biotecnológico, Universidad de la República, 2Present Affiliation: Trinity Biomedical Science Institute, Trinity College Dublin

Bu makalede

Özet

Bu çalışma, farelerde akut pnömokok pnömonisine karşı koruma sağlamak için akciğerlerde doğuştan gelen bağışıklık tepkisini artırmak için dil altı immünoterapisinin kullanılmasının rahatlığını göstermektedir.

Özet

Dil altı yolu, küçük molekülleri kan dolaşımına iletmek ve farklı bölgelerdeki bağışıklık tepkisini modüle etmek için yaygın olarak kullanılmaktadır. Sistemik ve mukozal bölgelerde, yani akciğerlerde ve ürogenital sistemde humoral ve hücresel yanıtları etkili bir şekilde indüklediği gösterilmiştir. Dil altı aşılaması, alt ve üst solunum yollarındaki enfeksiyonlara karşı korumayı teşvik edebilir; Ayrıca alerjenlere karşı toleransı artırabilir ve astım semptomlarını iyileştirebilir. Dil altı immünoterapi (SLIT) ile akciğerin immün yanıtının modülasyonu, potansiyel olarak zararlı moleküllerin doğrudan hava yollarına verilmesini gerektirmediği için formülasyonların intranazal yolla doğrudan uygulanmasından daha güvenlidir. İntranazal doğumun aksine, beyin toksisitesi veya yüz felci gibi yan etkiler SLIT tarafından desteklenmez. SLIT'in altında yatan bağışıklık mekanizmaları hala belirsizliğini korumaktadır ve akut akciğer enfeksiyonlarının tedavisinde kullanımı henüz araştırılmamıştır. Bu nedenle, potansiyel avantajlarını daha fazla araştırmak için SLIT'in uygun hayvan modellerinin geliştirilmesine ihtiyaç vardır.

Bu çalışma, akut pnömokok pnömonisine karşı koruma yeteneklerini değerlendirmek için farelerde terapötik ajanların dil altı uygulamasının nasıl gerçekleştirileceğini göstermektedir. Dil altı aşılama sırasında fare kullanımının teknik yönleri, dil altı mukozasının hassas bir şekilde tanımlanması, lenf düğümlerinin boşaltılması ve dokuların, bronkoalveoler lavajın ve akciğerlerin izolasyonu gösterilmektedir. FACS analizi için tek hücreli süspansiyon hazırlığı için protokoller ayrıntılı olarak açıklanmaktadır. İmmün yanıtın analizi için diğer aşağı akış uygulamaları tartışılmaktadır. Streptococcus pneumoniae inoculum'un hazırlanmasının teknik yönleri ve farelerin intranazal zorluğu da açıklanmaktadır.

SLIT, akciğerlerin bağışıklık tepkisini modüle etmek için aday moleküllerin taranmasına izin veren basit bir tekniktir. SLIT'in başarısını etkileyen parametreler, yüksek konsantrasyonlu formülasyonların moleküler boyutu, bozunmaya yatkınlığı ve stabilitesi ile ilgilidir.

Giriş

Bu çalışmanın genel amacı, akut solunum yolu enfeksiyonlarının (ARI) tedavisinde dil altı immünoterapinin faydalarını göstermek ve bu uygulama yolunun diğer uygulama yollarına, yani intranazal ile karşılaştırıldığında avantajlarını sunmaktır.

ARI her yıl, özellikle beş yaşın altındaki çocuklarda milyonlarca ölüme neden oluyor. Streptococcus pneumoniae, bebeklerde ve yaşlılarda bakteriyel pnömoninin en önemli etiyolojik ajanlarından biri olmaya devam etmektedir1,2. Mevcut ana tedavi antibiyotik kullanımına dayanır, ancak dirençli suşlar sürekli olarak ortaya çıkmaktadır3,4.

SLIT, özellikle solunum yollarındasistemik ve mukozal düzeyde geniş yanıtlara neden olur 5. İnfluenza enfeksiyonuna karşı etkinliği kanıtlanmıştır, humoral ve hücresel yanıtların üretimi ile uzun süreli korumayı teşvik eder6,7. Ayrıca, dil altı yolla verilen bakteri lizatları ile profilaktik tedavinin yaşlılarda kronik obstrüktif bronşit alevlenmelerini azalttığı8 ve çocuklarda tekrarlayan solunum yolu enfeksiyonlarınıönlediği 9 gösterilmiştir. SLIT, alerji ve astım tedavisinde yaygın olarak kullanılmaktadır. Klinik çalışmalar, sadece solunum yollarındaki bağışıklık tepkisini modüle etme etkinliğini değil, aynı zamanda güvenliğini de göstermiştir10. İlaç şirketlerinin ve araştırmacıların SLIT'e artan ilgisine rağmen, bileşiklerin dil altı verilmesinden sonra mukozal immün yanıtların indüklenmesinde rol oynayan mekanizmalar belirsizliğini korumaktadır. Son zamanlarda, alerjen duyarsızlaştırma ile ilişkili toleransı teşvik eden mekanizmalara dikkat çekilmiştir. Dendritik hücreler ve makrofajlar gibi dil altı mukozasında yerleşik ve işe alınmış hücrelerin, SLIT11-13'ten sonra toleransı artırabileceği öne sürülmüştür. Oral mukozanın dendritik hücreleri, IFN-gama ve IL-10 üreten T yardımcı hücrelerini11 teşvik edebilir, ayrıca distal genital mukozaya yeniden dolaşım yapabilir ve CD8 + T hücrelerini14 teşvik edebilir. Bununla birlikte, SLIT'in doğuştan gelen hücreler üzerindeki etkisi veya akut solunum yolu enfeksiyonları sırasında patojen klirensini iyileştirme kapasitesi hakkında çok az şey bilinmektedir.

Akciğerlerdeki pnömokok enfeksiyonunun doğal kontrolü, büyük ölçüde yerel doğuştan gelen savunmaların etkin ve hızlı aktivasyonuna bağlıdır. Daha önce, bir TLR5 ve NLRC4 agonisti olan tek bir intranazal flagellin (FliC) dozu ile akciğerlerin doğuştan gelen bağışıklığının arttırılmasının, Streptococcus pneumoniae serotip 1'in ölümcül bir dozunda klinik izolat ile mücadele edilen farelerin% 75-100'ünü koruduğunu gösterdik. Bu korumanın GR1 + hücrelerinin (muhtemelen polimorfonükleer nötrofiller, PMN'ler) lokal alımına bağlı olduğu ve antikorlara, B veya T hücrelerine(15) bağlı olmadığı gösterilmiştir.

Flagellin, bakteri kamçısının yapısal bileşenidir. Monomerik formunda, hücre dışı FliC16'yı algılayan TLR5 ve hücre içi flagellin17,18'i tespit eden NLRC4 / NAIP5 inflamatuarını algılayan TLR5 olmak üzere iki Patojen Tanıma Reseptörü (PRR) tarafından tanınır. FliC, PRR'ler tarafından algılandığında, önemli bir inflamatuar yanıt tetiklenir. Biz ve diğerleri, saflaştırılmış FliC'nin Salmonella enterica serovar Typhimurium'dan akciğerlere damlatılmasının, özellikle akciğerlerin epiteli tarafından tanındığında, kemokin ve sitokinlerin hızlı bir şekilde üretilmesini sağladığını ve bunun da bağışıklık hücrelerinin hava yollarına, özellikle de PMN'lere alımını düzenlediğini gösterdik15,19-21. Geçici olmasına rağmen, FliC'nin nazal olarak verilmesinden sonra hava yollarına meydana gelen önemli nötrofil infiltrasyonu, insan kullanımı için klinik tedavilere doğru hareket ediyorsa bir endişe kaynağı olabilir. Aşırı iltihaplanma, akciğerlerin işlevi için zararlı olabilir. Ayrıca, immünostimülatör moleküllerin intranazal olarak verilmesinin fasiyal paralizi ve/veya beyin toksisitesine neden olabileceği gösterilmiştir22-24.

Dil altı immünoterapisi, solunum yollarındaki immün yanıtı modüle etmek için intranazal yola göre daha güvenli bir alternatif sunar. Non-invaziv, ağrısız, basit ve hasta uyumu iyidir25. Ayrıca, daha önce de belirtildiği gibi, formülasyonların doğrudan intranazal veya intrapulmoner verilmesiyle ilişkili riskler olmaksızın solunum mukozasında koruyucu yanıtları indükleyebilir. Dil altı yol, alternatif olarak, akciğerin bağışıklık sistemi üzerinde büyük etkileri olan, ancak toksik olduğu kanıtlanmış molekülleri iletmek veya intranazal olarak uygulandığında büyük iltihaplanma ortaya çıkarmak için kullanılabilir. Bu avantajların yanı sıra, dilaltı immünoterapi formülasyonları, steril olmayan ürünler bu yolla teslim edilebildiğinden ve endotoksik şok SLIT için bir endişe kaynağı olmadığından daha düşük üretim maliyetine sahiptir. Öte yandan, akciğerlerde bir bağışıklık tepkisi oluşturmak için intranazal veya parenteral yollarla kullanılanlara kıyasla daha yüksek dozlarda immünostimülatör bileşiklerin gerekli olduğunu fark etmek önemlidir; ayrıca SLIT'in fare modelini kullanırken yüksek konsantrasyonlu çözeltilere ihtiyaç vardır, çünkü formülasyonların biriktirildiği anatomik bölge küçüktür.

Daha önce yayınlanmış verilerimize dayanarak, model immünostimülan olarak flagellin ile dil altı immünoterapi kullanarak bir koruma modeli geliştirdik. Kontrol grubundaki tüm fareler 5 gün içinde enfeksiyondan ölürken, tek bir flagellin dozunun serotip 1 suşunun neden olduğu invaziv pnömokok pnömonisine karşı %60 sağkalımı indüklediğini gösterdik. Akış sitometrisi analizi, flagellin ile dil altı tedaviden sonra korunan hayvanların hava yollarına daha fazla sayıda PMN alındığını gösterdi, bu da bu hücrelerin dil altı immünoterapisinin neden olduğu koruma mekanizmasına dahil olabileceğini düşündürdü.

Bu video, dil altı immünoterapisinin nasıl uygulanacağını ve ayrıca dil altı mukozasından ilgili dokunun nasıl kurtarılacağını, daha fazla analiz yapmak için lenf düğümlerinin yanı sıra akciğerleri ve hava yollarını nasıl boşaltacağını ayrıntılı olarak göstermektedir. Ek olarak, FACS analizi için genel hücre hazırlama tekniğini gösterir ve akut enfeksiyon modelini oluşturmak için Streptococcus pneumoniae süspansiyonlarının nasıl hazırlanacağını ve farede intranazal enfeksiyonların nasıl gerçekleştirileceğini kısaca gösterir.

Protokol

Uruguay - hayvanları kapsayan Prosedürleri Hayvan Deney için Fahri Komisyonu ve Tıp Okulu, Universidad de La Republica Direktifi Kurulu tarafından onaylanmış 071140-000821-12 ve 08.052.010 ° protokolleri N ile uygun olarak yapıldı.

Terapötik madde, 1. dil altı uygulama

  1. Terapötik madde ihtiva eden bir çözelti hazırlamak test edilecek. Fare başına 10 ul maksimum bir hacme sahip yönetmek üzere, konsantre hale ayarlayın.
    Not: Salmonella enterica serovar saflaştırılmıştır flagellin'in için S. ilk ölümcül dozu ile enfekte farede korumayı indüklemek için en uygun dozu typhimurium pneumoniae serotip 1 E1586,% 100 ölüme neden olan 10 ug / faredir. Çözelti, flagellin monomerlerin salınmasını sağlamak için 5 dakika boyunca 65 ° C 'de ısıtılması gerekmektedir. Flagellin arıtma hakkında daha fazla bilgi için başvuru 26 bkz.
    1. Var, moleküler boyut, saflık, duyarlılık ve proteolize mukozaya yapışan maddelerin kullanımına göre farklı immüno-modülatör ajanlar olarak etkili konsantrasyonu. Her bir bileşik, etki için test edilecek için en uygun konsantrasyon ayarlayın. Burun içinden yol ile daha önce yapılan çalışmalar, belirli bir bileşik için yapılmıştır halinde, dil altı yol ile etkinliğini test etmek için bir başlangıç ​​dozu 5-10 kat daha yüksek kullanın.
  2. 5.5 mg / kg Xylacine ile 110 mg / kg ketamin içeren bir kokteyl enjekte ederek farelerin Anesteziyoloji ve hayvanlar 7 ila 10 dakika bekletin.
  3. Yavaşça arka bacaklardan birinin Kapkaççı basarak uygun anestezi onaylayın; Eğer düzgün hayvan uyarana cevap olarak hareket etmeyecektir anestezi.
  4. Anestezi altında iken kuruluğunu önlemek için her fare gözleri üzerine veteriner merhem ince bir tabaka sürün.
    NOT: Bir sistem donatmak eğer Izofloran gibi Đnhalatuar anestezik yerine de Ketamin / Xylacine kullanılabilirindüksiyon odası ve burun kozalakları ile ped kullanılabilir. Hayvanları anastetize ve sublingual yoldan imünostimülanı yönetmek indüksiyon odasına kullanın. Yutulduktan hemen önlemek ve tedavi edici bir bileşiğinin emilimine imkan vermek için anestezi altında tutmak için en az 15 dakika boyunca, bir uç konisinde, hayvanın bağlayın.
  5. Immüno-uyarıcı veya kontrol çözeltiyi içeren çözeltinin Pipet; başparmak ve dominant olmayan el işaret parmağı kullanarak fare almak ve dikey konumda tutun.
  6. Biraz forseps açık, dil altında dominant el yerde kapalı forseps bir çift kullanarak ve orta ve yüzük parmaklarını kullanarak yerinde tutun dilini kaldırmak için.
  7. Pipet ve dilin ağız ve dorsal tarafına zemin üzerine solüsyonun verilmesi.
  8. Forseps çıkarın ve kafesin içine geri koyarak önce 3 ila 5 dakika boyunca fare dinlensin. Sağlamak için bu normotermi anestezi uygulanmış mikrofon korunure, bir kafes ısıtıcı sistemine kafesleri bağlayın. Böyle bir sistem mevcut değilse, yer farenin yatak üzerinde birbirine yakın gelen kafes içine tekrar aynı tedavi grubuna ait ve kısmen onları vücut ısısını korumaya yardımcı olmak için temiz kağıt levhalar ile bunları kapatın.
  9. Muamele ile uyarılan hücre popülasyonlarında değişiklikleri analiz etmek için bağışıklık düzenleyici maddenin uygulamasından sonra herhangi bir zaman noktasında, doku örneklerinin alınması.
    Not: flagellin'in bu özel protokol yönetiminde muameleden önce 2 saat uygulandı. Tedavisi ve meydan okuma her bir terapötik madde ve patojen arasındaki uygun zamanı belirlemek üzere test edilebilir.

Streptococcus pneumoniae 2. Bakteriyel Süspansiyon hazırlanması ve burun içi bulaştırma

NOT: S. pneumoniae invaziv pnömoni, sepsis gibi yaşamı tehdit eden hastalıklara neden olabilir doğal bir patojendirve menenjit. Solunması veya mukozası ile temas halinde olduğunda iletim oluşabilir. Bu nedenle, S. ile temas etmiş olabilecek tüm örnekler pneumoniae sınıf II biyogüvenlik kabini kullanarak uygun bir Biyogüvenlik Seviye II tesisi ele alınmalıdır. Koruyucu giysiler, atık bertarafı ve uygulanabilecek ek güvenlik önlemleri için Tip II patojenlerin kullanılmasıyla ilgili kurumun Standart Çalışma Prosedürleri edin. Enfekte hayvanlar HEPA filtre ile donatılmış izolatörler tek tek havalandırılan kafeslerde tutulmalıdır. Anti-pnömokok aşıları ve antibiyotik tedavisi mevcuttur. Daha fazla bilgi için başvurular 27 ve 1 bkz.

  1. 15'te açıklandığı gibi hazırlanan bilinen Bakteri CFU sayısı bir Streptococcus pneumoniae çalışma stok süspansiyonu bir kısım çözülme.
  2. 2500 xg ve oda sıcaklığında 5 dakika boyunca santrifüj.
  3. Süpernatantı atın ve st 1 ml asarak bakteriyel pelet yıkayınerile tuzlu su çözeltisidir. Bakteri süspansiyonu, dilüsyonlarını veya hayvan meydan için hazırlanırken filtre ipuçlarını kullanın.
  4. Şekilde tekrar adım 2.2 tarif santrifüj.
  5. Süpernatant atılır ve 4x10 5 CFU / 50 ul bir süspansiyonunu elde etmek için steril tuz uygun hacimde pelletini. Bu doz, S. minimum bakteri dozuna denk düşen pneumoniae serotip önceki çalışmalara göre, 15, BALB / c farelerinde% 100 ölüme yol açar 1 E1586.
    Not: farelerde pnömokok kökenli pnömoni bir model oluşturmak halinde en az bakteriyel doz mortalite% 100 bakteri suşu, serotip ve fare soyunun her bir kombinasyonu için belirlenmelidir neden olur.
  6. Vorteks veya aşağı 5 kez yukarı pipetleme ve bakteri süspansiyonu homojenize.
  7. Yük steril bir filtre ucu kullanılarak bakteriyel süspansiyonun 50 | il ve anestezi uygulanmış bir farenin burun içine toplam hacmi aşılamak. Fare upri tutun2 dakika için ğa ve 2 dakika daha dorsal pozisyonda dinlendirin. Gözleri üzerine veteriner merhem sürün ve kafesine hayvanların dönmek; Anestezi altında iken normotermi korumak için emin olun.
    NOT: Bu çalışmada, bakteriye karşı 15,28 daha önce tayin edildiği gibi akciğerlere toplam CFU en azından% 90 teslimini sağlamak için 50 ul bir hacim içinde gerçekleştirilmiştir. Kullanılabilir hayvanın daha küçük hacimlerde (örneğin, 20 ul) rahatsızlığı en aza indirmek için,. Bununla birlikte, ciğerlere girebilecek bakterilerin etkin bir dağıtım kontrol edilmelidir; Bu uygulama sonrasında akciğerlerinde 5 dakika hasat edilmesi ve kan-agar plakaları üzerine seri dilüsyonları kaplama ile akciğerlerin homojenatlarında CFU sayılması ile yapılabilir.
  8. Kan agar plakaları üzerine 10 kat seri dilüsyonları kaplama ile enfeksiyon için, kullanılan bakteri süspansiyonu içinde CFU numaralarını kontrol edin. % 5 CO2 ile 37 ° C, O / N inkübe ve al yeşil bir halo özelliği gösteren mukoid koloni sayısınıfazlı hemolitik bakteri.

3. Doku Toplanması ve akış sitometrisi (FACS) analizi için örnek hazırlanması

3.1) Doku Toplama

  1. Servikal dislokasyon veya bir CO2 bölmesinde kullanılarak hayvan Euthanize; boynuna kadar göğüs boşluğunda tüm yol açıp boyun ve submandibular bölge ventral tarafında ortaya çıkarmak için ön ayakları boyunca bir kesi yapmak.
  2. Ince uçlu kavisli bir forseps ile hafifçe ağız kat dorsal yüzü ortaya çıkarmak için tükürük bezleri ve komşu yumuşak dokuyu yukarı çekin. 500 ml-% 10 Fetal Sığır Serumu, 10,000 U / ml ihtiva eden bir çözelti, 5 ml için, nazikçe çekerek alt çene ve alt çene aksesuar lenf düğümlerine ve tam RPMI (cRPMI içeren bir tüpe yerleştirin, ince kavisli ucu forseps kullanılarak bu olacak alt prosedüre göre penisilin ve 10 mg / ml streptomisin solüsyonu ve 5 ml L-glutamin, 200 mM) veya nükleik asit koruyucu çözeltisiDaha sonra gerçekleştirilebilir.
  3. Göğüs boşluğu diyafram bir kesi yapmak açmak için; sıçan dişli forseps bir çift dikkatle sternum xiphoid kıkırdak kelepçe kullanarak ve gerçek kaburga sternum manubrium karşılamak noktaya ulaşıncaya kadar tüm yol kadar yanlış kaburga başlayarak her iki dorsal tarafta kaburga kesti.
  4. Forseps ile sternum xiphoid kıkırdak tutarak, göğüs boşluğunun organların maruz hafifçe yukarı çekin.
  5. Tamamen birinci kaburga ve köprücük kemiğine keserek kaburga çıkarın. Timüs, kalp tabanına yakın toraks anteroventral kısmında bulunan iki lob beyaz bir yapı olarak görünür.
  6. Forseps bir çift ile sıkma tarafından lob birini alın ve onun alt yüz ve perikard arasındaki bağları kaldırmak için bir makas kullanın. İkinci lobunu kaldırmak için devam edin.
  7. Karın boşluğu belirlenmesi ve m medyan ekseni boyunca keserek açınuscular duvar organları ortaya çıkarmak. Forseps bir çift ile posterior vena kava ve aorta kesilmiş; emici bir doku ile kan fazlasının ayrılması.
  8. Alveol ikamet eden ve infiltre hücre popülasyonları bronkoalveoler lavaj (BAL) gerçekleştirmek analiz etmek. Trakea ve yemek borusu açığa çıkarmak için boynun ventral kısmında kaslar kesin; bunların yapıları lateral dorsal taraftan kesiler yapmak ayırmak için.
  9. Forseps ile trakea yukarı kaldırın ve Ca 2 + / Mg 2 + artı 1 mM EDTA olmadan 1 ml PBS ile dolu ince uçlu transfer pipet tanıtmak için bir neşter ile küçük bir kesi yapmak. Aşılamak ve toplam hacmin en az üç kez aspire; aspirat steril 1.5 ml tüp hücre süspansiyonu transfer ve buz üzerine yerleştirin ve.
  10. Önce sağ ventrikül içine Ca2 + / Mg2 + artı 1 mM EDTA içermeyen 5 ml PBS enjekte edilerek akciğerlere serpmek, parenkimde hücre popülasyonları analiz etmekkalbin.
    Not: Bu akciğerlerin kan damarları içine mevcut olan kırmızı kan hücreleri ve bağışıklık hücrelerinin çoğu ortadan kaldırır. Perfüzyon doğru yapıldı ise, akciğerler renk beyaz pembe kayacak.
  11. Sol ventrikül tabanından sıkma tarafından akciğerlerden kalbe yalıtmalı ve incelikle tamamen kaldırmak için makas ile kan damarlarını kesti. CRPMI veya alt analizi bağlı olarak nükleik asit koruyucu çözelti içinde perfüze akciğerlere almak ve yerleştirmek gerçekleştirilmelidir.
  12. Sublingual mukozada hücre popülasyonlarının analizi için, hayvanın baş izole ve adım 3.2.1 yapılan edilmemiş ise tükürük bezleri ve bitişik yumuşak doku çıkarın.
  13. Altçene eklemi ulaşana kadar ağız her tarafında bir kesi yapmak ve pimleri diseksiyon tahtada bunu düzeltmek kullanarak, ağız dil ve zemin ile birlikte alt çene ayrı. Dil yukarı çekin; Bir neşter kullanılarak bir kesi yapmak nerede baDilin se dil altı mukozasına ortaya çıkarmak için üçüncü azı ulaşana kadar ağzın zemini karşılamaktadır.
  14. Tamamen dilini çıkarın; 0.5 mm'lik biyopsi yumruk almak ve alt ön dişlerin yanına yerleştirin. Yavaşça ağız kat kadar sublingual doku ve basın dişeti sokulmasına Cut tamamen kesilmiştir.
  15. Şimdi sublingual doku çıkarılmasını tamamlamak için üçüncü molar yakın biyopsi yumruk yerleştirerek bir kez daha tekrarlayın. CRPMI veya nükleik asit koruyucu içeren temiz bir tüpe yerleştirin.

FACS analizi için 3.2) Numune hazırlama.

  1. , 24 oyuklu bir plakaya her bir fareden izole edilen Akci¤erlere doku aktarın ve yaklaşık 2 mm doku küçük parçalar elde edene kadar makas temiz bir çift ile kıyma. Tip II Kolajenaz, 30 mg, FBS'siz RPMI 1 ml 50 ug DNAse I ihtiva eden sindirim orta oyuk başına 1 ml ilave edilir. Pipet ve aşağı yukarı beş kez ve inkübe37 ° C,% 5 ila 40 dakika boyunca CO2.
    1. Dil altı dokuda hücre popülasyonlarının analizi için, dispaz, 2 adet, RPMI, 1 ml, 30 mg, tip II Kolagenaz, 50 ug DNAse I ihtiva eden biriyle 3.2.1 sindirim ortamı yerine. 50 rpm'de bir orbital sallayıcı içinde 37 ° C'de 20 dakika boyunca sindirim ortamının 500 ul bir fareden alınan doku inkübe edin.
  2. Inkübasyon, pipet ardından ve dokusunu en bozuldu 10 kere veya 30 saniye kadar kadar aşağı. 40 mikron steril bir hücre süzgecinden da hücre süspansiyonu filtre edin ve PBS 5 mi, 5 mM EDTA ile takviye ile yıkayın.
    Not: hücre dışı matris ve lifli doku Tam sindirme elde edilmeyecektir. Bu artan hücre ölümü ve F genel sonucu etkileyen hücre dışı proteinlerin bozulmasına neden olur Ancak, kolajenaz ve / veya toz haline getirme ya da agresif dispase mevcudiyetinde daha uzun inkubasyon süreleri tavsiye edilmezACS analiz.
  3. 400 xg, 5 dakika, 4 ° C'de santrifüj.
    1. BAL hücre popülasyonlarının analizi için, 4 ° C'de 400 x g'de 5 dak hücreleri santrifüj 3.2.4 adıma devam eder.
    2. Lenf düğümleri hücre popülasyonlarının analizi için, steril bir petri tabağına 70 mikron hücre süzgecinden yerleştirmek ve süzgeç içine cRPMI 1 ml lenf düğümleri birlikte koydu. 2 ml steril şırınga dalma çıkarın ve süzgecini en örgü karşı lenf düğümleri ezmek için bir havanda olarak kullanabilirsiniz. Taze cRPMI 1 ml hücre süzgecinden yıkayın ve steril bir tüpe petri hücreleri aktarın.
  4. Her numunenin temsili bir kısım alın ve canlı hücre sayısını belirlemek için Tripan Blue ile boyanır.
  5. 2x10 mi 7 hücre / süspansiyonunu oluşturan bir tüp içine sitometresi 50 ul PBS-5 mM EDTA,% 1 Sığır Serum Albumin-: FACS-EDTA içinde süspansiyon hücreleri.
  6. Yakl içeren 2X antikor karışımı hazırlayınMevcut FACS enstrümana göre yüzey belirteçleri ve florokromlar karşı antikorların opriate kombinasyonları. Hücre süspansiyonu ihtiva eden her tüpe 2X antikor karışımı 50 ul ekle.
    Not: iyi miktarını belirlemek için, her fluorokrom-etiketli antikor titre başvuru 29 bkz detaylı bir protokol için kullanılır.
  7. Karanlıkta buz üzerinde 30 dakika inkübe edin.
  8. FACS-EDTA, 3 ml bir kez yıkayın ve 4 ° C'de 5 dakika boyunca 400 x g'de santrifüj ile hücreler aşağı spin, aynı tampon 200 ul hücreleri tekrar süspansiyon ve Akış Sitometresi analiz.
    Not: numune büyük bir sayı kullanılacaksa, yukarıda tarif edilen FACS analizi için boyama protokolü yerine sitometre tüpler U tabanlı, 96 oyuklu plakalar içerisinde gerçekleştirilir. Bununla birlikte, 96 oyuklu plakalar, yıkama adımları, her Washi ile, 4 ° C'de 5 dakika boyunca 400 xg'de hücreleri aşağı iplik 4 kez FACS-EDTA, 200 ul kadar ilave edilmesi ve tekrar tarafından gerçekleştirilmelidirng adım.
  9. Bu noktada, daha sonraki sitometresi (sabitlenmesinden sonra 72 saat kadar) akış analizi için numuneler, tespit edin.
    1. Hücreleri sabitlemek için, FACS-antikorları ile işaretlendikten sonra PBS herhangi bir Ca2 + / Mg2 +, FBS'siz 1 mM EDTA içinde hücreleri yıkayın. Herhangi bir Ca2 + / Mg2 +, aynı tamponun 50 ul süspanse hipertonik (2X) ile, PBS içinde taze hazırlanmış% 4 paraformaldehid çözeltisi 50 ul ekle.
    2. Oda sıcaklığında 20 dakika boyunca inkübe edin ve FACS-EDTA içinde 3 kez yıkayın.
    3. 4 ° C'de 200 FACS ul EDTA ve mağaza hücrelerin tekrar ve en fazla 72 saat boyunca ışıktan korundu.
      NOT: FSC-SSC sabitleme etkilenebilir. Tandem boyaları sabitleyici ajanlar varlığında bozulmuş olabilir çünkü tespit takdirde, numunelerin üretici ile floresan etiketli antikorların uyumluluğunu kontrol. Örnekleri enfekte hayvanlardan kaynaklandığı varsa tespit hayli zaman analy hiçbir kalıcı patojenler mevcut olmasını sağlamak için tavsiye edilirmicroaerosols numune alımı sırasında oluşturulabilir çünkü FACS makinesinde örnekleri şarkı.

4. Toplam RNA Ekstraksiyon, cDNA Sentezi ve Real Time PCR.

4.1), RNA ekstraksiyonu ve cDNA sentezi.

  1. Mekanik parçalama göre tercih edilen nükleik asit koruyucu bir solüsyon içerisinde dokuyu homojen (örneğin, bir rotor-stator homojenleştirici kullanılarak, dokuya ruptor boncuk vb çalkalama yüksek hız). 15 dakika 4 ° C'de 12,600 x g'de santrifüje doku çöküntüsü ortadan kaldırılmaktadır. Temiz bir tüpe süpernatant aktarın.
  2. Üretici talimatlarına uygun seçim yöntemi ile RNA ekstrakte edin.
    NOT: hacimde yapmak ve -80 ° C'de RNAse serbest tüpler içinde saklayın, hemen izolasyondan sonra kullanılacak olacak değilse RNA, parçalanmaya yüksek duyarlıdır. Tekrarlanan donma ve çözülme kaçının. Tüpler her zaman eldiven ile ele alınması gerekir. Bir numune çözündükten sonralways buz üzerinde saklayın.
  3. 260 nm'de nükleik asitlerin absorbansı ölçülür ve mg / ml konsantrasyonunu hesaplamak.
  4. DNAse I ilave edilerek karıştırın hazırlanması (1 bir numune için): ultra saf su 7.6 ul 10X DNAse I tampon maddesi 1 ul, 0.4 DNAse (amplifikasyon eğim) stok, 1 U / ul ul, 8.4 ul DNAse I toplam RNA'nın 1 ug ihtiva eden her bir örnek için karıştırın.
    1. 1 mg / ml bir konsantrasyonda RNA kullanarak ve bir şablon olarak toplam RNA'nın 1 ul ekleyerek retrotranscription reaksiyonu (RT-PCR) gerçekleştirir. Örnekler de seyreltilmiş ve konsantrasyon beklenenden daha düşük olması halinde, toplam RNA yerine daha büyük hacimde su ilave edin. Fenol izleri RT-PCR verimini etkileyebilecek yana tercih RNA ekstraksiyon protokolü fenol-kloroform karışımı katılan özel olarak ise, RNA eklerken nihai reaksiyon hacminin% 20'sinden fazla değildir.
  5. 4 ° C ya da I, 10 dakika süre ile oda sıcaklığında 15 dakika inkübece. (Inkübasyon süresi aşmayın !!)
  6. Her bir tüp, 25 mM EDTA, (Moleküler Biyoloji) 1 ul ilave edin ve DNAse I etkisiz hale getirmek için 10 dakika boyunca 65 ° C'de inkübe edin.
  7. (1 reaksiyon için) aşağıdaki gibi retrotranscription (RT) karışımı hazırlayın: 1 ul rastgele heksamer primerleri stok 0.2 mg / ml, 1 ul dNTP stok 10 mm, 4 ul 5X ir M-MLV-RT tamponu, 2 ul 0.1 M DTT, 1 ul RNAz OUT stok 40 U / ml ve 1 ul M-MLV stok 200 U / ul retrotranscriptase.
  8. RT-PCR, 10 ul, 10 ul DNAse I reaksiyon tüpüne karışımı ekleyin.
  9. Aşağıdaki programa göre, bir termal döngü PCR reaksiyonu yürütmek:
    1X döngüsü: 10 dk, 25 ° C; 50 dakika, 37 ° C; 15 dakika, 70 ° C
  10. Ultra saf su 80 ul ekleyerek 5: 1 cDNA seyreltin. -20 ° C'de saklayın.

4.2) Gerçek zamanlı PCR (qPCR).

  1. Taq P içeren 5 ul ana karışımı: (1 reaksiyon için) aşağıdaki gibi qPCR reaksiyon karışımı hazırlayınolymerase, SYBR Green boya, PCR Tampon, dNTP karışımı ve MgCl2 (aşağıya bakınız 4.2.2); Adım 4.1.10 gösterildiği gibi ileri primeri, 10 uM stok çözeltisi 0.9 ul, bir ters primerin 10 uM stok çözeltisi, 1.2 ul ultra-saf su, 0.9 ul, cDNA şablonunun 2 ul, daha önce seyreltilmiştir.
    NOT: Bu bölümde kullanılan reaktif konsantrasyonu ve Çevrim protokolleri, "Materyaller ve Reaktifler: Tablo" de tarif edilen tepkime maddeleri ve araçlar ile özel olarak gerçekleştirilebilir için optimize edildi diğer markalar kullanılabilir, ancak reaksiyon hacmi, reaktif konsantrasyonları ve çevrim protokolü değişebilir. RT-qPCR gerçekleştirmeden önce üretici talimatları kontrol edin.
  2. Aşağıdaki gibi QPCR enstrüman ayarlayın:
    1X döngüsü: 15 dk, 95 ° C
    40X çevrimi: 15 saniye, (bu noktada elde edimi fluoresans) yaklaşık 1 dakika, 60 ° C, daha sonra 95 ° C'dir.
    Not: mRNA'nın nispi ölçümü için Ct yöntemi 30, e göre referencE geni Ct değerleri normalleştirme için seçilmelidir. Referans seçim gen ifadesi değişebilir belirli deney koşulları altında test edilmelidir ACTB, GAPDH veya 18S, genellikle referans olarak seçilen genlerin bazılarıdır.
  3. Eşik değerini ayarlama ve verileri analiz.

Sonuçlar

Sublingual immünoterapi ile başarılı Akci¤erlere bağışıklık tepkisini modüle etmek üzere kullanılabilir. Biz, flagellin, TLR5 ve NLRC4 agonisti tek bir dozu, kemokinler CXCL1, CCL20 ve tuzlu suyla tedavi edilen kontrol grubu ile karşılaştırıldığında sitokin, IL-6 kodlayan mRNA'nın önemli ölçüde artmasına neden olduğunu göstermiştir. MRNA seviyelerinin indüksiyon SLIT'in sonra 8 saatte doruğa katlayın ve 20 saat (Şekil 1) sonra bazal düzeylere geri dönmektedir. SLIT'in S'dir. Pneumoniae ile 2 saat önce uygulandı burun içi enfeksiyona, ancak, CXCL1 ve IL 6 mRNA düzeyleri tedavi edilmemiş hayvanlarda (Şekil 2) ile karşılaştırıldığında SLIT'in sonra, hatta 24 saat regüle kaldı.

FACS ile BAL hücre popülasyonlarının ve akciğer dokusunun analizi dil altı yolu ile FLIC ile muamele edilmiş hayvanlar için akciğerin doku (Şekil 3), hava yollarında nötrofil sayısı artmıştır, ancak ortaya çıkardı.

Şekil 4'te gösterildiği gibi, flagellin ile SLĐT koruma teşvik edilmesi ve akut pnömokok kökenli pnömoniye karşı yaşamalarım arttırmıştır.

figure-results-1
Flagellin ile sublingual immünoterapi Şekil sonra akciğerlerin transkripsiyonel profili 1. kinetiği. Sekiz ila 10 haftalık BALB / c fareleri (n = 4) olarak uygulandı dil altı yolu ile, flagellin ya da tuzlu su, 10 ug ile muamele edilmiştir. Akciğerler farklı zaman noktalarında toplandı ve nükleik asit koruyucu yerleştirildi. Tüm RNA çıkarılması uygulandı ve cDNA sentezlenmiştir. mRNA seviyeleri Tabl listelenen spesifik primerler kullanılarak, gerçek zamanlı PCR ile değerlendirildiE 1. miktar ölçümü normalizasyonu için ACTB mRNA seviyelerini kullanarak ACt yöntemi göre gerçekleştirilmiştir. Sonuçlar ± SEM ortalaması olarak salin ile tedavi edilmiş gruba kıyasla kat bir artış olarak gösterilmiştir. Yıldız Mann-Whitney testi kullanılarak hesaplanmıştır istatistiksel olarak anlamlı fark (p <0.05) göstermektedir. Sonuçlar Şekil 2, bağımsız deneyi temsil etmektedir.

figure-results-2
Ile, flagellin. Sekiz ila 10 haftalık BALB / c fareleri (n = 4, kontrol grubu için n = 7 tedavi gören grup için) sublingual immünoterapi sonra pnömokok kökenli pnömoni sırasında Şekil 2. akciğerleri transkripsiyonel profili, flagellin ya da tuz, 10 ug ile muamele edilmiştir anestezi altında dilaltı rota. 2 saat sonra 10 farenin neden olan en az ölümcül bir doz (MSD) ile intranazal yoldan tehdit edildiS. klinik izolatı% 0 mortalite 4x10 5 CFU / 50 ul karşılık gelen pneumoniae serotip 1 E1585. Akciğerler mücadeleden 24 saat sonra toplandı ve RNA ekstraksiyonu ve cDNA sentezi gerçekleştirilmiştir kadar nükleik asit koruyucu depolanmıştır. Gerçek zamanlı PCR ile gerçekleştirilmiştir (Tablo 1 'de astar listesine bakınız) ve nispi ölçümü normalizasyonu için ACTB mRNA seviyelerini kullanarak ACt yöntemi göre gerçekleştirilmiştir. Sonuçlar ± SEM ortalaması olarak salin ile tedavi edilmiş gruba kıyasla kat bir artış olarak gösterilmiştir. Yıldız Mann-Whitney testi kullanılarak hesaplanmıştır istatistiksel olarak anlamlı fark (p <0.05) göstermektedir.

figure-results-3
Polimorfonükleer nötrofil Şekil 3. Analiz (PMN) SLIT'in sonra akciğerlerin dokusunda ve hava yollarında işe. Eight'e10 haftalık BALB / c fareleri (n = 4) olarak uygulandı dil altı yolu ile, flagellin ya da tuzlu su, 10 ug ile muamele edilmiştir. 2 saat sonra farelerin S. MLD ile intranazal yoldan tehdit edildi pneumoniae serotip 1 E1585. Hücumdan 24 saat sonra, BAL yapıldı ve akciğerler FACS analizi için işlenmiştir. PMN Ly6G yüksek / CD11b yüksek / CD11c'nin negatif hücreler olarak tanımlanan ve FCS-SSC profiline göre yapılmıştır. Sonuçlar akciğerde ya da BAL'da toplam hücre sayıları açısından PMN yüzdesi olarak ifade edilmiştir. Barlar ± SEM medyan temsil eder. Yıldız tek yönlü Mann-Whitney testi kullanılarak hesaplanmıştır istatistiksel olarak anlamlı fark (p <0.05) göstermektedir.

figure-results-4
Flagelllin'ine ile Şekil 4. SLIT'in akut pnömokokal pnömoniye karşı fareleri korur. S. MLD ile intranazal yoldan tehdit edildi pneumoniae serotip 1 E1585. Hayatta kalma günlük olarak değerlendirildi. Kaplan-Meier eğrileri Log-rank (Mantel-Cox) testi açısından karşılaştırıldı. Yıldız istatistiksel olarak anlamlı fark (p <0.05) .Results 2 bağımsız deneyler temsilcisi olduklarını gösterir.

İsim Dizi 5'-3 ' PCR Ürün uzunluğu (bp)
mB,-actin_F GCTTCTTTGCAGCTCCTTCGT 68
mB,-actin_R CGTCATCCATGGCGAACTG
mCCL20_F TTTTGGGATGGAATTGGACAC 69
mCCL20_R TGCAGGTGAAGCCTTCAACC
mCXCL1_F CTTGGTTCAGAAAATTGTCCAAAA 84
mCXCL1_R ACGGTGCCATCAGAGCAGTCT
mlL-6_F GTTCTCTGGGAAATCGTGGAAA 78
mlL-6_R AAGTGCATCATCGTTGTTCATACA
mTNFalpha_F CATCTTCTCAAAATTCGAGTGACAA 63
mTNFalpha_R CCTCCACTTGGTGGTTTGCT
mCxcl2_F CCCTCAACGGAAGAACCAAA 72
mCxcl2_R CACATCAGGTACGATCCAGGC

Gerçek zamanlı PCR analizi için kullanılan astar listesi Tablo 1.. QPCR analizi için kullanılan özel astar dizilerini sıralamaktadır. İleri ve fare ACTB için primerler, ters Cccl20, CXCL1 Il6, TNFa ve CXCL1 5'-3 'sekansları gibi sunulmuştur ve beklenen ürün uzunluğu hem baz çiftlerinde (bp) olarak gösterilir.

Tartışma

Terapötik maddelerin maddelerinin sublingual yoldan verilmesi solunum yollarında immun cevabı modüle etme yararlı bir yöntem olduğu kanıtlanmıştır. Solunum koşullarının tedavisi için SLIT'in başlıca avantajı, burun içinden tatbikat 31 dayanan tedavilerle daha güvenli olan, akciğer veya burun içine bileşiklerinin doğrudan iletilmesini içerir etmemesidir.

Sublingual immünoterapi ya da alerjik iltihaplanma ve astımın 32 semptomlarını iyileştirmek veya burada gösterildiği gibi akut akciğer enfeksiyonlarının tedavisi için doğal bağışıklık mekanizmalarını geçici aktivasyonunu uyarmak için düzenleme tepkilerinin uyarılması için, farklı şekillerde immun cevabı modüle etmek üzere kullanılabilir.

Bu video sunulan fare modeli SLĐT'in için terapötik maddeler olarak farklı bileşiklerin taranması için uygun bir yöntemdir.

Bu hayvan modeli etkisini belirlemek için kullanışlı bir araç sunmaktadırAkci¤erlere immün tepkisi, hem de diğer organları (örneğin,., lenf düğümleri veya uzak mukozal the drenaj), in vitro modellerinin kullanımı ile taklit edilemeyen SLIT'in. Dilaltı immünoterapi kullanılarak elde edilen sonuçları tanımlamak birçok makale olmasına rağmen, dilaltı uygulama prosedürleri için ayrıntılı yöntemleri henüz mevcut yapılmamıştır. Buna ek olarak, bu model solunum yolu sistemik hem de lokal koruma sağlamak amacıyla dil altı aşıların değerlendirilmesi için de kullanılabilir.

Eşlik eden video gösterildiği gibi, bileşiklerin sublingual yolla kolaylıkla geniş eğitim gerek duyulmadan basit bir işlemdir. Tipik olarak, hayvan kullanımı konusunda uzman bir kişi bu protokolde tarif edildiği gibi, enjekte edilebilir anestetikler ile 10 fareden oluşan bir grup SLĐT'i gerçekleştirmek için 1 saat gerektirir. Pnömokokal hücuma de gerçekleştirilirse, ilave 90 dakika hazırlamak için gerekli olacakBakteri süspansiyonu ve hayvanların burun içi bulaştırma gerçekleştirin.

Burada sunulan FACS protokolleri Akci¤erlere hücre dinamikleri üzerinde lenf düğümleri yanı sıra etkilerini drenaj, uygulama yerel yerinde SLIT'in etkisinin uygun karakterizasyonu izin verir.

Bronkoalveoler içeriği ve akciğer dokusu ayrı ayrı analizi hava yolu bağışıklık yerleşik ve doku içinde kalır bu hücre tiplerini sızmakta ayırt etmek önemlidir. BAL içeriğinin analizi alveoler makrofaj ciro çalışma yanı sıra farklı tedaviler ile neden olunan alveolar boşluk, örneğin., PMN, eozinofiller, monositler içine hücrelerin işe dinamiklerini sağlar. BAL için enzim bağlantılı immünosorbent deneyi (ELISA) ya da dil altı aşılamanın ardından ortaya salgılanan IgA antikorlarının tespiti tarafından salgılanan sitokinler ve kemokinlerin varlığını saptamak için kullanılabilir. Akci¤erlere doku Çalışmasıdiğer hücre türleri, klasik dendritik hücreleri, T hücreleri ve B hücreleri karakterizasyonu sağlayacaktır.

FACS analizi için BAL örnekleri ve lenf düğümleri hazırlanması basittir. Numune toplama sonra, normalde 60 dakika 10-20 örnekler için boyama protokolü tamamlamak için gereklidir. Hücre-dışı matrisin sindirim gerekli değildir ve bu Bunun aksine, akciğer veya dil altı doku hücrelerinin elde edilmesi daha fazla zaman gerekir. Dil altı yolu ile verilen terapötik maddenin emilimi vivo görüntüleme sistemleri kullanılarak, floresan veya radyoaktif işaretli moleküllerin takibi ile sağlanabilir.

Sublingual immunoterapinin bağışıklık solunum yollarında tepkileri vermenin yanı sıra tedavi etmek ya da önlemek için, solunum koşulları kullanılabilir sistemik olarak uyarılması için çekici bir yöntemdir. SLIT'in i sonra solunum yollarında bağışıklık tepkisinin aktivasyonunun belirlenmesi karşı tolerans mekanizmalarını aydınlatılmasıFarklı solunum koşullarına karşı mevcut tedaviler ile birlikte, tek başına veya kombinasyon halinde kullanılabilecek, yeni tedavi stratejileri rasyonel tasarım sağlamak çok önemlidir s.

Açıklamalar

Yazarların açıklayacak hiçbir şeyi yoktur.

Teşekkürler

Lille Enfeksiyon ve Bağışıklık Merkezi, Pasteur de Lille-Fransa Enstitüsü'nden Dr. Jean-Claude Sirard'a saflaştırılmış flagellini sağladığı için ve Uruguay Sağlık Bakanlığı Ulusal Referans Laboratuvarı Direktörü Dr. Teresa Camou'ya pnömokok suşunu sağladığı için teşekkür ederiz.

Yazarlar, BichoFeo Producciones-Uruguay'dan Bay Diego Acosta ve Bay Ignacio Turel'e tüm video prodüksiyonu ve edisyonu boyunca gösterdikleri bağlılık ve sıkı çalışma için teşekkürlerini sunar

.

Bu çalışma, Ulusal Araştırma ve Yenilik Ajansı, Uruguay'dan ANII, Temel Bilimleri Geliştirme Programı, Uruguay PEDECIBA ve Uruguay Sektörel Bilimsel Araştırma Komisyonu, CSIC-Universidad de la República, Uruguay'dan PR_FCE_2009_1_2783 ve BE_POS_2010_1_2544 hibelerle desteklenmiştir.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
Ketamin çözeltisi (50 mg/ml)Pharma Service, Uruguay
Xilacine çözeltisi (%2)Portinco S.A., Uruguay
Steril 1 ml şırıngaModern, Uruguay
Steril 27 G iğneModern, Uruguay
RPMI 1640General Electric Health CareE15885
Fetal Sığır SerumuATCC302020
Penisilin / Streptomisin ÇözeltisiSIGMAP4333
Ca < sup> 2 + < / sup> / Mg < sup> 2 + < / sup>PAAH21002
Tip-I KollajenazYaşam Teknolojileri / Gibco17100017
Deoksiribonükleaz I (DNAse-I)SIGMAD4513
DispaseLife Technologies / Gibco17105041
PerCP-Cy5.5 konjuge sıçan anti fare IgG2b anti CD11bBD550993Klon M1/70
APC konjuge hamster anti fare IgG1 anti CD11cBD550261Klon HL3 
APC-Cy7 konjuge sıçan anti fare IgG2a anti Ly6GBD560600Klon 1A8
Steril Salin SolüsyonuLaboratorio Farmaco Uruguayo, Uruguay
Triptik Soya AgarBD Difco, Fransa236950
Defibrine Koyun Kanı Biokey, Uruguay
Steril Petri KaplarıGreiner633180
p10 PipetGilsonF144802
p20 PipetEppendorf3120000097
p200 PipetGilsonF123601
p200 PipetCappC200
p200 PipetEppendorf3120000054
p1000 PipetEppendorf3120000062
Steril Filtre Uçları p10Greiner771288
Steril Filtre Uçları p200Greiner739288
Steril Filtre Uçları p1000Greiner750288
VortexBIOSANV1-plus
Paslanmaz çelik ince uçlu forseps SIGMAZ168785/Z168777Kavisli ve düz
Pansuman dokusu forsepsSIGMAF4392Uzunluk 8 inç
Mikro diseksiyon forsepsSIGMAF4017Düz ve nbsp;
Mikro diseksiyon forsepsSIGMAF4142 kıvrımlı
Mayo MakasSIGMAZ265993 
NeşterSAKIRA MEDİKAL
Steril Biyopsi Punch & Oslash; 3mmStiefel Laboratories Ltd.2079D5 mm çap da kullanılabilir
Steril 1.5 ml TüplerDeltalab200400P
Steril 15 ml TüplerGreiner188271
Steril 50 ml TüplerGreiner227261
Steril serolojik pipetler 5 mlGreiner606160
Steril serolojik pipetler 10 mlGreiner607160
Steril serolojik pipetler 25 mlGreiner760180
Biyolojik güvenlik kabini, sınıf IIThermo Scientific1300 serisi, tip A2
Mikro İzolatör; RafRAIR  IsoSystem 76144WSüper  Fare  1800 AllerZone 
Soğutmalı MikrosantrifüjEppendorfLegend Micro 21R
MikrosantrifüjHeraeusBiofuge-pico
SantrifüjThermo ScientificSorval ST40R
CO2 İnkübatör Thermo ScientificModel  3111
Steril İnce uçlu pastör pipetleriDeltalabD210022
Steril pastör pipetleriDeltalab200007
Steril 24 oyuklu plakaGreiner662160
Tripan Mavisi Solüsyonu Yaşam TeknolojileriT10282
Otomatik Hücre Sayacı - KontesYaşam TeknolojileriC10227 
Kontes Hücre Sayma Odası SlaytlarıYaşam TeknolojileriC10312
Akış Sitometri TüpleriBD343675
Akış Sitometresi - FACS Canto-IIBD
Gerçek Zamanlı PCR Cihazı - Rotor Geni Q veya ABI 7900Qiagen / Uygulamalı Biyosistemler
Trizol ReaktifYaşam Teknolojileri15596-026Moleküler Biyoloji Sınıfı
DNAse-IYaşam Teknolojileri18068-015Moleküler Biyoloji Sınıfı
DNAse-I Tamponu 10XYaşam Teknolojileri18068015Moleküler Biyoloji Sınıfı
EDTA 25 mMYaşam Teknolojileri18068015Moleküler Biyoloji Sınıfı
Ultra Saf SuYaşam Teknolojileri10977Moleküler Biyoloji Sınıfı
RNAse ÇıkışıYaşam Teknolojileri100000840Moleküler Biyoloji Sınıf
Rastgele Heksamer PrimerleriYaşam TeknolojileriN8080127Moleküler Biyoloji Sınıf
M-MLV-RT tamponuYaşam Teknolojileri18057-018Moleküler Biyoloji Sınıf
M-MLV-RT enzimiYaşam Teknolojileri28025-021Moleküler Biyoloji Sınıfı
QuantiTect Syber Green PCR KitiQiagen204143Moleküler Biyoloji
Sınıfına Özel Primerler Yaşam TeknolojileriMoleküler Biyoloji Sınıfı

Kaynaklar

  1. Pneumococcal vaccines WHO position paper--2012. Weekly Epidemiological Record. 14, 129-144 (2012).
  2. Pneumonia - Facts Sheet N°331. , WHO. Available from: http://www.who.int/mediacentre/factsheets/fs331/en (2013).
  3. Appelbaum, P. C., et al. Carriage of antibiotic-resistant Streptococcus pneumoniae by children in eastern and central Europe-a multicenter study with use of standardized methods. Clin Infect Dis. 23, 712-717 (1996).
  4. Ramirez, J. A., Anzueto, A. R. Changing needs of community-acquired pneumonia. J Antimicrob Chemother. 66, 3-9 (2011).
  5. Cuburu, N., et al. Sublingual immunization induces broad-based systemic and mucosal immune responses in mice. Vaccine. 25, 8598-8610 (2007).
  6. Pedersen, G. K., et al. Evaluation of the sublingual route for administration of influenza H5N1 virosomes in combination with the bacterial second messenger c-di-GMP. PLoS One. 25, 1-12 (2011).
  7. Song, J. H., et al. Sublingual vaccination with influenza virus protects mice against lethal viral infection. Proc Natl Acad Sci USA. 105, 1644-1649 (2008).
  8. Cogo, R., Ramponi, A., Scivoletto, G., Rippoli, R. Prophylaxis for acute exacerbations of chronic bronchitis using an antibacterial sublingual vaccine obtained through mechanical lysis: a clinical and pharmacoeconomic study. Acta Biomed. 74, 76-87 (2003).
  9. Rosaschino, F., Cattaneo, L. Strategies for optimizing compliance of paediatric patients for seasonal antibacterial vaccination with sublingually administered Polyvalent Mechanical Bacterial Lysates (PMBL). Acta Biomed. 75, 171-178 (2004).
  10. Senna, G., Caminati, M., Canonica, G. W. Safety and tolerability of sublingual immunotherapy in clinical trials and real life. Curr Opin Allergy Clin Immunol. 13, 656-662 (2013).
  11. Mascarell, L., et al. Oral dendritic cells mediate antigen-specific tolerance by stimulating TH1 and regulatory CD4+ T cells. J Allergy Clin Immunol. 122, 603-609 (2008).
  12. Mascarell, L., et al. Mapping of the lingual immune system reveals the presence of both regulatory and effector CD4+ T cells. Clin Exp Allergy. 39, 1910-1919 (2009).
  13. Mascarell, L., et al. Oral macrophage-like cells play a key role in tolerance induction following sublingual immunotherapy of asthmatic mice. Mucosal Immunology. 4, 638-647 (2011).
  14. Hervouet, C., et al. Antigen-bearing dendritic cells from the sublingual mucosa recirculate to distant systemic lymphoid organs to prime mucosal CD8 T cells. Mucosal Immunology. 7, 280-291 (2014).
  15. Munoz, N., et al. Mucosal administration of flagellin protects mice from Streptococcus pneumoniae lung infection. Infect Immun. 78, 4226-4233 (2010).
  16. Hayashi, F., et al. The innate immune response to bacterial flagellin is mediated by Toll-like receptor 5. Nature. 410, 1099-1103 (2001).
  17. Lightfield, K. L., et al. Critical function for Naip5 in inflammasome activation by a conserved carboxy-terminal domain of flagellin. Nature Immunology. 9, 1171-1178 (2008).
  18. Lightfield, K. L., et al. Differential requirements for NAIP5 in activation of the NLRC4 inflammasome. Infect Immun. 79, 1606-1614 (2011).
  19. Honko, A. N., Mizel, S. B. Mucosal administration of flagellin induces innate immunity in the mouse lung. Infect Immun. 72, 6676-6679 (2004).
  20. Janot, L., et al. Radioresistant cells expressing TLR5 control the respiratory epithelium's innate immune responses to flagellin. Eur J Immunol. 39 (6), 1587-1596 (2009).
  21. Van Maele, L., et al. TLR5 signaling stimulates the innate production of IL-17 and IL-22 by CD3(neg)CD127+ immune cells in spleen and mucosa. J Immunol. 185, 1177-1185 (2010).
  22. Lee, S. J., et al. Neurologic adverse events following influenza A (H1N1) vaccinations in children. Pediatrics international: official journal of the Japan Pediatric Society. 54, 325-330 (2012).
  23. Lewis, D. J., et al. Transient facial nerve paralysis (Bell's palsy) following intranasal delivery of a genetically detoxified mutant of Escherichia coli heat labile toxin. PLoS One. 4, e6999(2009).
  24. Mutsch, M., et al. Use of the inactivated intranasal influenza vaccine and the risk of Bell's palsy in Switzerland. N Engl J Med. 350, 896-903 (2004).
  25. Kuo, C. H., Wang, W. L., Chu, Y. T., Lee, M. S., Hung, C. H. Sublingual immunotherapy in children: an updated review. Pediatr Neonatol. 50, 44-49 (2009).
  26. Nempont, C., Cavet, D., Rumbo, M., Bompard, C., Villeret, V., Sirard, J. C. Deletion of flagellin's hypervariable region abrogates antibody-mediated neutralization and systemic activation of TLR5-dependent immunity. J. Immunol. 181, 2036-2043 (2008).
  27. Pathogen Regulation Directorate, Public Health Agency of Canada . Streptococcus pneumoniae: Pathogen Safety Data Sheet - Infectious Substances. , Available from: http://www.phac-aspc.gc.ca/lab-bio/res/psds-ftss/streptococcus-pneumoniae-eng.php (2011).
  28. Marques, J. M., et al. Protection against Streptococcus pneumoniae serotype 1 acute infection shows a signature of Th17- and IFN-gamma-mediated immunity. Immunobiology. 217, 420-429 (2012).
  29. Stewart, C. C., Stewart, S. J., et al. Titering antibodies. Current Protocols in Cytometry. 4, Unit 4.1(2001).
  30. Kubista, M., et al. The real-time polymerase chain reaction. Molecular Aspects of Medicine. 27, 95-125 (2006).
  31. Pedersen, G., Cox, R. The mucosal vaccine quandary: intranasal vs. sublingual immunization against influenza. Human Vaccines & Immunotherapeutics. 8, 689-693 (2012).
  32. Vitaliti, G., et al. Mucosal immunity and sublingual immunotherapy in respiratory disorders. Journal of Biological Regulators and Homeostatic Agents. 26, S85-S93 (2012).

Yeniden basım ve izinler

Etiketler

Pn mokok Zat rresiFare ModeliAk SitometrisiBronkoalveoler LavajTek H cre S spansiyonuStreptococcus pneumoniaeTLR Agonistlerimm n Yan tLenf Nodu zolasyonu
Alternatifi olarak dilaltı immünoterapi Akut Solunum Enfeksiyonları Karşı Koruma tetikleyebilecek
Bize Ulaşın
Kütüphaneye Öner

Gizlilik

Kullanım Koşulları

Politikalar

Telif Hakkı © 2026 MyJoVE Corporation. Tüm hakları saklıdır.