Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliğiniz gereklidir. Giriş yapın veya ücretsiz denemenizi bugün başlatın.

Yöntem makalesi

Embriyoid Kuruluşlarının Farklı Boyutları tarafından uyarılmış pluripotent kök gelen Retina pigment epiteli (RPE) türetilmesi (iPS) Hücreler

10K görüntülenme

⸱

DOI:

10.3791/52262

⸱

4 Şubat 2015

 ,  ,  ,  , 
1Ocular Trauma, U.S. Army Institute of Surgical Research

Bu makalede

Özet

Bu raporun amacı, embriyoid organlarının farklı boyutlarda kullanılarak uyarılmış pluripotent kök (iPS) hücrelerden retina pigment epiteli (RPE) elde etmek protokolleri tanımlamaktır.

Özet

Pluripotent kök hücreler, süresiz olarak çoğalma ve hemen hemen her hücre tipine farklılaşma yeteneğine sahiptir. Ek olarak, somatik hücreleri indüklenmiş pluripotent kök (iPS) hücrelere yeniden programlamak için tekniklerin geliştirilmesi, özelleştirilmiş kişisel rejeneratif tıp olasılığına yönelik ilgi ve heyecan yaratmıştır. Bununla birlikte, kök hücre farklılaşmasının istenen bir soya doğru etkinliği düşük kalmaktadır. Bu çalışmanın amacı, in vitro farklılaşma sırasında yaygın bir ara ürün olan embriyoid cisimciklerinin (EB'ler) homojen popülasyonlarını oluşturmak için bir doku mühendisliği yaklaşımı uygulayarak iPS hücrelerinden (iPS-RPE) retinal pigment epiteli (RPE) türetmek için bir protokolü tanımlamaktır. Protokol, mikrokuyu plaka teknolojisini kullanarak belirli boyutlarda EB'lerin oluşturulmasını uygular. İmmünositokimya ve ters transkripsiyon polimeraz zincir reaksiyonu (RT-PCR) ile RPE'nin protein ve gen belirteçlerini tanımlama yöntemleri de açıklanmaktadır. Son olarak, RPE belirteçlerinin floresanla aktive edilen hücre sıralama (FACS) analizi ile izlenen farklı EB boyutlarındaki farklılaşmanın etkinliği açıklanmaktadır. Bu teknikler, gelecekteki uygulamalar için iPS hücrelerinin RPE'ye farklılaşmasını kolaylaştıracaktır.

Giriş

Uyarılmış pluripotent kök (iPS) hücreleri dış faktörlerin 1 yetişkin hücrelerinin yeniden programlanması türetilen pluripotent kök hücrenin bir türüdür. Bunun aksine, embriyonik kök hücrelerin (EKH), pluripotent kök hücrenin başka bir tip blastosist 2-3 iç hücre kitlesi elde edilmiştir. Farklı kökenlerden rağmen, iPS hücreleri ve EKH in vitro ve herhangi bir hücre tipine 4-5 içine ayırt etme kapasitesinde çoğaltmak için onların sınırsız kapasite karşılaştırılabilir. IPS hücrelerinin bu özellikleri onları kişiselleştirilmiş rejeneratif tıp uygulamaları için ideal bir aday olun. Son araştırma çabaları retina pigment epiteli (RPE), 6-11 dahil olmak üzere özel yetişkin hücreleri üretmek için sağlam farklılaşma protokolleri geliştirmeye odaklandık.

IPS türetilen hücrelerin potansiyel klinik uygulamaları için, belirli bir hücre tipi için yönlendirilmiş bir farklılaşma gereklidir. Çeşitli yöntemler vardıronların verimlilik 6-7, 12-16 büyük ölçüde değişir RPE içine hem EKH ve iPS hücrelerinin yönettiği farklılaşması için yayınladı. Biz hala geliştirme veya farklılaşması sırasında hücre / doku kaderi yöneten moleküler olayların pek bilmiyorum. Son yıllarda, çabalar mümkün olduğunca embriyonik gelişimini taklit edebilir farklılaşma protokol geliştirmek için girişimlerde bulunulmuştur. Blastosist aşamasında, kök hücrelerin kaydedilmemiş nüfusu üç boyutlu mikroçevresinin birlikte bulunmaktadır. Yani, çeşitli stratejiler araya ESC / iPS hücrelerini yapmak ve üç boyutlu onları büyümeye uygulanmıştır. Bu kök hücre agrega embriyoid organları (EBS) denir. Çalışmalar kök hücrelerin EB farklılaşma embriyo gelişiminin erken evre taklit ve kendiliğinden onun dış yüzeyinde ilkel endoderm neden olduğunu göstermiştir. EB gelişme ilerledikçe sonra, her üç germ soylarının farklılaştırılmış hücre fenotipleri 17-18 görünür. Therefore, EBS tabanlı farklılaşma protokolleri ESC / iPS hücrelerinin in vitro farklılaşması için dikkat çekti ve pluripotent kök hücrelerinden 13 den RPE nesil için iyi bir aday olduğunu var.

EBS ESC / iPS hücrelerinden çeşitli yöntemlerle yapılabilir. Başlangıçta, EBS yapışkan koloniler kazıma ve yapışmayan süspansiyon kültürü içinde muhafaza edilerek yapılmıştır. Ancak, bu yaklaşım, düşük tekrarlanabilirlik neden EBS heterojen nüfus verir. Asma damla hücre kültürü ve mikro temelli EBS formasyonu oldukça tekrarlanabilir tanımlanan boyutlarda homojen EBS verim EBS oluşumu için diğer popüler teknikler vardır. Ayrıca, mikro tekniği daha az çaba ile agreganın çok sayıda elde edebilirsiniz.

EBS içindeki hücrelerin farklılaşması dışı ve hücre içi mikroçevreden morfojenik ipuçları bir multiplex tarafından düzenlenir. Bir mon farklılaşma aksineolayer biçimi, EBS hücrelerin karmaşık montaj ve 17 oluşmasına arası sinyalizasyon için bir platform sağlar. İlginç bir şekilde, tek tek EBS yapmak için kullanılan pluripotent kök hücre sayısı hücrelerin kaderini etkileyen gözlenmiştir. 1000 hücre EB eritroid soy 20 doğru itilir ise, örneğin, insan EKH bir hematopoietik farklılaşma çalışmada 500 hücre EB myeloid doğru farklılaşmasını teşvik ettiği görülmüştür. Bir başka çalışmada, küçük EBS nöro-ektoderm farklılaşma 11, 17 doğru terfi büyük EBS ise endoderm farklılaşma tercih.

Bu geçmiş çalışmalar kuvvetle bireysel EBS yapmak için kullanılan ESC / iPS hücrelerinin sayısı herhangi bir hücre tiplerine farklılaşma esaslı EBS etkilediğini göstermektedir. Ancak, bildiğimiz kadarıyla, RPE doğru ayırt etmek eğiliminde EBS büyüklüğü etkisini aydınlatılamamıştır var hiçbir geçerli çalışmalar vardır. Bu çalışmanın amacı etkisini karakterize etmekRetina pigment epiteli (RPE iPS-) farklılaşma ve RPE soy yönelik farklılaşması için EBS yapmak için en uygun hücre sayısını belirlemek için - uyarılmış pluripotent kök (iPS) hücreleri üzerine EB boyutu.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Protokol

Kültür Reaktifler ve Kültür Plakaların hazırlanması 1.

  1. Kök hücre bazal ortamı, 400 ml 5x serumsuz ek 100 ml ilave etmek suretiyle besleyici içermeyen kök hücre kültür ortamı hazırlayın. Orta 2 haftaya kadar 4 ° C 'de 6 ay boyunca -20 ° C' de stabildir.
  2. Rho-bağlantılı sarmal bobin ihtiva eden bir protein kinaz (Rock) inhibitörü (Y-27362) için ticari olarak temin edilebilen embriyoit gövdesi (EB) oluşumu ortamı içinde 10 uM çözeltisi ekleyin.
  3. (Dulbecco Modifiye Eagle Ortamı / Besin Karışımı, F-12, 0.1 mM β-merkaptoetanol, 0.1 mM esas olmayan amino asitleri, 2 mM L-glutamin,% 10 nakavt serum yerine (KSR) ve 10 ug / ml gentamisin ilave edilerek DMEM farklılaşma ortamı hazırlayın / F12).
  4. 1x N1 takviyesi, 0.1 mM esas olmayan amino asitleri, 250 ug / ml taurin, 13 ng / ml triiyodo-L-tironin sodyum tuzu, 20 ng / ml hidrokortizon, 5 ug / ml gentamisin ve% 15 eklenmesi ile iPS RPE orta hazırlayın fetal sığır serumu (FBS) Minimum Essential Orta Kartalı (MEM) 21. PH'ı 7.4'e ayarlayın.
  5. Triiyodo-L-tironin sodyum tuzu stok çözeltisi hazırlayın. Hafifçe dönen 1 N sodyum hidroksit içinde triiyodo-L-tironin sodyum tuzu, 1 mg eritin. MEM 49 mi triiyodo-L-tironin sodyum tuzu ve 50 ml 20 ug / ml yapmak için ekleyin. Alikotları hazırlayın ve gerektiği kadar -20 ° C'de donar. Son kültür ortamı içinde arzu edilen konsantrasyon elde etmek için uygun bir hacim kullanın.
  6. Hidrokortizon stok çözeltisi hazırlayın. Hafif çalkalama ile% 100 etanol içinde 1 ml hidrokortizon, 1 mg çözünürleştirilir. MEM 19 mi, 20 ml hidrokortizon stok çözeltisi ug / ml 50 yapmak için ekleyin. -20 ° C'de kısım ve donma kadar gerekli. Son kültür ortamı içinde arzu edilen konsantrasyon elde etmek için uygun bir hacim kullanın.
  7. DMEM / F12 içinde 1 mg / ml dispase bir çalışma çözeltisi hazırlayın.
  8. Matris kaplı plakaların hazırlanması
    1. Engelbreth-Holm-Swarm (EHS) çıkarılan protein matrisi mou hazırlayın0.08 mg / ml DMEM / F12 içinde se sarkoma hücreleri. Kat matris solüsyon içerisinde 1 ml, 6 gözlü bir plakanın her bir oyuğa. 1 saat boyunca oda sıcaklığında kaplanmış inkübe edin.
    2. 1 saat inkübe edildikten sonra, fazla DMEM / F12 aspire. Kuyular kurumasını önlemek için besleyici içermeyen kök hücre kültür ortamı, 0.5 ml ilave edilir. matris kaplı plakalar kullanıma hazırdır.
  9. DMEM / F12 içinde 2 ml her bir durulanarak, mikro plakalar hazırlayın. DMEM / F12 çıkarın ve her bir Rock inhibitörü ile takviye edilmiş EB formasyonu sıvısının 0.5 ml ilave ediniz. 5 dk herhangi bir hava kabarcıklarını çıkarmak için 2.000 xg'de plaka santrifüjleyin.
  10. Fosfat tamponlu tuzlu su (PBS) içinde bir sodyum azid% 2 FBS karıştırılarak FACS boyama tamponu hazırlayın ve% 0.09. PH 7.4 tampon ayarlayın.
  11. DMEM / F12,% 10 FBS eklenerek tripsin nötralize çözelti hazırlayın.

2. iPS Kültür

  1. IPS hücre tohumlama öncesinde, sıcak besleyici içermeyen kök hücre kültürü 37 ° C, orta, ve ma vartrix plakaları hazır kaplı.
  2. Hızlı bir şekilde 37 ° C su banyosu içinde IMR90-1 iPS hücrelerini eritin. Daha sonra su banyosundan cryo-flakon çıkarın ve% 70 etanol ile şişeyi silin. Hücre kümeleri kırılmasını en aza indirmek için 2 ml'lik bir pipet kullanarak 15 ml konik bir tüp hücre transfer edin.
  3. Damla damla hücrelere sıcak besleyici içermeyen kök hücre kültür ortamı 5 ml ekleyin ve hafifçe karıştırın. Oda sıcaklığında 5 dakika boyunca 300 x g'de santrifüj hücreler çıkartıldı ve süpernatan.
  4. Dikkatle besleyici içermeyen kök hücre kültür ortamının 2 ml hücre kümeleri tekrar süspansiyon ve matris ile kaplanmış bir levhanın gözleri içine hücre kümeleri tohum. % 5 CO2,% 95 nem ile 37 ° C inkübatör içine plaka koyun.
  5. Günlük iPS hücre kültürü ortamı değiştirin. Tohumlama sonrası farklılaşmamış koloniler 5-7 gün gözlemleyin. Bir ışık mikroskobu altında geçit (yoğun merkezi koloniler) için hazır farklılaşmamış koloniler için kontrol edin.

IPS hücrelerinin 3. Pasajlanması

  1. Başlangıçta önce geçide iPS hücreleri, su banyosu içinde 37 ° C Dispase çözeltisi, DMEM / F12 ve besleyici içermeyen kök hücre kültür ortamı ısıtın.
  2. IPS hücrelerini pasaj önce, bölgeyi kazıma ve orta aspire farklılaşma herhangi alanları kaldırmak. Dikkatle 2 ml DMEM / F12 ile iPS hücrelerini durulayın.
  3. / Ml dispaz her bir kuyucuğa 1 mg 1 ml ilave edilir ve 7 dakika için 37 ° C'de inkübe edin. Dispaz aspire ve yavaşça DMEM / F12, iki kez 2 ml hücre kolonileri yıkayın. Durulamadan sonra, her bir kuyucuğa besleyici içermeyen kök hücre kültür ortamının 2 ml ilave ediniz.
  4. 5 ml'lik bir pipet kullanarak hafifçe hücre kümeleri oluşturmak için plaka koloniler kazımak. 15 ml konik tüp müstakil hücre kümeleri aktarın. Hücrelerin sonraki geçişini tohum yeterli besleyici içermeyen kök hücre kültür ortamı ekleyin.

Microwell Plakaları kullanma EBS 4. Nesil

  1. IPS hücrelerinin tek bir hücre süspansiyonu hazırlanması
    1. Mediu'yu kaldıriPS hücrelerinden m DMEM / F12 içinde 2 ml iPS hücrelerini yıkayın. 6 gözlü bir plakanın her bir de iPS hücreleri Accutase 750 ul ekle. Hücreler plakasına (yaklaşık 5-10 dakika) ayrılmasını sağlamak için izin vermek için 37 ° C'de ve% 5 CO2 ile inkübe hücreleri.
    2. Yavaşça kalan hücreleri ayırmak için bir pipet kullanın ve plaka yüzeyinde kalan hücreleri ayırmak için. 50 ml'lik bir konik tüp hücreleri aktarın. DMEM / F12, 5 ml plaka durulayın ve konik bir tüp içinde hücreler ile yıkandı, DMEM / F12 birleştirir. Olası kalıntı hücre kümeleri kaldırmak için bir 40 mikron hücre süzgecinden hücre süspansiyonu geçirin.
    3. Accutase çıkarmak için oda sıcaklığında 5 dakika boyunca 300 x g'de hücreleri santrifüjleyin. Hücre yoğunluğu yaklaşık 0.5-1.0 x 10 7 hücre / ml olacak şekilde EB formasyonu ortamında hücre pelletini.
    4. Tripan mavi ve bir hemositometre ile hücre sayımı yolu ile yaşayan hücrelerin sayısını belirlemek.
  2. Adjustinmikro g hücre yoğunluğu boyutu kontrollü EBS oluşturmak üzere
    1. İstenen EB boyutları oluşturmak için bir mikro tablanın her bir çukuruna hücre sayısını ayarlar. Eşit hafifçe hücreler birkaç kez pipetleme hücreleri dağıtmak, adım 1.9 hazırlanan levhaların mikro hücreleri ekleyin.
      NOT: kuyu başına mikro EB sayısı x başına hücre kuyu başına gereken hücrelerin sayısı = istenilen sayı.
    2. 2.0 ml 'lik bir son hacme kuyu kaya inhibitörü ile takviye edilmiş EB formasyonu orta ayarlayın. Yavaşça her pipetleme iyi hücreleri yeniden dağıtın. 3 dakika boyunca 100 x g'de mikro plakaları santrifüjleyin. % 5 CO2 ve 24 saat için% 95 nem ile 37 ° C'de bir kuluçka makinesi içinde plakaları yerleştirin.
  3. Mikro plakalardan Hasat EBS
    1. Iyi EBS çoğunun çıkması için 1 ml mikropipetöre ile yukarı ve aşağı orta pipetleme mikro Hasat EBS. Bir ters 40 mikron hücre yoluyla EB süspansiyon geçmek50 ml'lik konik bir tüp üzerine süzgeç tek hücreler ayıklandı.
    2. Tüm EBS kaldırmak için DMEM / F12 içinde 1 ml bir mikro oyuk plaka 5 kez yıkayın. Yıkar toplayın ve ters hücre süzgecinden geçmek. Yeni 50 ml konik tüp kadar hücre süzgecinden sağ tarafını çevirin. EB formasyonu ortam ile yıkanarak EBS toplayın. Verimi belirlemek için EBS sayın.

5. Kaplama EBS ve başlatılıyor Farklılaşma

  1. <1,000 EBS / yoğunluğunda iyi EB formasyonu ortamı artı 10 uM Kaya inhibitörü (adım 1.8.1 gibi), altı gözlü levha üzerinde kaplanmış protein matrisi üzerindeki EBS Plate. % 5 CO2 ve 24 saat için% 95 nem ile 37 ° C'de EBS inkübe edin.
  2. 24 saat EB sonra kaplama, farklılaşma başlatmak için farklılaşma ortamı ile değiştirin. Hücreler, daha fazla analiz için toplanır kadar her gün farklılaştırma ortamının yarısı değiştirin.
  3. RT-PCR yapmak için günde 6, 17, 29 ve 60 ° C'de örnekleri toplamak, immunocytochemistry ve FACS karakteristik RPE genlerin ve proteinlerin ifadesini doğrulamak için.

6. RNA ekstraksiyonu ve PCR

  1. Piyasada mevcut kit verilen talimatlara göre EB örneklerinden RNA ayıklayın. Bir spektrofotometre kullanılarak RNA konsantrasyonunu belirlemek.
  2. CDNA ters transkript kiti piyasada mevcut RNA göre toplam RNA 100 ng ters transkripsiyon gerçekleştirin.
  3. CDNA 10 umol / 10 ng bir konsantrasyonda cDNA 10 ng, aşağıdaki primerler kullanılarak (Tablo 1) ile PCR yapın. Aşağıdaki gibi PCR ayarlayın: 5 dakika boyunca 95 ° C 'de DNA'yı denatüre, 72 ° C'de bir son döngü, ardından 30 saniye, 1 dakika için 72 ° C için 15 saniye boyunca 95 ° C' de 35 döngü 60 ° C yükseltmek 10 dakika işleme sokuldu. Bir% 1 agaroz jeli üzerinde PCR ürünü çalıştırın.

7. İmmünositokimya

  1. Oda sıcaklığında PBS ile iki kez EBS yıkayın. % 4 paraformald RT EBS saptamak10 dakika boyunca ehyde. Oda sıcaklığında bir kez PBS ile yıkayın. 4 ° C de PBS içinde mağazası örnekleri boyama için kullanılana kadar.
  2. Boyama gününde, tespit ve permeabilization reaktifler ile sabit hücreler tedavi. Oda sıcaklığında 1 saat boyunca (permeabilizasyon çözeltisi içinde% 10 keçi serumu) bloke etme çözeltisi ile inkübe edin.
  3. Belirtilen seyreltmelerde aşağıdaki birincil antikorlar kullanılarak permeabilizasyon çözeltisi içinde% 10 keçi serumu immunokimya yapın: Anti-Pax6 (01:10), anti-RX (1: 200), anti-MITF (01:30), ve anti- ZO1 (1: 100). 4 ° C 'de antikor O / N karşılık gelen örnekleri inkübe edin.
  4. Bir sonraki gün, hücreler birinci antikorları ayıklamak ve PBS ile numuneleri üç kez yıkayın. Oda sıcaklığında 1 saat süre ile florofor-konjuge sekonder antikor ile inkübe edin.
  5. Hücrelerinden ikincil antikoru çıkarın ve PBS içinde numuneleri üç kez yıkayın. Kapak montaj ortamı içeren DAPI ile cam slaytlar fişleri monte ve örnekler karanlık odasında O / N ayarlamanıza olanak verir.Lekelenmeye görselleştirmek için bir floresan mikroskop kullanın.

FACS Analizi 8. Boyama

  1. PBS içinde iki kere kültür EBS yıkayın. Tek bir hücre süspansiyonu yapmak için 5-10 dakika boyunca% 0.25 tripsin, 0.5 ml EBS inkübe edin. Tripsin nötrleştirme çözeltisi ile tripsin (1 ml / çukur) nötralize.
  2. 10 dakika boyunca 600 x g'de 15 ml konik bir tüp ve santrifüj ile tek bir hücre süspansiyonu aktarın.
  3. Süpernatantı atın ve tüp hücrelere DMEM / F12 10 ml ekleyin. Yavaşça hücreleri karıştırmak için ters. 600 x g'de santrifüj. Santrifüj işleminden sonra, süpernatan atılır ve FACS lekeleme tampon maddesi içinde tekrar süspansiyon hücreleri.
  4. Hücrelerin toplam sayısını sayın. 10 dakika boyunca 600 x g'de santrifüjleyin. Santrifüj atmak süpernatant sonra. Hemen% 4 paraformaldehid, 0.5 ml ekleyerek hücreleri saptamak. Nazik vorteks ile iyice karıştırın. 20 dakika boyunca 4 ° C'de inkübe hücreleri.
  5. 10 dakika için 600 xg'de santrifüj ve kaldırmaksüpernatant. Vortex hafifçe hücre pelet bozacak. Soğutulmuş permeabilizasyon çözeltisi 1 ml ilave etmek suretiyle hücre geçirgenliği. Girdap, yavaşça karıştırın ve 30 dakika boyunca buz üzerinde inkübe edilmeye.
  6. 10 dakika için 600 xg'de Santrifüj ve süpernatant kaldırmak. FACS tampon boyama ve tekrar süspansiyon 3 ml ekleyin. Bir kez daha bu adımı tekrarlayın. 5 x 10 6 hücre / ml'lik bir nihai konsantrasyonda, FACS lekeleme tampon maddesi içinde tekrar süspansiyon hücreleri.
  7. Her bir mikrofüj tüplerine hücre süspansiyonu (0.5 x 10 6 hücre), 100 ul aktarın ve birincil antikor tavsiye edilen hacim ekleyin. Pax6, hücre süspansiyonu 100 ul PE karşıtı Pax6 5 ul ilave edin. MITF, hücre süspansiyonu 100 ul anti-MITF 5 ul ilave edin.
  8. Karıştırın ve 60 dakika boyunca oda sıcaklığında inkübe edilir. FACS lekeleme tampon maddesi 3 ml ilave edilir. 10 dakika için 600 xg'de karıştırın ve santrifüj. Süpernatantı ve iki ek kez 8,16 tekrarlayın.
  9. MITF boyama için, ikincil Antibo hücreleri inkübedy, 1 bir seyreltme keçi anti-fare Alexa Fluor 488: 4 ° C 'de 1 saat süre ile 2000. Pax6 boyama için, bu adımı kaçının.
  10. 10 dakika boyunca 600 x g'de, FACS lekeleme tampon maddesi ve santrifüj 5 ml hücreleri yıkayın. Iki kez bu işlemi tekrarlayın.
  11. Hücre pelet bozmaya hafifçe FACS boyama tampon ve vorteks 500 ul hücrelerin tekrar. Numuneler akım sitometri analizi için hazırız.

9. IPS-RPE İzolasyon ve Kültür

  1. Günün 29 at, dikkatli bir 200 ul pipet kullanarak kültür plaka seçilen pigmentli koloniler etrafında kesti. 15 ml konik tüp yüzen koloniler aktarın. Oda sıcaklığında 10 dakika boyunca 600 x g'de santrifüj koloniler çıkartıldı ve süpernatan.
  2. 10 dakika boyunca 600 x g'de DMEM / F12 ve santrifüj 10 ml hücre kolonileri yeniden süspanse. Süpernatantı.
  3. 7-10 dakika boyunca 37 ° C'de% 0.25 tripsin ve 2 ml koloniler inkübe edilerek, tek bir hücre süspansiyonunun hazırlanması. Yavaşça koloniler ayırmak için hücre süspansiyonu vorteks.
  4. IPS-RPE orta 2 ml ekleyerek tripsin nötralize eder. 10 dakika için 600 xg'de Santrifüj ve süpernatant atın. IPS-RPE orta 2 ml bir tekrar süspansiyon hücreleri. 37 ° C,% 5 CO2 ve% 95 nem ile bir kuluçka makinesi içinde bir protein matrisi kaplanmış 6-yuvalı plaka ve yeri içine hücreleri aktarın.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

Bu deneyde, iPS hücreleri kültüre ve EBS gelen RPE soy içine ayırt. Kontrol boyutlarda EBS mikro plakalar kullanılarak oluşturulmuştur. Şekil 1, EB oluşumu görüldüğü gibi, mikro plakalar içinde homojen olduğu görülmüştür. Bu EBS sonra, (Şekil 2), toplandı ve 6-delikli plakalar üzerine plakalandı.

RPE RPE işaretlerinin da klasik altıgen morfolojisi, pigmentasyon ve ifade ile tespit edilebilir. 12 haftalık kültür sonrası, 200 hücre EBS astrosit ve fibroblast m...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

Hücre tedavisi için pluripotent kök hücrelerin tam söz gerçekleştirilmesi için, tutarlı ve tekrarlanabilir bir şekilde kendi farklılaşma atılması için gereklidir. Bu rapor, mikro plaka teknolojisini kullanarak boyutu kontrollü EBS oluşturan RPE doğru farklılaşma başlatmak ve RPE protein ve gen göstergeleri tanımlamak için protokolleri açıklar. In vitro olarak farklılaşma senkronize etmek için, EBS homojen boyutları zorunlu agregasyonu mikro plakalara santrifüj iPS hücrelerinin bilinen numaraları ile oluşturulmu...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

Yazarların açıklayacak hiçbir şeyi yoktur.

Teşekkürler

Burada yer alan görüşler veya iddialar yazarların özel görüşleridir ve resmi olarak veya Ordu Bakanlığı veya Savunma Bakanlığı'nın görüşlerini yansıttığı şeklinde yorumlanmamalıdır. Bu araştırma, yazarlar Alberto Muñiz, Ramesh R Kaini, Whitney A Greene ve Jae-Hyek Choi'nin USAISR'de Ulusal Araştırma Konseyi Doktora Sonrası Araştırma Görevlisi olarak görev yaptıkları sırada gerçekleştirilmiştir. Bu çalışma ABD Ordusu Klinik Rehabilitasyon Tıbbı Araştırma Programı (CRMRP) ve Askeri Operasyonel Tıp Araştırma Programı (MOMRP) tarafından desteklenmiştir.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
mTeSR1 ortamı + 5x takviyeKök Hücre Teknolojileri5850
Y-27632 (Kaya İnhibitörü)Kök Hücre Teknolojileri72304
DMEM/F12Yaşam Teknolojileri11330-032
2-MerkaptoetanolSigmaM-7154
Esansiyel olmayan amino asitlerHyclone(Fisher)SH30853.01
Nakavt serum replasmanıYaşam Teknolojileri10828-028
Gentamisin Yaşam Teknolojileri15750-060
L-GlutaminYaşam Teknolojileri25030-081
MEM ortamıYaşam Teknolojileri10370-021
N1 takviyesiSigmaN-6530-5ML
TaurinSigmaT-8691-25G
HidrokortizonSigmaH0888-1G
Fetal sığır serumHipon (Fisher) SH3008803HI
Triiyodo-L-tironin sodyum ve nbsp; tuzSigmaT6397
Sodyum hidroksitSigmaS5881
DispaseYaşam Teknolojileri17105-041
MatrigelBD Biosciences354277
Fosfat tamponlu tuzlu suHidroklonu (Fisher)10010-023
Aggrewell 400 plakaKök Hücre Teknolojileri27940
AggreWell ortaKök Hücre Teknolojileri5893
AccutaseKök Hücre Teknolojileri7920
BD Cytofix/Cytoperm Fiksasyon/Geçirgenleştirme KitiBD Biosciences554714
Fare Anti-PAX6 antikoruGelişimsel Çalışmalar Hibridoma Bankası
Tavşan Anti-RX antikoruAbcamAb23340
Fare  Anti-MITF antikoruThermo ScientificMS-772-P
Tavşan Anti-ZO-1 antikoruInvitrogen40-2200
RNeasy plus mini kitQiagen74134
PCR ana karışımıPromegaM7502
Yüksek kapasiteli RNA - cDNA kitiYaşam Teknolojileri4387406

Kaynaklar

  1. Takahashi, K., et al. Induction of pluripotent stem cells from fibroblast cultures. Nat Protoc. 2 (12), 3081-3089 (2007).
  2. Reubinoff, B. E., et al. Embryonic stem cell lines from human blastocysts: somatic differentiation in vitro. Nat Biotechnol. 18 (4), 399-404 (2000).
  3. Thomson, J. A., et al. Embryonic stem cell lines derived from human blastocysts. Science. 282 (5391), 1145-1147 (1998).
  4. Takahashi, K., Yamanaka, S. Induction of pluripotent stem cells from mouse embryonic and adult fibroblast cultures by defined factors. Cell. 126 (4), 663-676 (2006).
  5. Yu, J., et al. Induced pluripotent stem cell lines derived from human somatic cells. Science. 318 (5858), 1917-1920 (2007).
  6. Buchholz, D. E., et al. Derivation of functional retinal pigmented epithelium from induced pluripotent stem cells. Stem Cells. 27 (10), 2427-2434 (2009).
  7. Ukrohne, T. U., et al. Generation of retinal pigment epithelial cells from small molecules and OCT4 reprogrammed human induced pluripotent stem cells. Stem Cells Transl Med. 1 (2), 96-109 (2012).
  8. Subba, R. M., Sasikala, M., Nageshwar, R. D. Thinking outside the liver: induced pluripotent stem cells for hepatic applications. World J Gastroenterol. 19 (22), 3385-3396 (2013).
  9. Yoshida, Y., Yamanaka, S. iPS cells: a source of cardiac regeneration. J Mol Cell Cardiol. 50 (2), 327-332 (2011).
  10. Mak, S. K., et al. Small molecules greatly improve conversion of human-induced pluripotent stem cells to the neuronal lineage. Stem Cells Int. 2012, 140427(2012).
  11. Bauwens, C. L., et al. Control of human embryonic stem cell colony and aggregate size heterogeneity influences differentiation trajectories. Stem Cells. 26 (9), 2300-2310 (2008).
  12. Cour la, M., Tezel, T. The Retinal Pigment Epithelium. Advances in Organ Biology. 10, 253-273 (2006).
  13. Vaajassari, V., et al. Toward the defined and xeno-free differentiation of functional human pluripotent stem cell-derived retinal pigment epithelial cells. Mol Vis. 17, 558-575 (2011).
  14. Carr, A. J., et al. Protective effects of human iPS-derived retinal pigment epithelium cell transplantation in the retinal dystrophic rat. PLoS One. 4 (12), e8152(2009).
  15. Muniz, A., et al. Retinoid uptake, processing, and secretion in human iPS-RPE support the visual cycle. Invest Ophthalmol Vis Sci. 55 (1), 198-209 (2014).
  16. Meyer, J. S., et al. Modeling early retinal development with human embryonic and induced pluripotent stem cells. Proc Natl Acad Sci U S A. 106 (39), 16698-16703 (2009).
  17. Bratt-Leal, A. M., Carpenedo, R. L., McDevitt, T. C. Engineering the embryoid body microenvironment to direct embryonic stem cell differentiation. Biotechnol Prog. 25 (1), 43-51 (2009).
  18. Kurosawa, H. Methods for inducing embryoid body formation: in vitro differentiation system of embryonic stem cells. J Biosci Bioeng. 103 (5), 389-398 (2007).
  19. Itskovitz-Eldor, J., et al. Differentiation of human embryonic stem cells into embryoid bodies compromising the three embryonic germ layers. Mol Med. 6 (2), 88-95 (2000).
  20. Ng, E. S., et al. Forced aggregation of defined numbers of human embryonic stem cells into embryoid bodies fosters robust, reproducible hematopoietic differentiation. Blood. 106 (5), 1601-1603 (2005).
  21. Maminishkis, A., et al. Confluent monolayers of cultured human fetal retinal pigment epithelium exhibit morphology and physiology of native tissue. Invest Ophthalmol Vis Sci. 47 (8), 3612-3624 (2006).
  22. Maintenance of hESCs and hiPSCs. mTESR1 and mTESR2. , Stem Cell Technologies. Available from: http://www.stemcell.com (2010).
  23. The Analysis of DNA or RNA using its wavelengths: 230 nm. 260 nm. 280nm.. About Biotechnology. 230, Available from: http://archive.today/0qTh (2013).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Etiketler

İndüklenmiş Pluripotent Kök HücrelerEmbriyoid Gövde OluşumuMikrokuyu Plaka TeknolojisiYönlendirilmiş DiferansiyasyonİmmünositokimyaRT-PCR AnaliziFloresan Aktivasyonlu Hücre AyıklamaRPE Markör EkspresyonuHücre Kültürü İnkübasyonu
Embriyoid Kuruluşlarının Farklı Boyutları tarafından uyarılmış pluripotent kök gelen Retina pigment epiteli (RPE) türetilmesi (iPS) Hücreler
Bize Ulaşın
Kütüphaneye Öner

Gizlilik

Kullanım Koşulları

Politikalar

Telif Hakkı © 2026 MyJoVE Corporation. Tüm hakları saklıdır.