Yöntem makalesi

Bir Proteoliposome Tabanlı effluks Deney Cl Tek-molekül Properties belirleme - Kanallar ve Nakliyeciler

DOI:

10.3791/52369

⸱

20 Nisan 2015

 , 
1Department of Anesthesiology, Weill Cornell Medical College, 2Department of Physiology and Biophysics, Weill Cornell Medical College, 3Department of Biochemistry, Weill Cornell Medical College

Bu makalede

Özet

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Proteolipozomlar, iyi tanımlanmış bir biyokimyasal ortamda yeniden oluşturulan saflaştırılmış kanalları ve taşıyıcıları incelemek için kullanılır. Bu proteinlerin aracılık ettiği akışı ölçmek için deneysel bir prosedür gösterilmiştir. Sulandırılmış proteinin fonksiyonel özelliklerini kantitatif olarak belirlemek için proteolipozomları hazırlama, kayıtları gerçekleştirme ve verileri analiz etme adımları açıklanmaktadır.

Özet

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Son 15 yıl, ökaryotlardan olduğu kadar prokaryotik organizmalardan gelen zar proteinlerini de aşırı eksprese etme ve saflaştırma yeteneğinde bir patlama ile karakterize edildi. Bu artış, büyük ölçüde, zar proteinleri hakkında yapısal bilgi elde etmek için yapılan başarılı itici güçten kaynaklanmaktadır. Bununla birlikte, bu proteinleri işlevsel olarak sorgulama yeteneği aynı oranda ilerlememiştir ve genellikle sınırlı kantitatif değere sahip kalitatif tahlillerle sınırlıdır, böylece sağlayabilecekleri mekanik içgörüleri sınırlar. Sulandırılmış Cl-kanallarının veya taşıyıcıların taşıma aktivitesini kantitatif olarak araştırmak için bir tahlil açıklanmaktadır. Tahlil, membran potansiyelini şöntlemek için K+ iyonofor valinomisinin eklenmesini takiben proteolipozomlardan Cl-'nin akış hızının ölçülmesine dayanmaktadır. İstenen protein ile yeniden oluşturulan proteolipozomlardan iyon akışının zaman seyrini takip etmek için iyona duyarlı bir elektrot kullanılır. Yöntem, üniter taşıma hızı, aktif proteinin fraksiyonu ve fonksiyonel birimin moleküler kütlesi gibi yeniden yapılandırılmış proteinin temel özelliklerinin kantitatif olarak belirlenmesine izin verdiği için mekanik çalışmalar için oldukça uygundur. Tahlil ayrıca, sulandırılmış proteini doğrudan inhibe eden/aktive eden küçük moleküllü bileşiklerin etkisini belirlemek ve ayrıca membran bileşiminin veya lipid modifiye edici reaktiflerin modülatör etkilerini test etmek için de kullanılabilir. Mümkün olduğunda, bu yöntem kullanılarak elde edilen sonuçlar arasında doğrudan karşılaştırmanın, elektrofizyolojik yaklaşımlar kullanılarak elde edilenlerle iyi bir uyum içinde olduğu bulunmuştur. Teknik, model sistem olarak CLC tipi bir H+/Cl- değiştirici olan CLC-ec1 kullanılarak gösterilmiştir. Akış testi, herhangi bir Cl ileten kanal / taşıyıcıyı incelemek için kullanılabilir ve minimum değişikliklerle, herhangi bir iyon taşıyan proteini incelemek için uyarlanabilir.

Giriş

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Son iki aşırı ifade eden ve zar nakil proteinleri saflaştırmak için yeteneği önemli ölçüde artmıştır yıllarda: iyon kanalları, birincil ve ikincil taşıyıcıları rutin heterolog sentezleme sistemleri ile olduğu gibi, doğal kaynaklardan saflaştırılır. Bu proteinlerin istikrar, ifade izlemek geliştirmek ve çıkarma kolaylaştırmak ve geliştirmek için yeni yaklaşımlar sürekli 1-5 geliştirilmektedir. Bu teknolojik devrimler da, kendi işlevinin yapısal üsleri anlayışımızı gelişmiş, membran proteinlerinin atom düzeyinde yapısal bilgi patlamasını tetikleyen vesile olmuştur. Buna karşılık, bizim yetenek bazı durumlarda yüksek çözünürlüklü yapısal bilgiler, böylece kantitatif yapı-tabanlı tahminler sınamak için yeteneğini sınırlayan, nitel verilerle fonksiyonel eşlik böylece, aynı oranda artmadı saflaştırılmış proteinlerin fonksiyonel özelliklerini incelemek için. Bu nedenle, gelişme içerisindenicel ve genellenebilir fonksiyonel testlerin t membran proteini fonksiyonu mekanik temellerinin aydınlatılması yönünde önemli bir adımdır.

Kanal, taşıyıcı - Burada kantitatif saflaştınldı ve yeniden Cl anahtar işlevsel özelliklerini belirlemek için kullanılabilecek bir akış deneyi tarif eder. tahlil altında yatan ilkeler taşıma sistemlerinin çeşitli yanı sıra sigara iyon-taşıma proteinlerine jeneralize olabilir. Kanal / büyük Cl mevcudiyetinde taşıyıcıları - - Lipozomlar saflaştırılmış Cı ile yeniden degrade (Şekil 1A, B). Cı - akış bizim durumumuzda, karşı-iyon akışının izin vermek için bir iyonofor ilave edilerek başlatılır K + iyonoforu Valinomycin, Cl tarafından kurulan gerilim şant olan - gradyeni ve K denge potansiyeline ilk membran potansiyeli ayarlanmış + 6,7. T olmadanBir transmembran potansiyeli nesil tarafından engellenir gibi akış oluşur, - o anlamlı net Cl iyonofor'un. - efflux, f 0, aktif protein içermeyen lipozomlar fraksiyonu τ, Cl zaman sabiti: Veri kantitatif iki ölçülebilir parametreler (Şekil 1C) ile tarif edilir. Τ ve f 0 yekpare Cı kaynaktan - taşıma hızı, aktif protein fraksiyonu ve aktif kompleks moleküler kütlesi 8 elde edilebilir. Bilinen yapısı ve fonksiyonu değiştirici - tekniği CLC-EC1, iyi karakterize CLC-tipi H + / Cl ile yeniden proteoliposomes kullanarak burada gösterilmektedir. Bu tahlil kolaylıkla aktivite gerilimi ve / veya ligandların varlığına bağlıdır farklı iyonik seçicilik veya kanallar veya nakliyecilere genelleştirilmiş. Bundan başka, bu deney, küçük moleküller, doğrudan yeniden protein etkileyip etkilemediğini belirlemek için kullanılabilir,Bu bileşiklerin ve nasıl membran bileşimi veya lipid-modifiye reaktifler yeniden kanalların ve taşıyıcıların fonksiyonunu etkileyebilir etkilerini ölçmek için.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Protokol

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. Lipid Preparasyonu

  1. Saydam bir cam tüp içine istenilen miktarda lipit bölmeyin. Kullanım E. E. coli kutuplu lipit özü, ama en lipit bileşimler kullanılabilir. Lipidler toz biçiminde ise, 20 mg / ml 'lik bir konsantrasyona kadar kloroform bunları yeniden süspanse edin. Bütün solvent buharlaşana kadar N2 gazı altında oda sıcaklığında lipitler kurutun.
  2. Pentan lipitleri tekrar ve kloroform kalan izleri kaldırmak için yeniden gaz N 2 akışı kurutun. Kuru bütün solvent çekinceye kadar. Kurutma sırasında, lipid altındaki bir biçim verme yoğun kütle yerine borunun alt üçte birini örtmekte olan eşbiçimli bir film dağıtılır ve böylece tüp hafifçe döndürün.
  3. Sulandırma tamponu içeren bir deterjan ekleme (300 mM KCI, 50 mM sitrik asit, 25 mM K 2 HPO 4, pH 4.5, 35 mM CHAPS) lipidler eritin. Protein CHAPS'tan kötü hoşgörülü ise bu adım için diğer hafif deterjanlar kullanın.
  4. ResuspenBir su banyosu sonikatör kullanarak netlik lipidler d. Kısa (30 sn-1 dk) ile kısa (30 sn-1 dk) bakliyat maksimum güçte su banyosunda sonikatör merkezinde tüp daldırın duraklar. Çözelti berrak hale gelmelidir.
    Not: açıklık son derece elde kullanılan spesifik yağ bileşimine bağlıdır. Da nominal olarak denk lipidler arasında bu adımda bazı partiden partiye değişkenlik, aynı zamanda mümkündür. Kalıntı bulanıklık santrifüjleme ile çıkarılabilir süspansiyonda büyük parçacıklar tarafından ışık saçılımı kaynaklanmaktadır.
  5. 20-60 dakika boyunca oda sıcaklığında yeniden süspansiyon haline lipitler inkübe edin.

2. Proteoliposome Formasyonu

Not: birkaç strateji lipozomlara deterjan çözülmüş protein eklemek için kullanılabilir. CLC-EC1 için diyaliz iyi çalışır ve bu nedenle tercih 6,9,10 bir yöntemdir.

  1. Saflaştırılmış protein ekleyin istenen protein-to-lipid ug o ifade (P / L) oranı ( F proteinine mg / lipid). P / L oranının seçimi deney amacına bağlıdır.
    1. Amaç, ilgi konusu proteinin aktivitesini değerlendirmek yüksek P tekrar oluşturmak için, her lipozom proteininin birden fazla kopyasını içerdiğinden / L ile, sinyali en üst düzeye çıkarmak için. Her bir kesecik ortalama 1 protein ihtiva edecek şekilde aktivitesi ve / veya proteinin üniter nakil oranını ölçmek için, düşük P / L'nin de bir Poisson seyreltme rejiminde sulandırın. Her rejimi kullanmak için ne zaman bir daha derinlemesine analiz için Adım 7 ve Tartışma bakın.
  2. Farklı tedavi rejimleri için uygun P / L değerlerini belirlemek için, protein konsantrasyonu 8,11-13 bir fonksiyonu olarak aktivitesi tam bir titrasyon yapmak. Bununla birlikte, aktif biriminin moleküler ağırlığı (MW kDa olarak belirtilmiştir) için kullanılan herhangi bir protein için, aşağıdaki P / L değerleri ilk guesstimates olarak kullanılabilir bilinmektedir:
    pg "/>
    figure-protocol-1
  3. Önceden ıslatılmış diyaliz tüp veya bir kaset protein ve lipit karışımı yükleyin. 500-1,000x lipit yeniden oluşturma tampon hacmi ihtiva eden bir beher içinde diyaliz cihazı yerleştirin (yani, yağ yeniden süspanse edilmesi için 1 ml 1 L tamponu) hafif karıştırma altında.
    1. Değişim tampon aralıkları> 3 saatte 3-4 kez. Her çözelti, değişiminde, kaset / boru ve damıtılmış su ile beher yıkayın ve taze tampon maddesi ile yeniden oluşturma beher doldurun. Çözelti değişikliği için 1-2 O / N aralıklarını ekleyin. çözüm değişiklikleri tam sayısı ve süresi kullanılan tam lipid ve deterjanlar bağlıdır.
  4. Son adım tamamlandıktan sonra, diyaliz tekneden lipozomlar kaldırmak tüpler onları bölmeyin ve flaş -80 ° C'de sıvı N 2 veya dondurularak onları dondurmak.

3. Kayıt Ayarı

NOT: Kayıt set-up (Şekil 2A) iki odadan (düz tabanlı silindir, ~ 3-4 ml hacimli), bir Cl oluşur - elektrot, bir analog bir pH metre (aşağıya bakınız) dijital elektrik çıkışı, bir sayısallaştırıcı ve uygun bir satın alma yazılımı ile bilgisayar veya.

  1. PH metre elektrodu, bilgisayara bağlı olan sayısallaştırıcıya pHmetrenin çıkışını - Cl bağlayın. Bir odasında referans elektrot ve diğer (Şekil 2B) içinde recoding teli yerleştirin.
    NOT: ΔV Cal pozitif (Adım 6.4 ve 7.2) ise tellerin kutuplarının doğru.
  2. Kayıt odasına (Şekil 1B) ve bir karıştırma çubuğu olan bir karıştırma plakası üzerinde odaları yerleştirin. Karıştırma çubuğu elektrot temas etmediğinden emin olun.
  3. Bir agar köprü (Şekil 2B) (100 mM KCI ve% 2 agar) ile ölçme cihazı. 100 mM KCl Agar köprüleri saklayın.

    4. Cl 4. hazırlanması - Elektrot

    1. Eski ve -possibly- çalışmayan pH elektrodu alın. Tamamen gümüş teller ortaya çıkarmak için cam kaplama kırın.
    2. Dikkatlice neşter bıçak kullanarak gümüş teller kaplama çıkarın. H2, O ve EtOH bol miktarda kullanarak telleri temizleyin.
    3. Teller kadar FeCl3 (ya da ağartıcı) bir doymuş çözeltisi içinde yer AgCİ muntazam bir koyu kaplama ile kaplanmıştır.

    Tek tabakalı veziküller 5. N-

    1. deneyler önceki gece, dış tamponu, 15 ml (1 mM KCI, SO 4, 25 mM sitrik asit, pH 4.5, 150 mM K 2), hafif sallama ile (kımıldamam) içinde Sephadex G-50 taneleri 1 g kabarma Kullanmadan önce oda sıcaklığında en az 3 saat. Her bir deney, şişmiş boncuk ~ 3 ml gerektirir. En fazla birkaç gün 4 ° C'de şişmiş boncuk tutun.
    2. Lipozomlar oda sıcaklığında çözülmesi ederken, her sütun ~ 3 m dökmekşişmiş G-50 taneleri l. Oda sıcaklığında yerçekimi akışı ile onları kuru edelim; Bu genellikle 1-2 dakika sürer.
    3. 0.4 m, teflon kesme kullanarak Mini-ekstruderinden proteoliposomes 11 kes ekstrude tek lamelli kesecikler hazırlanır.
    4. Plastik yuvarlak dipli bir tüp içinde sütun yerleştirin. Fazla çözüm kaldırmak için sütunları Spin. Bir klinik santrifüj cihazında 1400 x g'de 20-30 saniye santrifüjleyin.
    5. 13 x 100 mm cam tüpe akış yoluyla yer sütun atın ve kolona ekstrüde veziküller 100 ul ilave edin. Bir klinik santrifüj cihazında 500 xg'de 1 dakika için sütun dönerler.
    6. Aşama 6.5 kayıt odasına eklenecek akış yoluyla ve ~ 200 ul toplayın.

    6. akış ölçümü

    1. Referans (toprak) bölmesi içinde 100 mM KCl 2 ml ve dış tampon 1.8 ml yerleştirin (1 mM KCI, 150 mM K 2 SO 4, 25 mM sitrik asit, pH 4.5), kayıt odasına. İç arasındaki hafif ozmotik dengesizlikve dış çözümler etkilemez
    2. Satın alma programını başlatın. Bu birkaç dakika sürebilir, temel muvazene edelim.
    3. Sinyal istikrarlı bir temel (lipozomlar hazır ve sütunlar kurumaya) ulaştığında, (Şekil 3A) kaydetmeye başlayın.
    4. Sistem (Şekil 2A) kalibre edilmesi için bir 10 mM KCI çözeltisi 15 ul ekle.
    5. Lipozomlar ekleyin. Proteoliposomes (Şekil 3A) - küçük atlama nedeniyle dış Cl eksik çıkarılması için görünür olabilir. Bazal stabilize kadar bekleyin.
    6. Valinomycin ekleyin (1 mg EtOH / ml 1 ul) akış (Şekil 3A) gerçekleştirmek için kullanılır.
    7. Akış zamanı kursu bu yaylalar kadar (Şekil 3A) çalıştıralım.
    8. Tüm lipozomlar (Şekil 3A), çözünmesi için dış tamponu içinde hazırlanmış 1.5 M β-oktilglükozit (β-RG) 40 ul ekle. Kaydı bitirmek.

    7. Veri Analysis

    1. Bir ASCII veya metin biçiminde gelen izleme dosyası dışa ve seçim analizi programına ithal.
    2. Aşağıdaki noktaları (Şekil 3A) Gerilim ölçün:
      Kaydın başlangıcında (V 0);
      Ayarlama sinyali (V cal) ilave edildikten sonra;
      Lipozomlar (V lipo) ilave edildikten sonra;
      Efflux (V kanat) sonunda;
      Deterjan (V tot) ilave edildikten sonra;
      Temel gerilimler böylece V 0 = 0.
    3. Deneysel değerini belirlemek için, Nernst-Plank denklemi kullanın figure-protocol-2 ölçülerek
      figure-protocol-3
      Nerede Cilt Cal ul kalibrasyon nabız hacmi deneyi ifade başında odası hacmi, 1.800 olduğunu1; - kalibrasyon nabız ve mM dış tampon konsantrasyonları ve ΔV cal kalibrasyon darbesi sonrasında ölçülen mV atlama l [CI] cal / Cl vardır.
      NOT: α Bu ampirik belirlenmesi üç amaca hizmet eder: sistem düzgün yanıt olmasını sağlar, deneyler arasındaki enstrümanın tepki tutarlılık ölçüsü sunuyor yanı sıra hiçbir hata çözüm yapımında yapılmış olduğunu kontrol etmek.
    4. Aşağıdaki gibi her adımdan sonra Cl konsantrasyonları hesaplayın:
      figure-protocol-4
      figure-protocol-5
      figure-protocol-6
      faktör 3/400 2000 ul nihai hacim içinde 15 ul kalibrasyon darbe seyrelmesi gelir.
    5. CalculHer adımda, fin ΔCl lipo / / tot de [Cl] değişiklikleri yedik.
    6. Ile Cl (t) v (t) dönüştürme
      figure-protocol-7
      Doğrudan kritik noktalarda [CI] değerlerini belirlemek ve bir iç kontrol olarak hesaplanan değerler bunları karşılaştırmak.
    7. Iz Normale Cl rel = 0 lipo ve Cl rel tot = 1 böylece
      figure-protocol-8
    8. Aşağıdaki denkleme akış süresi kursu Fit:
      figure-protocol-9
      Deneysel olarak Cl ölçülerek belirlenir sızıntısı - - L Cl oranı olduğu durumda, aynı koşullar ve τ hazırlanan proteinsiz lipozomlardan akışını işleminin zaman sabitidir.
    9. V, ilk hız hesaplayın:

      Nerede ΔCl fin milimolar ifade ve V ul odasının hacmi olduğunu.
    10. Taşıma hızı / iletkenlik hesaplayın
      figure-protocol-10
      P P / L olduğu durumda, molekül ağırlığı aktif kompleks molekül ağırlığı kDa olarak ifade edilen

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Değiştirici, lipozomlar içinde yeniden - saflaştırılmış CLC-EC1, bir prokaryotik CLC-tipi H + / Cl aracılığı taşıma - Biz detaylı ve sağlam Cl ölçmek için protokol açıklar. Deneyin şematik bir temsili Şekil 3 'de gösterilmiştir, saflaştırılmış CLC-EC1 ve yüksek iç Cl ihtiva ile yeniden Proteoliposomes -., Düşük Cl ihtiva eden bir banyo çözeltisine daldırıldığı -. Bu koşullar, net Cl altında - akış lipozom içinde verilebilir (Şekil...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Saflaştırılmış anyon-seçici kanallar veya lipozomlar içinde yeniden taşıyıcıları aracılığı ile ulaşım - Biz detaylı Cl ölçmek için protokol tanımlanmıştır. CLC-EC1 eşanjöre - kullanılan örnek Prokaryotik H + / CI oldu. Söz konusu iyon için uygun biri ile AgCİ elektrot: Ancak, bu yöntemin hali hazırda ligandlar 12,13,15, gerilim 11,12, veya Ag değiştirerek farklı anyonik seçicilik 15,16 spor geçitleri kanalları çalışmaya adapte edilebilir. Elektrotlar Cl b...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Yazarlar herhangi bir rakip mali çıkar beyan etmemektedir.

Teşekkürler

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Bu çalışma, NIH hibe GM085232 ve Irma T. Hirschl/ Monique Weill-Caulier Scholar Award (A.A.'ya) tarafından desteklenmiştir.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
Liposomicator, Avanti Polar Lipidler A.Ş.  Avanti Polar Lipidler A.Ş.610200
IEC Centra CL2 MasaüstüTermo Bilimsel
Orion Araştırma Modeli 701A Dijital pH-mV ölçerBunlar Ebay'de bulunabilir.
İşlevsel olmayan pH probuGümüş telli herhangi bir pH metre probu çalışacaktır. Cam/plastik kaplamanın çıkarılması ve tellerin temizlenmesi gerekir.
DI-710 Veri KaydediciDATAQ cihazları
WinDAQ edinme yazılımıDATAQ cihazları
Pierce Tek Kullanımlık Plastik Kolonlar, Yerçekimi akışlı, 2mlPierce (Thermo Scientific)29922
KIMAX Kültür Tüpleri, Tek Kullanımlık, Borosilikat CamKimble Chase73500-13100
Tutucu/Isıtma BlokluEkstruder SetiAvanti Polar Lipidler A.Ş.610000
Bilgisayar

Kaynaklar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Kawate, T., Gouaux, E. Fluorescence-detection size-exclusion chromatography for precrystallization screening of integral membrane proteins. Structure. 14, 673-681 (2006).
  2. Drew, D., et al. GFP-based optimization scheme for the overexpression and purification of eukaryotic membrane proteins in Saccharomyces cerevisiae. Nat Protocols. 3, 784-798 (2008).
  3. Hattori, M., Hibbs, R. E., Gouaux, E. A fluorescence-detection size-exclusion chromatography-based thermostability assay for membrane protein precrystallization screening. Structure. 20, 1293-1299 (2012).
  4. Almo, S. C., Love, J. D. Better and faster: improvements and optimization for mammalian recombinant protein production. Curr Opin Struct Biol. 26, 39-43 (2014).
  5. Xiao, S., Shiloach, J., Betenbaugh, M. J. Engineering cells to improve protein expression. Curr Opin Struct Biol. 26, 32-38 (2014).
  6. Accardi, A., Miller, C. Secondary active transport mediated by a prokaryotic homologue of CLC Cl- channels. Nature. 427, 803-807 (2004).
  7. Nguitragool, W., Miller, C. Uncoupling of a CLC Cl-/H+ exchange transporter by polyatomic anions. J. Mol. Biol. 362, 682-690 (2006).
  8. Walden, M., et al. Uncoupling and turnover in a Cl-/H+ exchange transporter. J. Gen. Physiol. 129, 317-329 (2007).
  9. Accardi, A., Kolmakova-Partensky, L., Williams, C., Miller, C. Ionic currents mediated by a prokaryotic homologue of CLC Cl- channels. J. Gen. Physiol. 123, 109-119 (2004).
  10. Basilio, D., Noack, K., Picollo, A., Accardi, A. Conformational changes required for H(+)/Cl(-) exchange mediated by a CLC transporter. Nat Struct Mol Biol. 21, 456-463 (2014).
  11. Lee, S. Y., Letts, J. A., MacKinnon, R. Functional reconstitution of purified human Hv1 H+ channels. Journal of Molecular Biology. 387, 1055-1060 (2009).
  12. Terashima, H., Picollo, A., Accardi, A. Purified TMEM16A is sufficient to form Ca2+ activated Cl- channels. Proc Natl Acad Sci U S A. 110, 19354-19359 (2013).
  13. Malvezzi, M., et al. Ca2+-dependent phospholipid scrambling by a reconstituted TMEM16 ion channel. Nature Communications. 4, 2367(2013).
  14. Picollo, A., Malvezzi, M., Houtman, J. C., Accardi, A. Basis of substrate binding and conservation of selectivity in the CLC family of channels and transporters. Nat Struct Mol Biol. 16, 1294-1301 (2009).
  15. Eckford, P. D., Li, C., Ramjeesingh, M., Bear, C. E. Cystic fibrosis transmembrane conductance regulator (CFTR) potentiator VX-770 (ivacaftor) opens the defective channel gate of mutant CFTR in a phosphorylation-dependent but ATP-independent manner. J Biol Chem. 287, 36639-36649 (2012).
  16. Stockbridge, R. B., et al. Fluoride resistance and transport by riboswitch-controlled CLC antiporters. Proc Natl Acad Sci U S A. 109, 15289-15294 (2012).
  17. Menon, I., et al. Opsin is a phospholipid flippase. Curr Biol. 21, 149-153 (2011).
  18. Nimigean, C. M., Miller, C. Na+ block and permeation in a K+ channel of known structure. J Gen Physiol. 120, 323-335 (2002).
  19. Picollo, A., Xu, Y., Johner, N., Bernèche, S., Accardi, A. Synergistic substrate binding determines the stoichiometry of transport of a prokaryotic H(+)/Cl(-) exchanger. Nat Struct Mol Biol. 19, 525-531 (2012).
  20. Tsai, M. F., Fang, Y., Miller, C. Sided functions of an arginine-agmatine antiporter oriented in liposomes. Biochemistry. 51, 1577-1585 (2012).
  21. Heginbotham, L., Kolmakova-Partensky, L., Miller, C. Functional reconstitution of a prokaryotic K+ channel. J Gen Physiol. 111, 741-749 (1998).
  22. Lundbaek, J. A., Collingwood, S. A., Ingólfsson, H. I., Kapoor, R., Andersen, O. S. Lipid bilayer regulation of membrane protein function: gramicidin channels as molecular force probes. J R Soc Interface. 7, 373-395 (2010).
  23. Lim, H. H., Stockbridge, R. B., Miller, C. Fluoride-dependent interruption of the transport cycle of a CLC Cl(-)/H(+) antiporter. Nat Chem Biol. 9, 712-715 (2013).
  24. Stockbridge, R. B., Robertson, J. L., Kolmakova-Partensky, L., Miller, C. A family of fluoride-specific ion channels with dual-topology architecture. Elife. 2, e01084(2013).
  25. Nimigean, C., Shane, T., Miller, C. A cyclic nucleotide modulated prokaryotic K+ channel. J Gen Physiol. 124, 7(2004).
  26. Brohawn, S. G., del Mármol,, J,, MacKinnon, R. Crystal Structure of the Human K2P TRAAK, a Lipid- and Mechano-Sensitive K+ Ion Channel. Science. 335, 436-441 (2012).
  27. Jayaram, H., Robertson, J. L., Wu, F., Williams, C., Miller, C. Structure of a slow CLC Cl-/H+ antiporter from a cyanobacterium. Biochemistry. 50, 788-794 (2011).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya şekillerini yeniden kullanmak için izin iste

İzin iste

Etiketler

Klor r Eflluks AnaliziProteolipozom Rekonstit syonuBirim Ta ma H zyon Hassasiyetli ElektrotValinomisin yonoforuCLC ec1 EksanjeriMembran Potansiyeli antLipozom Ak l myon Ta ma Analizi

İlgili makaleler