Burada murin peritoneal makrofajları izole etmek için basit bir protokolü açıklıyoruz. Bu prosedürü, Toll benzeri reseptörlerin uyarılması üzerine gen ekspresyon analizi yapmak için RNA ekstraksiyonu takip eder.
Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliğiniz gereklidir. Giriş yapın veya ücretsiz denemenizi bugün başlatın.
Yöntem makalesi
Fare Periton Makrofagların izolasyonu Toll-benzeri reseptörler Uyarım üzerine Gen İfadesi Analizi Yapacak
Bu makalede
Özet
Özet
Enfeksiyon ve inflamasyon sırasında dolaşımdaki monositler kan dolaşımına bırakın ve onlar makrofajlar içine ayırt dokulara, göç. Makrofajlar mikroorganizmaların geniş bir yelpazede evrimle korunmuş moleküler şekilleri tanıyan yüzey Toll-benzeri reseptörler (TLR), ifade eder. TLR genellikle gen ekspresyonu değiştirilmesi ile ilişkili makrofaj aktivasyonunda önemli bir rol oynar. Makrofajlar pek çok hastalıkta önemli ve tedavisi için çekici bir hedef olarak ortaya çıkmıştır. Aşağıdaki protokol, bira, tiyoglikolat vasatı kullanılarak sıçan periton makrofajları, izole edilmesi için bir prosedür açıklanmaktadır. İkincisi buna göre bu 10 kat makrofaj verim çıkaracağız, periton içine monosit göçü artıracak. Pek çok çalışma, kemik iliği, dalak veya periton türetilmiş makrofajlar kullanılarak gerçekleştirilmiştir. Ancak, periton makrofajlar izolasyon üzerine daha olgun olduğu gösterilmiştir ve bunların fonksiyonel olarak daha kararlı edildiSığ ve fenotip. Böylece, fare periton boşluğuna izole makrofajlar farklı immünolojik ve metabolik çalışmalarda hizmet verebilir önemli bir hücre popülasyonu sunuyoruz. İzole bir kez, makrofajlar farklı TLR ligandları ile uyarıldı ve dolayısıyla gen ifadesi değerlendirildi.
Giriş
retiküloendotelyal fagositik sistemi, kemik iliği, kan, karaciğer ve dalak gibi çeşitli dokularda ve organlarda hücrelerden oluşmaktadır. Makrofajlar yoğun bunlar, özellikle doğuştan katılmak ve kontrol bağışıklık tepkilerini ve net enfeksiyonları uyarlamalı vücudun etrafında dağıtılır. Host savunmasında rollerine ilave olarak, makrofajlar, yara iyileşmesi ve doku homeostazını 1,2 muhafaza edilmesinde önemli bir rol oynamaktadır. Ayrıca, makrofajlar bağışıklık işlevi sadece önemli değil, aynı zamanda aktif demir homeostazda 3 katılacak. Vücutta demir yaklaşık% 80'i yaşlanmış makrofajlar tarafından fagosite 4 hangi zaman, eritrositler içinde hemoglobin bulunur. Günlük, bu makrofajlar eritrosit kaynaklı demir 25 mg geri dönüşüm ve plazma 5 içine ulaşım sağlamaktadır. Ayrıca, enfeksiyon ve enflamasyon sırasında, pro-inflamatuar makrofajlar demir availabili azaltmak için serum demir çekilmekhem sistemik ve yerel düzeylerde 6-8 patojenlerin için ty. Makrofajlar ve özellikle hepatositler demir metabolizmasının 9, 10 master regülatörü olarak kabul edilir hepsidin adında bir antimikrobiyal peptid üretmek Yanı sıra, çalışmalar göstermiştir. Hepsidin esas inflamatuar uyaranlara artmış ve kronik inflamasyon 11-13 üzerine makrofaj demir haciz kısmen sorumludur. Makrofajlarda hepcidin ifadesi çok iyi anlaşılamamıştır, biz bu yönetmelikte Toll benzeri reseptörler olası rolünü (TLR) okudu. TLR'ler öncelikle makrofajlar üzerinde bulunan ve aktivasyon merkezi bir rol oynarlar. Buna ek olarak, karaciğer LPS kaynaklı Hepsidin sentezleme TLR4 13 bağlıdır. Bu nedenle, çalışma çalıştırmak için, Sıçan peritonal makrofajları izolasyonu dayanan bir yöntem kullanılır.
Makrofaj hücre dizileri genel olarak, makrofaj saplama kullanılanler; yine genişletilmiş kültür geni kaybını kışkırtmak ve bu hücre hatlarında bağışıklık fonksiyonları azalmış olabilir. Bu nedenle, periton boşluğundan makrofajların izolasyonu önemlidir.
Fare periton boşluğu makrofajlar 13-15 hasat için ideal bir siteyi sunuyor. İzole fare periton makrofajlar onların immünolojik fonksiyonu ile ilgili çeşitli çalışmalar için uygundur. Ancak, periton makrofajların sayısı geniş çalışmalar için yetersiz ve fare başına yaklaşık 1 x 10 6 makrofajlar tahmin edilmektedir. Bu nedenle, makrofaj üretimini artırmak için, örneğin tiyoglikolat gibi steril ortaya çıkarma maddesi, hücre hasat Yukarıdaki periton boşluğu içine enjekte edilmiştir. Tiyoglikolat enjeksiyonundan sonra, fare başına makrofajların verimi 10-kat artmıştır. Makrofajlar verim, makrofajlar alımı, MA içinde elde edilen, bir enflamatuvar yanıtı indükleyen bir tahriş edici olarak Brewer, tiyoglikolat vasatı eylemleri artışa rağmeny, ancak gerekli değildir, gen ekspresyonunu etkiler. Bu nedenle, muamele edilmemiş makrofaj oluşan bir kontrol grubudur, her bir deney içinde dahil edilmelidir. Bizim ellerde, çok inflamasyon ile uyarılır hepsidin ifade periton makrofajlar ortaya dışı muamele tiyoglikolatın saptanmadı. Ayrıca, çalışmaların Bira tiyoglikolat sayıda makrofajların, fakat bunlara 16 aktive etmediğini göstermiştir. Öte yandan, Bira tiyoglikolat makrofajlar lizozomal enzim bir artış ancak yutulur mikroorganizmaları öldürme 17 azalma gösterdi ortaya çıkardı. Olmayan tetiklenen makrofajlar 16 ile karşılaştırıldığında, ancak, fagositik kapasitesi etkilenmedi.
Yemekler kültürlenen sonra peritoneal makrofajlar nedenle periton boşluğu izole diğer hücre türünden bunların ayrılmasına izin veren, yapışkan hale gelir. Daha sonra izole edilmiş makrofajlar, farklı TLR agonistleri ile tehdit edildi.Son olarak, mRNA, kültürlenmiş hücrelerden ekstrakte edildi ve gen ekspresyonu kantitatif ters transkriptaz-polimeraz zincir reaksiyonu (qRT-PCR) kullanılarak analiz edilmiştir.
Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.
Protokol
Tüm işlemler Centre de recherche du Centre Hospitalier de l'Université de Montréal kurumsal Hayvan Bakım Komitesi (CRCHUM) tarafından onaylandıktan sonra Hayvan Bakımı yönergelere Kanada Konseyi'ne göre yapıldı.
1. İzolasyon, Kimlik ve Kültür Kemirgen Periton Makrofagların
- % 3.8 bira tiyoglikolat orta hazırlayın. Bunu yapmak için, damıtılmış su içinde 1000 ml tiyoglikolat vasatı içinde 38 g askıya almak için. Tamamen orta çözmek için kaynamaya çözüm getirin. 15 dakika boyunca 121 ° C'de otoklav ile sterilize edin. RT 18 at, karanlıkta 3 aya kadar saklayabilirsiniz.
NOT: Bulanıklık bakteriyel kontaminasyon işaret eden gelişirse atın. Steril tutulması durumunda çözüm karanlıkta bir yıla kadar muhafaza edilebilir. - Her MZ'nin periton boşluğu içine% 3.8 Brewer, tiyoglikolat vasatı 1 ml enjekte edilir, 23 G iğne takılı 1 ml şırınga kullanılarakse 3 gün bekleyin ve. Her fare için yeni şırınga ve iğne kullanın.
- Sodyum pentobarbital (100 mg / kg) intraperitonal enjeksiyonu ile fareler anestezi ve servikal dislokasyon ile farelerin euthanize. Solunum hızı kontrol ederek uygun anesthetization onaylayın. Genellikle hızlı Solunum fare derin anestezi yapılmadan olduğunu göstermektedir.
- % 70 etanol ile her bir farenin karın yıkayın. Bir makas kullanarak, periton alt orta hat boyunca bir yanal kesi yapmak.
- Bir forseps kullanarak, şeffaf periton cilt ortaya çıkarmak için karın cilt geri çekin. 20 G iğne takılı 5 mi şırınga kullanarak, her bir farenin karın boşluğu içine soğuk DPBS 5 ml enjekte edilir.
- Periton boşluğuna üzerinde yumuşak bir masaj yapın ve sonra herhangi bir organı delinmesiyle olmadan dikkatlice sıvıyı aspire. İğneyi çıkarın ve 50 ml konik santrifüj tüplerine periton sıvısı dağıtmak.
- Soğutuculu santrifüj 400 x g'de 10 dakika boyunca santrifüj.Hücreler tüm prosedür sırasında soğuk kalmalıdır. RPMI ortamı 1640 süpernatant ve tekrar süspansiyon hücre pelletini atın.
- Bir hemasitometre kullanarak, hücrelerin sayısı ve 1 x 10 6 hücre / ml hücre yoğunluğuna kadar ayarlayın.
- F4 / 80 karşı fare ve Antikorların başına 1 x 10 6 hücreleri kullanılarak akış sitometrisi ile izole edilmiş hücrelerin fenotipini karakterize (bir yüzey antijeni makrofajlar üzerinde ifade edilir).
2. Hücre Tedavileri
- Doğrudan, izolasyondan sonra, her kuyuya 1 x 10 6 hücre ekleyin. 37 ° C'de 1 saat ila 2 içinde kültürlenmesi ile 6-çukurlu plakalara yapışmaya sıçan periton makrofajları, bırakın. Hafifçe sıcak PBS ile 3 kez yıkanarak yapışmayan hücreler çıkarın.
- Daha sonra, 900 ul serum içermeyen DMEM içinde kültür hücreleri, şu TLR ligandlar varlığında, 24 saat süre ile (Pam3CSK4-TLR1 / 2 (0.5 mg / ml); Poli (I: C) -TLR3 (10 mg / ml) LPS-TLR4 (100 ng / ml); flagellin'e TLR5 (100 ng / ml); FSL1-TLR6 / 2 (100 ng / ml); ssRNA40-TLR7 (1 ug / ml); ODN1826-TLR9 (1 uM).
NOT: Her ligand 10x stok solüsyonu için hazırlayın. Bu şekilde, bir 10-kat seyreltme yapılarak, her bir ikincisi, 100 ul ekle.
3. RNA İzolasyon
- Bir pipet ile birkaç kez her kuyuya, 1 ml Trizol eklenmesi ve hücre lizatı geçen altı oyuklu plakalar içinde doğrudan tüm orta ve lize hücreleri çıkarın. Nükleoprotein kompleksinin tam bir ayrışma izin vermek için, oda sıcaklığında 5-10 dakika boyunca homojenize örnekleri inkübe edin.
- 1.5 ml lizat transfer RNase- ve DNaz içermeyen mikrosantrifüj tüpleri. 1ml TRIzol başına 0.2 ml kloroform ekleyin. 15 saniye boyunca elle kuvvetli bir şekilde tüpleri çalkalanır ve 5-10 dakika boyunca oda sıcaklığında inkübe. 4 ° C'de 15 dakika boyunca 12,000 x g'de santrifüjleyin. Bir düşük değerli kırmızı renkte bir faz (fenol-kloroform) ayrılarak karışımı, bir faz ve renksiz bir üst sulu faz dikkate alınmalıdır. RNA, sulu faz içinde özel olarak kalır.
- Traninterfazda bozmadan, yeni bir tüpe Sfer dikkatle üst akıcı faz. Izopropil alkol, 0.5 ml ile karıştırılarak bu RNA hızlandırabilir. 4 ° C'de 10 dakika boyunca 12,000 x g'de 10 dakika santrifüj boyunca oda sıcaklığında inkübe edin. RNA tüpün yan ve alt beyaz pelet oluşturan çökeltileri.
- Süpernatantı. % 75 etanol içinde bir kez 1 mL RNA pelet yıkayın. 4 ° C'de 5 dakika boyunca 7500 x g'de vorteks ve santrifüj ile örnekleri karıştırın. Kısaca RNA (10 dakika boyunca hava kuru) kurutun. 0.1 mi DEPC (RNaz içermeyen su) içinde RNA eritin ve 55 ° C'de 10 dakika inkübe edilir.
- Bir spektrofotometre kullanılarak RNA niceliğini. Bunu yapmak için numuneler DEPC su içinde 100 kez seyreltilmesi ve 260 nm dalga boyunda okundu. RNA konsantrasyonu daha sonra olacak: OD 260 x 40 ng / ul x seyreltme faktörü.
- RNA konsantrasyonları eşitlemek ve İlk Strand cDNA Sentezi Kit RT-PCR Sistemi kullanılarak üreticinin talimatlarına göre cDNA sentez. Olaraküreticinin talimatlarına göre gerçek zamanlı PCR, bir gerçek zamanlı DNA tespit sisteminde (45 devir) ile gen mRNA seviyelerini ölçer. Örnek β-aktin ve GAPDH için iki temizlik geni ile gen ekspresyon düzeyleri Normale.
NOT: ml 500 ug / RNA konsantrasyonu Normale ve cDNA sentezi için 0.5 ug kullanın.
Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.
Sonuçlar
İlk akış sitometrisi ile izole edilmiş sıçan periton makrofajları, karakterize edilir. Bunu yapmak için, özellikle yalnızca makrofajlar tarafından ifade edilen markerler tanır (F4 / 80) antikorları kullanılmıştır. Bu karakterizasyon izole makrofaj yüzdesini belirlemek için ve izolasyon işlemi sırasında elde edilen hücreler arasında onları ayırmak için gereklidir. (Şekil 1) gösterildiği gibi, hücrelerin yüzdesi F4 / 80 sürekli olarak% 95 üzerinde olduğu tespit edilmiştir antijeni eksprese eden. Daha sonr...
Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.
Tartışma
Makrofajlar hayatta kalmak için çok önemlidir ve immünolojik hedefler için ana işlemek için cazip bir hedef sağlar. TLR ve diğer tanıma moleküllerinin keşfi immünolojik tartışmaların merkezine makrofajlar yaptık. Makrofajlar sitokinler, hasar ile ilişkili molekül model molekülü (DAMPS), 20 ve patojenlerin (PAMPs) 21 grupları ile ilişkili moleküller de dahil olmak üzere çeşitli uyaranlara, yanıt. Bu farklı uyaranlara yanıt makrofaj aktivasyonu seyrini temsil etmektedir ve genellikle gen ekspresyonu ...
Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.
Açıklamalar
Yazarların birbiriyle rekabet eden hiçbir mali çıkarı yoktur.
Teşekkürler
Bu eser Doğa Bilimleri ve Kanada'nın Mühendislik Araştırma Konseyi bir hibe ile desteklenmiştir (NSERC, hayır 298515-2011 hibe). AL doktora almıştır Doğa Bilimleri ve Kanada'nın (NSERC) Mühendislik Araştırma Konseyi ve MS burs (hayır verin. MOP123246 CIHR), Kanada Sağlık Araştırma Enstitüleri bir hibe desteklenmiştir.
Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.
Malzemeler
| Ad | Şirket | Katalog numarası | Yorumlar |
|---|---|---|---|
| C57BL / 6 fareler | Charles River Laboratories, Inc. (Wilmington, MA, ABD) | 475 | |
| Tiyoglikolat | Sigma-Aldrich, (St. Louis, MO) | 19032-500G | |
| 70 etanol | |||
| 10 sodyum pentobarbital (Fare anestezisi için kullanılır (80 mg / kg, ip)) | |||
| Dulbecco' Fosfat tamponlu salin (DPBS), buz üzerine yerleştirilir ve makrofajların hasat edilmesine hizmet eder | WISENT INC Canada (QC) | 311-425-CL | |
| RPMI ortamı 1640 (Penisilin, streptomisin, L-glutamin ve% 10 fetal buzağı serumu ile takviye | WISENT INC Kanada (QC) | 350-000-CL | |
| 1 ve 5 ml şırıngalar | BD ABD (NJ) | ||
| 6 oyuklu plakalar | Corning Incorporated (NY, ABD) | MCT-150-C | |
| Bakteriyel lipoprotein Pam3CSK4 (0.5 mg / ml) | InvivoGen (San Diego, ABD) | TLRL-pm25 | |
| Poliiyonozin– polisitidlik asit (Poli(I:C)) (10 mg/ml) | InvivoGen (San Diego, ABD) | Escherichia | |
| flagellin Salmonella typhimurium (100 ng/ml) | InvivoGen (San Diego, ABD) | TLR-FLIC-10 | |
| HIV-1 uzun terminal tekrarından türetilen ssRNA, ssRNA40 (1 & mu; g/ml) | InvivoGen (San Diego, ABD) | TLR-LRNA-40 | |
| Tip B CpG oligonükleotid ODN1826 (1 & mu; M) | InvivoGen (San Diego, ABD) | 11B16-MM | |
| TRIzol | Invitrogen, (Burlington, ON, Kanada) | 15596-026 | |
| 20 G ve 23 G iğneler | BD ABD (NJ) | ||
| Makaslı | |||
| Forseps | |||
| 50 ml buz üzerine yerleştirilmiş konik tüpler | Sarstedt (Newton, MA, ABD) | 62.547.205 | |
| Kırmızı Kan Hücreleri Lizis Tamponu | Sigma-Aldrich, (St. Louis, MO) | R7757-100ML | |
| Soğutmalı santrifüj | |||
| Hemositometre | |||
| F4 / 80 antikor | BIO-RAD (CA, ABD), | ||
| CD16 / CD32 antikorları | Pharmingen, {Mississauga, ON, CA) | 553141 | |
| Akış sitometresi | Coulter Epics Elite sayacı, Coulter, (Hialeah, FL, ABD) | ||
| 1.5 ml Eppendorf tüpleri | Axygen Scietific (CA, ABD) | 3516 | |
| Chloroform | Fisher Scientific (ON, Kanada) | UN1888 | |
| İzopropil alkol | JT Baker (PA, ABD) | 70566 | |
| % 75 etanol (DEPC ile arıtılmış suda) | Ticari Alchohols (QC, Kanada) | 17394 | |
| % 0.01 dietil pirokarbonat (DEPC) ile arıtılmış su (gece boyunca bekletilsin ve otoklav) | Sigma-Aldrich, (St. Louis, MO) | 216.542.8 | |
| Omniscript RT-PCR sistemi | Qiagen, (Mississauga, ON, Kanada) | 205113 | |
| Rotor Gene 3000 | Montreal Biotech, (Kirkland, QC, Kanada)QuantiTect | ||
| SYBR Green I PCR kitleri | Qiagen, (Mississauga, ON, Kanada) | 204141 |
Kaynaklar
- Pollard, J. W. Trophic macrophages in development and disease. Nat Rev Immunol. 9 (4), 259-270 (2009).
- Gordon, S. Alternative activation of macrophages. Nat Rev Immunol. 3 (1), 23-35 (2003).
- Koury, M. J., Ponka, P. New insights into erythropoiesis: the roles of folate, vitamin B12, and iron. Annu Rev Nutr. 24, 105-131 (2004).
- Sheftel, A. D., Kim, S. F., Ponka, P. Non-heme induction of heme oxygenase-1 does not alter cellular iron metabolism. J Biol Chem. 282 (14), 10480-10486 (2007).
- Hershko, C. Storage iron regulation. Prog Hematol. 10, 105-148 (1977).
- Collins, H. L. Withholding iron as a cellular defence mechanism--friend or foe. Eur J Immunol. 38 (7), 1803-1806 (2008).
- Noyes, W. D., Bothwell, T. H., Finch, C. A. The role of the reticulo-endothelial cell in iron metabolism. Br J Haematol. 6, 43-55 (1960).
- Layoun, A., Huang, H., Calve, A., Santos, M. M. Toll-like receptor signal adaptor protein MyD88 is required for sustained endotoxin-induced acute hypoferremic response in mice. Am J Pathol. 180 (6), 2340-2350 (2012).
- Zumerle, S., et al. Targeted disruption of hepcidin in the liver recapitulates the hemochromatotic phenotype. Blood. 123 (23), 3646-3650 (2014).
- Nguyen, N. B., Callaghan, K. D., Ghio, A. J., Haile, D. J., Yang, F. Hepcidin expression and iron transport in alveolar macrophages. Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. 291 (3), L417-L425 (2006).
- Nemeth, E., et al. Hepcidin, a putative mediator of anemia of inflammation, is a type II acute-phase protein. Blood. 101 (7), 2461-2463 (2003).
- Nemeth, E., et al. Hepcidin regulates cellular iron efflux by binding to ferroportin and inducing its internalization. Science. 306 (5704), 2090-2093 (2004).
- Constante, M., et al. Distinct requirements for Hfe in basal and induced hepcidin levels in iron overload and inflammation. Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol. 291 (2), G229-G237 (2006).
- Zhang, X., Goncalves, R., Mosser, D. M. The isolation and characterization of murine macrophages. Curr Protoc Immunol. Chapter 14 (Unit 14 11), (2008).
- Ray, A., Dittel, B. N. Isolation of mouse peritoneal cavity cells. J Vis Exp. (35), (2010).
- Leijh, P. C., van Zwet, T. L., ter Kuile, M. N., van Furth, R. Effect of thioglycolate on phagocytic and microbicidal activities of peritoneal macrophages. Infect Immun. 46 (2), 448-452 (1984).
- Dy, M., Debray-Sachs, M., Kamoun, P., Hamburger, J. Effect of thioglycollate on macrophage lysosomal enzymes. Biomedicine. 29 (5), 167-170 (1978).
- Li, Y. M., Baviello, G., Vlassara, H., Mitsuhashi, T. Glycation products in aged thioglycollate medium enhance the elicitation of peritoneal macrophages. J Immunol Methods. 201 (2), 183-188 (1997).
- Layoun, A., Santos, M. M. Bacterial cell wall constituents induce hepcidin expression in macrophages through MyD88 signaling. Inflammation. 35 (4), 1500-1506 (2012).
- Oppenheim, J. J., Yang, D. Alarmins: chemotactic activators of immune responses. Curr Opin Immunol. 17 (4), 359-365 (2005).
- Akira, S., Uematsu, S., Takeuchi, O. Pathogen recognition and innate immunity. Cell. 124 (4), 783-801 (2006).
- Lang, R., Patel, D., Morris, J. J., Rutschman, R. L., Murray, P. J. Shaping gene expression in activated and resting primary macrophages by IL-10. J Immunol. 169 (5), 2253-2263 (2002).
- Wang, C., et al. Characterization of murine macrophages from bone marrow, spleen and peritoneum. BMC Immunol. 14 (6), (2013).
- Austin, P. E., McCulloch, E. A., Till, J. E. Characterization of the factor in L-cell conditioned medium capable of stimulating colony formation by mouse marrow cells in culture. J Cell Physiol. 77 (2), 121-134 (1971).
- Cannon, G. J., Swanson, J. A. The macrophage capacity for phagocytosis. J Cell Sci. 101 (Pt 4), 907-913 (1992).
- Wang, Y., Harris, D. C. Macrophages in renal disease. J Am Soc Nephrol. 22 (1), 21-27 (2011).
- Edwards, J. P., Zhang, X., Frauwirth, K. A., Mosser, D. M. Biochemical and functional characterization of three activated macrophage populations. J Leukoc Biol. 80 (6), 1298-1307 (2006).
- Hoover, D. L., Nacy, C. A. Macrophage activation to kill Leishmania tropica: defective intracellular killing of amastigotes by macrophages elicited with sterile inflammatory agents. J Immunol. 132 (3), 1487-1493 (1984).
- Schleicher, U., Bogdan, C. Generation culture and flow-cytometric characterization of primary mouse macrophages. Methods Mol Biol. 531, 203-224 (2009).
Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.
Yeniden basım ve izinler
