Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliğiniz gereklidir. Giriş yapın veya ücretsiz denemenizi bugün başlatın.

Yöntem makalesi

İnsan Adenovirüs Tip 5 dayanarak Yüksek Kapasiteli Adenoviral Vektörler klonlanması ve Büyük Ölçekli Üretim

15.1K görüntülenme

⸱

DOI:

10.3791/52894

⸱

28 Ocak 2016

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Institute of Virology and Microbiology, Center for Biomedical Education and Research (ZBAF), Department of Human Medicine, Faculty of Health, University Witten/Herdecke

Bu makalede

Özet

Tüm viral kodlama dizilerinden yoksun yüksek kapasiteli adenoviral vektörlerin üretilmesi için bir protokol sunulmuştur. Vektör genomunda bulunan transgenlerin klonlanması, hedef güdümlü endonükleazlara dayanmaktadır. Yapışık hücreler olarak büyütülen ve süspansiyon halinde üretilen üretici hücrelerde virüs amplifikasyonu, trans halinde viral genler sağlayan yardımcı bir virüse dayanır.

Özet

Tüm viral kodlama dizilerinden yoksun yüksek kapasiteli adenoviral vektörler (HCAdV), yüksek paketleme kapasiteleri (35 kb'a kadar), düşük immünojenisiteleri ve düşük toksisiteleri nedeniyle en gelişmiş gen dağıtım vektörlerinden birini temsil eder. Bununla birlikte, birçok laboratuvar için HCAdV kullanımı, vektör genom yapımı ve virüs üretimi için karmaşık prosedür tarafından engellenmektedir. Burada, HCAdV genomunu içeren plazmid pAdFTC'ye dayalı olarak HCAdV'nin verimli klonlanması ve üretilmesi için ayrıntılı bir protokol açıklanmaktadır. HCAdV genomlarının inşası, hedef güdümlü endonükleazları (I-CeuI ve PI-SceI) kullanan bir klonlama vektör sistemine dayanmaktadır. 14 kb'ye kadar olan herhangi bir ilgilenilen gen, I-CeuI ve PI-SceI ile çevrili çoklu klonlama bölgesi içeren mekik vektörü pHM5'e alt klonlanabilir. Transgenin mekik vektöründen I-CeuI ve PI-SceI aracılı salınımından sonra, transgen HCAdV klonlama vektörü pAdFTC'ye yerleştirilebilir. pAdFTC plazmidinin büyük boyutu ve güçlü DNA bağlanması ile ilişkili kullanılan enzimlerin uzun tanınma bölgeleri nedeniyle, klonlama parçalarının dikkatli bir şekilde ele alınması gerekir. Virüs üretimi için, HCAdV genomu, NotI digest tarafından salınır ve Cre rekombinazı stabil bir şekilde eksprese eden HEK293 tabanlı bir üretici hücre hattına transfekte edilir. Adenovirüs amplifikasyonu için tüm adenoviral genleri sağlamak için, loxP bölgeleri ile çevrili bir paketleme sinyali içeren bir yardımcı virüs ile ko-enfeksiyon gereklidir. Vektörün ön amplifikasyonu, yüzeylerde büyütülen üretici hücrelerde gerçekleştirilir ve vektörün büyük ölçekli amplifikasyonu, süspansiyon içinde büyütülen üretici hücreleri ile döner şişelerde gerçekleştirilir. Virüs saflaştırması için, sezyum klorür gradyanlarına dayalı iki ultrasantrifüj aşaması gerçekleştirilir ve ardından diyaliz yapılır. Burada, bu HCAdV vektör sistemiyle çalışarak son yıllarda geliştirilen ipuçları, püf noktaları ve kısayollar sunulmaktadır.

Giriş

Gen terapötik uygulamalar için, viral proteinlerin tanımlanması, transgen tarafından ya gelen viral proteinler kaynaklanan sitotoksik ve immünojenik yan etkileri önlemek için büyük bir önem taşımaktadır. Adenovirüs vektörleri (AdV), yaygın olarak transgen ekspresyonu 1,2 etkisini araştırmak için hücreler, çok çeşitli yabancı DNA'nın için kullanılır. AdV en gelişmiş versiyonu tüm viral kodlama dizilerinin 3,4 ve böylece düşük immünojenikliğe ve düşük toksisite 5-8 ile birlikte 35 kb bir ambalajlama kapasitesi sunan yoksun yüksek kapasiteli adenovirüs vektörleri (HCAdV) ile temsil edilir. Sahip oldukları yüksek paketleme kapasitesi tek bir vektör doz kullanılarak büyük veya çok sayıda transgenlerin dağıtılmasına izin. Bu nedenle, araştırma toplum için değerli bir araç temsil etmektedir.

Bunun aksine, VEC birinci veya ikinci kuşak AdV kolayca ticari kitler kullanılarak üretilebilir erken gende, E1 ve / veya E3 yoksun içintor HCAdV genomu yapımı ve virüs üretimi daha karmaşıktır. HCAdV genomlarının yapımı için sistem, bütün viral kodlayıcı sekansların ve mekik plazmidinin pHM5 9-12 yoksun bir HCAdV genomu taşıyan plazmid pAdFTC dayanmaktadır. Kadar 14 kilo bazların (kb) ilgi duyulan herhangi bir gen çoklu klonlama bölgesini tanıma ile takviye edildiği mekik vektörü pHM5 klonlanabilir / homing endonükleazlar siteleri yaran Sce I ve I-Ceu I. PI Bu nedenle, ilgi konusu bir klonlanmış genin üst üste PI Sce I ve I-I Ceu plazmid pAdFTC içinde ihtiva HCAdV genomunda bulunan, aynı restriksiyon sitlerine sonra yönlendirilmiş sokulması için digests serbest bırakılabilir. PAdFTC olarak PI Sce I ve I-CEU I sitesi yarığa arasında bulunan transgen yerleştirme sahası stuffer DNA ve 5 've 3' ters terminal tekrarları genom paketleme için gerekli kodlama yapmayan adenoviral sekansından (ITR) tarafından kuşatılırbiter ve 5'ITR bölgesinin paketleme sinyaline akım aşağı hem de. Ek stuffer DNA virüs üretimi sırasında etkin bir paketleme sağlamak için 27 ile 36 kb arasında değişen nihai HCAdV genomunun en uygun boyutu sağlar. PAdFTC (sokulan transgenin boyutuna bağlı olarak) 45 kb olan büyük bir plasmid ve nispeten uzun DNA tanıma mevkileri ile homing endonükleazlar kullanım olduğu bağlanması güçlü bir DNA, çok sayıda temizlik adım pHM5 gelen transgenin transferi sırasında gerekli olan sergileyen pAdFTC için. Kesme kuvvetleri kaçınarak dikkatli kullanım tavsiye edilir.

HCAdV genomunun ITRler 5'ITR yukarı doğru doğrudan doğruya bulunur ve 3'ITR 12 alt baş Not I sınır enzimi tanıma bölgeleri tarafından takviye edilir. Bu nedenle, HCAdV Not I HCAdV üretici hücre hattı viral genomun daha sonra transfeksiyonu için sindirimi ile serbest bırakılabilir. Not sınırlama enzimi kullanımı değil ben rel içinplazmid pAdFTC viral genomun kolaylığı eklenen transgen Not I DNA tanıma sitelerinin yoksun olduğunu gösterir. HEK293 hücre bazlı üretici hücreler (116 hücreleri) kararlı bir şekilde Cre rekombinaz ifade eder. Virüs amplifikasyonu için 116 hücre trans-3,4 replikasyon ve paketleme için gerekli olan tüm AdV genlerin temin Bir yardımcı virüs (HV) ile birlikte enfekte edilir. HV 116 hücrelerinde 4 olarak ifade edilmiştir Cre rekombinaz virüs amplifikasyonu sırasında uzaklaştırılır floxed paketleme sinyali ile bir birinci kuşak AdV olup. Bu, sağlam bir ambalaj sinyalini içeren, ağırlıklı olarak HCAdV genomları kapsül içine alınır sağlar.

HCAdV Ön amplifikasyon doku kültürü çanakları içinde yüzeyler üzerinde büyümüş 116 hücreleri seri pasajlama aşamaların uygulanması ile gerçekleştirilir. Her geçiş sonrasında viral partiküller üç ardışık dondurma-eritme aşamaların uygulanması ile enfekte olmuş hücrelerden salınırlar. Hücrelerin sayısını artan her geçiş ile enfekte olanÖnceki geçit hücre lizatı 1/3. Son ön amplifikasyon aşaması, büyük ölçekli amplifikasyonu için, dönen bir şişede süspansiyon içinde yetiştirilmiş üretici hücrelerin enfeksiyonu için kullanılır son olarak lizata. Viryonlar 4,12 gradyan sezyum klorür yoğunluğunda ultrasantrifüj gerçekleştirerek süspansiyon hücrelerinden saflaştırılır. Bu prosedür ile, boş parçacıklar ve tam olarak monte parçacıkları iki farklı bantlar ayrılır. Ayrıca HCAdV konsantre ikinci bir sigara kademeli ultrasantrifügasyon adımı gerçekleştirilir parçacıklar. Daha sonra elde edilen bant HCAdV içeren toplandı ve fizyolojik tampon karşı diyaliz edilir. Nihai vektör hazırlıkları mutlak viral parçacıkların, enfeksiyöz partiküller ve HV kirlilik seviyeleri numaralarına göre karakterize edilir. Mutlak viral parçaları viral partikülleri parçalama ve 260 nm'de absorbans ölçülerek ve kantitatif gerçek zamanlı PCR (qPCR) 12 gerçekleştirilerek belirlenebilir. Pur enfektivitesiified virüs parçacıkları enfekte olmuş hücrelerde 3 saat enfeksiyon sonrası içinde mevcut qPCR ölçüm HCAdV genomlarının belirlenebilir.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Protokol

Plazmid pAdFTC dayalı Rekombinant HCAdV Genomlarının 1. İnşaat

Not: Tüm plazmidler önce 11,12 açıklandığı ve istek üzerine temin edilir oylandı. Klonlama prosedürü şematik olarak Şekil 1 'de gösterilmiştir.

  1. PHM5-GOI oluşturmak için, seçilen bir klonlama stratejisi kullanılarak, transfer plazmidi pHM5 içine promotör ve poliadenilasyon sinyali (pA) da dahil olmak üzere ilgili bir geni (GOI) klonlama.
    Not: pAdFTC nispeten büyük bir plazmid olduğu için, klasik bir plazmid hazırlama protokolleri silika membranlanna dayalı ticari plazmid saflaştırma kitleri kullanılarak plazmid DNA Sheering önlemek için önerilir. I- Ceu I ve PI -Sce şiddetle DNA'ya bağlanmasını ve sindirilmiş DNA'nın elektroforetik hareketliliği değiştirin. Bu nedenle, bir fenol-kloroform ekstraksiyonu ve EtOH çöktürme (1.3 adım a), agaroz jel elektroforezi gerekli olacaktır.
  2. HSH özetini 20 ug100 ul toplam hacim içinde 37 ° C sıcaklıkta 3 st için I-CeuI (10 U) 5-GOI ve pAdFTC 10 ug (~ 2.8 kb + GOI ORF sekansı ve • 31kb sırasıyla) plazmidler doğrusallaştırılması için.
  3. Etanol (EtOH) çökeltme 13, ardından fenol-kloroform ekstraksiyonu kullanılarak doğrusallaştırılmış plazmidler arındırın.
    1. Kloroform: 100 fenol ul ekle izoamil alkol ve tüpü birkaç kez ters yüz edilerek yavaşça karıştırın. 15.000 x g'de 2 dakika süre ile santrifüje.
    2. , Yeni bir tüpe transfer süpernatantı sodyum asetat, 20 ul (pH 5, 3 M) ve buz 400 ul soğuk EtOH (% 99.8) ekleyin ve kuvvetli bir şekilde süspansiyon karıştırın. 15.000 x g'de 10 dakika boyunca santrifüj.
    3. Süpernatantı, 15.000 x g'de 2 dakika süre ile 300,% 70 EtOH ul ve santrifüj ekleyin. Ardından süpernatant ve hava-kuru DNA pelet çıkarın. DH 2 O. 10- 20 ul pelet çözülür O çözeltide DNA elde etmek zor olacak gibi, çok uzun değil kuru DNA pelet yapın.
  4. Digest I-Ceu I pHM5-GOI ve adım 1.3 pAdFTC plazmidi) -digested 50 ul toplam hacim içinde 37 ° C'de sınırlama enzimi PI -Sce I (10 U) en az 3 saat ya da O / N ve daha sonra I saflaştırmak -CeuI ve PI -Sce I (adım 1.3) EtOH çökeltme izlenmiş ve fenol-kloroform ekstraksiyonu kullanılarak plazmidler ile sindirilmiş. Nükleaz ücretsiz dH 2 O 20 ul DNA çözülür
  5. Ayrı pHM5 plazmid omurgası (2,8 kb) ile bir preparatif agaroz jeli üzerinde (adım 1.4) GOI ticari bir jel-ile GOI jel saflaştırılması ve temizleme kiti ise PCR. Özetle temsili bir agaroz jel Şekil 2A'da gösterilmiştir.
  6. Fosforilatı I- Ceu I ve PI -Sce pAdFTC I ile sindirilmiş 25 ul toplam hacim içinde 37 ° C sıcaklıkta 1 st için dana bağırsağı alkalin fosfatazı CİP (10 U) ve fenol-kloroform ekstraksiyonu ve daha sonra EtOH ile fosforik asitten arındırılan plazmid pAdFTC saflaştırılması (Aşama 1.4) precipitation (adım 1.3). Nükleaz ücretsiz dH 2 O 20 ul DNA Zehir
  7. Dijestleri eksiksiz ve beklenen parçalarının boyutları (doğru olup olmadığını ~ doğrusallaştırılmış pAdFTC 31 kb analiz etmek için (adım 1.6) defosforile pAdFTC plazmid ve (1.5 adım) saf GOI parçasının bir böleni ile analitik jel elektroforezi gerçekleştirme ).
    Not: Goa boyutu transgen ekspresyon kasetinin büyüklüğüne bağlı olarak değişkendir. Daha sonra ligasyon için ilgili parçalarının görece konsantrasyonlarının tahmin edilmesi. Saflaştınldı parçalarının temsili bir agaroz jel Şekil 2B'de de gösterilmiştir.
  8. 400 U T4 DNA ligazı ve 1 eklemek için vektörün bir mol oranı kullanılarak 20 ul bir toplam hacim içinde Bağlanma tepkimesinin ayarları: 3.
    NOT: Şekil 2B'de gösterildiği agaroz jeli ile uyumlu olarak genellikle, 6-il vektörüne 2- 20 ul bir toplam hacim içinde 8- ila 12 ul ligateyerleştirin ve 400 U T4 DNA ligaz. DNA konsantrasyonu çok sayıda fenolizasyon aşamalarından sonra genellikle düşük olduğu için 20 ul nihai hacme ulaşmak için ek bir H2O ilave edilmesi gerekir, böylece mümkün olduğunca fazla DNA kullanılır. EtOH çökeltme (adım 1.3), ardından fenol-kloroform ekstraksiyonu yerine, daha sonra 16 ° de CO / N oranında bağlanır ve.
    1. Nükleaz serbest dH 2 O 15 ul DNA Zehir ve 20 ul bir toplam hacim içinde 25 ° C 'de 2 saat süre ile sınırlama enzimi SwaI (10 U) ile saflaştırılmıştır ligasyon reaksiyonu sindiremez. Daha sonra konsantre ve EtOH çökeltme (adım 1.3), ardından fenol-kloroform ekstraksiyonu gerçekleştirerek, DNA arındırmak. Nükleaz ücretsiz dH 2 O 10 ul DNA Zehir
  9. Saflaştırılmış SWA 2 ul Transform Ben DH10B içine elektroporasyon ile ligasyon ürünü sindirilmiş ya da DH5α E. elektrouyumlu E. coli ve amfisilin içeren LB 37 ° C'de 16 ila 24 saat için seçim klonlarPlakalar (50 mg / ml ampisilin). 5- 10 klonları seçip fenol-kloroform ekstraksiyonu ve daha sonra EtOH çökeltme (adım 1.3) de 13 ve ardından alkalin liziz kullanılarak plazmid DNA mini preparatları.
  10. DNA fragmanlarının boyutunu kontrol etmek için agaroz jel elektroforezi ile ve ardından plazmid mini preparatlar analitik özetini gerçekleştirin. Önerilen sınırlama enzimleri, örneğin I Ceu I ve PI Sce I ekleme, Spe I ve Hinc II (Şekil 2C) serbest bırakmak için bulunmaktadır.
  11. Amfisilin içeren LB ortam maddesi doğru bir klon yükseltin (50 mg / ml ampisilin) ​​ve herhangi bir ticari olarak mevcut plazmid saflaştırma kiti kullanılarak bir midibüsleri veya maksi plazmid hazırlama gerçekleştirin.

Yapımcı Hücre Hattı 116 pAdFTC Plazmid ve HCAdV Vektörleri Preamplification gelen HCAdV-genom 2. Yayın

  1. Aşama 1,11 klonlanan GOI içeren pAdFTC tabanlı adenoviral üretimi plazmid) içinde 20 ug Digesttoplam> 2 saat süre ile 37 ° C 'de Not I (20 U) kullanılarak 100 ul hacim ve yerine fenol-kloroform ekstraksiyonu iki kez EtOH çökeltme izlenmiş. 20- 30 ul steril dH 2 O çözülür
  2. Jel elektroforezi ile 1:10 seyreltilmiş sindirilmiş pAdFTC-GOI-DNA'nın bir kısım edin. Goa, HCAdV genomuna (boyut: 28- 36 kb) bir ikinci DNA fragmanının boyutuna bağlı olarak bir 9 kb plazmid omurgası için fragmanı ve, tespit edilebilir.
    Not: Ben değil sindirmek temsili bir örneği Şekil 2D görüntülenir. Doğrusal hale getirilen DNA birkaç hafta boyunca 4 ° C'de veya -20 ° C'de birkaç gün muhafaza edilebilir.
  3. Protokol ile devam etmeden önce, yardımcı virüsü AdNG163R-2 4 amplifiye edilmiş olduğundan emin olun.
    Not: pAdFTC türetilmiş HCAdV vektörleri ile transfekte hücreler Biyogüvenlik Seviyesi 2 (BSL-2), uygun çevreleme ve atık işleme kullanın lütfen olarak sınıflandırılan genetiği değiştirilmiş organizmalarBSL-2 laminer akış davlumbaz altında kişisel koruyucu donanım ve çalışmaları dahil olmak üzere önlemler.
  4. MEM Kartal ortamı içinde kültür 116 hücreleri,% 10 FBS ve higromisin B (ug / ml 100 ug) ile takviye edilmiştir. (Geçit 10 altında) Tohum düşük geçiş da 50-% 80 konfluent ertesi gün ulaşacak şekilde transfeksiyondan önce 60 mm doku kültürü çanağı bir günde 116 hücreleri (0.4x 10 6 hücre).
  5. Örneğin kalsiyum fosfat transfeksiyonu veya diğer ticari olarak temin edilebilen transfeksiyon reaktifleri (Şekil 3A) ve yöntemleri kullanarak 116 hücrelerine aşama (2,1) için linearize HCAdV genomu transfekte. 16- 18 saat post-transfeksiyon, dikkatli bir şekilde hücre başına (konfluent yana HV AdNG163R-2 4 5 nakleden birimleri uygulanması (TU) ile hücrelerin 3 ml ekleyin, taze ortam (MEM,% 5 FBS) orta kaldırmak ve enfekte 60 mm doku kültürü çanak ~ 3.2x 10 6 hücre içeren) HV ~ 1.6x 10 7 TU ekleyin.
    1. Yavaşça için enfeksiyon sonrası ilk bir saat içinde çanak her 20 dakikada hareketEşit HV dağılımını sağlamak. 37 ° C 'de, enfekte olmuş hücrelere yetiştirmek ve% 5 CO2. Virüs replikasyonu neden etkili bir virüs amplifikasyon sitopatik etki (CPE) durumunda gözlemlenebilir olan (hücreler yuvarlanır ve gevşek bağlı veya doku kültürü çanak ayrılır) post-infection.If CPE görülmektedir 48 saat önce HV miktarı vardır azaltılabilir. CPE sonra başlar, daha fazla yardımcı virüs kullanılmalıdır.
  6. Kültür ortamı kullanılarak kültür kaplarına hücreler kapalı kızarma ile süpernatant 48 saat sonrası enfeksiyon dahil Hasat hücreleri. Kendi kültür ortamı içinde süspansiyon haline hücreler, pasajı 0 (P0) olarak adlandırılır. Iki fraksiyon Böl P0.
    1. Ayrılan hücreler, 0.5 ml 2.000 x g'de 3 dakika boyunca hücrelerin aşağı spin ve hücre topağından orta kaldırmak kaynaktan, daha sonra büyütme işlemi qPCR göre analiz için genomik DNA (gDNA) izole etmek için kullanılmıştır. Daha sonra işlenene kadar -20 ° C'de saklayın hücre topakları.
    2. 2.5 Gönderenmüstakil hücrelerin mi kendi orta üç ila dört kez resupended hücreler (sıvı azot -80 ° C'de ya da) dondurulması ve (37 ° C su banyosunda oda sıcaklığında ya da) eritilmesi ile viral partikülleri serbest bırakın. Bu fraksiyon P0 denilen lizat fazladır.
  7. FBS (% 10) ve higromisin B (100 ug / ml) ve HV ile takviye edilmiş MEM-ortamı kullanılarak 90-% 95 konfluansa kadar büyütülür 116 hücreleri ile doku kültür kaplarına sağlanması, aşağıdaki adımları pasajlama için kullanılabilir.
  8. 60 mm doku yana hücre (başına 2 TU uygulanması HV ekleyin 3,5 ml'lik bir nihai hacme, önceki geçiş (aşama 2.6.2) için lizat, 2.5 ml taze ortam (MEM,% 5 FBS) içinde 1 ml karıştırın 90-% 95 konfluansa kültür çanağı ~ 3.2 x 10 6 hücre içeren) HV ~ 6.4x 10 6 TU ekleyin. (Şekil 3B). Dikkatle 116 hücre 60 mm çanak orta kaldırmak ve hücrelere virüs karışımı ekleyin. Adımı yineleyin 2.6) - 2.8) iki kez pas lizatları elde etmek içinyaşları P1 ve P2.
  9. ~ Içeren P2 lizat 2.5 ml 17,5 ml yeni, ortam (MEM,% 5 FBS) karıştırın ve 80-% 100 konfluansa bir 150 mm doku kültürü çanağı yana hücre (başına 2 TU uygulanması HV ekleme 2x 10 7 Hücreler,) + HV 4x 10 7 TU ekleyin. 116 hücre, 150 mm'lik çanak Ortamı çıkarın ve viral karışımı ile hücreleri enfekte etmektedir. 37 ° C 'de, enfekte olmuş hücrelere yetiştirmek ve% 5 CO2.
  10. Gibi adım 2.6'da açıklanana 48 saat enfeksiyon sonrası hasat hücreleri) geçişi P3 (Şekil 3B) elde edildi.
    1. Adımı yineleyin 2.6) 1.
    2. Resupended hücrelerden P3 bırakma viral parçacıkların kalan 19.5 ml den üç dört kez dondurma ve çözme ile. Bu fraksiyon P3 denilen lizat fazladır.
      Not: yeterince güçlendirilmiş kadar bazı vektörler sonunda 150 mm yemekleri ek pasajlar gerekebilir. Bu nedenle preamplıfikasyon sürecinin etkinliği seri geçiş sırasında izlenmesi gerekenyaşlanma. Bölüm 3 (ayrıca bkz, Şekil 4A) 'de tarif edildiği gibi büyütme işlemi qPCR dayalı analiz gerçekleştirilebilir. Yeşil floresan proteini (GFP) için bir ekspresyon kasetini taşıyan HCAdV Ön amplifikasyon kolayca floresan mikroskop (Şekil 4B) ile GFP flourecscent sinyalin gözlemlenmesi ile değerlendirilebilir.

Kantitatif-Real Time PCR (qPCR) ile Amplifikasyon Sürecinin 3. İzleme (aynı zamanda Şekil 4A).

  1. 2.10) kültür hücrelerinden gDNA izolasyonu veya seçtiğiniz başka bir yöntem için herhangi bir ticari DNA izolasyon kiti kullanılarak - preamplifaction (2.6 adımlar) her geçit hücre pelet gelen gDNA'sından izole edin. Optimal PCR sonuçları için mümkün olduğunca taze olarak gDNA'sından kullanın. Aksi takdirde gDNA sonraki kullanıma kadar -20 ° C'de muhafaza edilebilir.
  2. Standart bir eğri 10 1 kullanılarak oluşturulabilir qPCR analizi ile ilgili geçiş hücrelerinde mevcut HCAdV genomlarının sayısını belirlemek için, - 10 HCAdV genomu içinde ihtiva GOI taşıyan bir plazmidin 9 kopya.
  3. HCAdV genomunda ihtiva Goa için özel primerler 400 nM kullanılarak qPCR uygulanması P0- P3 (aşama 2.6- 2.10) için gDNA aynı miktarda analiz eder. İlgili qPCR kimyasalların qPCR takip üreticinin talimatlarına yürütülmesi için. Şöyle qPCR Set programı: Ön inkübasyon 95 ° C de 10 dakika, 10 sn için 95 ° C 40 döngü amplifikasyon, 15 sn için 60 ° C 55- ve 20 sn için 72 ° C. Standart eğrinin temelinde reaksiyonda HCAdV genomlarının sayısı interpolasyon edilebilir.

Askıya büyüyen 116 hücrelerinde HCAdV Vektörler 4. Büyük Ölçekli Büyütme

  1. 3 l spinner kültürü şişesi (Şekil 3B) içerisine% 10 FBS ve higromisin B (100 ug / ml) ile desteklenmiş önceden ısıtılmış (37 ° C), taze MEM 900 ml ilave edilir.
  2. 1 ile en az 10 ayrı ayrı 150 mm doku kültürü kaplarından orta çıkarın16 hücreleri 90-% 100 konfluansa büyütüldü ve 10 ml hücrelerini yıkamak, taze, önceden ısıtılmış (37 ° C) MEM FBS (% 10) ve serolojik bir pipet kullanarak higromisin B (100 ug / ml) ile takviye edilmiştir. Yukarı Pipet ve aşağı birkaç kez homojen bir hücre süspansiyonu elde etmek. Zaten) aşama 4.1 900 ml içeren dönen şişeden doğrudan hücreleri aktarın.
    Not: olumsuz süspansiyon hücrelerinin büyümesini etkileyebilir olarak tripsin / EDTA kullanmayın. Ortamının alınmasından sonra, hemen spinner flask içine hücreleri aktarın. Bir seferde en fazla iki doku kültürü yemekleri dokunmayın. Uzun bekleme süresi daha zor taze medya ekledikten sonra doku kültürü çanak hücreleri kopuk olacaktır.
  3. 37 ° C'de 24 saat boyunca bir doku kültür inkübatörü içinde bir manyetik karıştırıcı ile ilgili en uygun hücre büyümesi inkübe spinner flask sağlanması ve% 5 CO2 için. Cam yüzeylere hücrelerin yapışmasını önlemek için 70 rpm'ye manyetik karıştırıcı ayarlayın.
  4. Spinner kültürü şişesine yetiştirilen hücreler canlı olup olmadığını ve yeterli miktarda büyümeye olup olmadığını incelemek için spinner kültürü şişesi hücre büyümesini izleyin. 60 mm doku kültürü tabağına biyoreaktör taze bir sıvı transfer 2 ml ilave edilmeden önce her zaman. Mikroskop altında hücre morfolojisi uyun.
    Not: kültür ortamı yüzer topaklar hücreler uygun büyüme ve canlılığı (ayrıca bkz Şekil 4C) işaret etmektedir. 24 saat sonra onlar doku kültürü çanak yüzeyinde koloniler oluştururlar. 30-% 50 izdiham optimum yoğunluğunu gösterir.
  5. 24 saat spinner kültürü şişesi kurduktan sonra higromisin B (100 ug / ml) ile desteklenmiş taze ortam 500 ml (MEM,% 10 FBS) ilave edin. 24 saat sonra bu adımı tekrarlayın.
  6. 72 saat santrifüj kültürünün kurduktan sonra, hücre süspansiyonu, 3 L'lik bir toplam hacim içinde elde edilen higromisin B (100 ug / ml) ile, taze MEM ortamında (% 10 FBS) 1,000 ml ilave edin.
  7. 24 saat sonra, av ulaşanoda sıcaklığında 500 x g'de 10 dakika boyunca santrifüjleme ile üç litre, hasat 116 Süspansiyon hücreleri olume. Süpernatantı atın. Doku kültürü kaputun altında boşaltılmış spinner kültür şişesi bulundurun.
  8. Taze MEM'de süspanse hücre topakları homojen bir hücre süspansiyonu elde etmek için aşağı yaklaşık 8- 10 kez yukarı pipetleme ve% 5 FBS ile desteklenmiş. Ortamının hacmi Aşama 2,10) 2 olup lizat bağlıdır. 1 (19.5 ml, adım 4.8). seçeneği a) 'ya aşama 5,9 den HCAdV saflaştırılmış viral stoğu) 2. (viral titresi bağlı olarak süresi birkaç ul, adım 4.8) 2., isteğe bağlı b) hücrelerin enfeksiyonu için kullanılır. 150 ml 'lik bir toplam hacim kullanın.
    1. Seçenek a: steril manyetik karıştırma çubuğu ile veya 250 ml'lik bir küçük ölçekli, dönen bir şişede ile donatılmış 250 ml'lik bir saklama şişesine P3 (birincil amplifikasyonu) aşama 4,8 transfer hücreleri) lisatı ile 116 süspansiyon hücrelerinin enfeksiyonu için olan hücreleri co-enfekte P3 (adım 2.10.2) ve hücre başına HV 2 TU lizat içindeki virüs. 3x bir yoğunluğa varsayarsak10 5 hücre ml başına toplam hücre sayısı 9x 10 8 hücreleri. Böylece HV 1.8x 10 9 TU ekleyin.
    2. Seçenek b: saflaştınlmış viral stok ile 116 süspansiyon hücrelerinin enfeksiyonu için, steril manyetik karıştırma çubuğu ve 250 ml küçük ölçekli dönen şişeden ile donatılmış 250 ml'lik bir şişeye aşama depolama 4,8 transfer hücreleri) 100 viral partikül hücreleri co-enfekte (adım 5.9 dan itibaren) eskiden saflaştırılmış HCAdV 2 hücre başına.). Saflaştırılmış HCAdV ve HV 1.8x 10 9 TU, (aşama 6 260nm'de absorbans ile ölçüldü) Bu nedenle, fiziksel titreye uygun olarak 9 x 10 10 VP ekleyin.
  9. 60 rpm'de 2 saat boyunca CO2 37 ° C'de doku kültürü inkübatörü içinde, bir manyetik karıştırıcı üzerinde sep 4.8.1) ya da 4.8.2) hücre-virüs Karışımı karıştırınız ve% 5. Depolama şişesi tamamen hava dolaşımına izin kapalı olmadığından emin olun.
  10. 2 saat sonrası enfeksiyon 3 l spinner kült haline geri hücre-virüs karışımın toplam hacmi aktarınure şişe ve 48 saat sonra 37 ° C'de ve% 5 CO2 doku kültürü kuluçka makinesi içinde 2 L 'lik bir toplam hacme kadar% 5 FBS ile desteklenmiş taze önceden ısıtılmış (37 ° C) MEM ortam 1850 ml ekleyin ve inkübe 70 rpm.
  11. 500 ml santrifüj tüplerine oda sıcaklığında 890x g'da 10 dakika boyunca santrifüj ile hasat hücreleri. Ortamı çıkarın ve DPBS 28 ml 'lik bir toplam hacim içinde tekrar süspansiyon pelet hücreleri. Homojen bir hücre süspansiyonu elde etmek aşağı yukarı pipet ve. Süspansiyon, donmuş emin sıvı azot ya da -80 ° C'de hücre virüs süspansiyonu dondurun. Virüs arıtma başlangıç ​​kadar -80 ° C 'de hücre virüs süspansiyonu saklayın.

5. Arıtma ve HCAdV Diyaliz

  1. , Sezyum klorür (CsCl) geçişlerini viral lizat hazırlanması 37 ° C dört kez bir su banyosu içinde, sıvı azot ve çözülme adım 4,11 hücreden virüs süspansiyonu) dondurmak için.
  2. R 8 dakika boyunca 500 xg'de viral lizat santrifüjT ve HCAdV ihtiva eden süpernatan toplamak.
  3. Ultrasantrifüj ve 31,25 g (1,35 g / cm 3), 33.5 g (1.5 g / cm3 için) CsCl çözeltiler gibi follows.Weigh 37,5 g hazırlamak için (1.25 g / cm3) CsCl tozu sırasıyla ve dolgu dH 2 O 25 ml kadar.
    1. Çözelti kadar karışması sağlandı açık ve steril filtreyi çözümleri olur. Nihayet her çözeltinin 1 ml kaldırmak ve yoğunluğu doğru Hava kontrol etmek için ince bir ölçekte tartın. 1ml sırasıyla 1.5 g, 1.35 ve 1.25 gr ağırlık gerekir.
    2. Yoğunluğu çok yüksekse, steril dH 2 O küçük hacimleri (ul) adım adım ilavesiyle ayarlamak DH 2 O eklendikten sonra tekrar Yoğunluklu ölçün. Gerekirse daha fazla dH 2 O ekleyin
    3. Yoğunluk doğru kadar işlemi tekrarlayın. Yoğunluğu çok düşükse, CsCl tozu az miktarda eklenmesi ile ayarlayın. Steril filtre tekrar ve yoğunluğunu kontrol edin. Yoğunluğu çok yüksekse, eklenti ile ayarlamakg dH önce açıklandığı gibi 2 O. Yoğunluk hala çok düşük eklemek mor CsCI, steril filtre onu tekrar yoğunluğunu kontrol edilirse. Yoğunluk doğru kadar işlemi tekrarlayın.
  4. Altı açık ultrasantrifüjdeki tüplerde CsCI adım geçişlerini hazırlayın. Dikkatle yavaş yavaş, aşağıdaki düzen ile tüplerin içine CsCl çözümler pipetle: 1.5 0.5 ml g / cm3 CsCI çözeltisi, 1.35 ml 3 g / cm3 CsCl çözeltisi ve 1.25 ml 3,5 g / cm 3 CsCl çözeltisi (Şekil 2C) .
  5. Kaplama ~ 1,25 g / cm3 CsCl tabakanın üzerine adım 5.2 temizlenir vektörü süpernatan 4.5 mi). Santrifüj boş parçacıklar ve hücreden virüs partikülleri içeren ayrı HCAdV-genom yavaş hızlanma ve yavaşlama ile 226.000 xg (35,000 rpm) en az 2 saat 12 ° C'de rotor (SW-41) bir salıncak dışarı kullanarak bir ultrasantrifüjdeki geçişlerini enkaz.
    NOT: üstündeki hücre enkaz kalıpları optimal koşullar altında bir yaygın banttüpler. İki Aşağıda beyaz şeritler görülebilir. Alt bant HCAdV (Şekil 2C ve 5A) eşittir oysa üst bant boş parçacıklar içerir.
  6. Dikkatle Hücre kalıntılarının boş parçacıkların tabakaları kaldırmak ve steril bir 50 ml tüp içine temiz bir pipet ucu ile her bir tüpe transfer virüsü, alt bantların 1 ml toplar. G Toplanan virüs parçacıklarına / cm 3 CsCl çözümü ve iyice karıştırın 1,35 24 ml ekleyin.
  7. 1.35 g / cm bir ultrasantrifüjdeki 12 ° C'de 226.000 xg (35,000 rpm) ve üst santrifüj O / N (18- 20 saat) 3 CsCl-virüs çözümü rotor bir salıncak dışarı kullanarak (SW-41 ile santrifüj tüpleri doldurmak ) Yavaş hızlanma ve yavaşlama ile.
  8. Belirgin alt bandında bulunan HCAdV toplayın. Potansiyel bir üst bant boş parçacıklar pipet kullanarak üst üst katmanlarını kaldırmak içerdiğinden Sonra alt bant usi take away (Şekil 2C ve 5B bakınız)bir pipet ng.
  9. Tampon değişimi için toplandı virüs partikülleri Dialyze.
    1. Uzunluğu yaklaşık 8 cm, üç kez steril dH 2 O ile yıkayın: diyaliz tübü (50.000 MWCO) bir şerit kes. Daha sonra plastik bir kelepçe ile diyaliz tübü bir tarafına yakın ve 1 ml pipet kullanılarak tüp içinde) aşama 5,8 toplanan virüs aktarın. Boru içindeki hava kabarcıklarını önlemek ve plastik kelepçe diyaliz kapaklar ile diğer tarafta kapatın.
    2. 4 ° Cwith yavaş karıştırma 2 saat süreyle diyaliz tamponuna (10 mM Tris-HCl (pH 7,5),% 10 gliserol ve deiyonize H 2 O, 1 mM MgCl2) içinde 1 l Dialyze. 2 diyaliz tamponu l ve yavaş karıştırılarak 4 ° C'de O / N diyaliz Exchange diyaliz tamponu. Alternatif olarak, bir sucrosebuffer (140 mM NaCI, 5 mM Na 2 HPO 4 x2H 2, O, 1,5 mM KH 2 PO 4 ve 730 mM sakaroz, pH 7.8) kullanın.
    3. Adım 5.9) 2 diyaliz virüs parçacıkları toplayın. 1 ml p kullanarakipette. İstenen küçük hacimli (25- 100 ul) birden fazla alikotları hazırlayın ve -80 ° C'de saflaştırılmış virüs saklayın.

6. Ölçme Optik Yoğunluk Final HCAdV Hazırlıklar Fiziksel Titre (OD)

  1. Liziz tamponu (10 mM Tris-HCI (pH 7.5) 475 ul ile adım 5.9) 2 nihai vektörü hazırlama 25 ul seyreltilmiş, 10 mM EDTA (pH 8.0),% 0.5 SDS)), yavaşça 20 dakikada çalkalanır RT ve son olarak 15.000 x g'de oda sıcaklığında 2 dakika süreyle santrifüjlenir.
  2. 260 nm'de (A260) absorbans değerleri, genellikle düşük olduğundan, süpernatan 100 ul kullanılarak Emilim dört kez ölçülmesi ve dört ölçümün ortalama değeri hesaplanmıştır. Aşağıdaki formülü kullanarak ml başına viral parçacıkların sayısını (vp / ml -1) hesaplayın: kb içinde vp / ml -1 = (A260 ortalama) x (20) x (1.1 x 10 12) x (36 kb / HCAdV boyutu ).
    Not: Mutlak viral parçacıkların (OD titresi) tipik bir verim sonuçları, Şekil 7A'da gösterilmektedir . Deneyim OD titresi virüs partiküllerinin sayısını olduğundan fazla olduğunu gösterir. OD Mutlak viral partiküller q-PCR ile ölçülen enfeksiyöz viral parçacıkların 100 kat daha fazla 20- olabilir. Tarafından daha kesin absolte ve bulaşıcı HCAdV parçacıklarının ölçümü yanı sıra HV kirlenme q-PCR bölüm 7'ye bakın.

7. Toplam Parçacıklar, qPCR Final Vektör Hazırlama HCAdV ve YG Kirlilik Düzeylerinin Bulaşıcı Birimleri ölçülmesi. Titrasyon Prosedür A Şema Şekil 6'da gösterilen bir

  1. 6 ya da 12 gözlü doku kültür plakaları içinde Tohum HEK293 hücreleri, böylece hücreler, bir sonraki gün% 90 birleşik duruma ulaştılar. Bulaşıcı viral parçacıkların sayısını (bulaşıcı titre) belirlemek için, 1 | il ve adım 5,9 saflaştırılmış virüs 10 ul, ikinci oyuk) ile bir çok-çukurlu plakanın üzerindeki çukurların birinin hücreleri enfekte 3.
  2. Hasat hücreleri 3 saat sonrası enfeksiyon. Orta çıkarın ve tüm kuyu kapsayacak şekilde tripsin eklemek ve 3 inkübe7 ° C ve% 5 5 dakika boyunca CO2. Bir pipet kullanarak tripsin ile hücrelerini yıkayın ve oda sıcaklığında 3 dakika boyunca 890 xg'de hücreleri aşağı doğru döndürün.
  3. DPBS 200 ul pelet hücreleri tekrar süspansiyon ve ücretsiz (non-enfektif) vektör parçacıkları çıkarmak için iyice yıkayın. Oda sıcaklığında 890 x g'de 3 dakika boyunca santrifüj. Taze DPBS 200 ul supernatant ve tekrar süspansiyon hücre pelletleri atın.
    Not: Bulaşıcı titreye doğru belirlenmesi için, tedavi ve kapsamlı yıkama tripsin hücre yüzeyleri olmayan tüm enfektif viral partikülleri temizlemek için çok önemlidir.
  4. Toplam viral partikül sayısı (enfektif parçacıklar olmayan enfeksiyon parçacıklar = Fiziksel titresi) belirlemek için, hasat kendi kültür ortamı, bir pipet kullanılarak ile hücrelerden yıkama Tripsinin vermeden iki kuyu HEK293 hücrelerinin enfekte olmayan.
  5. RT'de 890 x g'de 3 dakika boyunca hücreleri aşağı Spin. Orta atın ve DPBS 200 ul pelet hücreleri tekrar süspansiyon. Subsequently sırasıyla şirketinden hücrelere 1 ul ve n-bütanol HCAdV hazırlama 10 ul ekle. GDNA izolasyon ve sonraki q-PCR için aynı koşulları sağlamak için, arka plan olarak sigara enfekte hücreleri kullanın.
  6. HEK293 adımlar 7.3 türetilen hücrelerin) ve 7.5 gDNA'sından Yalıtmak)
    1. DPBS 3 sn için (aşama 7,3 ve 7,4), 200 ul içinde yeniden süspansiyon haline Vorteks Hücreler, SDS çözeltisi 200 ul ilave edin. (10 mM Tris-HCl (pH 7.5), 10 mM EDTA (pH 8.0),% 0.5 SDS) içinde 20 ul Proteinaz K (20 mg / ml) ve vorteks süspansiyonu 3 sn. 55 ° C'de 12- 16 saat inkübe ve yavaş yavaş sallayın. Daha sonra RNAse A 2 ul (20 mg / ml) ekleyin ve 37 ° C'de 30 dakika inkübe edilir.
    2. 15.000 x g'de 2 dakika süre ile izoamil alkol ve santrifüj: kloroform: fenol 350 ul ekle. Yeni bir tüpe süpernatant aktarın ve bir kez bu adımı tekrarlayın
    3. , Yeni bir tüpe transfer süpernatantı sodyum asetat, 50 ul (pH 5, 3 M) ve buz 1 ml soğuk EtOH (% 99.8) ekleyin ve süspansiyon karıştırılır. Centri15.000 x g'de 10 dakika boyunca fuge örnekleri genomik DNA: pelet.
    4. Daha sonra, süpernatant kaldırmak 15.000 x g'de 2 dakika süre ile 500,% 70 EtOH ul ve santrifüj ekleyin. Süpernatantı,% 70 EtOH 500 ul ve oda sıcaklığında 30 dakika boyunca sallayın. Daha sonra 15.000 x g'de 2 dakika süre ile santrifüjlenir.
    5. Süpernatantı ve hava-kuru DNA pelet çıkarın. O çözeltide gDNA'sından almak zor olacak gibi uzun bir süre değil kuru DNA pelet yapın. DH 2 O 120 ul DNA pelletini ve çalkalayarak 37 ° C sıcaklıkta yaklaşık 1 saat süreyle inkübe edin. DNA solüsyonu viskoz görünürse, 37 ° C'de birkaç saat boyunca sallayın veya ~ 1 saat boyunca 55 ° C'de inkübe edin.
  7. HCAdV genomu içinde ihtiva GOI taşıyan bir plazmidin 10 8 kopya - enfeksiyöz HCAdV parçacıklar ve mutlak HCAdV parçacıkları saptamak için, 10 1, standart bir eğri oluşturmak.
  8. Enfekte HEK293 c gDNA aynı miktarda analiz ederek toplam parçacıkları ve bulaşıcı parçacıklar belirlemeAşama 7.3) ve 7.4) için arşın qPCR HCAdV genomu içinde ihtiva Goa için özel primerler 400 nM kullanılarak uygulanır.
  9. Aşağıda belirtilen PCR programı ayarlayın: Ön inkübasyon 95 ° C de 10 dakika, amplifikasyon için 10 saniye boyunca 95 ° C 40 döngü, 10 saniye 55 ° C ve 20 sn için 72 ° C'dir. Standart eğri (aşama 7,7) temelinde, reaksiyonda adenoviral genom sayısı enterpolasyon.
  10. Aşağıdaki Formular kullanarak nihai vektör hazırlanmasında adenoviral genom sayısını hesaplayın: (HCAdV / ağırlık sayısı reaksiyonu gDNA arasında ng) x (ul ağırlığı tüm hücrelerin DNA ng enfekte çanak / hacim virüsü) .
    NOT: Mutlak ve enfektif viral parçacıkların verim için tipik aralık 1x10 7 -1x10 8 viral partiküller / ul çevresinde bulunmaktadır. Burada gösterdi on kat daha yüksek ya da daha düşük titreler, normal olarak kabul edilebilir. Yüksek titreler bir gelişme olacaktır. Mutlak HCAdV katılımı ile oranı ile ilgili olarakles enfeksiyöz HCAdV parçacıklarına deneyim mutlak HCAdV partiküllerinin yaklaşık 5 ila 10%, bulaşıcı (Şekil 7A) olduğunu göstermektedir.
  11. HV ile kirlilik seviyesini belirlemek için, HV genomunda bulunan adenoviral geç gen 3 (L3) bir kısmını yükselterek qPCR gerçekleştirmek. Standart bir eğri (aşama 7,7) oluşturmak üzere adenoviral geç gen 3 (L3) taşıyan bir plazmit kullanın.
  12. Bu reaksiyonda primerler L3 400 nM geçerli ileri 5'-AGC AGA TTA TCC GCA GTT CGA ACT GTT GG-3 've 5'-L3 ters ATA AGC TTG CAT GGT ATG GTT CAG GAT GG-3' birlikte nM 300 ile L3-spesifik probun 5'-FAM-CCA CCC TGT GTG ACC TGG TGG ACA-TAMRA 3 '.
  13. Aşağıda belirtilen PCR programı ayarlayın: Ön inkübasyon / aktivasyon 95 ° C de 10 dakika, amplifikasyon 15 saniye ve 1 dakika boyunca 60 ° C, 95 ° C 40 döngü süresince. PCR qPCR reaksiyon için master herhangi evrensel prob kullanın. Standart eğri (aşama 7,7) temelinde bölgesi sayısını hesaplamakNihai vektör hazırlanmasında bulaşıcılık HV parçacıklar. HV partiküller için tipik verimler için (Şekil 7A) bakınız.
  14. Nihayet vektör hazırlık kalitesini değerlendirmek için HV kirlilik seviyelerine HCAdV mutlak bulaşıcı parçacıkların oranı hesaplanır.
    NOT: Şimdi kalan HV küçük bir kısmı göz ardı edilemez kadar. Genellikle HV kirlilik oranının kabul edilebilir bulaşıcı parçacıklar ya da daha az ~% 5 (Şekil 7B) 'dir. Mümkün olduğunca az HV arzu edilir Tabii olarak, vektör hazırlama hayvan deneyleri için kullanılan olacak özellikle eğer.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

Klonlama, amplifikasyon ve HCAdV preparasyonlar saflaştırılması için Burada temsili örnekleri gösterilir. Enzim restriksiyon dijest ile bir klonlama stratejisi genel (Şekil 1) ve klonlama için temsili örnekler ve HCAdV genomunun salma (Şekil 2) temin edilmiştir. Sindirimi I PI Sce I ve I-CEU tarafından pHM5 gelen GOI-sentezleme kaseti ve daha sonra fenol-kloroform ekstraksiyonu ve EtOH çökeltme serbest bırakılmasından sonra tipik bir sı...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

Burada sunulan protokol daha önce tarif edilen prosedürlere göre 4,12 insan adenovirüs tip 5 göre HCAdV vektörlerinin saflaştırılmasına olanak tanımaktadır. PAdFTC plasmidinin içinde HCAdV genom Tüm adenovirüs genlerin yoksun olan ve 5'- ve 3'- ITR'ler ve paketleme sinyalini taşır. Bu stratejide HV AdNG163R-2 4 trans etkili bir virüs üretimi için gerekli tüm genleri içerir. Veya adeno bağlantılı virüs (AAV) vektörleri tabanlı - Bu, açık bir şekilde, birinci ve ikinci nesil ADVS...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

Yazarlar hiçbir rakip mali çıkarlarını var olduğunu beyan ederiz.

Teşekkürler

Bu çalışma, DFG hibesi EH 192/5-1 (A.E.), AB (E-nadir-2) projesi Transposmart (A.E.), UWH Forschungsförderung (E.S. ve W.Z) ve Witten/Herdecke Üniversitesi'nin (PB) doktora programı tarafından desteklenmiştir. JL, Çin Burs Konseyi'nin bir bursu ve T.B. ve M.G, Else Kröner-Fresenius vakfı (EKFS) tarafından desteklendi.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
I-CeuINew England BiolabsR0699Skısıtlama özeti
PI-SceINew England BiolabsR0696Skısıtlama özeti
T4 LigaseNew Engand BiolabsM0202Sligasyonu
SwaINew England BiolabsR0604Skısıtlama özeti
NotINew England BiolabsR0189Skısıtlama özeti
Buzağı Bağırsak Alkalin Fosfataz (CIP)New England BiolabsM0290Ssindirilmiş plazmitlerin defosforilasyonu
Higromisin BPANBiotech P02-015116 hücreli CRE seçimi
DMEMPAN BiotechP04-03590     Hek293T hücre kültürü ortamı
Minimal Esansiyel Ortam (MEM) EaglePAN BiotechP04-08500116 hücre kültürü ortamı   
Dulbecco' s fosfat tampon salin (DPBS)PAN BiotechP04-36500hücrelerin yıkanması, hücrelerin yeniden süspansiyonu
250 ml saklama şişesiSigmaCLS430281-24EAsüspansiyonda büyütülen 116 hücrenin enfeksiyonu
500 ml PP Santrifüj TüpleriSigmaCLS431123-36EAsüspansiyon kültüründen hücrelerin sedimantasyonu
Spinner şişesiBellco1965-61030'da116 hücrenin büyümesi süspansiyon
Ultra Şeffaf Ultrasantrifüj tüpleriBeckmann Coulter344059yoğunluk gradyan santrifüjleme
UltrasantrifüjBeckmann Coulteryoğunluk gradyan santrifüjleme
SW-41 rotorBeckmann Coulteryoğunluk gradyan santrifüjleme
Spektrum Laboratuvarları Spectrapor MembranVWR132129diyaliz tüpleri
Kullanıma hazır diyaliz kasetleri Termo66383diyaliz
tek atış DH10B elektroyetkin E. coliinvitrojenC4040-52ligasyon reaksiyonlarının dönüşümü
PureYield Plazmid Midiprep SistemiPromegaA2495midiprep
peqGOLD Doku DNA Mini Kiti ve nbsp;Peqlab12-3396-02genomik DNA
SuperFect Transfeksiyon Reaktifininizolasyonu Qiagen301305116 hücrenin transfeksiyonu
opti MEM (% 10 FBS)Gibco31985-062116 hücrenin transfeksiyonu
iQ SYBR GreenSupermix BioRad  170-8882q-PCR
CFX 96 C1000 dokunmatik BioradqPCR makinesi
Fenol / Kloroform / İzoamil alkol  Carl RothA156.1DNA
Sezyum klorürünCarl Roth8627.1yoğunluk gradyan santrifüjleme
sodyum asetat %99Carl Roth6773.2DNA çökeltme
LB ortamı Carl RothX968.3bakteri üreme ortamı
etanol & nbsp;% 99.8 safCarl Roth9065.5 & nbsp;DNA çökeltme ve yıkama
SDS %99,5CarlRoth2326.2lizis  tampon
EDTACarl Roth8043.2lizis  tampon
Tris-HCl %99CarlRoth9090.3diyaliz tamponu/ lizis  tampon
gliserol %99,5CarlRoth3783.1diyaliz tamponu
MgCl2 98.5%Carl RothKK36.2diyaliz tamponu
NaClCarl Roth3957.1isteğe bağlı diyaliz tamponu
KH2PO4Carl Roth3904.2isteğe bağlı diyaliz tamponu
sükrozCarl Roth9286.1isteğe bağlı diyaliz tamponu
Na2HPO4x2H2OCarl Roth4984.2İsteğe bağlı diyaliz tamponu
1.5 ml tüplerSarstedt72.730.005Virüs preparatlarının -80 ° C'de saklanması; Ç
saflaştırılması

Kaynaklar

  1. Benihoud, K., Yeh, P., Perricaudet, M. Adenovirus vectors for gene delivery. Curr Opin Biotechnol. 10 (5), 440-447 (1999).
  2. Crystal, R. G. Adenovirus: the first effective in vivo gene delivery vector. Hum Gene Ther. 25 (1), 3-11 (2014).
  3. Parks, R. J., et al. A helper-dependent adenovirus vector system: removal of helper virus by Cre-mediated excision of the viral packaging signal. Proc Natl Acad Sci U S A. 93 (24), 13565-13570 (1996).
  4. Palmer, D., Ng, P. Improved system for helper-dependent adenoviral vector production. Mol Ther. 8 (5), 846-852 (2003).
  5. Morral, N., et al. High doses of a helper-dependent adenoviral vector yield supraphysiological levels of alpha1-antitrypsin with negligible toxicity. Hum Gene Ther. 9 (18), 2709-2716 (1998).
  6. Muruve, D. A., et al. Helper-dependent adenovirus vectors elicit intact innate but attenuated adaptive host immune responses in vivo. J Virol. 78 (11), 5966-5972 (2004).
  7. Ehrhardt, A., et al. A gene-deleted adenoviral vector results in phenotypic correction of canine hemophilia B without liver toxicity or thrombocytopenia. Blood. 102 (7), 2403-2411 (2003).
  8. Cots, D., Bosch, A., Chillon, M. Helper dependent adenovirus vectors: progress and future prospects. Curr Gene Ther. 13 (5), 370-381 (2013).
  9. Mizuguchi, H., Kay, M. A. Efficient construction of a recombinant adenovirus vector by an improved in vitro ligation method. Hum Gene Ther. 9 (17), 2577-2583 (1998).
  10. Mizuguchi, H., Kay, M. A. A simple method for constructing E1- and E1/E4-deleted recombinant adenoviral vectors. Hum Gene Ther. 10 (12), 2013-2017 (1999).
  11. Ehrhardt, A., Kay, M. A. A new adenoviral helper-dependent vector results in long-term therapeutic levels of human coagulation factor IX at low doses in vivo. Blood. 99 (11), 3923-3930 (2002).
  12. Jager, L., et al. A rapid protocol for construction and production of high-capacity adenoviral vectors. Nat Protoc. 4 (4), 547-564 (2009).
  13. Sambrook, J., Russell, D. W. Molecular Cloning: A Laboratory Manual. 1-3, Cold Spring Harbor Laboratory Press. New York. (2001).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Etiketler

pAdFTC PlazmidiHoming Endon kleazlarHEK293 retici H crelerYard mc Vir s Ko enfeksiyonuSpinner Flask AmplifikasyonuSezyum Klor r PurifikasyonuUltrasantrif jasyonDiyaliz Tamponu De i imi
İnsan Adenovirüs Tip 5 dayanarak Yüksek Kapasiteli Adenoviral Vektörler klonlanması ve Büyük Ölçekli Üretim
Bize Ulaşın
Kütüphaneye Öner

Gizlilik

Kullanım Koşulları

Politikalar

Telif Hakkı © 2026 MyJoVE Corporation. Tüm hakları saklıdır.