Yöntem makalesi

Adım özgü Fare spermatidlerin Sıralama'yı Akışı Sitometrinin tarafından

DOI:

10.3791/53379

⸱

31 Aralık 2015

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Biochemistry, Université de Sherbrooke, 2Department of Medicine, Université de Sherbrooke

* These authors contributed equally

Bu makalede

Özet

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Akış sitometrisi kullanarak fare spermatidleri için bir sıralama stratejisi açıklıyoruz. Spermatidler, yuvarlak (spermiyogenez aşamaları 1-9), erken uzayan (spermiogenez aşamaları 10-12), geç uzayan (spermiyogenez aşamaları 13-14) ve uzun spermatidler (spermiyogenez aşamaları 15-16) dahil olmak üzere oldukça saf dört popülasyona ayrılır. Seçim parametreleri olarak DNA boyama, boyut ve granülozite kullanılır.

Özet

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Fare spermatidler farklılaşması sağlam bir genomu olan bir fonksiyonel erkek gamet üretimi için bir kritik işlem sonraki kuşağa olmaktır. Şimdiye kadar, bu morfolojik geçiş moleküler çalışmalar daha sonraki analizler için spermatid farklılaşma bu önemli adımlardan yeterli ayrılmasını sağlayan bir yöntem olmaması nedeniyle sekteye oylandı. Akış sitometri kullanılarak bu hücrelerin düzgün gating de önceki girişimler için kromatin yenileme geçiren spermatidler DNA floresan kendine özgü bir artış zor olabilir. Bu gözleme dayanarak, biz etanol ile sabit fare spermatid dört popülasyonlarının tekrarlanabilir arıtılmasını sağlayan düzeni sitometri basit bir akış ayrıntıları, her nükleer yeniden şekillenme sürecinde farklı bir durumu temsil. Nüfus zenginleştirme aşaması özgü işaretleri ve morfolojik kriterler kullanılarak teyit edilir. Saflaştırılmış genomik spermatidler ve proteom için kullanılabiliric analizleri.

Giriş

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Haploid yuvarlak spermatidler, spermiyogenez adı verilen bir süreçle spermatozoaya farklılaşır. Bu, bir kamçının elde edilmesi, kromatin ve hücre iskeletinin yeniden şekillenmesi, çekirdeğin yoğunlaşması ve sitoplazmanın çoğunun kaybı dahil olmak üzere birçok farklı adımı içerir. Döllenmeye uygun, bozulmamış bir genoma sahip olgun bir fonksiyonel gamet üretmek için bu benzersiz hücresel olayların hassas bir şekilde düzenlenmesi gerekir. Spermiyogenez in vitro olarak incelenemez, çünkü şimdiye kadar hiçbir güvenilir hücre kültürü sistemi sürecin farklı aşamalarında ilerlemeyi destekleyememiştir. Ayrıca, gerçek in vitro teknikler düşük verime yol açar1,2. İn vivo, spermiyogenezin farklı aşamaları boyunca uygun geçişler, erkek gametin doğal fonksiyonel bütünlüğü için çok önemlidir. Spermatidlerin farklılaşma adımlarına göre başarılı bir şekilde saflaştırılması, spermiyogenezin moleküler karakterizasyonuna izin verecek yeterli bir zenginleştirme seviyesi ile hiçbir zaman gerçekleştirilmemiştir. Örneğin, spermatidal farklılaşmanın temel adımlarının saflaştırılması, gelişmekte olan akrozomun oluşumu, orta parça3'ün oluşumu, hücre bağlantı dinamikleri4, RNA dinamikleri5, kromatin yeniden şekillenme süreci6,7 veya genomik stabilite8'i incelemek için özellikle yararlı olacaktır. Spermatidlerin saflaştırılması, ilerleyici morfolojik dönüşümleri, bilinen evreye özgü dış biyobelirteçlerin eksikliği ve kendine özgü şekil ve büyüklükleri nedeniyle engellenmiştir.

Çoğu erkek germ hücresi, DNA lekelenmesi ile ploidi (DNA içeriği) arasında doğrudan bir ilişki gösterse de, bu tür pozitif korelasyonun artık spermatidler için geçerli olmadığını fark ettik. Bu, seminifer tübül kesitlerinin farklı spermiyogenez aşamaları boyunca değişken yoğunlukta DNA boyama gösterdiğine dair erken gözlemimizden kaynaklanmaktadır. DNA boyama, spermiyogenez aşamaları 1'den 7'ye kadar olan haploid kromozom setleriyle tutarlı olmasına rağmen (yuvarlak spermatidler), nükleer yeniden yapılanma ve kromatin yeniden şekillenmesinin başlangıcında DAPI veya SYTO 16 ile floresan yoğunluğunda keskin bir artış gözlemledik (spermiogenez adım 8) nükleer yoğunlaşmanın başlangıcında zirveye ulaştı (spermiogenez aşamaları 11-12). Çekirdeğin yoğunlaşmasını takiben, DNA boyama yoğunluğu spermleşmeye kadar azalır (spermiogenez aşaması 16). Bunun muhtemelen, histonların protaminlerle değiştirildiği tuhaf kromatin yapı geçişlerinin oluşumu ile ilişkili olduğunu tahmin ettik. Bu nedenle, ana seçim parametresi olarak spermatidlerin DNA yoğunluğunun değişimini kullanarak spermatidlerin ayrılmasına izin veren güvenilir bir akış sitometrisi yöntemi geliştirdik.

Basit bir akış sitometrisi yaklaşımı, fare spermatidlerini görünür DNA içeriğine (SYTO16 boyama), boyutlarına ve granülozitelerine göre yüksek saflıkta (%95-100) ayırmak için tanımlanmıştır. Spermatidler dört popülasyona ayrılır; spermiyogenez aşamaları 1-9, 10-12, 13-14 ve 15-16. Saflaştırılmış spermatidler, genetik/genomik analizlerin yanı sıra grup9'un yakın tarihli bir yayınında açıklandığı gibi proteomik uygulamalar için uygundur.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Protokol

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Hayvan bakım Université de Sherbrooke hayvan bakımı ve kullanımı komitesi ile uyumlu idi.

1. Tüp Hazırlığı

  1. Hücre sıralama bir gün önce, 5 ml'lik bir polipropilen yuvarlak tabanlı tüpe ısı ile inaktive edilmiş fetal büyükbaş hayvan serumu (FBS) ile 1-2 ml ekleyin ve 15 ml ve 50 ml polipropilen konik tüplere.
    Kritik adım: protokolünde kullanılan her tüp kaplı olduğundan emin olun.
    Not: FBS kaplama boru duvarlarına yapışmasını germ hücrelerine önler.
  2. Yavaş yavaş tüpler aynı şekilde bir rotator ile kaplamak için, 4 ° C'de ters çevirme ile O / N karıştırın.
  3. Ertesi gün, boşaltılarak kaplanmış tüpler FBS çıkarın.
    1. * Kritik adım: 5 ml polipropilen yuvarlak dipli tüpler ve hücre hazırlanması için kullanılan 15 ve 50 ml tüpler (protokol 2.11 2.1 adımları) tamamen havalandırmak (yan akımlarının, yani belirsiz sapma) önlemek için FBS boşalttı emin olun. FBS kaldırmak için bir P200 pipetlemeyin kullanın.
      Not: önce hücrelerle veya hücre ayırma sırasında kullanılan tüpler kontaminasyon kaybına neden olabilir sıralama için tüplere Kalıntı FBS,
    2. Yuvarlak 5 ml polipropilen saflaştırılmış hücreleri toplamak için kullanılan alt tüpler içinde FBS (yaklaşık 100-200 ul) küçük bir kalıntı hacmi bırakın.

2. Hücre Hazırlanması

  1. O CO 2 boğulma ardından 2 / izofluran (daha sonra% 2 oranında muhafaza% 5 indüksiyon) ile anestezi altında tek erkek fare Kurban.
  2. Tüketim ve açarlar hem testis ve 1.5 ml tüp içine tampon sıralama 500 ul küçük bir makas ile kıyma.
  3. Sağlam bir 100-1,000 ul ucu ile daha sonra seminifer ilk kesik 100-1,000 ul ucu ile 1.5 ml tüp nazik yukarı ve aşağı pipetleme tübüllerinde, ve gelen yıkayın germ hücreleri.
  4. 40 mikron hücre süzgeç kullanılarak bir filtrasyon adım enkaz ve kümeleri çıkarın ve 50 ml konik tüp prev içine süzülen toplamakiously Aşama 1 FBS kaplanmıştır.
  5. Daha önce 1. adımda kaplı 15 ml konik tüp içine toplam 3 ml hacminde ve transfer filtrata kadar tampon sıralama ile bir kez filtreyi yıkayın.
  6. 0,8 mM EDTA nihai bir konsantrasyon elde etmek üzere, 50 mM EDTA hücre süspansiyonu mililitre başına pH 8 (3 ml 48 ul) 16 ul ekle.
  7. Germ hücreleri düzeltmek için, yavaş yavaş süt süspansiyon üretecek hafif ajitasyon ile 10 mi pipeti (düşük hızda vorteks) kullanılarak buz-soğuğu% 100 etanol içinde 3 hacim ekleyin.
    Kritik adım: yavaşça etanol ilave hücre hazırlama bütünlüğünü korumak için çok önemli ve çok önemlidir. Biz etanol hızlı ekleme etkinliğini sıralama önemli bir düşüşe neden hücre lizizine neden olduğunu kaydetti. 3 ml hücre süspansiyonu için, etanol, 9 ml, yaklaşık 1 dakika içinde ilave edilmelidir.
  8. Ters çevirme ile ara sıra karıştırma ile 15 dakika süreyle buz üzerinde inkübe hücreleri.
  9. Santrifüj hücre 5 dakika boyunca 800 xg'de süspansiyon ve net çıkarmaksüpernatant.
  10. Yavaşça tampon sıralama 2 ml sabit germ hücreleri tekrar süspansiyon.
  11. SYTO16 DNA boyası (DMSO içinde 1 mM çözelti) 4 ul ekleyin ve (ışıktan korunarak), en az 30 dakika inkübe edilir.
    Not: iyi sıralama sonuçları kolayca spermatidlerin yüksek oranda sıkıştırılmış çekirdekler dahil edilen geçirgen bir DNA boya olduğu SYTO16 kullanılarak elde edilir.

3. Hücre Ayırıcı Kurma

Not: Burada, bir 4-Lazer (405 nm - menekşe, 488 nm - mavi, 561 nm - sarı-yeşil, 633 nm - kırmızı) 20-parametre BDFACSAria III hücre sıralayıcı kullanılır. BD FACSDiva 6.1.3 yazılımı veri görselleştirmek ve analiz etmek için kullanılır. Ayarları kullanılır sıralayıcı türüne bağlı olarak değişebilir.

  1. Fluidik kapatma prosedürü (yazılımında "Sitometre" menüsü) sıralama öncesinde sırasında kılıf sıvısı olarak% 70 etanol çalıştırarak FACS sıralayıcı sterilize edin. Yazılımın araç çubuğundaki "Sitometreyi" seçin ve "Fluidic sh seçin. "utdown süreçler tarafından belirtilen adımları izleyin.
  2. Hazırlama ve herhangi bir kristal ve kirletici maddelerin bertaraf edecek şekilde bir 0.22 um filtre ile 1x PBS filtre. Tankın iç üst kaynak hattına kılıf deposunu doldurunuz.
  3. Yazılımını başlatın ve oturum açın. Önce sıralama için en az 30 dakika süreyle lazer ısınmak için FACS sıralayıcı başlatın. Akıskanlar tekni˘gi gelen etanol dışarı floş iki akışkan başlangıç ​​süreçlerini çalıştırın. Yazılımın araç çubuğundaki "Sitometreyi" seçin ve "Fluidic başlangıç" ı seçin. Süreçlerle belirtilen adımları izleyin.
    Not: Bu normal bir kılıf sıvısı (1x PBS) ile Fluidics geri yükler.
  4. Sıralama blok ve distile su ile saptırma plakaları temizleyin ve iyice kurulayın. Bir sonikasyon banyosu içinde 2 dakika için damıtılmış su içinde bir boru içine yerleştirilmiş bir 100 um ağızlık sonikasyon. Iyice memeyi silin.
  5. Akış hücre içine 100 mikron memesini takın ve 12 meme-kilitleme kolunu saat yönünde çevirinhr pozisyonu. 20 psi kılıf basıncını ayarlayın.
  6. Dere açın ve (30 civarında) frekans hedef değerleri elde etmek için genlik ayarlayın 1 (150 civarında) bırakın ve (12 civarında) Gap ve istikrarlı bir damlacık kırılması deseni (birkaç uydu damla) kurmak. Zayıflama kapatın.
  7. Dere düz ve sıralama bloğunun açısını değiştirerek atık aspiratör merkezini vurur emin olun. Not: 10 psi A 130 mikron meme de test edildi ve belirgin bir fark bulunmuştur.
  8. Sarı-yeşil lazerler için, mavi mor kırmızı için -77.39, 37.33 -39.85 ve için 0 olarak ayarlayın lazer gecikme.
  9. Sarı-yeşil lazerler için, mavi mor kırmızı için 1.0, 0.75 ve 0.96 için 1.14 ölçekleme ayarlayın alanları.
  10. (Yazılım "Yan Akım" penceresinde) Test Sıralama kullanarak, yan akışları havalandırarak olmadığından emin olun. Onlar middl isabet böylece "Yan Akım" penceresinde, her yan akımının gerilim sürgü ayarlamakTest toplama tüpünün e. Merkez akışı sıkı değilse, merkez akışı sınırlamak için 2 nd, 3 rd ve 4. damla ayarlarını.
  11. Yazılımın ("Sitometre" menüsü) Sitometrenin Kurulum ve İzleme (CS & T) uygulamasını başlatın.
  12. Üreticinin talimatlarını kullanarak sitometresinin performans karakterizasyonu ve izleme otomatikleştirmek için 350 ul başına 1 damla sitometresinin kurulum ve izleme boncuk kullanın.
  13. CS & T uygulaması çıkın. CS & T ayarı uygulamak, dere parametreleri hala istikrarlı bir damlacık kırılması modelini izin verdiğinizden emin olun, ve ("kırılması penceresinde" olarak) üreticinin talimatlarına açıklandığı gibi Sweet Spot butonuna açın.
  14. Floresan boncuklar kullanarak Bırak Gecikme değerini optimize (Malzeme Tablo).
    1. Tutucuya toplama tüpleri yükleyin. Sıralama bloğu kapağını açın. "Yan Akım" penceresinde, "seçeneğini ardından gerilime açınTest sıralama "ve çekmeceyi açın ve toplama tüpleri erişimi için Aspiratör Çekmece düğmesini tıklatın.
    2. Onlar tüp merkezine gitmek böylece yan akışları optimize edin. Gerektiği gibi değer ve kaydırma çubuklarını ayarlayın.
    3. Sıralama bloğu kapağını kapatın ve merkezde parlak boncuk nokta elde etmek mikrometre kadranını ayarlamak için emin olun. Unselect atık çekmece test sıralama ve gerilim. Toplama tüpleri çıkarın.
    4. Üreticinin talimatlarına göre açılan gecikme optimize edin.
      1. Kısaca, boncuk şişe kuvvetlice sallayın ve PBS 0.5 ml boncuk 1 damla sulandırmak.
      2. Üreticinin talimatlarına kullanarak, yazılım mevcuttur Bırak Gecikme deneme şablonu kullanarak damla gecikme ayarlayabilirsiniz. Alternatif olarak, açılan gecikmesini ayarlamak için Otomatik Bırak Gecikme özelliğini kullanın.
      3. Floresan boncuk tüp yerleştirin ve eşik oranı kadar ~ 3.000 4.000 olaylar / saniye akış hızını ayarlayın. Sıralama hassasiyetini ayarlamak için "İlk" ve sonly "Sıralama düzeni" penceresindeki "İnce ayar" için. Optik filtreyi seçin ve boncuk sıralayın. % 100 sola sıralanır ~ kadar Bırak Gecikmesi ayarlayın.
        Not: Bu adım emin olmak için kritik olduğunu bir yan akışına faiz tür hücreler. Boncuk ve optik filtre, bir% 100 damlacık sapma yakın elde etmek için kullanılır.
  15. FSC dedektörü bloğunun sol ucundaki bir FSC 1.5 ND (nötr yoğunluk) filtreyi yerleştirin. 2.00 us pencere uzantısı ve ("Sitometre" penceresindeki "Lazer" sekmesinde) 1.00 FSC Alan ölçekleme ayarlayın.
  16. Örnek tüpü yerleştirmeden önce, topaklanma önlemek için örnek hattının sonunda 50 um örnek filtre satırı koyun. Bunu yapmak için, "Sitometre" menüsünden "Örnek Filtre değiştirme" seçeneğini seçin.
  17. Yan akım arasındaki havalandırmadan iyi bir şekilde ayrılmasını sağlamak ve Polipropilen yapışmasını önlemek için hücrelerin örnek sıvı bileşimin testne tüpler.
    1. , Örnek tüp Yük saptırma plakaları açın ve çekmece kapalı "Test tür" seçeneğini seçin. Ayrılık çok fazla ventilatör olmadan oluşursa yan dereler bak.
      Not: Havalandırma, numune tamponu içinde, yüksek protein konsantrasyonunda muhtemeldir.
  18. FACS aracı haline örnek tüp yükleyin. 300 rpm'lik bir ajitasyon örneği ve 4 ° C'de bir örnek sıcaklığı seçin. "Acquisition Dashboard" in "Veri Edinme" seçeneğini seçin.
  19. Gerekirse, (3.0 maksimum akış hızında) / saniye 5000 etkinlikleri en fazla, uygun bir olay hızı elde etmek için örnek seyreltin. Sıralanmış hücrelerin saflığını muhafaza edecek şekilde Strictly bu sınırları saygı.
  20. Analiz ve hücreleri sıralamak için, faiz nüfusu müdahale etmeden enkaz ortadan kaldırmak için FSC eşik değerini optimize. Logaritmik ölçekte yapmak amacıyla 530/30 filtresi ile foto-çoğaltıcı tüp (PMT) dedektörün voltajını ayarlamakEmin toplam nüfusun floresan sinyal ölçeğinde dahilinde ve pozitif nüfus kapısı (Şekil 1, Kapı 1).
  21. Bir Forward Scatter-alanı (FSC-A) / Side Scatter alan SYTO16 pozitif nüfusun (SSC-A) arsa üretin ve yaklaşık 110 V Doğrusal ölçekte için FSC-A ayarlayın ve yaklaşık 150 V SSC-A Çok büyük hücreleri ve hücre agrega hariç ise logaritmik ölçekte tüm olayları görselleştirmek için.
  22. "Sıralama Düzeni" penceresinde, "Sıralama Hassas Mode" set "4-yollu saflık" için (Verim maskesi: 0, Saflık Maskesi: 32, Faz Maskesi: 0). Sürekli sıralama için "Hedef Etkinlikler" menüsünden "Sürekli" yi seçin.
  23. ("Sıralama Düzeni" penceresinde) tüplere karşılık gelen alanda sıralamak için popülasyonları ekleyin. Yüksek orta frekans ve ucunda düşük frekanslarda olanlar ile yerleştirin popülasyonları. , Sıralama sırasında 2500 V gerilim plakaları ayarlayın örnek toplama t tutmakBuz üzerinde UBE.

4. Hücre Ayırma

  1. Hemen sıralamadan önce, yuvarlak dipli tüp önceden kaplanmış 5 ml polipropilen 50 mikron filtre kullanılarak filtre hücreleri.
  2. Tampon sıralama 1-2 ml yoğun filtreyi yıkayın.
  3. Şekil 1'de detaylı yolluk planı izleyen bir 488 nm lazer donanımlı hücre sıralayıcı kullanılarak sırala sabit germ hücreleri. Daha önce buz üzerinde bölüm 1 kaplı 5 ml polipropilen yuvarlak dipli tüplerde arıtılmış kesirler toplayın.
    1. FBS 100-200 ul tüp duvarına sıralanmış hücrelerin yapışmasını önlemek için toplama tüpleri muhafaza olduğundan emin olun.
    2. SYTO16 konsantrasyonu sıralama döneminde floresan dalgalanmaları önlemek için doygunluğa emin olun. Ayırma Grafiklerdeki Alexa Fluor 488 parametresi (DNA boyama) hücre boyama yoğunluğunun daha fazla değişiklik olduğunda SYTO16 satürasyon. Gerekirse, 1 ulSıralama tüp SYTO16 doygunluk ulaşmak için.
    3. Alexa Fluor 488-A vs olay sayısı: aşağıdaki parametreleri gösteren bir grafik üzerinde toplam etkinlik gösterir.
    4. Şekil 1 'de gösterildiği gibi, Gate 1 pozitif bir DNA boyama hücreleri seçin.
      1. Parametre olarak FSC-A vs SSC-A kullanılarak bir grafik üzerinde kapısı 1 Ekran hücreleri
        1. Şekil 1'de gösterdiği gibi, Gate 2 ile hücreleri seçin.
        2. Parametre olarak Alexa Fluor 488-A vs FSC-A kullanılarak bir grafik üzerinde Gate 2 Ekran hücreleri.
        3. Şekil 1'de gösterdiği gibi, Gate 2 grafik üzerinde Gate 5 ve Gate 6 hücreleri seçin.
        4. Parametre olarak Alexa Fluor 488-A vs 488-W Alexa Fluor kullanarak grafik üzerinde ayrı ayrı Gate 5 ve 6 Gate gösterir.
        5. Seç Spermiyogenez Gate 5 grafikte 1-9 spermatid adımları ve Şekil 1'de gösterdi Spermiyogenez Gate 6 grafik 10-12 spermatid adımları yineleyin.
      2. Ekranparametre olarak Alexa Fluor 488-A vs FSC-A kullanılarak bir grafik üzerinde kapısı 1 hücreleri
        1. Şekil 1'de gösterdiği gibi, Gate 3 ve Gate 4 hücreleri seçin.
        2. Parametre olarak Alexa Fluor 488-A vs 488-W Alexa Fluor kullanarak grafik üzerinde ayrı ayrı Gate 3 ve Gate 4 görüntüler.
        3. Seç Spermiyogenez Kapısı 3 grafik üzerinde 13-14 spermatid adımları ve Şekil 1'de gösterdi Spermiyogenez, Gate 4 grafik üzerinde 15-16 spermatid adımları yineleyin.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Yolluk strateji akış sitometri ile kullanılabilir

Şekil 1 dört derece saf spermatid popülasyonları sıralamak için flow sitometri kullanılan yolluk stratejisini temsil eder. Kısaca, pozitif DNA boyama hücreleri (Alexa Fluor 488-A) Birinci boyut vs granulosity (SSC-A) gösteren bir nokta arsa üzerinde Spermiyogenezin 1. spermatid 1-12 seçilir adımlar Kapısı (Gate 2) ile seçilir (FSC Kapı 1. A) Daha sonra, Spermiy...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Spermatogenik hücreler her zaman seminifer epitel karmaşıklığı yanı sıra, in vitro kültür sınırlı bir başarı verilen araştırmaya zorlu oylandı. Yıllar boyunca, pek çok yaklaşım, çeşitli türlerden germ hücreleri geliştirildi saflaştırmak için. Percoll ya da sığır serum albümini gradyanları ile gravite arıtma kullanılarak sedimentasyon teknikler genellikle sağlam germinal hücrelerde daha iyi bir verim sağlar, ancak bu mayoz tetraploid hücre ve spermatidler 10 gibi bazı hücre tipleri arasında, uygun bir...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Yazarlar herhangi bir rakip mali çıkar beyan etmemektedir.

Teşekkürler

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Yazarlar Epifloresans mikroskobu ile ilgili teknik danışmanlık için Dr. Leonid Volkov ve Éric Bouchard teşekkür etmek istiyorum.

Finansal destek

GB Sağlık Araştırması (hibe # MOP-93.781) Kanada Enstitüleri tarafından finanse

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
IsofluranABBOT05260-05Ötenazi öncesi fare anestezisi için
Fetal sığır serumuWisent90150Tüp kaplama için
1x PBS
EDTABioShopEDTTampon hazırlamayı sıralamak için
HEPESSigmaHTampon hazırlamayı sıralamak için
%100 EtanolLes alcools de commerce092-09-11NHücre fiksasyonu için
SYTO 16Life TechnologiesS7578DNA boyama
5 ml polipropilen yuvarlak tabanlı tüplerBD Falcon352063Sıralanmış hücrelerin toplanması
15 ml polipropilen konik tabanlı borularPROgene1500
50 ml polipropilen konik tabanlı borularPROgene5000
TEC4 anestezik buharlaştırıcıOhmeda1160526Fare ötenazisi için
CO2< / sub> gaz tankıPraxairC799117902Fare ötenazisi için
O2< / sub> gaz tankıPraxairO254130501Fare ötenazisi için
Ev yapımı fare gaz odasıFare ötenazi
40 & mikro için; m Falcon hücre süzgeciCorning Incorporated352340
50 μ m numune hattı filtreleriBD Biosciences649049
Vorteks karıştırıcıLabnet international, inc.S0200Hücre fiksasyonu için
Dynac santrifüjClay Adams101
Celltrics 50 & m filtrelerPartec04-004-2327
488 nm lazerle çalışan hücre sıralayıcıBD BiosciencesFACSAria III
Accudop FloresanBoncuklar BD Biosciences345249
Sıralama Tamponu: 1x PBS, 1 mM EDTA pH 8.0, 25 mM HEPES pH 7.0, %1 FBSFBS ısıyla etkisiz hale getirilir. Taze çözelti yapın, 0.22 & mu; m filtrelenir ve 4 ° C'de tutulur.
,

Kaynaklar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Sato, T., et al. In vitro production of functional sperm in cultured neonatal mouse testes. Nature. 471 (7339), 504-507 (2011).
  2. Sato, T., et al. In vitro production of fertile sperm from murine spermatogonial stem cell lines. Nat. Commun. 2, 472(2011).
  3. Sun, X., Kovacs, T., Hu, Y. -J., Yang, W. -X. The role of actin and myosin during spermatogenesis. Mol. Biol. Rep. 38 (6), 3993-4001 (2011).
  4. Cheng, C. Y., Mruk, D. D. Cell junction dynamics in the testis: Sertoli-germ cell interactions and male contraceptive development. Physiol. Rev. 82, 825-874 (2002).
  5. Laiho, A., Kotaja, N., Gyenesei, A., Sironen, A. Transcriptome profiling of the murine testis during the first wave of spermatogenesis. PLoS ONE. 8 (4), (2013).
  6. Leduc, F., Maquennehan, V., Nkoma, G. B., Boissonneault, G. DNA damage response during chromatin remodeling in elongating spermatids of mice. Biol. Reprod. 78 (2), 324-332 (2008).
  7. Meistrich, M. L., Mohapatra, B., Shirley, C. R., Zhao, M. Roles of transition nuclear proteins in spermiogenesis. Chromosoma. 111 (8), 483-488 (2003).
  8. Grégoire, M. -C., et al. Male-driven de novo mutations in haploid germ cells. Mol. Hum. Reprod. 19 (8), 495-499 (2013).
  9. Simard, O., et al. Instability of trinucleotidic repeats during chromatin remodeling in spermatids. Hum. Mutat. , (2014).
  10. Wykes, S. M., Krawetz, S. Separation of spermatogenic cells from adult transgenic mouse testes using unit-gravity sedimentation. Mol. Biotechnol. 25 (2), 131-138 (2003).
  11. Yoshida, S., et al. The first round of mouse spermatogenesis is a distinctive program that lacks the self-renewing spermatogonia stage. Development (Cambridge, England). 133 (8), 1495-1505 (2006).
  12. Moreno, R. D., Lizama, C., Urzúa, N., Vergara, S. P., Reyes, J. G. Caspase activation throughout the first wave of spermatogenesis in the rat. Cell Tissue Res. 325 (3), 533-540 (2006).
  13. Meistrich, M. L., Trostle-Weige, P. K., Van Beek, M. E. Separation of specific stages of spermatids from vitamin A-synchronized rat testes for assessment of nucleoprotein changes during spermiogenesis. Biol. Reprod. 51 (2), 334-344 (1994).
  14. van Pelt, A. M., de Rooij, D. G. Synchronization of the seminiferous epithelium after vitamin A replacement in vitamin A-deficient mice. Biol. Reprod. 43, 363-367 (1990).
  15. Getun, I. V., Torres, B., Bois, P. R. J. Flow cytometry purification of mouse meiotic cells. J. Vis. Exp. , (2011).
  16. Kovtun, I. V., McMurray, C. T. Trinucleotide expansion in haploid germ cells by gap repair. Nature Genet. 27 (4), 407-411 (2001).
  17. Bastos, H., et al. Flow cytometric characterization of viable meiotic and postmeiotic cells by Hoechst 33342 in mouse spermatogenesis. Cytometry A. 65 (1), 40-49 (2005).
  18. Lassalle, B., Ziyyat, A., Testart, J., Finaz, C., Lefèvre, A. Flow cytometric method to isolate round spermatids from mouse testis. Hum. Reprod. 14 (2), 388-394 (1999).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya şekillerini yeniden kullanmak için izin iste

İzin iste

Etiketler

SpermiyogenezKromatin Yeniden D zenlenmesiH cre Ay klamaDNA BoyamaEtanol FiksasyonuYan Sa l mleri Sa l mAlexa Fluor 488

İlgili makaleler