Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliğiniz gereklidir. Giriş yapın veya ücretsiz denemenizi bugün başlatın.

Yöntem makalesi

Fare Beyin Dilim Hazırlık içinde nöbet benzeri Faaliyet doğrudan akım Stimülasyon ve Multi-elektrot Dizi Kaydı

10.2K görüntülenme

⸱

DOI:

10.3791/53709

⸱

7 Haziran 2016

 ,  ,  , 
1Institute of Biomedical Sciences, Academia Sinica, 2Department of Anesthesiology, University of Alabama at Birmingham

Bu makalede

Özet

Çalışmalar, katodal transkraniyal doğru akım stimülasyonunun ilaca dirençli nöbetler üzerinde baskılayıcı etkiler yaratabileceğini göstermiştir. Bu çalışmada, farelerin beyin dilimi hazırlığında nöbet benzeri aktivitenin doğru akım stimülasyonu ve çoklu elektrot dizisi kaydının değerlendirildiği bir in vitro deney düzeneği tasarlanmıştır. Doğru akım stimülasyon parametreleri değerlendirildi.

Özet

Katot transkranial doğru akım stimülasyonu (TEKMER) ilaca dirençli nöbetler üzerinde baskılayıcı etkisi neden olur. Etkili eylemleri gerçekleştirmek için, stimülasyon parametreleri (örneğin, yönlendirme, alan şiddeti ve stimülasyon süresi) fareler beyin dilim hazırlıkları muayene edilmesi gerekir. Test ve fareler beyin dilim konumuna elektrot göreceli yönünü düzenlenmesi mümkün bulunmaktadır. Mevcut yöntem anterior singulat korteks nöbet benzeri faaliyetleri DCS etkisini değerlendirmek için thalamocingulate yolu korur. Çok kanallı dizi kayıtların sonuçları katot DCS anlamlı 4-aminopiridin ve bicuculline kaynaklı nöbet benzeri aktivite uyarılması-uyarılmış yanıtlar genlik ve süresini azalttığını göstermiştir. Bu çalışma, 15 dakika ile katot DCS uygulamaları thalamocingulate yolunda uzun süreli depresyon neden olduğu bulunmuştur. Bu çalışma thalamocingulat üzerinde DCS etkilerini incelemektedirE sinaptik plastisite ve akut nöbet benzeri aktiviteler. Geçerli yordam bir in vitro fare modelinde yönlendirme, alan kuvveti ve stimülasyon süresi de dahil olmak üzere optimum stimülasyon parametreleri test edebilirsiniz. Ayrıca, yöntem hem hücresel hem de ağ seviyelerinde kortikal nöbet benzeri faaliyetleri DCS etkilerini değerlendirebilir.

Giriş

Epilepsi sık görülen bir nörolojik bozukluktur. Epilepsili hastaların yüzde otuzu ilaca dirençli nöbetlerden muzdariptir1. Transkraniyal doğru akım stimülasyonu (tDCS), nöbetler gibi büyük beyin alanlarındaki ağ aktivitelerini kontrol etmek veya değiştirmek için invaziv olmayan bir yaklaşım sağlar. Klinik çalışmalar, tDCS'nin inatçı nöbetleri2 etkili bir şekilde tedavi ettiğini venöbetler 3-5 üzerinde hem kısa hem de uzun vadeli baskılayıcı etkiler üretebileceğini göstermiştir. Bununla birlikte, tDCS etkilerinin terapötik mekanizması hala belirsizdir. Sunulan beyin dilimi modeli, tDCS eylemlerinin terapötik mekanizmasının nöbet benzeri beyin aktivitelerinin semptomlarını nasıl değiştirdiğini araştırmak için in vitro bir yöntemdir. Buna göre, optimal etkilerini elde etmek için, oryantasyon, alan kuvveti ve stimülasyon süresi dahil olmak üzere spesifik stimülasyon parametrelerinin deneysel bir modelde test edilmesi gerekir. Önceki çalışmalar, elektrik alanın oryantasyonunun terapötik etkiler elde etmek için önemli olduğunu göstermiştir6. Bu nedenle, elektrotların oryantasyonunun test edilen beyin diliminin konumuna göre test edilmesi ve düzenlenmesi mümkündür.

Frontal lob epilepsisi ve anterior singulat korteks (ACC) nöbetleri sıklıkla ilaca dirençlidir7,8. Bazı çalışmalar, singulat korteks9-11'de tDCS uygulamasını bildirmiştir. tDCS'nin ACC aktivitelerinin değiştirilmesi yoluyla uyanıklık, karar verme ve duyguyu etkilediği gösterilmiştir ve bu beyin bölgesindeki nöronal uyarılabilirliği ve nöbet aktivitesini modüle edebilir12. Bu nedenle, tDCS'nin ACC nöbetleri üzerindeki baskılayıcı etkileri klinik tedavi ve alternatif tedavilerin değerlendirilmesi için yardımcı olabilir.

Mevcut protokol, bir beyin diliminin DCS'si için kayıt odasında bir elektrotun hazırlanmasını ve bunun bir çoklu elektrot dizisi (MEA) ile nöbet benzeri aktivite kaydı üzerindeki etkisini açıklar.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Protokol

hayvan denekleri içeren Prosedürler Kurumsal Hayvan Bakım ve Kullanım Komitesi, Academia Sinica, Taipei, Tayvan tarafından onaylanmıştır.

1. multielectrode Dizi Kayıt için deneysel Çözüm ve Ekipman hazırlanması

  1. Yapay beyin omurilik sıvısı (CSF hazırlanması; 124 mM NaCI, 4.4 mM KCI, 1 mM NaH 2% 95 O fokurdatıldı PO 3, 2 mM MgSO 4, 2 mM CaCl2, 25 mM NaHCO 3, ve 10 mM glükoz, 2 ve % 5 CO2).
  2. 6 x 10 düzlemsel MEA ve 8 x 8 MEA: MEA prob iki tür kullanın. Eski prob korteks, striatum ve talamus oluşur bölgeyi kapsar. İkinci prob sadece kortikal bölgeyi kapsar.
  3. 0.1 Hz ve 1.200 amplifikasyonu 3 kHz arasında yer alan bir bant geçiren filtre ile 60 kanallı amplifikatör kullanın. 10 kHz örnekleme hızında veri edinin.
  4. DCS MEA odasının içine iki AgCl kaplı gümüş telleri yerleştirin. AgCİ kullanın-kaplı gümüş teller izole bir stimülatör tarafından oluşturulan elektrik alanları üretmek.
  5. tungsten elektrot (; uzunluk, 7,62 cm; 8 ° AC konik uç, çap, 127 mikron direnç, 5 M?) koyun talamik stimülasyon için, ve MEA odasında referans elektrot yerleştirin. Darbe üreteci tarafından kontrol edilir izole bir stimülatörü kullanılarak tungsten elektrotun akımları sunun.

2. Beyin Dilim Hazırlık

  1. 4-8 haftalık erkek C57BL / 6J fareler, kullanın. Ev klimalı odada hayvanlar yiyecek ve suya serbest erişimi (21-23 ° C;% 50 nem / 12 saat aydınlık / karanlık döngüsü, 8:00 ışıklar 12 saat).
  2. Aşama 1.1'de elde edilmiştir aCSF 250 ml'lik bir şişe alın ve buz içeren bir behere yerleştirin. Aynı zamanda,% 95 O2 ve% 5 CO2 oluşan sürekli gaz kaynağı.
  3. cerrahlık
    1. bir bardak% 4 izofluran ile hayvan anestezisiYaklaşık 3 dakika boyunca kutu. hayvan (ayak tutam yanıt eksikliği ile gösterilir) anestezi cerrahi derinliğe ulaştığında, ezilmiş buz dolu sığ bir tepsiye yerleştirin ve makas kullanılarak baş kaldırmak.
    2. kafatası maruz ve kalan kas keserek. Daha sonra, rongeurs kullanılarak, beyinden kafatası dorsal yüzeyini soyularak. rongeurs kullanılarak kafatası kenarlarını uzak kesin. % 75 etanol çözeltisi ile cerrahi aletler tüm sterilize edin.
    3. Bir spatula kullanarak, beynin ventral yüzeyi boyunca koku ampuller ve sinir bağlantılarını kesti ve beyin kaldırmak. Başlarının kesilmesi işleminden sonra, hızlı bir şekilde buz gibi soğuk oksijenli aCSF ile dolu bir beher beyin aktarın.
  4. Medial Talamus (MT) -ACC Beyin Slice hazırlanması
    Not: ACC 13 MT yolu ihtiva dilimleri hazırlayın.
    1. 2,0 mm Her yarımkürede orta hatta yanal iki sagital kesim ile beyin blok El-cutsubkortikal anatomiyi görüntülemek için. Sonra iki açılı kesimler yapmak. striatum görünür lif yollarının ilk çapraz kesim paralel olun.
    2. thalamocingulate yoluna ventral ve paralel olan ön komissür ve optik yolu arasındaki orta noktasına beyincik ve görsel korteks arasındaki bağlantıdan ikinci çapraz kesim olun.
    3. siyanoakrilat yapıştırıcı ile bir açısal plaka (~ 120 °) beyin bloğunu takın ve sadece yolun dönüm noktasının üzerinde bir kesim yapmak. , Plaka açın düzeltin ve bir vibratome odası sahneye tutkal.
    4. Medial talamus-ACC beyin kesitleri daha sonra (500 mikron kalınlığında) ve 1 oksijenli ACSF kayıt odasına buz soğukluğunda oksijenli aCSF.Transfer dilimleri sokmaktan ve sürekli perfüzyon (12 ml / dakika) altında 32 ° C 'de devam olun hr.

Multielectrode Dizi Kayıt için Perfüzyon Odası 3. hazırlanması

  1. HazırlıkPerfüzyon Odası
    1. Bir çok kanallı sistemde, bir MEA sonda yerleştirin ve bir peristaltik pompa prob bağlamak için iki ayrı polietilen boru kullanımı. MEA odası ve odanın dışına çıkması aCSF kılavuz diğer tüp içine aCSF yol bir tüp kullanarak. Son olarak, sürekli sıcak (29-30 ° C), oksijenli aCSF (8 mL / dakika) ile hazırlanmasını serpmek.
  2. MEA beyin dilim aktarın. ıslak pamuklu çubuk kullanarak MEA beyin dilim basılı tutun. Dikkatle ACC elektrotlar üzerinde odaklı sağlamak için beyin dilim taşıyın.
  3. beyin dilim basın dilim çapa kitleri tutun-çıkışlar kullanın. Bu adım, bir dilim ve elektrotların arasında iyi bir elektrik bağlantısı sağlar.

DCS Elektrik Alanlarının 4. Nesil

Not: elektrik alan yönlendirme tanımı ACC Aksodendritik ekseni yönünde dayanmaktadır. dendrit ve soma bölmelerinin yönelimleri vardıGolgi boyama 12 kullanılarak doğruladı.

  1. ACC proksimal (anot olarak tanımlanır) AgCl elektrot yerleştirin ve ACC uzak (katot olarak tanımlanır) diğer elektrot yerleştirin. MEA iki alan yönelimleri (ACC Aksodendritik liflere paralel ve dik) tarafından oluşturulan alan mukavemetini kaydedin ve bir uyarıcı kullanarak elektrik alanların akımlarını sunar.
  2. AgCl elektrotlar (yaklaşık 1.5-2 cm) mesafe düzeltmek ve mA 0.5 ila 2 DCS yapmak için stimülatörü mevcut gücünü ayarlamak.

5. Elektrik kaynaklı Kortikal Synaptic Yanıtları

Not: Bir programlanabilir elektriksel uyarı jeneratör dikdörtgen bifazik akım darbeleri üreten hangi MT elektrik stimülasyonu ile ACC sinaptik yanıtları neden.

  1. Yukarıda tekrarlayın Bölüm 3.
  2. MT tungsten elektrot yerleştirin ve Thal stimülatör gelen bakliyat teslimBipolar tungsten elektrotlar aracılığıyla dilim amic bölgesi.
  3. ACC tepkisi uyandıran eşik belirlemek için çeşitli akım şiddetleri kullanın. Burada, en dilimler halinde ACC% 80 maksimal yanıtı ortaya çıkardı 200 mikro saniye olduğu bir ± 150 uA yoğunluğunu ve süresini, kullanın.
  4. Optimal cevabı profillerini elde etmek için MT-ACC dilim (korpus kallosum için MT) thalamocingulate yolu boyunca tungsten elektrot hareket ettirin.
  5. ACC cevapların 10-20 silerler ve yazılım kullanmak, MT uyarılması ile ACC tüm ortalama otomatik. MT-ACC yolunun MT stimülasyon uyarılan ACC sinaptik yanıtları ISS sonucu.

6. Elektrik kaynaklı Nöbet benzeri Etkinlik

(250 uM 4-AP) ve bicuculline (5 uM) felç benzeri aktivitesi 4-aminopiridin uygulanması ile indüklendi: edin. Önceki Zaman-kontrol çalışmaları maksimal ve istikrarlı tepkiler ortaya çıktığını gösterdiIlaç uygulaması 14 sonra 2-3 saat.

  1. Yukarıdaki tekrarlayın Bölüm 5.
  2. perfüzyon çözeltisine ilaçlar ekleyin. 4-AP (250 uM) ve bicuculline (5 mcM) kullanın. eşit uyuşturucu karıştırın ve 2-3 saat perfüzyon devam ediyor.
  3. nöbet gibi aktivitesi sağlamak için, ayrıca bir pH gradyanı birikmesini önlemeye yardımcı olabilir nispeten hızlı bir perfüzyon oranı (8 mL / dakika), perfüzyon pompası korumak.
  4. MT tungsten elektrot yerleştirin ve ACC yanıt profillerini elde etmek için elektrik stimülasyonu (150 uA, 200 mikro-sn süre) teslim.
  5. 10-20 silerler ve yanıtları ortalama.
  6. uyuşturucu yıkamak için taze aCSF ile perfüzyon çözümü değiştirin. Tekrarlayın Adım 6.5.

Uyarılmış Kortikal Yanıtları üzerinde DCS 7. Test Etkisi

  1. Tekrarlayın Bölüm 3 ve 4. o üniforma elektrik alanları M içine yerleştirilir iki paralel AgCl kaplı gümüş telleri arasındaki akımlar geçirerek tarafından oluşturulan emin olunEA odası. herhangi bir sorun varsa, DCS 0.5 ve 2 mA arasında kalır.
  2. DCS kapatın ve (150 uA, 200 mikro-sn süresi ±) talamus uyarmak için bir tungsten elektrot yerleştirin. ACC, maksimum sinaptik yanıtları elde 10-20 silerler ve yanıtları ortalamasını.
  3. Eşzamanlı olarak DCS (2 mV / aa DCS gücü) ve talamik stimülasyon (350 uA, 200 mikro-sn süre) açın. DCS sırasında talamik stimülasyon uyarılmış ACC yanıtı genlik değişiklikleri değerlendirmek.
  4. DCS kapatın ve perfüzyon çözüm 4-AP (250 uM) ve bicuculline (5 mcM) ekleyin. Sonra 2-3 saat bekleyin. Uyuşturucu beyin dilim etkiler zaman dilim kortikal nöbet yanıtları üretir.
  5. ACC yanıtların 10-20 Piyango yapın ve ardından elektrik uyarılmış kortikal nöbet yanıtları genlik ve süresini ölçün.
  6. Adım 7.5 sonra aynı anda (DCS (2 mV / aa DCS gücü) ve talamik stimülasyon 150 uA, 200 durati çevirmekmikro-saniye üzerinde). DCS uygulama esnasında genlik ve uyarılmış kortikal nöbet yanıtları süresi değişiklikleri değerlendirmek.
  7. uyuşturucu yıkamak için taze aCSF ile perfüzyon çözümü değiştirin ve tekrar 7.2 ve 7.3 adımları tekrarlayın.
  8. farklı deneysel koşullar veri kayıt tüm verileri toplamak ve grup. farklı deneysel koşullar altında kortikal nöbet yanıtları genlik ve süresini değerlendirin.

8. Veri Analizi

  1. (Örneğin, MC Raf yazılım) otomatik olarak kaydedilir yanıtları ortalamasını yazılımı kullanın ve bir elektronik tabloya ham veri ihracat. Ham veri genliği ve süresi Analiz ve renkli resimler üretir.
  2. salınım nöbet olaylarını tespit etmek, temel değer ve standart sapma (SD) ölçmek için yazılımı kullanın. eşik olarak gürültü seviyesi 3 SD ayarlayın. Bu eşiği aşan bir salınım olayı sırasında zirvelerin genlikleri otomatik olarak tespit edilirEd.
  3. Student t-testi kullanılarak istatistiksel analiz.
  4. Dilim sayısını belirten n Ekspres ölçümler ve SE ortalama ± olarak metinde varyans (ANOVA) sonuçları tek yönlü analizi, 12 okudu.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

Thalamocingulate Dilim ve MEA Kayıt Sistemi Kurulumu hazırlanması

Farelerden alınan MT-ACC dilim thalamocingulate yolunun elektrofizyolojik özelliklerinin incelenmesini sağlar özel bir dilim hazırlıktır. Şekil 1A MT-ACC dilim hazırlanmış olan yolu gösterir. Fare beyni hızla ayrılmış ve (Şekil 1A, a, b) serin oksijenli ACSF tutuldu. Subkortikal anatomisini ortaya çıkarmak için beyin sagital bey...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

Bu çalışmada, ACC nöbet benzeri aktivite üzerine DCS süresine ve yönlendirme etkileri test edildi. fare beyin dilimleri kararlı veri elde etmek, nasıl MT-ACC yolunun bütünlüğünü korumak için ve iki açılı ventral kesikler ve korteksin dorsal kesim yapıldığı özellikle adımlar anahtarıdır zarar görmemesi için. Ayrıca, beyin dilim hazırlamak için zaman taze ve güçlü beyin tutmak için mümkün olan en kısa zaman olmalıdır beyin dilim, aktivitesini etkileyebilir. Önceki bir çalışmada, hedeflenen dokuya elektrokimyasal hasarı

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

Yazarlar, herhangi bir çıkar çatışması olmadığını beyan ederler.

Teşekkürler

Academia Sinica'daki Neural Circuit Electrophysiology Core'dan gelen teknik destek için minnettarız. Bu çalışma Ulusal Bilim Konseyi (102-2320-B-001-026-MY3 ve 100-2311-B-001-003-MY3) ve Academia Sinica Nörobilim Programı tarafından desteklenmiştir.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
< güçlü > Anestezik: < / güçlü >
İzofluranHalokarbon Ürünleri Şirketi & nbsp;NDC 12164-002-25%4
AdıŞirket<>Katalog NumarasıgüçlüYorumlar
güçlüaCSF (toplam: 1 L):
D (+) - GlikozMERCK1.08337.100010 mM
Sodyum hidrojen karbonatMERCK1.06329.050025 mM
Sodyum klorürMERCK1.06404.1000124 mM
(+) - Sodyum L-askorbat, >=%98SIGMAA4034-100G0.15 g/2 cc
Magnezyum sülfat, susuz, ReagentPlusSIGMAM7506-500G2 mM
Kalsiyum klorür dihidratMERCK1.02382.10002 mM
Sodyum dihidrojen fosfat monohidratMERCK1.06346.10001 mM
Potasyum klorürMayıs & Baker LTD Dagenham İngiltereMS 76164.4 mM
< güçlü > Adı< / güçlü >< güçlü > Şirket<> < güçlü>Katalog Numarası< / güçlü > <güçlü > Yorumlar< / güçlü
>< güçlü > İlaçlar: < / güçlü>
(+) - BicucullineTOCRIS01305 & mikro; aCSF
4-AminopiridinTOCRIS0940250 & mikro; aCSF'de M
NameCompanyKatalog NumarasıComments
Beyin dilimi Hazırlanışı: < / güçlü >
VibratomSerisi1000Blok 500 ve mikro dilimleme; m kalınlığında dilimler
< güçlü > İsim< / güçlü >< güçlü > Şirket< / güçlü >< güçlü > Katalog Numarası < / güçlü >< güçlü > Yorumlar< / güçlü >
< güçlü > MEA sistemi: < / güçlü >
Çok elektrotlu dizi (MEA) probları: 6 x 10 düzlemsel MEAÇok Kanallı Sistemler60MEA500 / 30iR-Ti-pr MEAS 6x10elektrot çapı, 30 ve mikro; m; elektrot aralığı, 500 & mikro; m; empedans, 50 k & Omega; 200 Hz'de
Çoklu elektrot dizisi (MEA) probları: 8 x 8 MEA Ayanda Biosystems60MEA200 / 10iR-Ti-pr MEAS 8x8piramidal şekilli elektrot; çap, 40 ve mikro; m; uç yüksekliği, 50 & m; elektrot aralığı, 200 & mikro; m; empedans, 1.000 k & Omega; 200 Hz'de
60X amplifikasyonda 0.1 Hz ile 3 KHz arasında ayarlanmış bir bant geçiren filtre ile 1,200 kanallı bir amplifikatör kullanıldıÇok Kanallı SistemlerMEA-1060-BC
10 KHz örnekleme hızında MC Raf yazılımıÇok Kanallı SistemlerVeri toplama ve kayıt için yazılım
puls üretecinin kontrolüKanallı SistemlerSTG 1002
dilim ankraj kitleri ve tutucularWarner InstrumentsSHD-26H/10; WI64-0250
Peristaltik Pompa-minipuls3GilsomMINIPULS3perfüzyon hızı: 8 ml / dak
< güçlü > Adı< / güçlü >< güçlü > Şirket< / güçlü >< güçlü > Katalog Numarası< / güçlü >< güçlü > Yorumlar< / güçlü
> < güçlü > Stimülasyon sistemi: < / güçlü >
İzole stimülatörA-M SistemleriModel 2100± yoğunluğu; 350 ve mu; A , 200 &mu süresi; sec
Tungsten elektrotA-M Sistemleri575300talamus içine yerleştirilmiş
güçlü Bir Çok

Kaynaklar

  1. Schiller, Y., Najjar, Y. Quantifying the response to antiepileptic drugs: effect of past treatment history. Neurology. 70 (1), 54-65 (2008).
  2. Fregni, F., et al. A controlled clinical trial of cathodal DC polarization in patients with refractory epilepsy. Epilepsia. 47 (2), 335-342 (2006).
  3. Auvichayapat, N., et al. Transcranial direct current stimulation for treatment of refractory childhood focal epilepsy. Brain Stimul. 6 (4), 696-700 (2013).
  4. Chung, M. G., Lo, W. D. Noninvasive brain stimulation: the potential for use in the rehabilitation of pediatric acquired brain injury. Arch Phys Med Rehabil. 96 (4 Suppl), S129-S137 (2015).
  5. Del Felice, A., Magalini, A., Masiero, S. Slow-oscillatory Transcranial Direct Current Stimulation Modulates Memory in Temporal Lobe Epilepsy by Altering Sleep Spindle Generators: A Possible Rehabilitation Tool. Brain Stimul. 8 (3), 567-573 (2015).
  6. Garnett, E. O., Malyutina, S., Datta, A., den Ouden, D. B. On the Use of the Terms Anodal and Cathodal in High-Definition Transcranial Direct Current Stimulation: A Technical Note. Neuromodulation. , (2015).
  7. Biraben, A., et al. Fear as the main feature of epileptic seizures. J. Neurol. Neurosurg. Psychiatry. 70 (2), 186-191 (2001).
  8. Zaatreh, M. M., et al. Frontal lobe tumoral epilepsy: clinical, neurophysiologic features and predictors of surgical outcome. Epilepsia. 43 (7), 727-733 (2002).
  9. Karim, A. A., et al. The truth about lying: inhibition of the anterior prefrontal cortex improves deceptive behavior. Cereb. Cortex. 20 (1), 205-213 (2010).
  10. Keeser, D., et al. Prefrontal transcranial direct current stimulation changes connectivity of resting-state networks during fMRI. J. Neurosci. 31 (43), 15284-15293 (2011).
  11. Nelson, J. T., McKinley, R. A., Golob, E. J., Warm, J. S., Parasuraman, R. Enhancing vigilance in operators with prefrontal cortex transcranial direct current stimulation (tDCS). Neuroimage. 85 (Pt 3), 909-917 (2014).
  12. Chang, W. P., Lu, H. C., Shyu, B. C. Treatment with direct-current stimulation against cingulate seizure-like activity induced by 4-aminopyridine and bicuculline in an in vitro mouse model. Exp. Neurol. 265, 180-192 (2015).
  13. Lee, C. M., Chang, W. C., Chang, K. B., Shyu, B. C. Synaptic organization and input-specific short-term plasticity in anterior cingulate cortical neurons with intact thalamic inputs. Eur. J. Neurosci. 25 (9), 2847-2861 (2007).
  14. Chang, W. P., Shyu, B. C. Involvement of the thalamocingulate pathway in the regulation of cortical seizure activity. Recent Research Developments in Neuroscience. Pandalai, S. G. 4, Research Signpost. Kerala. 1-27 (2013).
  15. Brummer, S. B., Turner, M. J. Electrochemical considerations for safe electrical stimulation of the nervous system with platinum electrodes. IEEE Trans. Biomed. Eng. 24 (1), 59-63 (1977).
  16. Durand, D. M., Bikson, M. Suppression and control of epileptiform activity by electrical stimulation: a review. Proc. IEEE. 89 (7), 1065-1082 (2001).
  17. Fritsch, B., et al. Direct current stimulation promotes BDNF-dependent synaptic plasticity: potential implications for motor learning. Neuron. 66 (2), 198-204 (2010).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Etiketler

Talamosingulat YolakAnterior Singulat KorteksAlan ŞiddetiStimülasyon SüresiElektrot OryantasyonuKatodik tDCS
Fare Beyin Dilim Hazırlık içinde nöbet benzeri Faaliyet doğrudan akım Stimülasyon ve Multi-elektrot Dizi Kaydı
Bize Ulaşın
Kütüphaneye Öner

Gizlilik

Kullanım Koşulları

Politikalar

Telif Hakkı © 2026 MyJoVE Corporation. Tüm hakları saklıdır.