Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliğiniz gereklidir. Giriş yapın veya ücretsiz denemenizi bugün başlatın.

Yöntem makalesi

Standardize Kolon Sıçanlarda Stent Peritonitini Yükseltir - Septik Akut Böbrek Hasarını İndüklemek İçin Basit, Uygulanabilir Bir Hayvan Modeli

1.4K görüntülenme

⸱

DOI:

10.3791/54448

⸱

15 Şubat 2022

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Department of General, Visceral, Transplantation, Vascular and Paediatric Surgery, Department of Surgery I, University of Würzburg, 2Department of Anesthesiology and Critical Care, Medical Center-University of Freiburg, 3Faculty of Medicine, University of Freiburg, 4Department of Internal Medicine I, Division of Nephrology, University of Würzburg, 5Department of Physiology and Pharmacology, West Virginia University School of Medicine, Robert C. Byrd Health Science Center, 6Department of Anesthesiology and Intensive Care Medicine, Robert-Bosch-Krankenhaus

Bu makalede

Özet

Akut böbrek hasarı (ABH), kritik hastalarda ciddi bir komplikasyondur ve artmış mortalite ile ilişkilidir. Burada, septik ABH patogenezinin anlaşılmasına katkıda bulunabilecek inflamatuar koşullar altında ABH'yi taklit etmek için güvenilir ve tekrarlanabilir bir in vivo model sunuyoruz.

Özet

Septik hastalarda ABH, patofizyolojisinin anlaşılmasını iyileştirmeye yönelik büyük çabalara rağmen artmış mortalite ve kötü sonuç ile ilişkilidir. Burada, ABH'yi indüklemek için standartlaştırılmış bir septik odağı ve insan sepsisinde karşılaştırılabilir gelişmiş bir hemodinamik izleme ve tedavi sağlamak için yoğun bakım (YBÜ) kurulumunu birleştiren bir in vivo model sunulmaktadır. Sepsis, standardize kolon ascendens stent peritoniti (sCASP) ile indüklenir. ABH, kan ve idrar örneklerinin ölçümü ile fonksiyonel olarak ve histopatolojik skorların değerlendirilmesi ile histolojik olarak incelenir. Ayrıca, ileri hemodinamik izleme ve tekrarlayan kan gazı örneklemesi olasılığı, indüklenen sepsisin şiddetinin farklı bir analizini mümkün kılar.

sCASP yöntemi, septik ABH'yi indüklemek için standartlaştırılmış, güvenilir ve tekrarlanabilir bir yöntemdir. Yoğun bakım kurulumu, sürekli hemodinamik ve gaz değişimi monitörizasyonu, düşük mortalite oranı ve böbrek fonksiyon ve bozukluklarının ayrıntılı analiz imkanı bu kurulumun avantajlarıdır. Bu nedenle, tarif edilen yöntem, septik ABH'nin deneysel araştırmaları için yeni bir standart olarak hizmet edebilir.

Giriş

Sepsis, kardiyak olmayan yoğun bakım ünitelerinde (YBÜ) %30-50'≈ ölüm oranları ile hala önde gelen ölüm nedeni olmaya devam etmektedir1,2,3. Şiddetli sepsis ve septik şokun ayırt edici özelliği, kalp ve solunum yetmezliğigibi uzak organ disfonksiyonu ile ilişkili olduğunda mortalite oranının daha da artmasına neden olan akut böbrek hasarıdır 4,5,6. Yoğun bakım hastalarında ABH'nin genel insidansı %20 ila 50 arasında değişmektedir7. ABH'nin sepsiste sonuç ve mortalite açısından önemli rolüne rağmen, altta yatan patomekanizma hala tam olarak anlaşılamamıştır.

Genel olarak 3 ana bileşen vardır: inflamasyon, toksik yaralanma ve ABH gelişimine katkıda bulunan hemodinamik değişiklikler7. Hemodinamik değişiklikler, azalmış renal kan akımı (RBF) ve global veya bölgesel renal iskemiyi kapsar. Burada, sepsisin sistemik hipotansiyon ve/veya endotel bariyeri bozulmasına bağlı olarak böbrek mikrosirkülasyonunda bozulmaya da neden olabileceği göz önünde bulundurulmalıdır8. Bu nedenle, septik ABH çalışması her zaman hemodinamik monitörizasyonu içermelidir. ABH ile ilgili son zamanlarda yapılan in vivo çalışmalarda çoğunlukla renal iskemi-reperfüzyon hasarı veya bilateral nefrektomi gibi hayvan modelleri kullanılmıştır. Bu çalışmalar genellikle hemodinamik monitörizasyon ve yoğun bakım eksikliği göstermiştir.

Septik ABH'nin potansiyel yeni patomekanizmalarının ve tedavilerinin araştırılması, tanımlanmış bir septik odak, yoğun bakım kurulumu, öngörülebilir bir sonuç ve organ hasarı olan bir in vivo model gerektirir 9,10,11,12. Burada, septik ABH için daha önce bahsedilen gereksinimleri karşılayan yenilikçi bir kemirgen modelini açıklıyoruz. Septik ABH, standardize kolon ascendens stent peritoniti (sCASP) ile indüklenir. Kullanılan sCASP modeli, bakteri istilasına ve çoklu organ yetmezliğine yol açan bağırsak dışkı sızıntısı ile abdominal sepsise neden olur13. CASP sonrası patofizyolojik değişikliklerin insan sepsisindekilere benzer olduğu gösterilmiştir ve bu nedenle CASP sepsis araştırmalarında klinik olarak anlamlı bir modeli temsil etmektedir11,14.

Ayrıca, deneysel protokolde ileri hemodinamik monitörizasyon ve YBÜ tedavisini içeren bir yoğun bakım (YBÜ) düzeni oluşturulmuştur. Yoğun bakım kurulumu, sıvı resüsitasyonu, intravenöz analjezi uygulaması ve tekrarlayan kan gazı analizine olanak tanır. Böbrek fonksiyonu, kreatinin gibi standart değerlerin ölçümü ve inülin ve p-aminohippurik asit (PAH) klerensi ile değerlendirilir. Ek bilgiler, deneyin sonunda toplanan doku ve organların patohistolojik skorları ile sağlanır. Septik ABH'yi indüklemek için sCASP modeli zaten değerlendirilmiş ve renal patolojide yeni bilgiler ortaya koymuştur15. Aşağıda sunulan bu protokolün daha fazla uygulanması, septik ABH anlayışının iyileştirilmesine yardımcı olabilir.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Protokol

Tüm hayvan prosedürleri, Almanya'nın Unterfranken Bölgesi Laboratuvar Hayvanları Bakım ve Kullanım Komitesi tarafından onaylandı ve Helsinki Bildirgesi'ne göre yürütüldü.

1. İnvaziv monitörizasyon ve sürekli ilaç tedavisinin cerrahi hazırlığı ve kurulumu

  1. Sprague-Dawley sıçanlarını, yerel kurumun hayvan araştırma gözetim organı ve / veya veterinerlik ekibi tarafından onaylanan bir konsantrasyon ve akış hızında hassas buharlaştırıcı tarafından sağlanan izofluran kullanarak uyuşturun. Yavaşlayan ve derinleşen solunum hızını gözlemleyerek yeterli anestezi derinliğini onaylayın ve kuyruk / ayak parmağı sıkışmasından sonra tepkisizliği doğrulayın. Boğazı ve mideyi bir ustura ile tıraş edin.
    Not: Solunum hızının büyük ölçüde azalması, aşırı dozda anestezinin bir göstergesi olabilir ve sonunda bradikne, hipotansiyon ve ölüme yol açabilir.
  2. Fareyi bir ısıtma yastığı üzerine sırtüstü pozisyonda yerleştirin. Gözlerin kurumasını önlemek için gözlere veteriner merhemi sürün. Sıçanın intraoperatif izlenmesine ve / veya yerel kurumun hayvan araştırma gözetim organının ve / veya veteriner ekibinin tavsiyelerine dayalı olarak izofluran konsantrasyonunu ve akış hızını kullanarak uygun anestezik derinliği koruyun. Fareyi otomatik bir ısıtma yastığı üzerine sırtüstü pozisyonda yerleştirin.
    Not: Hipotermi ve termal yaralanma makro ve mikrohemodinamik parametreleri etkiler ve güvenilir bir sonuç elde etmek için kaçınılmalıdır. Vücut ısısını fizyolojik aralıkta tutmak için esnek bir rektal prob ile sıçana bağlanan kontrol mekanizmalı bir ısıtma yastığı kullanılması önerilir.
  3. Boyun ve boğazın uygun dezenfeksiyon solüsyonu ile dezenfekte edilmesinden sonra, boğaz medialindeki cildi bir neşter ile kesin ve yaklaşık 2 cm'lik bir kesi yapın. Fareyi çevirin ve oksiputun yaklaşık 1 cm distalinde boynunda cerrahi makasla yaklaşık 1 cm'lik bir kesi yapın.
  4. Fareyi sırtüstü pozisyona getirin. Sağ juguler veni ve sol karotid arteri makas ve pamuklu çubuklarla nazikçe inceleyin. Gemileri komşu yapılardan inceleyin. Çok fazla sürüklemekten kaçının ve dikkatli yayma hareketleriyle daha fazla hazırlanın.
    Not: Önceden ısıtılmış steril tuzlu su uygulayarak damarları daima nemli tutun.
  5. İki kesi arasında bir bağlantı sağlamak için nazikçe ve damarlardan boyuna deri altından yayılma hareketleriyle diseksiyon yapın. Oluşturulan her tünele kelepçeler yerleştirin.
  6. Döner cihazdan gelen fırdöndü ve kateterleri %0,9 NaCl ile yıkayın. Kateterleri paslanmaz çelik bir yay içine yerleştirin.
    Not: Kateterler yerleştirilmeden önce sodyum klorür ile yıkanmalıdır, çünkü minimum hava uygulaması hava embolisi nedeniyle ani ölüme yol açabilir.
  7. Fareyi çevirin ve takılan kelepçeleri kullanarak kateterleri kelepçeleyin. Kateterleri boyundan boğaza doğru kaydırın. Yayı oksiputun yaklaşık 1 cm distalinde plastik bir düğme ipi ile boynunda 6 tekil dikiş (örn. 4/0) ile sabitleyin.
  8. Fareyi tekrar sırtüstü pozisyona getirin. Hazırlanan her kaba yaklaşık 4 cm distal ve proksimalde pamuk iplikleri döşeyin. Arter proksimal kısmını, genellikle subaraknoid anevrizmaları kırpmak için kullanılan bir mikro klips ile klipsleyin. Alternatif olarak, klipsi bırakın ve ipliklerden birini sıkarak arteriyel kan akışını durdurun.
  9. Atardamarı cerrahi bir mikro makasla kesin, bir elinizle kesiyi kanca ile açık tutun ve diğer elinizle forseps kullanarak arteriyel kateteri damar içine yerleştirin. Klipsi veya çekilen ipliği açın, kateteri kalbe doğru damarın içine yaklaşık 1 cm ileri itin ve serilen pamuk ipliklerini kullanarak cerrahi düğümlerle sabitleyin.
  10. Şah damarı üzerinde 1.8 adımını tekrarlayın ve damar arter kadar sağlam olmadığı için klipsi bırakın.
  11. Her iki kateteri de damarlarda düz bir çizgi halinde sabitledikten sonra, boğazdaki yarayı dikişlerle kapatın.

2. sCASP Prosedürü

  1. Fareyi sırtüstü pozisyonda tutun, karnı tıraş edin ve karın bölgesini uygun dezenfeksiyon solüsyonlarıyla dezenfekte edin.
    Not: Daima aseptik teknik kullanın.
  2. Cerrahi makasla yaklaşık 2 cm uzunluğunda cildin karın orta hattı insizyonunu yapın ve daha sonra periton mağarasını açmak için linea alba boyunca tekrar yapın.
  3. Çekal direği tanımlayın ve pamuklu çubuklar kullanarak çekuyu nazikçe dışarı çekin.
  4. Çıkan kolonu ileoçekal kapaktan yaklaşık 2 cm distalde anti-mezenterik tarafta bir sütür (6/0) [sütür 1] ile delin ve iki cerrahi düğüm ile sabitleyin. Herhangi bir kolon damarının lezyonlarından kaçının.
  5. 10 FR aspirasyon kateterinin distal ucunu - yaklaşık 1,5 cm - kesin. Kateterin bu parçasını, yaklaşık 0,5 cm uzunluğunda dikdörtgen bir flep oluşturacak şekilde makasla kesin. Flebin ortasında bir dikiş (6/0) [sütür 2] ile flebi hazırlayın.
  6. Flebi 14G'lik bir iğnenin üzerine koyun ve yükselen kolonu dikiş 1'insabitlendiği iğne ile delin 15.
  7. Hazırlanan plastik tüpü iğnenin üzerindeki kolona yerleştirin. Aynı anda iğneyi yavaşça çıkarın. Tüpü, flep kolonun dışına ve tüpün geri kalanı kolonun içine girecek şekilde konumlandırın.
    1. Plastik tüpün tam olarak yerleştirilmesinden sonra, kolon duvarını ve cerrahi düğümleri dikerek flebi zaten mevcut olan sütür 2 ile sabitleyin. Kolon damarlarının herhangi bir lezyonundan tekrar kaçının. Dikişin 1 serbest uçlarını kolonun dışına çıkan plastik tüpün geri kalanının etrafına koyun ve 2 cerrahi düğüm yapın.
  8. Stent çıkışında dışkı görünene kadar pamuklu çubuklar kullanarak çekumdan kolon stentine doğru dışkı sağın.
  9. İnce bağırsağı ve kolonu karın mağarasına geri koyun. Bu vesile ile dışkı ile plastik tüp karın zarı ile temas halinde olmalıdır. Dışkıyı periton mağarasına dağıtmak için stenti 2 mL% 0.9 NaCl ile yıkayın.
  10. Karın kaverneğini peritonun sürekli bir dikişi (4/0) ile ve daha sonra cildin sürekli bir dikişi (4/0) ile kapatın.

3. Ameliyat Sonrası İşlem

  1. İzofluranın solunmasını durdurun ve fareyi kafesine geri koyun.
  2. Fentanil (2.0 μg / 100 g vücut ağırlığı / saat) kullanarak venöz hat üzerinden intravenöz analjeziyi başlatın.

4. İkinci gün ölçümlerin hazırlanması

  1. sCASP işleminden 24 saat sonra intravenöz olarak 0.5-1.0 mg midazolam uygulayın. Sıçanın intraoperatif izlenmesine ve / veya yerel kurumun hayvan araştırma gözetim organının ve / veya veteriner ekibinin tavsiyelerine dayalı olarak izofluran konsantrasyonunu ve akış hızını kullanarak uygun anestezik derinliği koruyun.
  2. Alkol ve solüsyonla tekrar dezenfekte ettikten sonra, yeterli oksijenasyon ve ventilasyon sağlamak için 14 G venöz kanülün plastik tüpü ile trakeotomi yapın.
    1. Bu nedenle boğazdaki dikişi cerrahi makasla açın ve orta hattan soluk borusuna doğru nazikçe açın. Trakeayı cerrahi makasla yaklaşık 2 mm uzunluğundaki iki kıkırdak arasında dikey olarak kesin - sadece cerrahi makas sokacak kadar. Makasla kesiği künt bir şekilde trakea çapının yaklaşık yarısına kadar genişletin. 14 G'lik plastik bir tüpün 1 cm'sini yerleştirin ve 2 dikişle sabitleyin. 16
      Not: Soluk borusunun kesisi çevrenin yarısından daha büyükse, soluk borusu boyunca giden damarlar zarar görebilir ve bu da ciddi kanama, kan aspirasyonu veya ölümcül bradikardi ile sonuçlanabilir.
    2. FiO2 0.28 ve 0.7 Vol.% izofluran içeren bir kemirgen ventilatörü ile mekanik ventilasyona başlayın ve midazolam (0.7 mg / 100 g BW / s) ve fentanil (7 μg / 100 g BW / s) ile intravenöz anesteziye başlayın. Yeterli ventilasyon ve oksijenasyonu sağlamak için kan gazı analizleri yapın. Bu nedenle, arteriyel kateter yoluyla yaklaşık 0,7 mL kan çekin ve bir kan gazı analizatörü ile ölçün.
      Not: İntravenöz anestezi sadece mekanik olarak kontrol edilen ventilasyon sağlandığında başlamalıdır.
  3. 2.1'deki gibi traş ettikten ve dezenfekte ettikten sonra, sağ bacağın derisinde, dizin 0.5 cm proksimalinde 1 cm uzunlamasına bir kesi yapın. Cerrahi makas ve pamuklu çubuklar kullanarak arteri komşu yapılardan kör bir şekilde inceleyin.
    Not: Femoral arter yırtılırsa, proksimal pozisyonda kateter yerleştirilmesi hala mümkündür. Bu nedenle, implantasyona mümkün olduğunca distal olarak başlanması önerilir.
  4. Arteri bir kanca ile açarak ve kateteri forseps ile yerleştirerek femoral artere bir termodilüsyon kateteri yerleştirin.
  5. Termodilüsyon yöntemi ile kardiyak debiyi ölçmeye başlayın. Bu nedenle, bir kardiyak indeks ölçüm yazılımının ölçümünü başlattıktan sonra 1 mL soğutulmuş NaCl'yi venöz kateter yoluyla manuel olarak hızlı bir şekilde infüze edin. Bu ölçümü iki kez gerçekleştirin.

5. Böbrek fonksiyonunun değerlendirilmesi

  1. Derinin ve peritonun dikişlerini makasla açarak laparotomi yapın. İdrar kesesini küçük bir plastik kateter ile kateterize edecek kadar cerrahi makasla kesin. Mesanenin etrafına yaklaşık 7 cm'lik bir pamuk ipliği döşedikten sonra, ipliği sabitleyin, kateteri düğümlerle sabitleyin ve son olarak kateter yoluyla mümkün olduğunca fazla idrar toplayın.
  2. 2 mg / mL inülin, 5 mg / mL PAH konsantrasyonları elde etmek için% 0.9 NaCl ve% 0.9 NaCl içinde p-aminohippurik asit sodyum tuzu (PAH)% 0.9 NaCl içinde floresein-izotiyosiyanat-inülini (FITC-İnülin) çözün.
  3. Her iki maddenin karışımının 75 μL i.v.'lik bir bolusunu uygulayın, ardından her iki maddenin 3.7 μL / s / 300 g BW oranında sürekli intravenöz infüzyonunu uygulayın.
  4. FITC-Inulin ve PAH infüzyonu ile17 kararlı bir duruma ulaştıktan sonra idrarı 20 dakika boyunca toplayın. Kan gazı analizinin yapılmasıyla ilgili olarak 4.2.1'de açıklandığı gibi arteriyel kateter yoluyla kan örnekleri alın.
  5. Floresan spektrometrisi ile idrar ve plazmanın inülin konsantrasyonlarını belirleyin ve anthrone yöntemini kullanarak fotospektrometri ile PAH'ı ölçün17.

6. Deneylerin sona ermesi

  1. Hayvanı yerel yasal düzenlemelere göre ötenazi yapın.
  2. Şırınga kullanarak arteriyel kateter yoluyla mümkün olduğunca fazla kan çekin.
  3. Oniki parmak bağırsağı ve kalın bağırsağın peritoneal fiksasyonunu keserek alın, bunların bir kısmını cerrahi makas kullanarak çıkarın. Retroperitoneal hazırlayarak böbrekleri hazırlayın ve hasat edin ve yağlı kapsüllerinden serbest bırakın ve üreterden ve bağlı damarlardan kesin. Bir torakotomi yapın ve akciğerleri ve kalbi kesin. Tüm organları formaldehit içinde sabitleyin ve daha önce yayınlandığı gibi histolojik boyamalar yapın. 15,18

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

Schick ve ark.8 tarafından daha önce yayınlandığı gibi, aşağıdaki sonuçları gösteriyoruz.

Mortalite olmadan sepsis indüksiyonu
CASP modelinde sepsis, kolonun intralüminal yerleşimli bakterilerinin sürekli bir sızıntısı ile indüklenir ve karın boşluğuna yükselir ve fekal peritonit ve bakteriyemi ile sonuçlanır. Bu vesileyle, implante edilen kateterin boyutu dışkı çıkışını ve dolayısıyla...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

Septik ABH'nin patofizyolojisi, karmaşıklığı nedeniyle hala bilinmemektedir. Hastalarda yapılan klinik araştırmalar ve denemeler, histopatoloji değişiklikleri, mikrosirkülasyon bozuklukları veya hücresel düzeylerdeki ilaç etkileşimleri ile ilgili yeni içgörülerin kazanılmasını sağlamayacaktır15. Sepsis19 ile ilişkili akut böbrek hasarını araştırmak için geliştirilmiş ve yeni hayvan modellerine ihtiyaç olduğu daha önce varsayılmıştır. Bu ned...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

Yazarların ifşa edecek hiçbir şeyi yok.

Teşekkürler

M.A. Schick ve N. Schlegel, Deutsche Forschungsgemeinschaft (DFG) SCHL 1962/2-1 ve SCHL 1962/4-1'den fon aldı.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
Sprague-Dawley sıçanlarıJanvier Labs, Fransa
  Isofluran CPcp-pharma, Burgdorf, Almanya
polietilen kateter PE 10; 30mA. Hartenstein, Würzburg, Almanya0.58x0.96 mm
Döner (375/D/20)Instech, Plymouth Meeting, PA, USA(375/D/20)
plastik düğme bağlarıInstech, Plymouth Meeting, PA, ABDLW105S
PerfusorB. Braun; Melsungen, AlmanyaPerfusor fm
aspirasyon kateteri ch. 10B.Braun Melsungen AG, Almanyaaspirasyon kateteri tipik " İdeal"; bölüm 10
sütürSyneture; ABDSurgipro; Monofilament Polipropilen 4-0
sütürEtikon; İskoçyaProlene; Polipropilen 5-0
14G-i.v. kateterBD Insynte; BD Vialon; Madrid; İspanya14GA i.v. kateter
pamuk tomurcuklarıNOBA Verbandmittel Danz GmbH u Co KG; Wetter; Almanya
kemirgen maskesiHugo Sachs Elektronik KG, Almanyakemirgen maskesi, Tip:7025
MidazolamRatiopharm, AlmanyaMidazolam
TermodilüsyonkateterCihazları, Spechbach, Almanya
p-Aminohippurik asitSigma-Aldrich; Aziz Louis; ABDp-Aminohippurik asit sodyum tuzu; A3759-25G
İnülinSigma-Aldrich; Aziz Louis; ABDInülin-FITC; F3272-1G
FormaldehitOtto Fischar GmbH & Öğr. Saarbrü cken, AlmanyaFormaldehit %3.5
SiklopentanMerck; Darmstadt; AlmanyaUvasol: 2-Metilbutan
alkol bazlı ovmaSchü lke & Mayr GmbH, Norderstedt; Almanyakodan Tinktur forte; 100g povidon iyot çözeltisi başına 45g 2-Propanol, 10g 1-Propanol
B.Braun Melsungen AG, AlmanyaBraunol, 100g başına 7.5g Povidone İyot

Kaynaklar

  1. Angus, D. C., et al. Epidemiology of severe sepsis in the United States: analysis of incidence, outcome, and associated costs of care. Crit Care Med. 29, 1303-1310 (2001).
  2. Dellinger, R. P., et al. Surviving sepsis campaign: international guidelines for management of severe sepsis and septic shock: 2012. Crit Care Med. 41, 580-637 (2013).
  3. Moerer, O., Quintel, M. [Sepsis in adult patients - definitions, epidemiology and economic aspects]. Internist (Berl). 50, 788-796 (2009).
  4. Belayev, L. Y., Palevsky, P. M. The link between acute kidney injury and chronic kidney disease. Curr Opin Nephrol Hypertens. 23, 149-154 (2014).
  5. Chao, C. T., et al. The impact of dialysis-requiring acute kidney injury on long-term prognosis of patients requiring prolonged mechanical ventilation: nationwide population-based study. PLoS One. 7, e50675(2012).
  6. Chertow, G. M., Christiansen, C. L., Cleary, P. D., Munro, C., Lazarus, J. M. Prognostic stratification in critically ill patients with acute renal failure requiring dialysis. Arch Intern Med. 155, 1505-1511 (1995).
  7. Doi, K. Role of kidney injury in sepsis. J Intensive Care. 4, 17(2016).
  8. Gomez, H., et al. A unified theory of sepsis-induced acute kidney injury: inflammation, microcirculatory dysfunction, bioenergetics, and the tubular cell adaptation to injury. Shock. 41, 3-11 (2014).
  9. Deitch, E. A. Animal models of sepsis and shock: a review and lessons learned. Shock. 9, 1-11 (1998).
  10. Esmon, C. T. Why do animal models (sometimes) fail to mimic human sepsis? Crit Care Med. 32, S219-S222 (2004).
  11. Rittirsch, D., Hoesel, L. M., Ward, P. A. The disconnect between animal models of sepsis and human sepsis. J Leukoc Biol. 81, 137-143 (2007).
  12. Doi, K., Leelahavanichkul, A., Yuen, P. S., Star, R. A. Animal models of sepsis and sepsis-induced kidney injury. J Clin Invest. 119, 2868-2878 (2009).
  13. Zantl, N., et al. Essential role of gamma interferon in survival of colon ascendens stent peritonitis, a novel murine model of abdominal sepsis. Infect Immun. 66, 2300-2309 (1998).
  14. Maier, S., et al. Cecal ligation and puncture versus colon ascendens stent peritonitis: two distinct animal models for polymicrobial sepsis. Shock. 21, 505-511 (2004).
  15. Schick, M. A., et al. Sepsis-induced acute kidney injury by standardized colon ascendens stent peritonitis in rats - a simple, reproducible animal model. Intensive Care Med Exp. 2, (2014).
  16. Schick, M. A., et al. Effects of crystalloids and colloids on liver and intestine microcirculation and function in cecal ligation and puncture induced septic rodents. BMC Gastroenterol. 12, 179(2012).
  17. Schneider, R., et al. Downregulation of organic anion transporters OAT1 and OAT3 correlates with impaired secretion of para-aminohippurate after ischemic acute renal failure in rats. Am J Physiol Renal Physiol. 292, F1599-F1605 (2007).
  18. Schick, M. A., et al. The impact of crystalloid and colloid infusion on the kidney in rodent sepsis. Intensive Care Med. 36, 541-548 (2010).
  19. Bellomo, R., Ronco, C., Kellum, J. A., Mehta, R. L., Palevsky, P. Acute renal failure - definition, outcome measures, animal models, fluid therapy and information technology needs the Second International Consensus Conference of the Acute Dialysis Quality Initiative (ADQI) Group. Crit Care. 8, R204-R212 (2004).
  20. Lustig, M. K., et al. Colon ascendens stent peritonitis--a model of sepsis adopted to the rat: physiological, microcirculatory and laboratory changes. Shock. 28, 59-64 (2007).
  21. Traeger, T., et al. Colon ascendens stent peritonitis (CASP)--a standardized model for polymicrobial abdominal sepsis. J Vis Exp : JoVE. , (2010).
  22. Dyson, A., Rudiger, A., Singer, M. Temporal changes in tissue cardiorespiratory function during faecal peritonitis. Intensive Care Med. 37, 1192-1200 (2011).
  23. Arakelyan, K., et al. Early effects of an x-ray contrast medium on renal T(2) */T(2) MRI as compared to short-term hyperoxia, hypoxia and aortic occlusion in rats. Acta physiol. 208 (2), 202-213 (2013).
  24. Schick, M. A., et al. Balanced hydroxyethylstarch (HES 130/0.4) impairs kidney function in-vivo without Inflammation. PLoS One. 10 (9), e0137247(2015).
  25. Flemming, S., et al. Phosphodiesterase 4 inhibition dose dependently stabilizes microvascular barrier functions and microcirculation in a rodent model of polymicrobial sepsis. Shock. 41, 537-545 (2014).
  26. Flemming, S., et al. Sphingosine-1-phosphate receptor-1 agonist sew2871 causes severe cardiac side effects and does not improve microvascular barrier breakdown in sepsis. Shock. 49 (1), 71-81 (2018).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Etiketler

Hemodinamik zlemeKan Gaz rneklemesiHistopatolojik SkorlarYo un Bak m KurulumuStandardize Septik OdakB brek Fonksiyon AnaliziSepsis nd ksiyon Y ntemiDeneysel AK Modeli

Bu makale yayımlandı

Video yakında

Bize Ulaşın
Kütüphaneye Öner

Gizlilik

Kullanım Koşulları

Politikalar

Telif Hakkı © 2026 MyJoVE Corporation. Tüm hakları saklıdır.