Yüzeyler İnsan Norovirus Tespiti sürüntü Örnekleme Yöntemi

Özet

Çevresel sert yüzeylerde norovirüsün tespiti ve miktarının belirlenmesi için makro köpük tabanlı bir örnekleme metodolojisi geliştirilmiş ve değerlendirilmiştir.

Özet

İnsan Noroviruses salgın ve dünya çapında dağınık gastroenteritin önde gelen nedenidir. En enfeksiyonlar ya çevresel yüzeylerde ya da gıda yoluyla dolaylı olarak kişiden kişiye yolla doğrudan yayılır ya, çünkü kirlenen fomitler ve cansız yüzeyler norovirus salgınları sırasında virüsün yayılması için önemli araçlardır.

Biz geliştirdik ve algılama ve sert yüzeylerde insan Noroviruses bir tiplemesi için macrofoam bezlerden kullanarak bir protokol değerlendirildi. Fiber uçlu bezlerden veya antistatik mendil ile karşılaştırıldığında, macrofoam bezlerden 700 ^cm2 klozet yüzeylerinden virüs kurtarma (aralık 1,2-33,6%) izin verir. Protokol spin sütunları kullanılarak viral RNA'nın bezlerden virüsün çıkarma ve bir daha konsantrasyon yapılması adımlarını içerir. norovirus gastroenterit olmuştu yolcu gemileri ve uzun süreli bakım tesislerinde yüzeylerinden toplanan olmuştu 217 sürüntü örneklerinin toplam olarak, 127 (% 58.5)RT-qPCR GII norovirusa için pozitif test bildirildi. Bu 29 (% 22.8) başarıyla genotip olabilir. Sonuç olarak, klinik örnekler mevcut olmadığında virüsün saptanması yanı sıra salgınlar sırasında çevresel kirlilik düzeyinin belirlenmesinde yardımcı olabilir geliştirilen protokolü kullanılarak çevresel yüzeylerde norovirusa tespiti; aynı zamanda iyileştirme stratejilerinin etkinliğinin izlenmesi kolaylaştırabilir.

Giriş

İnsan Noroviruses salgın ve sporadik akut gastroenterit, dünya çapında ^{1, 2, 3} lider nedenidir. Virüs son derece bulaşıcıdır ve iletim kişi etkileşim ya da dolaylı kirlenmiş yiyecek, su ya da çevresel yüzeylerle temas yoluyla doğrudan kişi aracılığıyla gerçekleşir. Noroviruses uzun süre tutacak ve uzun süreli çevresel yüzeyler üzerinde virüs yaşam ^{1, 2, 3,} belgelenmiştir edilebilir. Pik ağızlık açma işlemi esnasında, virüs partiküllerinin milyarlarca dışkıların gramı başına serbest bırakılır, ve kusmuk da enfeksiyonu ^{4, 5, 6, 7, 8} neden viral parçacıkların yeterli sayı ^içerir,ef "> ^{9, 10.} Buna ek olarak, cansız yüzeyler ve insan cilt arasındaki virüsün transferi kolayca oluşabilir ^{2, 11, 12.} Dolayısıyla, çevresel kirlilik izleme salgını soruşturmalarda yardımcı ve temiz-up etkinliğini değerlendirmede olabilir ve dezenfeksiyon işlemleri.

Bir çok çevresel numune alma protokolleri rotavirüs saptanması için tarif edilmiştir, kolifaj MS2, kedigiller calicivirüs (FCV) ve bakteriyofaj P22 ^{13, 14, 15, 16.} Ancak, hızlı kurumaya (<1 saat) ve küçük yüzey alanları da dahil olmak üzere bu çalışmalarda, açıklanan doğrulama koşulları (25 x 100 cm ^2), yeterli alan ayarlarını temsil etmeyebilir. Buna ek olarak, Çevreyi düşük kirlilik seviyeleri tahminnmental yüzeyler çok az virüs partiküllerini tespit edebiliyoruz protokolleri gerektirir.

Biz Norovirüs tespiti ve yazmak için bir macrofoam esaslı yüzey örnekleme yöntemi geliştirdi. Bu yöntem, birkaç norovirus salgınlar sırasında valide edilmiştir. protokol içerir 1) (2) nasıl en iyi laboratuvara toplama ve nakliye sırasında numunelerin bütünlüğünü korumak için, ve norovirusa 3) laboratuvar testleri ve yazarak çevresel yüzeylerden sürüntü örnekleri toplamak için nasıl.

Protokol

Alanında 1. Swab Örnekleme

1. eldiven temiz bir çifti giymek.
2. bir ölçüm bandı veya cetvel kullanarak yüzeyine dokunmadan örnekleme alanının boyutunu ölçün. Mümkün olduğu kadar doğru bölgeyi tahmin ve bir rapor formu (Ek Tablo 1) doldurmak için deneyin.
3. olası sızıntı ve etiket örneği taşıma çantaları ve çubukla kitleri için sürüntü kiti edin.
4. şu şekilde numune alanı boyunca çubukla hareket Yatay yönde bir felç, dikey yönde bir vuruş ve bir köşegen yönünde bir vuruş. 700 cm ² den bir yüzey alanı büyük çubukla etmeyin.
5. bir tüp içine her bezi yerleştirin ve güvenli kapağı sıkın.

Laboratuvara Swablar 2. Depolama ve Taşıma

1. en fazla 48 saat boyunca 4 ° C 'de bezlerden tutun. daha uzun süreler boyunca depolama gerekli ise, -20 ° C 'de bezlerden saklamak (ya da -70 ° C).
2. 0-4 ° C'de tüpler tutmak (örn. Toplama 24-48 saat içinde laboratuar ve gemiye taşıma sırasında izole edilmiş bir kap içinde) soğuk paketleri kullanır.

3. Virüs Konsantrasyon, Viral RNA Ekstraksiyonu ve Saflaştırılması

NOT: Aksi belirtilmedikçe tüm santrifüj adımları, oda sıcaklığında 5 dakika boyunca 5000 x g'de bir masa üstü santrifüjü kullanabilirsiniz. evrensel nükleik asit ekstraksiyon (UNEX) tamponu ile çalışırken ekstra dikkatli olun. gözlük veya yüz siperi takın.

1. bir 15 ml tüp ve her bir numune için bir RNA Midi sütun etiketleyin. Her deneyde negatif çıkarma kontrolü içerir.
2. 10 çubuklar için lizis çözeltisinin hazırlanması PBST 25 mL UNEX tamponu 25 ml karışımı (% 0.02 oranında içeren PBS pH 7.2 Tween-80).
3. Lizis çözeltisinin 50 mL kolifaj MS2 süspansiyonu (10 ⁶ PFU / ml) 50 ul ekleyin.
4. 15 ml bir tüp içinde bir çubukla yerleştirilir ve 5 mi liz çözeltisi ilave edin. Karıştırınız ve oda sıcaklığında 10 dakika inkübe edilir.
5. 10 sn için, her bir tüp ve vorteks 5 mi% 100 etanol ilave edin.
6. Dikkatle 15 ml tüp çubukla kaldırmak aşırı sıvı kaldırmak ve sonra çubukla atmak için tüpün kenarına hafifçe bastırarak (o UNEX tampon içerir). Geri kalan hacim 9-10 ml arasında olmalıdır.

4. Midi Sütun Viral Nükleik Asit Ekstraksiyon

1. Dikkatle bir midi sütun, santrifüj üzerine adım 3.6 4.5 mL UNEX / etanol karışımı aktarın ve süzüntü atın.
2. Aynı sütun, santrifüj üzerine aynı karışımdan başka 4.5 mL yükleyin ve süzüntü atın.
3. İlk yıkama için, Midi kolonu, santrifüjün üzerine,% 70 etanol 3.5 ml ilave edilir ve filtrat atılır.
4. İkinci yıkama için, Midi kolonu üzerine% 70 etanol bir 3,5 ilave edin. Santrifüj süzüntü atın ve.
5. kuru spin için, etanol tüm izlerini (olumsuz viral RNA kurtarma etkileyebilir) kaldırmak için Midi sütunları santrifüj.
6. yeni bir 15 ml'lik santrifüj tüpüne Midi sütun. Midi kolonuna 250 ul elüsyon tamponu ekleyin; En yüksek Viral RNA iyileşmeyi elde etmek santrifüj edilmeden önce 1 dakika boyunca bekleyin.
7. -70 ° C'de çıkarılan nükleik asidi saklayın veya adım 5'e hemen geçin.

RNA Temiz ve Konsantratörü Setlerini Kullanma Viral Nükleik Asit 5. Konsantrasyon

1. RNA 10 saniye süreyle yukarıda adım 4.7 ve vorteks yıkandı RNA 250 uL Bağlama Tamponu 500 mcL ekleyin.
2. 10 sn için 750 mcL% 100 etanol ve vorteks ekleyin.
3. Her bir numune için bir spin kolon etiketleyin. spin kolona 750 uL örnek yükleyin.
4. 1 dakika boyunca 12.000 xg'de dönüş sütunları santrifüj. flow-through atın.
5. 1 dakika boyunca 12.000 xg'de bir spin kolon ve santrifüj üzerine kalan 750 uL yükleyin.
6. ön yıkama için 1 dakika boyunca 12.000 xg'de her spin kolon ve santrifüj 400 uL RNA Hazırlık tampon ekleyin. flow-through atın.
7. İlk yıkama için, 1 dakika için 12,000 x g'de her spin kolon ve santrifüj 800 uL RNA yıkama tamponu ilave edin. flow-through atın.
8. İkinci yıkama için, 1 dakika için 12,000 x g'de sütun ve santrifüj dönmeye 400 uL RNA yıkama tamponu ilave edin. flow-through atın.
9. kuru spin için, 2 dakika süreyle 12,000 xg'de yıkama tamponu tüm izlerini silmek için spin kolon santrifüj.
10. Dikkatle temiz bir 1.5 mL mikrosantrifüj tüp spin kolon aktarın.
11. Spin kolonu üzerine 25 uL elüsyon tamponu ilave edin ve oda sıcaklığında 1 dakika boyunca inkübe edin. Bu sütundan viral RNA kurtarma artacaktır.
12. 1 dakika 10.000 xg'de spin kolon santrifüj edilerek RNA toplayın.
13. Her iki durumda da, -70 ° C'de, RT-qPCR (aşama 6) veya mağaza RNA doğrudan devam edin.

6. Genogroup I Mutiplex RT-qPCR Algılama ve II Noroviruses ve Kolifaj MS 2 (Ek Tablo 2)

1. Temiz çalışma yüzeyleri, pipettes, RNaz dekontaminasyon solüsyonu ile ve santrifüjler olası kirlenmeyi azaltmak için.
2. buz üzerinde RT-qPCR reaktifler çözülme. (Ayrı bir alan / oda) buz üzerinde Çözülme RNA.
3. Reaksiyonların sayısını belirlemek ve bunların en az% 10 daha fazla eklemek (10 reaksiyonlar gerektiği takdirde, örneğin, 11 master karışımı olun).
4. 5 saniye için 25x RT-qPCR enzimi haricinde Vortex bireysel master miks bileşenleri. Dikkatli bir parmak ile tüp hafifçe vurarak enzimi karıştırın.
5. 5 saniye süreyle kısaca santrifüj master miks bileşenleri.
6. Kiti talimatlarına göre Norovirus GI ve GII gerçek zamanlı RT-PCR tespiti için ana karışım hazırlanarak, 1.5 ml mikrosantrifüj tüpü (Ek Tablo 3) norovirus spesifik oligonükleotid primerler ve problar ekleyin.
7. yukarı ve aşağı 5-10 kez pipetleme ana karışımı karıştırın (vorteks tavsiye edilmez). Gerçek zamanlı PCR, 96 oyuklu plakanın her bir master karışımı kısım 22 uL.
8. Vortex örnek RNA5 saniye için, ve kısa (5 s) santrifüjle toplanır.
9. RT-qPCR plaka (Tablo 2 şablonu izleyin) örnek RNA ve GI ve GII pozitif kontroller 3 mcL ekleyin. no-şablon kontrolü (NTC) kuyularda nükleaz Freewater 3 mcL ekleyin.
10. Optik yapışkan film ile gerçek zamanlı plaka basım.
11. 1 dakika kuyularda mevcut olabilecek herhangi bir hava kabarcığı veya sıvı damlaları kaldırmak için dikkatlice 1,300 xg'de gerçek zamanlı plaka santrifüj.
12. 10 dakika 1) RT adım: Bir gerçek zamanlı PCR cihazı ve set-up aşağıdaki thermocycling koşullar ayarlayın. Taq polimeraz, 45 ° C (2) aktivasyonu, 10 dak. 95 ° C ve (3) 95 ° C'de 15 saniye, 45 döngü, 60 ° C'de 60 s.

Çubuğu Örneklerinde Norovirus 7. sayısallaştırılması

1. RT-qPCR sonuçları (Ek Tablo 3) doğrulamak için pozitif ve negatif kontrollerin sonuçlarını kontrol edin.
2. Her bir standart eğri karşılayıp karşılamadığını belirlemekkabul edilebilir değerler Ek Tablo 2'de verilmiştir ve Eşitlik 1 kullanılarak standart eğri için genel standart sapmayı hesaplar.
   (Denklem 1)% verim = 100 x 10 ^{(ortalama Ct Değerleri-Intercept) / Eğim.}
3. PCR termal döngü cihazı yazılımı her standart eğri için eğimi hesaplamak etmezse, eğim ve R istatistik yazılımı kullanılarak regresyon ile ² değerleri (örneğin Excel, SPSS, ya da SAS) belirler. Buna ek olarak, denklem I aşağıdaki standart eğriler için% verimliliğini hesaplamak
4. Ek Tablo 4'te belirtilen kriterlere uygun standart eğrileri dayalı tüm test numuneleri için termal döngü cihazı yazılımı tarafından hesaplanan RNA kopya numarasını kaydedin. Kriterlere uygun ya da yanlış pozitif kontroller yok, standart eğrileri t şapka ile herhangi bir örnekleri yeniden. PCR inhibisyonunu izlemek için bir iç kontrol olarak eklenmiştir kolifajla MS2, Ct değerlerini kontrol edin.
5. RNA kopyası p sayısını belirlemekRT-qPCR Reaksiyon için kullanılan RNA (3 uL 5), bu, toplam RNA, yıkama sıvısı hacmi (25 ila 50 uL) oranında adım 7.2 hesaplanan RNA kopya sayısı ile çarpılarak er örneği. Alternatif olarak, analiz nesne yüzey alanı ^(cm2) toplam RNA kopya sayısına bölünmesi ile RNA yoğunluğunu hesaplamak.

Yan yerleştirilmiş geleneksel PCR amplifikasyonu ile gerçek zamanlı RT-PCR pozitif örnek 8. Genotiplendirme

1. RT-PCR testinin her bir primer seti için ana karışımı ilk turda hazırlayın (Ek Tablo 2 ve 5).
2. ana karışımı 20 mcL norovirus pozitif RNA 5 mcL ekleyin.
3. aşağıdaki koşullar altında, RT-PCR deneyinde (1) içinde oda sıcaklığında 95 ° C'de, Taq polimeraz, 42 ° C (2) aktivasyonu, 15 dakika, 30 dakika boyunca aşama, ve (3) 95 ° C'de 30 saniyelik 40 döngü 50 ° C'de 30 saniye ve 72 ° C'de 60 san. 40 döngü sonrasında, 72 ° C'de ek bir 10 dakika boyunca inkübe edin.
4. RT-PCR testinin her bir primer seti (Ek Tablo 2 ve 5) için mater karışımı ikinci tur hazırlayın.
5. 23 uL ana karışımı ekleyin ve her tüp (ideal ilk tur ürünü RNaz içermeyen su içinde 1/10 seyreltilmiş olmalıdır) için (ilk turdan) ilk tur RT-PCR ürünlerinin 2 mcL ekleyin.
6. Adımı tekrarlayın 8.3.
7. (PH 8.3, 40 mM Tris, 20 mM asetik asit ve 1 mM EDTA) 100 mL 1x Tris-asetat EDTA,% 2 agaroz jel hazırlayın. Bir mikrodalga fırında karışımın ısıtılmasıyla agaroz çözüldükten sonra, 60-70 ° C'ye kadar soğutulduktan sonra karışım hazırlanmış jel, 100 ml başına nükleik asit leke 10 mcL jel dökün ve tarak yerleştirin. Jel en az 30 dakika süreyle dinlendiriniz.
8. 6x yükleme boyası 3 uL her bir RT-PCR ürünü 15 ul karıştırın. Yük Her numunenin 15 uL ve 1 saat boyunca 100 V'ta agaroz jeli Electrophorese.
9. Jel An uygun büyüklükte (GI için 330 bp ve GII 341 bp) tüketim hedefi RT-PCR fragmanlarıticari bir jel özütleme kiti kullanılarak RNA'yı saflaştırmak d. Arıtılmış PCR ürünü, artık Sanger sekanslama için de kullanılabilir.

Sonuçlar

Şekil 1 sürüntü örnekleme protokolünün bir akış şemasını göstermektedir. Bu protokol dört ana aşamadan oluşmaktadır; 1) numune toplama, 2) örnek depolama ve nakliye, 3) viral RNA arıtma ve konsantrasyon ve 4) RT-qPCR tahlil ve genotiplendirme.

Şekil 1: norovirusa çevresel yüzey örnekleme için nihai protokolün akış şeması

Tartışma

Noroviruses 18 ve 10 ³ virüs parçacıkları ²⁰ arasında% 50 insan bulaşıcı dozu var. Bu nedenle, yüzeylerin bile düşük seviyeli kirlenme bir halk sağlığı riski doğurabilir. iç çıkarma kontrolü olarak taşıma sırasında 1) farklı sürüntü malzemeleri, 2) depolama koşulu bezlerden, 3) viral RNA konsantrasyonu ve 4) kolifaj MS2: çubukla örnekleme protokolünün çeşitli yönleri de dahil olmak üzere değerlendirildi.

Yakın zamana kadar, pamuk, polyester, naylon ve benze...

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi

Ad	Şirket	Katalog numarası	Yorumlar
Kitler için genel isim
Makro köpük çubuk<>	Önceden nemlendirilmiş EnviroMax Swab kiti	Püriten	2588060PFUW
RNA Lizis tamponu	CDC UNEX tamponu	Microbiologics	Cat No MR0501
< güçlü >RNA ekstraksiyon spin kolonu< / güçlü >	Midi kolon	Omega Biotek	Cat No R6664-02
< güçlü >RNA saflaştırma spin kolonu< / güçlü >	Zymol RNA Temiz ve Yoğunlaştırıcı kiti & nbsp;	Zymo Araştırma	Kedisi Hayır R1016
Gerçek zamanlı RT-PCR kiti	AgPath kiti Tek Adımlı RT-PCR Kiti	Yaşam Teknolojileri	Kedi No
4387391Konvansiyonel RT-PCR kiti	Qiagen tek adımlı RT-PCR kiti	Qiagen kiti	Cat No 210212
Jel ekstraksiyon kiti	Qiagen QIAquick jel ekstraksiyon kiti	Qiagen kiti	Kedi No 28704 veya 28706
	Kolifaj MS2	ATCC	Cat No 15597-B1
	RNA akış transkriptleri
	Gerçek zamanlı PCR platformu	Uygulamalı Biyosistemler	Model ABI 7500
	Optik 96 kuyulu reaksiyon plakası	Thermo Scientific	Cat No 4316813
	MicroAmp Şeffaf Yapışkan Film	Thermo Scientific Cat	No 4306311