Yöntem makalesi

Fare Primer Hepatosit Kültürler bir inflamatuar yanıtın indüksiyon

9.8K görüntüleme

⸱

DOI:

10.3791/55319

⸱

10 Mart 2017

 ,  ,  ,  ,  , 
1Katz Family Drug Discovery Center and Division of Nephrology and Hypertension, Department of Medicine, University of Miami Leonard M. Miller School of Medicine, 2Department of Cell Biology and Anatomy, University of Miami Leonard M. Miller School of Medicine

* These authors contributed equally

Bu makalede

Özet

Burada, yetişkin farelerin birincil hepatositler izole etmek için bir enzimatik yaklaşım göstermek ve biz ELISA ve gerçek zamanlı PCR kullanarak bir inflamatuvar yanıt ölçümü açıklar.

Özet

Karaciğer sistemik inflamasyon düzenlenmesinde önemli bir rol oynar. Özellikle kronik böbrek hastalığı, karaciğer Üremik ortamda, oksidatif stres, endotoksemi ve akut faz reaktanları çok sayıda üreterek proinflamatuar sitokinler dolaşımdaki azalmış temizlenmesi cevaben tepki verir. inflamasyon ve hepatositlerin yatan rolü deneysel araçları incelemek için kronik böbrek hastalığı gibi özellikle karmaşık bir ortamda düzenlenmesi ve karaciğer sitokinlerin katkısı sistemik akut faz yanıtı ve uzun bir pro-enflamatuar senaryo, anlamak için çok önemlidir. In vivo enflamasyon karmaşık mekanizmalar okuyan zorlu kaldığından, kaynak-yoğun genellikle ve transgenik hayvanların kullanımını gerektirir, birincil izole hepatositler hepatik akut faz yanıtı içine mekanistik anlayışlar kazanmak için sağlam bir araç sağlar. Bu in vitro tekniği ılımlı maliyetleri özellikleri olduğundan, yüksek yenidenüretilebilirlik ve ortak teknik bilgi, birincil izole hepatositler de kolayca bir tarama yaklaşımı olarak kullanılabilir. Burada, birincil fare hepatositleri izole etmek için bir enzimatik temelli bir yöntem tarif ve biz ELISA ve kantitatif gerçek zamanlı PCR kullanarak bu hücrelerin bir inflamatuar yanıtın değerlendirilmesi açıklar.

Giriş

Kronik böbrek hastalığı (CKD), akut ve kronik iltihap 1 bir durum olarak tanımlanabilir. KBH olan hastalarda, phosphaturic hormon fibroblast büyüme faktörü 23 (FGF23) serum düzeyleri giderek serum fosfat homeostazisini 2 korumak için yükselir. Artmış serum FGF23 düzeyleri bağımsız hemodiyaliz tedavisi 3, 4 başlıyor hastalarda kardiyovasküler morbidite ve mortalite ile ilişkilidir. Bundan başka, pek çok klinik çalışmalar, yüksek FGF23 seviyeleri ve C-reaktif protein (CRP), Interlökin-6 (IL-6) ve tümör nekroz faktörü a (TNFa), 5, 6 serum seviyeleri arasında güçlü bir ilişki olduğunu göstermiştir. Ayrıca, deneysel bir çalışmada, son zamanlarda FGF23 doğrudan hepatositler hedef ve artan CRP ve IL-6 p bir inflamatuar yanıta neden olduğunu göstermiştirkaraciğer 7 roduction. Bu nedenle, FGF23 CKD sistemik inflamasyona katkıda bulunan dolaşan bir faktör olarak hareket olabilir.

70 yılların başında, birincil hepatositler izole edildi ve ilk kez 8 okudu. O zamandan beri primer kulturlenmiş hepatik hücreler yoğun, 10 metabolik işlem, hormonal fonksiyon, ilaç metabolizması ve toksisitesinin yanı sıra bağışıklık yanıtlarını ve enflamatuar yanıtları 9 incelemek için kullanılmıştır. Önceki protokoller esas insan karaciğer dokusunda 11, 12 birincil hepatositlerin enzimatik izolasyonuna tarif etmişlerdir. mükemmel bir model olsa da, bu karmaşık karaciğer sinyal mekanizmalarını yanı sıra uyaranların farklı türde üzerine fonksiyonel sonuçlarını nasıl etkilediğini genetik manipülasyon çalışma olanağı dışarıda bırakır. Aşağıda, fare primer hepatositlerinde izolasyonunu tarif. Özellikle, böyle bir lipopolisakarit (LPS), IL-6 ve FGF23 hepatik akut faz tepkisinin birçok aracıların, etkisi, kolay, hızlı ve yeniden üretilebilir bir şekilde 13 analiz edilebilir.

Burada, erişkin farelerden hepatositlerin enzimatik izolasyonu için protokol mevcut, ve LPS ve IL-6, hem de böyle bir FGF23 gibi yeni enflamasyon ile ilgili aracıların enflamasyon kurulan indükleyicileri, doğrudan ifadesini ve ifrazatını uyardığını göstermektedir bu tür kültürlenmiş hepatositlerde CRP ve IL-6 gibi enflamatuar sitokinleri,.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Protokol

Tüm hayvan protokolleri ve deneysel prosedürler Tıp Miami Miller School Üniversitesi Kurumsal Hayvan Bakım ve Kullanım Komitesi (IACUC) tarafından onaylanmıştır.

1. Hazırlık

  1. Ön ısıtma karaciğer perfüzyon medya ve karaciğer 37 ° C'de su banyosunda medyayı sindirmek.
  2. bir perfüzyon pompası (30 ml / dak) ayarlayın. Dikkatle karaciğer perfüzyon medya ile pompanın boru sistemini önceden doldurmak. sistemdeki herhangi bir hava kabarcıklarını önlemek ve stereotaktik mikroskop hazırlar.
  3. Üreticinin protokolüne göre kollajen tipi kullanılarak Coat hücre kültürü tabakları.

2. Karaciğer Kurtarma

  1. Oksijen / izofluran inhalasyon (izofluran% 4/2 L / dk oksijen) kullanarak donör fare anestezisi.
    1. % 2-2.5 izofluran düşürülmesiyle veya ketamin enjekte edilerek anestezi bakımı (100 mg / kg vücut ağırlığı intraperitonal olarak) ve ksilazin (vücut ağırlığı için 10 mg / kg intraperitoneally). Sürekli izofluran anestezi ketamin kan basıncını düşürür ve hepatotoksisite neden olabilir çünkü tercih edilir.
  2. emici ped üzerine anestezi fare yerleştirin. yapışkan bant ile farenin ekstremitelerde düzeltin.
  3. Tıraş ve fare karın dezenfekte ve keskin / künt uçlu cerrahi makas kullanarak karaciğer kafatası sınırına pubis ventral laparotomi gerçekleştirin. her iki tarafa da karın duvarı, diyaframın kaudal İnsizyon.
  4. dikkatle sağ tarafa bağırsak hareket ettirerek inferior vena kava (IVC) Açığa. Dikkatle steril pamuk uçlu çubukları ve açılı ucu forseps kullanarak IVC çevresinde yağ dokusu disseke.
  5. suprahepatik diyafram insizyon ve keskin / sivri uçları ile ince cerrahi makas kullanılarak iki yanal kesiler ile göğüs boşluğu açın. göğüs İVC cerrahi ipek (5/0) ile Arter.
  6. Dikkatle iğneyi çıkarın, bir korumalı iv kateter kullanarak infrarenal IVC cannulateperfüzyon pompası bağlamak ve karaciğer perfüze başlar. Düzgün gerçekleştirildiği takdirde, karaciğer derhal ağartma ve kabarma başlamalıdır.
  7. ince cerrahi makas kullanılarak kan ve perfüzyon medyanın uygun drenaj izin damar portal transect.
  8. Karaciğer perfüzyon ortamının yaklaşık 30 mL 'si ile karaciğer serpmek ve CD (30 mL) sindirmek karaciğer geçin. perfüzyon pompası kapatın ve perfüzyon tamamlandıktan sonra kanül kaldırın.
  9. Yavaşça karaciğer merkez bölgesini ortaya çıkarmak ve karaciğer lobu birbirine bağlayan bağlantı doku bulun. merkezi bağlantı lifleri tut ve dikkatli bir şekilde yerinde karaciğer tutan tüm dokuları incelemek ve yavaşça karaciğer çıkarın.
  10. Hemen ortamı sindirimi karaciğer 15 mL içeren 50 ml polipropilen konik tüpe karaciğer aktarın.
    NOT: Bu adım için belirli bir zaman çizgisi vardır. perfüzyon sonra, karaciğer steril bir hücre kültürü kaputu taşıma için özet medyada kalır. Tüm subsequent adımları steril bir ortamda yapılmalıdır.

3. Hücrelerin İzolasyonu ve Tedavi

  1. Bir hücre kültürü kaputu içinde, steril bir doku kültürü çanak içine 50 ml polipropilen konik tüp içeren sindirim ortamından karaciğer aktarın.
  2. Steril forseps kullanarak, yavaşça karaciğerin dört lob gözyaşı. Düzgün gerçekleştirildiği takdirde, sindirim orta nedeniyle karaciğer hepatositleri izole etmek bulanık hale gelmelidir.
  3. 25 ml steril bir pipet ucu kullanılarak, sindirilmemiş doku partiküllerini ve hücre debrisini uzaklaştırmak için yeni bir 50 ml polipropilen konik tüpe 70 mikron naylon hücre süzgecinden bulanık sindirim orta filtre.
  4. Tekrar 3.2 ve steril fosfat-tamponlu tuzlu su (PBS) ile 3.3 yineleyin. Bu karaciğer herhangi bir kalıntı hepatositler kaldırarak yardımcı olur.
  5. 4 ° C'de 2 dakika boyunca 50 x g'de santrifüjleyin. 25 ml soğuk 1x hücreleri yeniden askıya hafifçe aşırı hücre artıkları içeren süpernatant aspire veWilliams 'Orta E.
  6. 25 ml steril bir pipet ucu kullanılarak temiz bir süspansiyon elde etmek için 50 ml polipropilen konik tüpe yeni 70 um naylon hücre süzgecinden yeniden süspansiyon filtre.
  7. Tekrarlayın 3.5 ve daha net bir hücre süspansiyonu elde etmek için soğuk Williams 'Orta E 1x kullanarak üç ek yıkar 3.6 adımları.
  8. Son yıkama aşamasından sonra, aspirat süpernatant aşırı hücre enkaz kaldırmak için. Yeniden askıya ve 50 ml polipropilen konik tüp içine yeni bir 70 mikron naylon hücre süzgecinden birincil hepatosit çözülme ve kaplama takviyeleri içeren 25 ml ılık Williams'ın 'Medya E 1x filtre hücreleri.
  9. hemasitometre kullanarak 25 ml hücre süspansiyonu içinde hücreleri saymak. yetişkin karaciğer başına 20 milyon hücre - ortalama 15 bekliyoruz. tripan mavisi boyama kullanarak hücre canlılığı belirleyin.
  10. Bir kollajen kaplı 6-iyi ce birincil hepatosit çözülme ve kaplama takviyeleri içeren 2 ml 'Williams Medya E 1x Levha hücrelerill kültür küme (kuyu başına 9 x 10 5 hücre).
  11. 4 saat sonra, birincil hepatosit bakım takviyeleri içeren Williams'ın 'Medya E 1x medyayı değiştirin.
  12. 24 saat sonra, serum Dulbecco modifiye edilmiş Eagle ortamında (DMEM) ortamı ile 1 x 6 saat boyunca hücreleri açlıktan öldürmek.
  13. araç, FGF23 (25 ng / ml), LPS gibi hücrelerin PBS ile tedavi (100 ug / ml) ya da serum barındırmayan ortam içinde IL-6 (50ng / ml) ve 24 saat boyunca inkübe edilir.

RNA izolasyonu 4.

  1. üreticinin talimatlarına göre bir ticari bir spin kolon kiti kullanılarak RNA'nın hazırlanması.

Ters Transkripsiyon tarafından izole RNA 5. Yaratma cDNA

  1. PCR tüpüne izole RNA numunesinin 200 ng ekleyin.
  2. Aşama 5.1 endonükleaz içermeyen H2O PCR tüpü 14 uL ekleyin.
  3. Aşama 5.1 PCR tüpü ters transkriptazın 4 ul ekle.
  4. Karışım homojen hale getirmek için yavaşça içeriğini yeniden askıya; yavaşça santrifüj.
  5. bir termalcycler içine karışımı içeren PCR tüp yerleştirin. Çalışma ters transkripsiyon için PCR: daha sonra 25 ° C'de (5 dakika), 42 ° C (30 dk) 1 döngü, 85 ° C (5 dakika) ve 4 ° C'de tutun. Son ürün, arzu edilen cDNA'nın olacaktır.

6. Kantitatif Real-time PCR ile Hücrelerin Analizi (qPCR)

  1. 96 oyuklu plaka hazırlanması.
    1. 1 uL cDNA, .25 uM ileri primer, .25 uM ters primer, 5 uL SYBR Green, 10 ul toplam hacim 3.5 uL PCR sınıf su: buz üzerinde qPCR reaksiyon tüm bileşenlerini yerleştirin. SYBR Green kullanarak, üç nüsha halinde tüm örnekleri çalıştırmak için ana karışımı hazırlayın.
    2. master miks tamamlandıktan sonra, girdap homojen hale getirmek için. 96 Wll plakanın her oyuğuna kısım 9 uL qPCR ana karışımı. Sonra, dikkatle her kuyuya cDNA 1 mcL ekleyin. Toplam reaksiyon hacmi 10 uL olacaktır.
    3. Yükleme tamamlandıktan sonra, optik olarak 96 kuyucuklu bir plaka sızdırmazYapışkan film ve kısa bir süre için santrifüj 96 oyuklu plaka (1 dakika için 50 x g).
  2. Bir Real Time PCR cihazında Run örnekler. Real Time PCR aracı haline mühürlü 96-plaka ve enstrüman üreticisi tavsiyelerine göre çalışacak örnekleri yerleştirin. Standart ve hızlı döngü örnekleri aşağıda yer almaktadır.
    1. 60 saniye boyunca, 15 sn için, daha sonra 120 saniye boyunca 94 ° C 'de, 60 ° C, 94 ° C 40 döngü, ilk denatürasyon, sonra, isteğe bağlı olarak 4 ° C'de tutun: Standart bisiklet parametreleri, aşağıdaki kullanın.
    2. Hızlı döngü için parametreler: 5 s, 15 s için 58 ° C, 10 saniye daha sonra 72 ° C'de, daha sonra 30 saniye boyunca 95 ° C 40 döngü 94 ° C sıcaklıkta başlangıç ​​denatürasyon: Aşağıdaki kullanın.
  3. Verileri analiz konusunda rehberlik için cihaz kılavuzuna bakın.

ELISA ile hücre üst 7. analizi

NOT: Üreticinin protokolüne göre tüm adımları gerçekleştirilir.

  1. Örnek hazırlama
    1. Ayrı tüpler içine seyrelticinin 398 uL koyun. 398 uL seyreltici tüpüne hücre süpernatanı numunesi Pipet 2 uL. Bu 200 seyreltme kat sağlayacaktır.
    2. Her bir numune için yineleyin 7.1.1 test edilecek.
  2. prosedür
    1. Pipet 100 200 kat seyreltilmiş bir numunenin uL ve 96 oyuklu bir plaka gözlerine standart.
    2. 150 rpm'de bir mikro-plaka karıştırıcısı üzerinde 45 dakika boyunca 25 ° C'de 96 oyuklu plaka inkübe edin.
    3. gözenekleri 1x yıkama tampon çözeltisi ile 5 kez yıkayın. Son yıkama tamamlandıktan sonra, emici kağıt ile kalan tüm yıkama solüsyonu çıkarın.
    4. Her kuyuya HRP konjügatı reaktif 500 ul ekle.
    5. 7.2.3 - Tekrar 7.2.2 adımları.
    6. tetrametilbenzidin Pipet 100 uL (TMB), 96 oyuklu plakanın her oyuğuna reajanı.
    7. Yavaşça mikroplaka üzerinde 20 dakika boyunca 25 ° C'de 96-çukurlu plaka karıştırın150 rpm'de sarsıcı. doğrudan her kuyuya durdurma çözeltisi 100 mcL ekleyerek reaksiyonu durdurmak ve hafifçe karıştırın. durdurma çözeltisi ilave edildikten sonra rengi sarı dönmelidir. Bu durak çözüm doğru karışık olduğunu bildirir.
    8. bir mikrotitre plaka okuyucusu kullanılarak, ilk 5 dakika içinde 450 nm'de optik yoğunluğu belirlemek.
  3. Sonuçların hesaplanması
    1. Her bir örnek, her bir standart için ortalama absorbans değerleri (450) bir tablo hesaplayın.
    2. Ng standart konsantrasyonuna karşı her bir standart bir 450 ortalaması işaretlenmesiyle bir standart eğri birleştirin / doğrusal grafikte mi. X-ekseni konsantrasyon ve 450 değerleri temsil etmek için y eksenini temsil izin verin.
    3. Her bir seyreltilmiş örnek 450 ortalama kullanarak, standart eğriden ng / mL, istenen protein konsantrasyonu belirlenir.
    4. seyreltme facto numune konsantrasyonunu çarpınr. Bu hücre yüzer örnek istenen proteinin gerçek konsantrasyonunu belirlemek için izin verir.
    5. Bir çizgi grafikte içine örneklerinden inşa tablo çizilir. OD 450 değerleri standart eğrinin dışında kalan, numuneler uygun şekilde seyreltilmiş edilmeli ve yeniden test edilmiştir.
    6. 500.000 hücrelere sonuçları normalleştirmek.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

histoloji

Birincil izole edilen ve kültürlenen hücrelerin Örnek ışık mikroskobu görüntüleri Şekil 1A'da gösterilmiştir. İmünositokimyasal analizi izole hepatositler yüksek albümini (kırmızı) hem de fibroblast büyüme faktörü reseptörü 4 (FGFR4) (yeşil) eksprese olduğunu göstermektedir. Çekirdekler 4 ', 6-diamidino-2-fenilindol (DAPI) (mavi) ile boyanır. (Şekil 1B).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

Farelerden alınan birincil hepatositler yalıtma inflamatuar yanıtları ex vivo çalışma için hızlı, ucuz ve güvenilir bir araçtır. Doğru şekilde gerçekleştirilmemesi durumunda, sonuçlar kolaylıkla üretilir ve zamanında ve maliyet-etkin bir şekilde çoğaltılabilir. Aşağıdaki hususlar, dikkatli bir şekilde, başarılı bir izolasyon sağlamak amacıyla değerlendirilmelidir.

Cerrahi kesi ve IVC kanülasyon genel anestezi altında ve ötenazi sonra yapılmalıdır. Genç, tecrübesiz araştırma...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

Yazarlar bildirmek için herhangi bir çıkar çatışması var.

Teşekkürler

Bu çalışma NIH (R01HL128714 CF) ve (KS F31DK10236101) ve Amerikan Kalp Derneği (CF ve AG) tarafından desteklenmiştir.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
Sarf Malzemeleri
Hücreli Süzgeç 70 & m Naylon hücre süzgeciFalcon352350
BD Insyte AutoguardBD381412
50 mL Polipropilen Konik BoruFalcon352098
100 6 inç Pamuk Uçlu Aplikatörler ve nbsp;Puritan806-WC
1cc U-100 İnsülin Şırıngası 28 G 1/2Becton Dickinson329420
Doku Kültürü Kabı 100 x 20 mm StilCorning353003
6 kuyulu Hücre Kültürü KümesiCostar3516
5/0 Siyah Örgülü Cerrahi İpek (100 yarda)LOOKSP115
NameCompanyKatalog NumarasıComments
Equipment
Minipuls 3 Perfüzyon PompasıGilsonF155007
Hematitometre Kitleri, PropperVWR48300-474
Hemasitometre Kapak Camları, PropperVWR48300-470
Cerrahi Makaslar - Keskin/KörF.S.T.14001-12
İris Makas-ToughCut DüzF.S.T.14058-11
Dumont SS-45 ForsepsFST11203-25
Öğrenci Doku ForsepsF.S.T.991121-12
NameCompanyKatalog NumarasıComments
Reagents
Asetik asit çözeltisi, 2.0N Sigma      A8976-100ML
İzofluran, USP 250 mLPiramal Sağlık Hizmetleri    66794-013-25
KetaVed 1.000 mg / 10 mL (100 mg / mL)VEDCO      50989-161-06
Ksilazin 100 mg / mLAnaSed Enjeksiyonu139-236
Willams' Medium E (1x)gibco12551-032
Karaciğer Perfüzyon Ortamı (1x)gibco17701-038
Karaciğer Sindirim Ortamı (1x)Yaşam Teknolojileri17703034
Primer Hepatosit Çözdürme ve Kaplama TakviyeleriYaşam TeknolojileriCM3000
Primer Hepatosit Bakım TakviyeleriYaşam TeknolojileriCM4000
Fosfat Tampon Salin (PBS) pH 7.4ThermoFisher bilimsel10010031
Kollajen Tip 1Corning354236
Tripan Mavisi ÇözeltisiVWR45000-717

Kaynaklar

  1. Silverstein, D. M. Inflammation in chronic kidney disease: role in the progression of renal and cardiovascular disease. Pediatr Nephro. 24 (8), 1445-1452 (2008).
  2. Isakova, T., et al. Fibroblast growth factor 23 is elevated before parathyroid hormone and phosphate in chronic kidney disease. Kidney Int. 79 (12), 1370-1378 (2011).
  3. Faul, C., et al. FGF23 induces left ventricular hypertrophy. J Clin Invest. 121 (11), 4393-4408 (2011).
  4. Gutiérrez, O. M., et al. Fibroblast growth factor 23 and mortality among patients undergoing hemodialysis. N England J Med. 359 (6), 584-592 (2008).
  5. Munoz Mendoza, J., et al. Fibroblast growth factor 23 and Inflammation in CKD. Clin J Am Soc Nephrol. 7 (7), 1155-1162 (2012).
  6. Hanks, L. J., Casazza, K., Judd, S. E., Jenny, N. S., Gutiérrez, O. M. Associations of Fibroblast Growth Factor-23 with Markers of Inflammation, Insulin Resistance and Obesity in Adults. PLoS ONE. 10 (3), e0122885(2015).
  7. Singh, S., et al. Fibroblast growth factor 23 directly targets hepatocytes to promote inflammation in chronic kidney disease. Kidney Int. , 1-12 (2016).
  8. Howard, R. B., Christensen, A. K., Gibbs, F. A., Pesch, L. A. The enzymatic preparation of isolated intact parenchymal cells from rat liver. J Cell Biol. 35 (3), 675-684 (1967).
  9. Moshage, H. J., et al. The effect of interleukin-1, interleukin-6 and its interrelationship on the synthesis of serum amyloid A and C-reactive protein in primary cultures of adult human hepatocytes. Bioch Biophysi Res Commun. 155 (1), 112-117 (1988).
  10. Soldatow, V. Y., LeCluyse, E. L., Griffith, L. G., Rusyn, I. In vitro models for liver toxicity testing. Toxicol. Res. 2 (1), 23-39 (2013).
  11. Lee, S. M. L., Schelcher, C., Demmel, M., Hauner, M., Thasler, W. E. Isolation of Human Hepatocytes by a Two-step Collagenase Perfusion Procedure. J Vis Exp. (79), (2013).
  12. Kegel, V., et al. Protocol for Isolation of Primary Human Hepatocytes and Corresponding Major Populations of Non-parenchymal Liver Cells. J Vis Exp. (109), (2016).
  13. Moshage, H., et al. Cytokines and the hepatic acute phase response. J Pathol. 181 (3), 257-266 (1997).
  14. Klaunig, J. E., et al. Mouse liver cell culture. I. Hepatocyte isolation. In vitro. 17 (10), 913-925 (1981).
  15. Lu, Y. C., Yeh, W. C., Ohashi, P. S. LPS/TLR4 signal transduction pathway. Cytokine. 42 (2), 145-151 (2008).
  16. Schmidt-Arras, D., Rose-John, S. IL-6 pathway in the liver: From physiopathology to therapy. J Hepatol. 64 (6), 1403-1415 (2016).
  17. Grabner, A., et al. Activation of Cardiac Fibroblast Growth Factor Receptor 4 Causes Left Ventricular Hypertrophy. Cell Metab. 22 (6), 1020-1032 (2015).
  18. Shulman, M., Nahmias, Y. Chapter 17, Long-Term Culture and Coculture of Primary Rat and Human Hepatocytes. Methods Mol Biol. 945, 287-302 (2012).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya şekillerini yeniden kullanmak için izin iste

İzin iste

Etiketler

Primer Hepatosit zolasyonuMurin Hepatosit K lt rnflamatuar Yan t De erlendirmesiELISA Sitokin TespitiKantitatif Real Time PCRLPS Uygulama ProtokolFGF23 Stim lasyonuIL6 Ekspresyon AnaliziCRP Sal n m l mHepatosit A l k Y ntemi

İlgili makaleler