Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliğiniz gereklidir. Giriş yapın veya ücretsiz denemenizi bugün başlatın.

Yöntem makalesi

Kordon Kanından Oluşan İndüklü Pluripotent Kök Hücrelerden Kondrojenik Pellet Oluşumu

10.7K görüntülenme

⸱

DOI:

10.3791/55988

⸱

19 Haziran 2017

 ,  , 
1CiSTEM Laboratory, Convergent Research Consortium for Immunologic Disease, Division of Rheumatology, Seoul St. Mary's Hospital, College of Medicine, The Catholic University of Korea, 2Division of Rheumatology, Department of Internal Medicine, Seoul St. Mary's Hospital, Institute of Medical Science, College of Medicine, The Catholic University of Korea

Bu makalede

Özet

Burada, kordon kanı mononükleer hücre kaynaklı insan kaynaklı pluripotent kök hücrelerden kondrojenik farklılaşma için bir protokol önermekteyiz.

Özet

İnsan eklem kıkırdağı kendini tamir etme becerisine sahip değildir. Kıkırdak dejenerasyonu bu nedenle tedavi edici değil, konservatif tedaviler ile tedavi edilir. Halen hasar görmüş kıkırdağı ex vivo genişletilmiş kondrositler veya kemik iliği kaynaklı mezenkimal kök hücreler (BMSC) ile yenilemek için çaba sarf edilmektedir. Bununla birlikte, bu hücrelerin kısıtlı canlılığı ve istikrarsızlığı, kıkırdak yeniden yapılandırma alanındaki uygulamalarını sınırlar. İnsan kaynaklı pluripotent kök hücreler (hiPSC'ler), rejeneratif uygulamalar için yeni bir alternatif olarak bilimsel bir ilgi görmüştür. Sınırsız kendi kendini yenileme kabiliyeti ve çok potansiyeli ile hiPSC'ler, kıkırdak onarımı için yeni bir yedek hücre kaynağı olarak vurgulanmıştır. Bununla birlikte, yüksek miktarda yüksek kaliteli kondrojenik pelet elde edilmesi, klinik uygulamaları için büyük bir zorluk oluşturmaktadır. Bu çalışmada, kondrojenik diferansiyasyon için embriyo gövdesi (EB) ile üretilmiş büyüme hücreleri kullanılmıştır. Başarılı kondrojenez PCR ile veD lekelenmesi alsi mavisi, toluidin mavisi ve kolajen tip I ve II'ye karşı antikorlar (sırasıyla COL1A1 ve COL2A1). Kordon kanı mononükleer hücre kaynaklı iPSC'lerin (CBMC-hiPSC'lerin) kondrojenik peletlere diferansiyelleştirilmesi için ayrıntılı bir yöntem sunmaktayız.

Giriş

HİPSC'lerin kullanımı, çeşitli hastalıkların uyuşturucu taraması ve mekanik çalışmaları için yeni bir stratejiyi temsil etmektedir. Rejeneratif bir perspektiften hiPSC'ler, eklem kıkırdağı 1 , 2 gibi sınırlı iyileştirme kabiliyetine sahip hasarlı dokuların değiştirilmesi için potansiyel bir kaynaktır.

Doğal eklem kıkırdağının rejenerasyonu birkaç on yıl için zor olmuştur. Artiküler kıkırdak, yumuşak beyaz bir dokudur ve kemiklerin ucunu sürtünmeden korur. Bununla birlikte, zarar gördüğünde kendini yenilemek neredeyse imkansız kılan sınırlı rejeneratif kabiliyete sahiptir. Bu nedenle, kıkırdak yenilenmesine odaklanan araştırma, onlarca yıldır devam etmektedir.

Daha önce, in vitro olarak kondrojenik soya diferansiyasyon, genellikle diz eklemi 3'ten izole edilen BMSC'ler veya doğal kondrositler ile gerçekleştirildi. BitmişKondrojenik potansiyelleri, BMSC'ler ve doğal kondrositler, kondrojenezde kullanımlarını destekleyen çok sayıda avantaja sahiptir. Bununla birlikte, sınırlı genişleme ve kararsız fenotip yüzünden, bu hücreler eklem kıkırdak defekti rekonstrüksiyonu konusunda çeşitli sınırlamalarla karşı karşıya kalmaktadır. In vitro kültür koşulları altında, bu hücreler 3-4 geçitten sonra kendi özelliklerini kaybetme eğilimindedir ve bu da sonuçta onların farklılaşma yeteneklerini etkiler 4 . Ayrıca, doğal kondrositler durumunda, bu hücreleri elde ederken diz ekleminde ek hasar kaçınılmazdır.

BMSC'lerin veya doğal kondrositlerden farklı olarak, hiPSC'ler in vitro olarak sınırsız olarak genişleyebilir. Uygun kültür koşullarıyla, hiPSC'lerin kondrojenik farklılaşma için yedek bir kaynak olarak büyük potansiyeli vardır. Bununla birlikte, hiPSC'lerin içsel özelliklerini değiştirmek zordur 5 . Dahası, birkaç karmaşık in vitro süreç gerektirirPs hiPSCs'in kaderini belirli bir hücre türüne yönlendirmek için. Bu komplikasyonlara rağmen, yüksek kendiliğinden yenilenme kabiliyetleri ve kondrositleri de içeren hedeflenen hücrelere ayırma kapasiteleri nedeniyle hiPSC'lerin kullanımı hala önerilmektedir.

Kondrojenik farklılaşma, genellikle MSC benzeri progenitör hücreler kullanılarak pelet kültürü veya mikromüzk kültürü gibi üç boyutlu kültür sistemleri ile yapılır. HiPSC kullanıyorsa, MSC benzeri öncü hücreler üretmek için protokol mevcut protokollerden farklıdır. Bazı gruplar, fenotipi doğrudan MSC benzeri hücrelere dönüştürmek için hiPSC'lerin tek katmanlı kültürü kullanır 7 . Ancak, çoğu çalışma MSC 8 , 9 , 10 , 11'e benzeyen hücre büyümesi üretmek için EB'ler kullanır.

Kondrojayı indüklemek için çeşitli büyüme faktörleri kullanılır.Nesis. Genellikle, BMP ve TGFβ ailesi proteinleri tek başına veya kombinasyon halinde kullanılır. Farklılaşma, GDF5, FGF2 ve IGF1 12 , 13 , 14 , 15 gibi diğer faktörlerle de indüklenmiştir. TGFβ1'in MSC 16'da doza bağımlı bir tarzda kondrojenez uyarısı yaptığı gösterilmiştir. Diğer izotip ile karşılaştırıldığında, TGFβ3, TGFβ1, kıkırdak öncesi mezenşimal hücre yoğunlaşmasını arttırarak kondrojeneze neden olur. TGFβ3, mezenkimal hücre çoğalmasını önemli ölçüde arttırarak kondrojeneze neden olur17. Bununla birlikte, TGFβ3 araştırmacılar tarafından TGFβ1 7 , 10 , 18 , 19'dan daha sık kullanılır. BMP2, insan kondrojenik matris bileşenleri ile ilgili genlerin ekspresyonunu arttırırEklem kondrositlerinde in vitro koşullar altında 20 . BMP2, TGFβ proteinleri 21 ile kombinasyon halinde MSC'lerde kıkırdak oluşumu için kritik olan genlerin ekspresyonunu arttırır. Ayrıca, BMP2'nin Smad ve MAPK yolakları yoluyla TGFβ3'ün etkisini sinerjik olarak arttırdığı gösterilmiştir 22 .

Bu çalışmada CBMC-hiPSC'ler düşük ekli bir Petri kabında EB ortamı kullanılarak EB'lere toplandı. Gelişen hücreler, EB'leri jelatin kaplı bir çanağa tutturarak indüklenmiştir. Hücreleri kullanarak kondrojenik farklılaşma pelet kültürü ile gerçekleştirildi. Hem BMP2 hem de TGFβ3 ile yapılan muamele, hücreleri yoğun bir şekilde yoğunlaştırdı ve kondrojenik pelet oluşumu için hücre dışı matris (ECM) protein birikimine yol açtı. Bu çalışma, CBMC-hiPSC'leri kullanarak basit fakat etkin kondrojenik bir farklılaşma protokolünü önermektedir.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Protokol

Bu protokol, Katolik Üniversitesi'nin kurumsal gözden geçirme kurulu (KC12TISI0861) tarafından onaylandı. Yeniden programlama için kullanılan CBMC'ler doğrudan Seul St. Mary Hastanesi Kordon Kan Bankası'ndan alındı.

1. iPSC'lerden kondrojenik türev

  1. CBMC-iPSC üretimi
    1. Önceki çalışmamızda gösterilen protokolü kullanarak CBMC-hiPSC'ler üretin 23 .
    2. 15 mL konik tüp içinde kan hücrelerini toplayın ve bir hemositometre kullanarak sayın.
    3. 3 x 10 5 hücre hazırlayın ve 515 xg ve RT'de 5 dakika süreyle santrifüjleyin. Süpernatantı emilerek boşaltın ve hücreleri 0.5 mL kan hücresi ortamında tekrar süspanse edin.
    4. Hücreleri, kaplanmamış 24 delikli bir tabakın bir çukuruna aktarın ve üreticinin tavsiyelerine göre Sendai virüs karışımını ilave edin.
    5. Plakayı 1150 xg ve 30 ° C'de 30 dakika santrifüjleyin.
    6. kıçtaEr santrifüjleme, hücreleri gece boyunca (O / N) 37 ° C'de% 5 C02'de inkübe edin.
    7. Ertesi gün, transduced hücreleri bir matris kaplı kuyuya aktarın. 30 ° C'de 1150 xg'de plakayı santrifüjleyin.
    8. Santrifüjden sonra, süpernatantı çıkarın, 1 mL iPSC ortamı ilave edin ve% 5 CO 2'de 37 ° C'de hücre O / N'yi muhafaza edin.
    9. Ekli hücreleri 37 ° C'de ve% 5 CO 2'de muhafaza edin. Ortamı günlük olarak değiştirin, onu yeni iPSC ortamı ile değiştirin.
      NOT: Koloniler, transdüksiyon sonrası 14-21. Günde ortaya çıkacaktır.
  2. EB üretimi
    1. HiPSC'leri 37 ° C'de ve% 5 CO 2'de muhafaza edin. Ortamı günlük olarak değiştirin ve onu yeni Temel 8 (E8) orta ile değiştirin.
    2. E8 ortamında, vitronektin kaplı, 100 mm'lik bir çanakta 2 x 10 6 hiPSC hazırlayın.
    3. Kültür çanak E8 orta çıkarın ve steril fosfat tamponlu salin (PBS) ile yıkayın.
    4. 1 ekleML 1 mM etilendiamintetraasetik asit (EDTA) ile inkübe edin ve 37 ° C'de ve% 5 C02'de 2 dakika inkübe edin.
    5. Hücreleri 3 mL E8 ortamı ile hasat edin ve yeni bir 15 mL konik tüp aktarın. Hücreleri oda sıcaklığında (RT) 250 xg'de 2 dakika boyunca santrifüjleyin.
    6. Hücre peletini bozmadan süpernatantı aspire edin ve hücreleri 5 mL E8 ortamında tekrar süspansiyon haline getirin.
    7. Hemocytometer kullanarak hücreleri sayın ve her 100 mm Petri kabı için 2 x 10 6 hücre hazırlayın. Hazırlanan hücreleri 10 uM ko-ilişkili kinaz (ROCK) inhibitörü ile E8 ve EB ortamı (1: 1) içeren 10 mL'lik bir karışımda tekrar süspanse edin.
    8. 37 ° C'de ve% 5 C02'de agregasyon için hücreleri O / N inkübe edin.
    9. Ertesi gün, pipetleme yapılarak toplu EB'leri toplayın. Hücreleri 250 xg'de 1 dakika boyunca santrifüjleyin. Süpernatantı çıkarın ve 10 mL taze E8 ortamı içinde EB'leri tekrar süspanse edin.
    10. Oluşturulan EB'leri 5 gün boyunca büyütün, fres ile günlük değişiklikler yapınH E8 orta. Daha fazla olgunlaşma için, kültür ortamını E7 ortamına değiştirin. 37 ° C'de ve% 5 CO2'de 5 gün boyunca EB'leri muhafaza edin, taze E7 ortamıyla günlük orta değişimler yapın.
      NOT: E7 orta FGF2 içermeyen E8 ortamıdır.
  3. EB'lerden büyümekte olan hücre indüksiyonu
    1. 100 mm'lik bir tabağa 6 ml% 1 jelatin ekleyin ve 30 dakika boyunca 37 ° C'de ve% 5 CO 2'de inkübe edin.
    2. Jelatı alın ve kullanmadan önce 2-3 saat boyunca tamamen kurutun.
    3. EB'leri 50 mL'lik bir konik tüpe aktarın. EB'lerin konik borunun altına yerleşmesine izin verin. EB'leri rahatsız etmeden süpernatanı çıkarın.
    4. EB'leri 10 mL Dulbecco Modifiye Kartal Ortamı (DMEM)% 20 fetal sığır serumu (FBS) ile tekrar süspanse edin. EB'leri jelatin kaplı 100 mm'lik tabağa aktarın. 10 uM ROCK inhibitörü ekleyin.
    5. 37 ° C'de ve% 5 C02'de 7 gün boyunca hücreleri inkübe edin ve muhafaza edin. Temayı değiştirDiok her gün ROCK inhibitörü eklemeden.
  4. Kondrojenik pelet oluşumu
    1. Çanak kültür ortamı aspire ve PBS ile hücreleri üç kez yıkayın.
    2. 1 ml 1 mM EDTA uygulayın ve 37 ° C'de inkübe edin ve 2 dakika süreyle% 5 CO 2 .
    3. % 20 FBS ile 5 mL DMEM kullanarak hücreleri hasat edin ve yeni bir 15 mL konik tüp aktarın.
    4. Hücreleri 250 xg ve RT'de 2 dakika santrifüjleyin. Süpernatantı atın ve% 20 FBS ile 10 mL DMEM içinde pelet tekrar süspansiyon haline getirin.
    5. 40 μm hücre süzgeç kullanarak filtre ve hücre kümeleri atın ve tek hücreleri hasat. Hemocytometer kullanarak tekli hücreleri sayın.
    6. Hücreleri 250 xg ve RT'de 2 dakika santrifüjleyin. Süpernatantı alın ve her pelet için 3 x 10 5 hücre 300 mL'lik kondrojenik diferansiyasyon ortamı (CDM) ile 15 mL'lik konik bir tüp içine alın.
    7. Pelet oluşumu için, hücreleri 5 dakika süreyle santrifüjleyin.680 xg ve RT.
      NOT: Peletler, kondrojenik pelletlerin farklılaşması sırasında 15 mL konik tüplerde muhafaza edilir.
    8. Hücreleri gece boyunca 37 ° C'de ve% 5 C02'de inkübe edin.
    9. CDM'yi 2-3 günde bir değiştirin. Peletler 3 gün içinde düzleştirilmiş sfero morfolojileri sergileyecektir. Pelletleri, 37 ° C'de ve% 5 C02'de 21 gün boyunca muhafaza edin.

2. Boyama ile Kondrojenik Pellet Karakterizasyonu

  1. Kondrojenik gömme
    1. Gömülmeden önce, 58 ° C'de parafin hazırlayın ve eritin.
    2. 1,5 mL'lik bir tüpte oda sıcaklığında 2 saat boyunca 1 mL'lik% 4'lük paraformaldehit içinde topakları düzeltin.
      Dikkat: Paraformaldehit oldukça toksiktir. Göz, cilt veya müköz zarlarla temasından kaçının. Pozlamayı en aza indirin ve hazırlarken teneffüs etmeyi önleyin.
    3. Kasete bir kat tül yerleştirin ve sabit peletleri bir pipet yardımıyla aktarın. Topağı katlayarak örtün.E gazlı bez ve kaset kapağını kapatın.
    4. 100 mL% 70 etanol (EtOH) içinde iki kez, her biri 10 dakika dehidrasyon başlatın. Peletleri% 80 ve% 95 EtOH içinde sıralı 10 dakikalık yıkamalarla kurutun.
    5. Pelletleri 10 dakika boyunca% 100 EtOH'a aktarın. Taze EtOH ile üç kez tekrarlayın.
    6. "Temizleme" için, çözeltiyi 100 mL, 1: 1 EtOH ve ksilen karışımı, ardından her biri 10 dakika süreyle 1: 2 EtOH ve ksilen karışımı ile değiştirin. Kalan EtOH'yı, her biri 10 dakika süreyle% 100'lük ksilen içerisinde iki kez kuluçkalayarak temizleyin.
    7. Parafin infiltrasyonu için, peletleri sıralı ksilen ve parafin karışımlarında inkübe edin. Bütün parafin sızma işlemini 58 ° C'de gerçekleştirin. Pelletleri 100 mL, 2: 1 oranında ksilen ve parafin karışımı içinde 30 dakika inkübe edin.
    8. Çözeltiyi 100 mL 1: 1 ksilen ve parafin karışımıyla değiştirin ve 30 dakika inkübe edin.
    9. Çözeltiyi 100 mL 1: 2 ksilen ve parafin karışımıyla değiştirin ve 30 dak.
    10. Nihai sızma için, peletleri ilk% 100 parafin banyosuna aktarın ve 2 saat inkübe edin.
    11. Peletleri% 100 parafinin ikinci banyosuna aktarın ve O / N, 58 ° C'de inkübe edin.
    12. Ertesi gün, cımbız kullanarak pelletleri bir kalıba yavaşça aktarın. Parafin dağıtıcıdan kalıba parafin ekleyin. Parafin, 4 ° C'de 30 dakika süreyle katılaştınlır.
    13. Kesitleri 7 μm'de kesin ve kesitleri slaydın üzerine aktarın. Slaytların bir gece kurumasını bekleyin ve kullanıma hazır oluncaya dek slaytları oda sıcaklığında saklayın.
  2. Slayt hazırlığı
    1. Slaytları, 100 mL,% 100,% 90,% 80 ve% 70 EtOH ile sırayla 5 dakika boyunca hareket ettirerek çözünmesini sağlayın.
    2. Slaytları bir cam kavanoz içine yerleştirin ve musluk suyu ile 5 dakika boyunca durulayın.
  3. Alcian blue lekesi
    1. Slaytları 30 dakika boyunca 50 mL% 1 alc blue solüsyonunda inkübe edin.
      DEĞİLE: Alcian blue,% 3 asetik asit solüsyonunda seyreltilir. Asetik asit kullanarak pH'ı 2.5'e ayarlayın.
    2. Slaytları bir cam kavanoz içine yerleştirin ve musluk suyu ile 2 dakika boyunca durulayın.
    3. Slaytları deiyonize suda (DW) durulayın ve 2 dakika nükleer hızlı kırmızı solüsyonla kontrastlayın.
    4. Slaytları bir cam kavanoz içine yerleştirin ve 1 dakika musluk suyu ile durulayın.
    5. 2.3.5) Slaytları kurutun ve adımları 2.6'da takın.
  4. Toluidin mavisi boyama
    1. Slaytları 4 dakika boyunca 50 mL tolüidin mavisi solüsyonunda inkübe edin.
    2. Slaytları bir cam kavanoz içine yerleştirin ve musluk suyu ile 5 dakika boyunca durulayın.
    3. Adım 2.6'da sallamaları gidermek ve takmak için ilerleyin.
  5. İmmunohistokimyasal boyama
    1. Slaytları, endojen peroksidaz blokajı için 15 dakika boyunca% 3 H202'de inkübe edin.
    2. Tris-bu ile 1: 100 oranında seyreltilmiş 200 uL birincil antikor uygulayın (anti-COL1A1 ve -COL2A1)Slaytlara% 1 sığır serum albümini (BSA) ve% 5 normal keçi serumu (TBS) içeren fferled salin (TBS) ve 4 ° C'de O / N inkübe edin.
    3. Ertesi gün, slaytları bir cam kavanoz içine yerleştirin ve her biri 5 dakika boyunca üç kez% 0.1 polisorbat 20 (TBST) içeren 50 mL TBS ile yıkayın.
    4. Slaytlara, 200 mcL sekonder antikor (keçi anti-tavşan IgG antikoru, 1: 200 oranında TBS içinde seyreltilmiş TBS ve% 5 NGS) uygulayın ve oda sıcaklığında 40 dakika inkübe edin.
    5. Slaytları bir cam kavanoz içine yerleştirin ve 50 mL, her biri 5 dakika ile üç kez yıkayın.
    6. Sinyal amplifikasyonu için, HRP-konjuge streptavidin solüsyonunu slaytlara uygulayın ve 10 dakika inkübe edin.
    7. Slaytları bir cam kavanoz içine yerleştirin ve 50 mL, her biri 5 dakika ile üç kez yıkayın.
    8. DAB-peroksidaz substrat solüsyonunu karıştırın, her slayta 200 μL solüsyon uygulayın ve 1 dakika inkübe edin.
    9. Slaytları bir cam kavanoz içine yerleştirin ve musluk suyu ile 5 dakika boyunca durulayın.
    10. Counterstain1 dakika boyunca Mayer'in hematoksilen ile.
    11. Slaytları DW ile yıkayın.
    12. Adım 2.6'da sallamaları gidermek ve takmak için ilerleyin.
  6. Dehidrasyon ve montaj
    1. Slaytları 100 mL% 70,% 80,% 90 ve% 100 EtOH, 30 saniye boyunca sırayla hareket ettirerek suyunu alın.
    2. Slaytları her biri 1 dakika süreyle iki değişik ksilende daldırın.
    3. Lamelleri 50 mcL montaj solüsyonu ekleyin ve slaytlar üstüne koyun.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

Bu çalışmada, EB'lerden büyümekte olan hücreleri indükleyerek CBMC-hiPSC'lerden kondrojenik peletler oluşturduk. Kondrojenik farklılaşma, doğrulanmış yüksek pluripotensiteli CBMC-hiPSC'ler kullanılarak indüklendi. Protokolümüzün basit bir şeması Şekil 1A'da gösterilmiştir . Farklılaştırmadan önce, iPSC kolonileri genişletildi ( Şekil 1B ). Genişletilmiş iPSC'ler, farklılaşmayı başlatmak için EB'ler olarak...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

Bu protokol CBMC'lerden başarıyla hiPSC üretti. Yamanaka faktörleri 24 içeren bir Sendai viral vektörü kullanarak CBMC'leri hiPSC'ye yeniden programladık. Farklılaşmada üç vaka kullanıldı ve tüm deneyler bu protokolü kullanarak kondrojenik pelletleri başarıyla üretti. HiPSC'lerin kondrositlere 25 , 26 , 27 , 28 farklılaşması için protokoller çok sayıda ç...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

Yazarların açıklayacak bir şeyi yok.

Teşekkürler

Bu çalışma Sağlık Bakanlığı, Refah ve Aile İşleri Bakanlığı, Kore Cumhuriyeti (HI16C2177) tarafından yapılan Kore Sağlık Teknolojisi Ar-Ge projesinin bir hibesi tarafından desteklenmiştir.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
Plastik
100 mm ÇanakTPP93100
6 Kuyulu PlakaTPP92006
50 mL Kornik TüpSPL50050
15 mL Kornik TüpSPL50015
10 mL Tek Kullanımlık PipetFalcon7551
5 mL Tek Kullanımlık PipetFalcon7543
12 kuyulu PlakaTPP92012
< güçlü > Adı< / güçlü> < güçlü > Şirket < / güçlü >< güçlü > Katalog Numarası< / güçlü >< güçlü > Açıklama< / güçlü
> < güçlü > E8 Orta Malzemeler< / güçlü >
DMEM / F12, HEPESYaşam Teknolojileri11330-057E8 Orta (500 mL)
Sodyum BikarbonatYaşam Teknolojileri25080-094E8 Orta (Konsantrasyon: 543 μ g / mL)
Sodyum SelenitSigma AldrichS5261E8 Orta  (Konsantrasyon: 14 ng/mL)
İnsan TransfferinSigma AldrichT3705E8 Ortamı (Kapanış: 10.7 μ g/mL)
Temel FGF2Peprotech100-18BE8 Orta  (Konsantrasyon: 100 ng/mL)
İnsan İnsülinYaşam Teknolojileri12585-014E8 Ortamı (Konsantrasyon: 20 μ g / mL)
İnsan TGF ve beta; 1Peprotech100-21E8 Orta (Konsantre: 2 ng/mL)
Askorbik AsitSigma AldrichA8960E8 Ortam  (Devamı: 64 μ g / mL)
DPBSYaşam Teknolojileri14190-144
VitronektinYaşam TeknolojileriA14700
ROCK İnhibitörüSigma AldrichY0503
< güçlü > Adı< / güçlü >< güçlü > Şirket< / güçlü >< güçlü > Katalog Numarası< / güçlü >< güçlü > Açıklama< / güçlü>
<> Kalite Kontrol Malzemeleri< / güçlü>
18 mm Kapak CamıÜstünHSU-0111580
%4 ParaformaldihitTech & YenilikBPP-9004
Triton X-100BIOSESANG9002-93-1
Sığır Serumu AlbüminVektör LaboratuvarıSP-5050
Anti-SSEA4 AntikorMiliporeMAB4304
Anti-Oct4 AntikoruSanta CruzSC9081
Anti-TRA-1-60 AntikorMiliporeMAB4360
Anti-Klf4 AntikoruAbcamab151733
Alexa Fluor 488 keçi anti-fare IgG (H + L) antikoruMoleküler ProbA11029
Alexa Fluor 594 keçi anti-tavşan IgG (H + L) antikoruMoleküler ProbA11037
DAPIMoleküler ProbD1306
Uzun süreli altın antifade reaktifiInvitrogenP36934
%4 ParaformaldihitTech & YenilikBPP-9004
Tween 20BIOSESANGT1027
Sığır Serumu Albümin VektörLaboratuvarıSP-5050
Anti-Kollajen II antikoruabcam ve nbsp;ab347121:100
Alcian mavisiSigma AldrichA3157-10G
Hızlı Yeşil FCF SigmaAldrichF7252-25G
Safranin OSigma Aldrich090m0039v
Nükleer hızlı kırmızıAmericanmastertechSTNFR100 
ksilenDuksan115 
EtanolDuksan64-17-5
Mayer'in hematoksilen çözeltisiwako saf kimya endüstrileriLAK7534
DAPVEKTÖR LABORATUVARLARISK-4100
Sürgülü Cam, KaplamalıHyun Il Lab-MateHMA-S9914
TrizolInvitrogen15596-018
KloroformSigma Aldrich366919
İzoprilalkolMilipore109634
EtanolDükkan64-17-5
RevertAid First Strand cDNA Sentez kitiThermo ScientficK1622
Name<strong>CompanyKatalog Numarası Açıklama< / güçlü >
< güçlü > Kondrojenik Farklılaşma Malzemeleri< / güçlü >
DMEMYaşam Teknolojileri11885Kondrojenik ortam bileşeni (500 mL)
Penisilin StreptomisinYaşam TeknolojileriP4333Kondrojenik ortam bileşeni (Konsantre:% 1)
Askorbik AsitSigma AldrichA8960Kondrojenik medya bileşeni (Conc.: 64 μ g/mL) 
MEM Esansiyel Olmayan Amino Asit Çözeltisi (100x)Life Technologies11140-050Kondrojenik ortam bileşeni (Konsantrasyon: 100 mM)
rhBMP-2R& D355-BM-050Kondrojenik ortam bileşeni (Konsantrasyon: 100 ng / ml)
Rekombinant Hman TGF-beta3R& D243-B3-002Kondrojenik medya bileşeni (Konsantre: 10 ng / ml)
KnockOut Serum Replasman Ömrü Teknolojileri10828-028Kondrojenik medya bileşeni (Konsantre:% 1)
ITS + PremixBD354352Kondrojenik medya bileşeni (Konsantre: %1)
Deksametazon-Suda Çözünür  Sigma AldrichD2915-100MGKondrojenik medya bileşeni (Konsantrasyon: 10 < sup>-7 < / sup> M)
GlutaMAX Ek YaşamTeknolojileri35050-061Kondrojenik medya bileşeni (Konsantre:% 1)
Sodyum piruvat çözeltisiSigma AldrichS8636Kondrojenik medya bileşeni (Konsantre:% 1)
L-ProlinSigma AldrichP5607-25GKondrojenik medya Bileşen (40 & mu; g/ml)
Anti-TRA-1-81 Antikor Millipore MAB4381 630801

Kaynaklar

  1. van Osch, G. J., et al. Cartilage repair: past and future--lessons for regenerative medicine. J Cell Mol Med. 13 (5), 792-810 (2009).
  2. Ahmed, T. A., Hincke, M. T. Strategies for articular cartilage lesion repair and functional restoration. Tissue Eng Part B Rev. 16 (3), 305-329 (2010).
  3. Diekman, B. O., et al. Cartilage tissue engineering using differentiated and purified induced pluripotent stem cells. Proc Natl Acad Sci USA. 109 (47), 19172-19177 (2012).
  4. Solchaga, L. A., Penick, K., Goldberg, V. M., Caplan, A. I., Welter, J. F. Fibroblast growth factor-2 enhances proliferation and delays loss of chondrogenic potential in human adult bone-marrow-derived mesenchymal stem cells. Tissue Eng Part A. 16 (3), 1009-1019 (2010).
  5. Guzzo, R. M., Drissi, H. Differentiation of Human Induced Pluripotent Stem Cells to Chondrocytes. Methods Mol Biol. 1340, 79-95 (2015).
  6. Drissi, H., Gibson, J. D., Guzzo, R. M., Xu, R. H. Derivation and Chondrogenic Commitment of Human Embryonic Stem Cell-Derived Mesenchymal Progenitors. Methods Mol Biol. 1340, 65-78 (2015).
  7. Nejadnik, H., et al. Improved approach for chondrogenic differentiation of human induced pluripotent stem cells. Stem Cell Rev. 11 (2), 242-253 (2015).
  8. Teramura, T., et al. Induction of mesenchymal progenitor cells with chondrogenic property from mouse-induced pluripotent stem cells. Cell Reprogram. 12 (3), 249-261 (2010).
  9. Koyama, N., et al. Human induced pluripotent stem cells differentiated into chondrogenic lineage via generation of mesenchymal progenitor cells. Stem Cells Dev. 22 (1), 102-113 (2013).
  10. Ko, J. Y., Kim, K. I., Park, S., Im, G. I. In vitro chondrogenesis and in vivo repair of osteochondral defect with human induced pluripotent stem cells. Biomaterials. 35 (11), 3571-3581 (2014).
  11. Nam, Y., Rim, Y. A., Jung, S. M., Ju, J. H. Cord blood cell-derived iPSCs as a new candidate for chondrogenic differentiation and cartilage regeneration. Stem Cell Res Ther. 8 (1), 16(2017).
  12. Hotten, G. C., et al. Recombinant human growth/differentiation factor 5 stimulates mesenchyme aggregation and chondrogenesis responsible for the skeletal development of limbs. Growth Factors. 13 (1-2), 65-74 (1996).
  13. Murphy, M. K., Huey, D. J., Hu, J. C., Athanasiou, K. A. TGF-beta1, GDF-5, and BMP-2 stimulation induces chondrogenesis in expanded human articular chondrocytes and marrow-derived stromal cells. Stem Cells. 33 (3), 762-773 (2015).
  14. Shintani, N., Siebenrock, K. A., Hunziker, E. B. TGF-ss1 enhances the BMP-2-induced chondrogenesis of bovine synovial explants and arrests downstream differentiation at an early stage of hypertrophy. PLoS One. 8 (1), e53086(2013).
  15. Fukumoto, T., et al. Combined effects of insulin-like growth factor-1 and transforming growth factor-beta1 on periosteal mesenchymal cells during chondrogenesis in vitro. Osteoarthritis Cartilage. 11 (1), 55-64 (2003).
  16. Worster, A. A., Nixon, A. J., Brower-Toland, B. D., Williams, J. Effect of transforming growth factor beta1 on chondrogenic differentiation of cultured equine mesenchymal stem cells. Am J Vet Res. 61 (9), 1003-1010 (2000).
  17. Knippenberg, M., et al. Differential effects of bone morphogenetic protein-2 and transforming growth factor-beta1 on gene expression of collagen-modifying enzymes in human adipose tissue-derived mesenchymal stem cells. Tissue Eng Part A. 15 (8), 2213-2225 (2009).
  18. Jang, Y., et al. Centrifugal gravity-induced BMP4 induces chondrogenic differentiation of adipose-derived stem cells via SOX9 upregulation. Stem Cell Res Ther. 7 (1), 184(2016).
  19. Kang, R., et al. Mesenchymal stem cells derived from human induced pluripotent stem cells retain adequate osteogenicity and chondrogenicity but less adipogenicity. Stem Cell Res Ther. 6, 144(2015).
  20. Tao, H., et al. Biological evaluation of human degenerated nucleus pulposus cells in functionalized self-assembling peptide nanofiber hydrogel scaffold. Tissue Eng Part A. 20 (11-12), 1621-1631 (2014).
  21. Sekiya, I., Larson, B. L., Vuoristo, J. T., Reger, R. L., Prockop, D. J. Comparison of effect of BMP-2, -4, and -6 on in vitro cartilage formation of human adult stem cells from bone marrow stroma. Cell Tissue Res. 320 (2), 269-276 (2005).
  22. Shen, B., Wei, A., Tao, H., Diwan, A. D., Ma, D. D. BMP-2 enhances TGF-beta3-mediated chondrogenic differentiation of human bone marrow multipotent mesenchymal stromal cells in alginate bead culture. Tissue Eng Part A. 15 (6), 1311-1320 (2009).
  23. Rim, Y. A., Nam, Y., Ju, J. H. Induced Pluripotent Stem Cell Generation from Blood Cells Using Sendai Virus and Centrifugation. J Vis Exp. (118), (2016).
  24. Kim, Y., et al. The Generation of Human Induced Pluripotent Stem Cells from Blood Cells: An Efficient Protocol Using Serial Plating of Reprogrammed Cells by Centrifugation. Stem Cells Int. 2016, 1329459(2016).
  25. Oldershaw, R. A., et al. Directed differentiation of human embryonic stem cells toward chondrocytes. Nat Biotechnol. 28 (11), 1187-1194 (2010).
  26. Toh, W. S., et al. Differentiation and enrichment of expandable chondrogenic cells from human embryonic stem cells in vitro. J Cell Mol Med. 13 (9B), 3570-3590 (2009).
  27. Hwang, N. S., Varghese, S., Elisseeff, J. Derivation of chondrogenically-committed cells from human embryonic cells for cartilage tissue regeneration. PLoS One. 3 (6), e2498(2008).
  28. Nakagawa, T., Lee, S. Y., Reddi, A. H. Induction of chondrogenesis from human embryonic stem cells without embryoid body formation by bone morphogenetic protein 7 and transforming growth factor beta1. Arthritis Rheum. 60 (12), 3686-3692 (2009).
  29. Guzzo, R. M., Scanlon, V., Sanjay, A., Xu, R. H., Drissi, H. Establishment of human cell type-specific iPS cells with enhanced chondrogenic potential. Stem Cell Rev. 10 (6), 820-829 (2014).
  30. Rim, Y. A., Park, N., Nam, Y., Ju, J. H. Generation of Induced-pluripotent Stem Cells Using Fibroblast-like Synoviocytes Isolated from Joints of Rheumatoid Arthritis Patients. J Vis Exp. (116), (2016).
  31. Pfaff, N., et al. Efficient hematopoietic redifferentiation of induced pluripotent stem cells derived from primitive murine bone marrow cells. Stem Cells Dev. 21 (5), 689-701 (2012).
  32. Xu, H., et al. Highly efficient derivation of ventricular cardiomyocytes from induced pluripotent stem cells with a distinct epigenetic signature. Cell Res. 22 (1), 142-154 (2012).
  33. Lee, S. B., et al. Contribution of hepatic lineage stage-specific donor memory to the differential potential of induced mouse pluripotent stem cells. Stem Cells. 30 (5), 997-1007 (2012).
  34. Hu, S., et al. Effects of cellular origin on differentiation of human induced pluripotent stem cell-derived endothelial cells. JCI Insight. 1 (8), 1-12 (2016).
  35. Vonk, L. A., de Windt, T. S., Slaper-Cortenbach, I. C., Saris, D. B. Autologous, allogeneic, induced pluripotent stem cell or a combination stem cell therapy? Where are we headed in cartilage repair and why: a concise review. Stem Cell Res Ther. 6 (94), 1-11 (2015).
  36. Gomez-Leduc, T., et al. Chondrogenic commitment of human umbilical cord blood-derived mesenchymal stem cells in collagen matrices for cartilage engineering. Sci Rep. 6, 32786(2016).
  37. Mareschi, K., et al. Isolation of human mesenchymal stem cells: bone marrow versus umbilical cord blood. Haematologica. 86 (10), 1099-1100 (2001).
  38. Wexler, S. A., et al. Adult bone marrow is a rich source of human mesenchymal 'stem' cells but umbilical cord and mobilized adult blood are not. Br J Haematol. 121 (2), 368-374 (2003).
  39. Zhang, X., et al. Isolation and characterization of mesenchymal stem cells from human umbilical cord blood: reevaluation of critical factors for successful isolation and high ability to proliferate and differentiate to chondrocytes as compared to mesenchymal stem cells from bone marrow and adipose tissue. J Cell Biochem. 112 (4), 1206-1218 (2011).
  40. Wagner, W., et al. Replicative senescence of mesenchymal stem cells: a continuous and organized process. PLoS One. 3 (5), e2213(2008).
  41. Tarte, K., et al. Clinical-grade production of human mesenchymal stromal cells: occurrence of aneuploidy without transformation. Blood. 115 (8), 1549-1553 (2010).
  42. Chen, W. C., et al. Prediction of poor survival by cyclooxygenase-2 in patients with T4 nasopharyngeal cancer treated by radiation therapy: clinical and in vitro studies. Head Neck. 27 (6), 503-512 (2005).
  43. Guzzo, R. M., Gibson, J., Xu, R. H., Lee, F. Y., Drissi, H. Efficient differentiation of human iPSC-derived mesenchymal stem cells to chondroprogenitor cells. J Cell Biochem. 114 (2), 480-490 (2013).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Etiketler

Kord Kanı iPSCelllerEmbriyoid Gövde DiferansiyasyonuKondrojenik Diferansiyasyon BesiyeriAlcian Blue BoyamaToluidin Blue BoyamaTip II KolajenGerçek Zamanlı PCRParafin GömmeHemositometre Sayımı
Kordon Kanından Oluşan İndüklü Pluripotent Kök Hücrelerden Kondrojenik Pellet Oluşumu
Bize Ulaşın
Kütüphaneye Öner

Gizlilik

Kullanım Koşulları

Politikalar

Telif Hakkı © 2026 MyJoVE Corporation. Tüm hakları saklıdır.