Yöntem makalesi

Lazer Doppler: pankreas adacık mikrovasküler Vasomotion Vivo içinde ölçüm için bir araç

7.7K görüntüleme

⸱

DOI:

10.3791/56028

⸱

8 Mart 2018

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Institute of Microcirculation, Chinese Academy of Medical Sciences & Peking Union Medical College

Bu makalede

Özet

Pankreas adacık mikrovasküler vasomotion adacık kan dağıtım düzenleyen ve adacık β hücrelerinin fizyolojik fonksiyon korur. Bu iletişim kuralı bir lazer Doppler monitör pankreas adacık mikrovasküler vasomotion vivo içinde fonksiyonel durumunu belirlemek ve pankreas kaynaklı hastalıklara pankreas adacık mikro katkıları değerlendirmek için kullanmayı açıklar.

Özet

Mikro fonksiyonel durumunu mikrovasküler vasomotion oksijen ve besin teslim ve karbon dioksit ve atık ürünlerin kaldırılması için önemlidir. Mikrovasküler vasomotion bozulma mikro ile ilgili hastalıkların gelişiminde çok önemli bir adım olabilir. Buna ek olarak, son derece bozukluklarına pankreas adacık endokrin işlevi desteklemek için uyarlanmıştır. Bu bağlamda, pankreas adacık mikrovasküler vasomotion fonksiyonel durumunu pankreas adacık işlevini etkileyebilir anlaması mümkün görünüyor. Pankreas adacık mikrovasküler vasomotion fonksiyonel durumunu patolojik değişiklikleri analiz katkıları belirlemek için uygun bir strateji olabilir o pankreas adacık mikro ilgili hastalıklar, diyabet gibi yapar pankreatit, vb. Bu nedenle, bu iletişim kuralı bir lazer Doppler kan akışı monitör pankreas adacık mikrovasküler vasomotion fonksiyonel durumunu belirlemek ve (ortalama kan perfüzyon, genlik, frekans ve akraba gibi parametreleri kurmak için kullanılmasını açıklar pankreas adacık mikrovasküler vasomotion hız) microcirculatory fonksiyonel durum değerlendirilmesi için. Bir streptozotocin indüklenen diyabetik fare modelinde, pankreas adacık mikrovasküler vasomotion bozulmuş bir fonksiyonel durumunu gözlenen. Sonuç olarak, pankreas adacık mikrovasküler vasomotion vivo içinde değerlendirmek için bu yaklaşım pankreas adacık hastalıkları ile ilgili mekanizmalar ortaya çıkarabilir.

Giriş

Bir parametre mikro fonksiyonel durumu olarak mikrovasküler vasomotion teslim ve oksijen, besin ve hormonlar alışverişi için sorumluluk kabul etmez ve karbon dioksit ve hücre atık gibi metabolik ürünler kaldırılması önemlidir 1. mikrovasküler vasomotion da düzenleyen kan akışı dağıtım ve doku perfüzyon, böylece yerel microcirculatory kan basıncı ve ödemi birçok hastalığa neden olabilir iltihap yanıtlarını etkileyen. Bu nedenle, mikrovasküler vasomotion fizyolojik fonksiyon organları2,3,4, doku ve bileşen hücreleri korumak son derece önemlidir. Mikrovasküler vasomotion bozulma, mikro-hastalıkları ile ilgili5geliştirilmesinde önemli adımlardan biri olabilir.

Lazer Doppler başlangıçta gözlem ve mikro araştırma6alanındaki miktar için geliştirilmiş. Bu teknik, teknik diğer yaklaşımlar (Örneğin, lazer benek7, transkütanöz oksijen vb..),ile birlikte kan akımı mikro değerlendirmek için altın standart olarak kabul edilmiştir. (Yani, kılcal damarlar, arteriyoller, venüller, vb) yerel mikrosirkulasyon kan perfüzyon Doppler, lazer ile donatılmış cihazları tarafından belirlenebilir mantığı Doppler kayması ilkesine dayanır. Dalgaboyu ve frekans uyarılmış emisyonu ışık ışık parçacıkları yüzdeki hareketli kan hücrelerinde karşılaşırsanız veya değişmeden kalır zaman değiştirin. Bu nedenle, mikro, sayısı ve kan hücrelerinin hız mikrovasküler kan akışının yönünü alakasız olsa da büyüklüğü ve frekans dağılımı Doppler kaymıştır ışık ile ilgili anahtar faktörlerdir. Farklı yöntemler kullanarak, çeşitli dokuların mesenteries microcirculatory çalışmaları için hem de dorsal deri kıvrım odaları fare, sıçan, hamster ve hatta insanlar8. Ancak, geçerli protokolünde, biz fonksiyonel üzerinde odaklanmak kullanarak değerlendirilir pankreas adacık mikrovasküler vasomotion durumunu lazer Doppler ve ev yapımı değerlendirme parametre sistemi.

Pankreas adacık mikro ve ayırt edici özellikleri sergileyen pankreas adacık yüzdeki esas olarak oluşur. Pankreas adacık kılcal ağ onun ekzokrin muadili9kapiller ağının daha beş kat yüksek yoğunluğu gösterir. Bir kanal giriş glikoz ve yaygınlaştırmanın insülin teslimi için sağlayarak, adacık endotel hücreleri oksijen metabolik olarak aktif adacık hücreleri β hücreler sağlamak. Ayrıca, kanıt ortaya çıkan Ayrıca adacık yüzdeki sadece insülin gen ekspresyonu ve β-hücre sağkalım düzenlenmesinde, aynı zamanda β-hücre işlevi etkileyen katılmaktadırlar gösterir; β-hücre çoğalması teşvik; ve vazoaktif, anjiogenik maddeler ve büyüme faktörleri10bir dizi üreten. Bu nedenle, bu bağlamda, biz pankreas adacık mikrovasküler vasomotion fonksiyonel durumunu gibi akut/kronik pankreatit, diyabet ve diğer hastalıkların patogenezinde yer almak ve adacık β-hücre işlevi etkiler olabilir sonucuna pankreas kaynaklı hastalıklar.

Pankreas adacık mikrovasküler vasomotion fonksiyonel durumunu patolojik değişiklikleri analiz yukarıda belirtilen hastalıklar için pankreas adacık mikro katkıları belirlemek için uygun bir strateji olabilir. Burada pankreas adacık mikrovasküler vasomotion vivo içinde belirlemek için yaklaşım açıklayan ayrıntılı adım adım yönerge sağlar. Tipik ölçümler daha sonra Temsilcisi sonuçlarıgösterilir. Son olarak, yararları ve yönteminin sınırlamalarını tartışma, daha fazla uygulamaları ile birlikte vurgulanır.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Protokol

Tüm hayvan deneyleri tüm ilgili kurallar, düzenlemeler ve düzenleyici kurumlar uygun olarak idam edildi. Gösterilen mevcut Protokolü rehberlik ve onay, Enstitüsü, mikro hayvan Etik Komitesi (IMAEC), Pekin Birliği tıp Koleji (PUMC) altında gerçekleştirildi.

1. hayvanlar

  1. Deneme başlamadan önce üç BALB/c fare kontrollü sıcaklık (24 ± 1 ° C) ile kafes ve nem (55 ± % 5), başına 12-h koyu döngüsü altında tutun. Fareler düzenli gıda ve su ücretsiz erişmesine izin vermek.
  2. Rastgele fareler bir diyabetik olmayan kontrol grubu ve bir diyabetik gruba bölmek. Doğru bir şekilde tek tek her fare ağırlık ve vücut kitle her fare kullanarak enjeksiyon birimi hesaplayın.
  3. Fareler streptozotocin (STZ) enjeksiyon önce 4 h için hızlı ve düzenli su normal olarak deneysel günde 1 sağlar.
  4. 0.1 M sodyum sitrat tampon pH 4,3 hazırlayın. Çözüm 1 mL 1.5 mL microcentrifuge tüp içine koymak ve microcentrifuge tüp ışık maruz önlemek için alüminyum folyo sarın.
  5. 5 mg/mL kullanmadan önce son bir çalışma konsantrasyonu (pH 4,3) sodyum sitrat arabellekte STZ geçiyoruz.
  6. Diyabetik grup mayi enjeksiyonlari STZ bir doz 40 mg/kg 1 mL şırınga ve bir 25-G iğne kullanarak, fareler ver. Diyabetik olmayan kontrol fareler sodyum sitrat arabellek (pH 4,3) aynı birimle enjekte.
  7. Fareler geri kafesler koymak ve onları düzenli gıda ve % 10 Sükroz su ile tedarik.
  8. 1.3-1.7 deneysel günlerde 2-5 (Yani, önümüzdeki 4 gün üst üste) yineleyin.
  9. % 10 Sükroz su düzenli su ile son STZ enjeksiyon sonra değiştirin.
  10. Hızlı fare için 6 h, ama onları su ücretsiz erişim sağlar ve dokuz gün sonra (deneysel gün 14) kan glikoz düzeyleri ölçmek. Bir kan örneği bir kan glikoz izleme sistemi kullanarak hiperglisemi onaylamak için kuyruk damar toplamak.
    Not: Kan glikoz düzeyleri > 200 mg / dL ile fareler şeker hastası olarak kabul edilir.

2. araç hazırlanması

  1. Sonda uç optik yüzeylerinin ve toz ve partiküller kaldırmak için sonda bağlayıcı lazer Doppler cihazları yumuşak, aşındırıcı olmayan bir bezle temizleyin. Kabloyu araç (şekil 1A) bağlantı noktasına takılır.
  2. Kalibrasyon stand akı standart deneysel çevre (genellikle 30 dk için oda sıcaklığında) ile termal denge olmak izin vererek topla. Akı sallamak yavaşça 10 s ve izin vermek için standart için 2 dk bekletin.
  3. Akı standart konteyner kalibrasyon Bankası ortasında konumlandırın. Kelepçe için maksimum yükseklik ayarlamak ve öyle ki aşağı doğru kapsayıcıya Puan tutturmak soruşturma güvenli. Akı standart doğru sonda altında konumlandırılmış emin olun.
  4. Ucunu doğru akı standardında batık kadar yavaşça sonda aşağı taşıyın. Seçin ve lazer Doppler cihazı "kalibrasyon" basın ve sonda bağlı çalışma kanalı seçin. Bir "Kalibrasyon başarılı" uyarı lazer Doppler cihazı ekranda görüntülenene kadar ayarlama programı çalıştırın.
  5. Prob prob sahipleri kullanarak güvenli. El ile sonda hareketi önlemek için güvenli.
  6. Korumak sabit sıcaklıkta (24 ± 1 ° C) deneysel Oda ve nem (~ 50-%60).
  7. Dış ışık kaynaklı değiştirmek önlemek için deney yapmadan önce herhangi bir dış ışık (örneğin flüoresan ve spot lambalar) kapatın.

3. hayvanlar hazırlanması

  1. Otoklav cerrahi aletleri ve oda sıcaklığında kullanmadan önce soğumaya izin.
  2. Fareler vermek pankreas adacık mikrovasküler vasomotion lazer Doppler tarafından tespit önce deneysel çevreye parkenizin için 10 dakika.
  3. 1-mL şırınga ile 1 mL % 3 Fentobarbital sodyum doldurun. Fareler anestezi için Fentobarbital sodyum çözüm (75 mg/kg ı.p.) enjekte.
  4. Fare kuruluğu önlemek için önceden ıslatılmış tıbbi gazlı bez ile gözünde kapak.
  5. Fare tamamen bilincini kaybeder ve artık yanıt kuyruğuna veya arka ayak Forseps ile pinches emin olun. Anestezi her 15 dk. Fentobarbital çözüm gerekli olduğunda ilk enjeksiyon hacmi yüzde 10'u ile ilave tarafından anestezi korumak ve anestezik ve intraoperatif etkinlik boyunca izlemek.
  6. Bir Isıtma yastığı ile yarı yalıtım katmanı hayvan altına yerleştirin ve hayvan sırtüstü pozisyonda yerleştirin ve lazer Doppler cihazı çalışma istasyonu için transfer. Çalışma sahnesi için fare cerrahi bant ile düzeltmek.
  7. Pamuklu çubuk fare betadin ve % 75 etanol ile karın derisi karın bölgesi temiz DNA örneği kullanılır.
  8. % 2 lidocaine/0.5% bupivacaine (50/50) karışımı subkutan enjekte et.  ~ 3 cm kesim-bir gazlı bez sünger ortasına delik çapı. Gazlı bez sünger ile karın bölgesini kapsar.
  9. Karın deri Forseps ile Asansör ve karın bir neşter ya da deri makas kullanarak bir ilk dikey kesi orta çizgi boyunca olun.
  10. Forseps ile temel kas kavramak ve karın boşluğuna girmek için deşmek. Herhangi bir organ zarar değil. Cilt ve temel kas karın boşluğu ortaya çıkarmak için göğüs katlayın. Yavaşça pankreas vücut ve forseps küt burunlu bir çift kullanarak dalak ortaya çıkarmak.

4. veri toplama için analiz

  1. Lazer Doppler cihazı yazılım koşmak yanında tıkırtı üstünde "Dosya" → "yeni" yeni bir ölçüm dosyası oluşturmak için. "Genel" sekmesi altında bağlı monitör yapılandırmak için "Ücretsiz çalışmasına." izleme süresi kadar ayarlayın Fabrika varsayılan "LDF monitör" sekmesini tıklayın "İleri" için kullanın
  2. Grafik görüntülenme hızını ayarla "ekran Yapısı iletişim kutusu içinden." "Akı, konsantrasyon, hız" kanalları ilgili kutuları işaretleyerek seçin. Aşağıdaki parametreleri seçin: "Kanal için veri kaynağı" ve "etiket, birimleri ve rengi." "Next" tıklayın
  3. "Dosya bilgileri iletişim kutusuna" konu ve ölçüm (Yani, adı ve denek, operatör, izleme süresi, Yorumlar, vb) hakkında kullanıcıya bilgi girin ve ölçüm yapılandırmasını bitirmek için "İleri" yi tıklatın.
    Not: Bir ölçüm pencere otomatik olarak yazılım (şekil 1B) tarafından oluşturulur.
  4. El ile elektrot pankreas için ilerlemek. Sonda ve pankreas dokular arasındaki uzaklığı 1 mm içinde olduğundan emin olun. Uygunsuz bir mesafe bir yapay olarak artan veya azalan kan akışı okuma verir.
  5. Mikrovasküler kan perfüzyon birimleri (PU) veri kayıt işlemini başlatmak için "Başlat" araç çubuğu simgesini tıklatın. PU veri 1 dk. için sürekli olarak her çalışma toplamak. Ölçüm durdurmak için "durdur"'u tıklatın. Seçin "Dosya" → "Farklı Kaydet" adına ve bitmiş ölçüm dosyayı kaydedin.
  6. Sonda katkı etkileri ve contractile yerelleştirilmiş tükenme önlemek için her çalıştırdıktan sonra el ile yeniden konumlandırırsanız ve gevşeme kapasitesi. Çok noktalı (Yani, üç rasgele seçilmiş Puan pankreas dokusu) mikrovasküler PU veri her fare için hasat için 4.1-4.4 adımları yineleyin. Yansıtıcı olmayan bir tabak PU verileri temel denetimi olarak ölçmek.
  7. Karın kas katmanı ve dikiş cilt katmanıyla kapatın. Hayvanlar temiz kafes deneyler sonra yerleştirin.
  8. Hayvan sıcak yarı üzerinde kurtarma kafes yerleştirerek Isıtma yastığını tutun.
    Not: sıcaklık, hijyen, sıvı ve gıda alımı ve enfeksiyon dikkat. Fareler 2 mg/kg Carprofen 48 saat için ameliyat sonrası ağrı yönetimi yönetmek.  Ötenazi fareler şiddetli ağrı veya hafifletti değil sıkıntı bir durumda olması için gözlendiğinde 150 mg/kg Fentobarbital sodyum ı.p. enjekte edilerek gerçekleştirin.

5. mikrovasküler Vasomotion parametrelerin hesaplanması

  1. Zaman ve PU ham veri *.xlsx dosyası olarak verebilir ve dosyayı bir elektronik tabloda açmak için lazer Doppler yazılım "Export" komutunu kullanın.
  2. Ortalama satır taban çizgisi perfüzyon birimi (PUb) hesaplamak (bkz. Adım 4,6).
  3. Ortalama kan perfüzyon (PUbir) bir ölçü 1 dk. için aşağıdaki gibi hesaplar: ortalama kan perfüzyon (PUbir) = PU - PUb (Denklem 1).
  4. Her 1dk ölçüm için (devir/dak) frekansını hesaplamak.
    Not: Mikrovasküler vasomotion sıklığını dakikada bir mikrovasküler vasomotion dalga oluştu doruklarına sayısı olarak tanımlanır.
  5. Her 1dk ölçüm için (ΔPU) genlik hesaplayın.
    1. Mikrovasküler vasomotion genliğini (PUmax) maksimum ve minimum (PUmin) arasındaki fark olarak hesaplar: genlik (ΔPU) PUmax - PUmin (Denklem 2) =.
  6. Her 1dk ölçüm için göreli hızı (PU) hesaplar.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

Mikrovasküler vasomotion ölçüm lazer Doppler cihazı bir yarı iletken lazer diyot ile donatılmış bir fotoğrafını şekil 1Aile gösterilir. Kullanıcı arabirimi bilgisayar yazılımı şekil 1Badımında sunulur. Yukarıda belirtilen yöntemle pankreas adacık mikrovasküler vasomotion hemodinamik parametreler diyabetik olmayan kontrol ve diyabetik fare için tespit edildi. Teknikleri, lazer Doppler flowmetry, dahil olmak üzere çeşitli yansıyan ...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

Mikrovasküler disfonksiyon (örn., şeker hastalığı, akut pankreatit, periferik mikrovasküler hastalıkları, vb) dahil hallerde bazı hastalıkların sınırlı kan akımı neden. Kan akımı değişiklikleri dışında orada mikro fonksiyonel durumunu ayna önemli göstergeleri mikrovasküler vasomotion gibi. Belirli göstergesi, mikrovasküler vasomotion, genellikle mikrovasküler yataklar mikrovasküler tonda salınım olarak tanımlanır. Geçerli kuralında izleme sistemi mikrovasküler kan perfüzyon doğrudan görselleştirme ve ka...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

Yazarlar ifşa gerek yok.

Teşekkürler

Bu eser Pekin Birliği tıbbi üniversite gençlik Fonu ve temel araştırma fonları Merkez üniversiteler (Grant no. 3332015200) için gelen hibe tarafından desteklenmiştir.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
MoorVMS-LDF2Moor InstrumentsGI80PeriFlux 5000 (Perimed Inc.), veri toplamak için alternatif bir cihaz olarak kullanılabilir
MoorVMS-PC YazılımıMoor InstrumentsGI80-1MoorVMS-LDF2 Kalibrasyon standı Yazılımı,
Moor InstrumentsGI-calKalibrasyon aleti
Kalibrasyon tabanıMoor InstrumentsGI-calKalibrasyon aleti
Kalibrasyon akısı standardıMoor InstrumentsGI-calKalibrasyon aracı
Tek Dokunuşla UltraEasy glukometreJohnson and Johnson#1955685Hiperglisemiyi onaylayın
One Touch UltraEasy şeritleriJohnson and Johnson#1297006Hiperglisemiyi onaylayın
StreptozotosinSigma-AldrichS0130Sodyum sitrat tamponunda çözün (pH 4.3)
Pentobarbital sodyumSigma-AldrichP3761Çalışma konsantrasyonu %3
EtanolSinopharm Inc.200121Çalışma konsantrasyonu %75
SükrozAmresco335Çalışma konsantrasyonu %10
Tıbbi gazlı bezÇin Sağlık Malzemeleri A.Ş.S-7112Cerrahi
Künt burun forsepsShang Hai Cerrahi Aletler A.Ş.N-551Cerrahi
Cerrahi bantlar3M Şirket3664CUCerrahi
Gazlı Bez süngerFu Kang Sen Tıbbi Cihaz CO.BB5447Cerrahi
NeşterYu Lin Cerrahi Aletler A.Ş.175CCerrahi
Cilt makasCarent255-17Cerrahi Sütür
Ning Bo Cerrahi Aletler A.Ş.3325-77Cerrahi
Şırınga ve 25-G İğneMISAWA Inc.3731-2011Ölçek: 1 ml
,

Kaynaklar

  1. Aalkjaer, C., Nilsson, H. Vasomotion: cellular background for the oscillator and for the synchronization of smooth muscle cells. Br J Pharmacol. 144 (5), 605-616 (2005).
  2. Serne, E. H., de Jongh, R. T., Eringa, E. C., IJzerman, R. G., Stehouwer, C. D. Microvascular dysfunction: a potential pathophysiological role in the metabolic syndrome. Hypertension. 50 (1), 204-211 (2007).
  3. Carmines, P. K. Mechanisms of renal microvascular dysfunction in type 1 diabetes: potential contribution to end organ damage. Curr Vasc Pharmacol. 12 (6), 781-787 (2014).
  4. Holowatz, L. A. Human cutaneous microvascular ageing: potential insights into underlying physiological mechanisms of endothelial function and dysfunction. J Physiol. 586 (14), 3301(2008).
  5. De Boer, M. P., et al. Microvascular dysfunction: a potential mechanism in the pathogenesis of obesity-associated insulin resistance and hypertension. Microcirculation. 19 (1), 5-18 (2012).
  6. Nilsson, G. E., Tenland, T., Oberg, P. A. Evaluation of a laser Doppler flowmeter for measurement of tissue blood flow. IEEE Trans Biomed Eng. 27 (10), 597-604 (1980).
  7. Chen, D., et al. Relationship between the blood perfusion values determined by laser speckle imaging and laser Doppler imaging in normal skin and port wine stains. Photodiagnosis Photodyn Ther. 13 (1), 1-9 (2016).
  8. Fuchs, D., Dupon, P. P., Schaap, L. A., Draijer, R. The association between diabetes and dermal microvascular dysfunction non-invasively assessed by laser Doppler with local thermal hyperemia: a systematic review with meta-analysis. Cardiovasc Diabetol. 16 (1), 11-22 (2017).
  9. Yaginuma, N., Takahashi, T., Saito, K., Kyoguku, M. The microvasculature of the human pancreas and its relation to Langerhans islets and lobules. Pathol Res Pract. 181 (1), 77-84 (1986).
  10. Brissova, M., et al. Islet microenvironment, modulated by vascular endothelial growth factor-A signaling, promotes beta cell regeneration. Cell Metab. 19 (3), 498-511 (2014).
  11. de Moraes, R., Van Bavel, D., Gomes Mde, B., Tibirica, E. Effects of non-supervised low intensity aerobic excise training on the microvascular endothelial function of patients with type 1 diabetes: a non-pharmacological interventional study. BMC Cardiovasc Disord. 16 (1), 23-31 (2016).
  12. Humeau-Heurtier, A., Guerreschi, E., Abraham, P., Mahe, G. Relevance of laser Doppler and laser speckle techniques for assessing vascular function: state of the art and future trends. IEEE Trans Biomed Eng. 60 (3), 659-666 (2013).
  13. Park, H. S., Yun, H. M., Jung, I. M., Lee, T. Role of Laser Doppler for the Evaluation of Pedal Microcirculatory Function in Diabetic Neuropathy Patients. Microcirculation. 23 (1), 44-52 (2016).
  14. Sun, P. C., et al. Microcirculatory vasomotor changes are associated with severity of peripheral neuropathy in patients with type 2 diabetes. Diab Vasc Dis Res. 10 (3), 270-276 (2013).
  15. Pan, Y., et al. Effects of PEMF on microcirculation and angiogenesis in a model of acute hindlimb ischemia in diabetic rats. Bioelectromagnetics. 34 (3), 180-188 (2013).
  16. Jumar, A., et al. Early Signs of End-Organ Damage in Retinal Arterioles in Patients with Type 2 Diabetes Compared to Hypertensive Patients. Microcirculation. 23 (6), 447-455 (2016).
  17. Nguyen, H. T., et al. Retinal blood flow is increased in type 1 diabetes mellitus patients with advanced stages of retinopathy. BMC Endocr Disord. 16 (1), 25-33 (2016).
  18. Forst, T., et al. Retinal Microcirculation in Type 1 Diabetic Patients With and Without Peripheral Sensory Neuropathy. J Diabetes Sci Technol. 8 (2), 356-361 (2014).
  19. Hu, H. F., Hsiu, H., Sung, C. J., Lee, C. H. Combining laser-Doppler flowmetry measurements with spectral analysis to study different microcirculatory effects in human prediabetic and diabetic subjects. Lasers Med Sci. 31 (1), 1-8 (2016).
  20. Klonizakis, M., Manning, G., Lingam, K., Donnelly, R., Yeung, J. M. Effect of diabetes on the cutaneous microcirculation of the feet in patients with intermittent claudication. Clin Hemorheol Microcirc. 61 (3), 439-444 (2015).
  21. Khazraei, H., Shafa, M., Mirkhani, H. Effect of ranolazine on cardiac microcirculation in normal and diabetic rats. Acta Physiol Hung. 101 (3), 301-308 (2014).
  22. Fujita, T., et al. Increased inner ear susceptibility to noise injury in mice with streptozotocin-induced diabetes. Diabetes. 61 (11), 2980-2986 (2012).
  23. Wiernsperger, N., Nivoit, P., De Aguiar, L. G., Bouskela, E. Microcirculation and the metabolic syndrome. Microcirculation. 14 (4-5), 403-438 (2007).
  24. Chawla, L. S., et al. Vascular content, tone, integrity, and haemodynamics for guiding fluid therapy: a conceptual approach. Br J Anaesth. 113 (5), 748-755 (2014).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya şekillerini yeniden kullanmak için izin iste

İzin iste

Etiketler

Kan Perf zyonuSTZ ile nd klenen DiyabetAk zlemeVazomosyon Analizin Vivo G r nt lemeMikrosirk lasyon De erlendirmesiPankreatik Kan Ak

İlgili makaleler