Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliğiniz gereklidir. Giriş yapın veya ücretsiz denemenizi bugün başlatın.

Yöntem makalesi

C. elegans Excretory kanal hücre içi Lumen morfogenez ve In Vivo polarize membran Biyogenez tek bir hücrede için bir Model olarak: etiketleme GFP-füzyon, RNAi etkileşimi ekran ve görüntüleme

9K görüntülenme

⸱

DOI:

10.3791/56101

⸱

3 Ekim 2017

 ,  ,  ,  ,  , 
1Mucosal Immunology and Biology Research Center, Developmental Biology and Genetics Core, Massachusetts General Hospital for Children, Harvard Medical School, 2College of Life Sciences, Jilin University, 3Faculty of Health Sciences, University of Macau

Bu makalede

Özet

C. elegans boşaltım kanalı görsel vivo içinde analiz polarize de novo membran dipnotlar için benzersiz bir tek hücreli modelidir. Bu iletişim kuralı standart genetik/RNAi ve yaklaşımlar, uyarlanabilir kimlik ve tek hücreli tubulogenesis ve apikal membran ve Lümen Biyogenez yönetmenlik molekülleri karakterizasyonu için Imaging birleşimidir açıklar.

Özet

Dört C. elegans boşaltım Kanallar kurmak ve Lümen bir membran ve submembraneous ile stabilize etmek hemen hemen eşit kadar genişletilmiş hücre içi endotubes ile tek bir hücreden hayvan uzunluğu ile genişletilmiş dar tüpler vardır sitoiskeleti apikal karakter. Boşaltım hücre uzunluğu yaklaşık 2.000 kez bu model de novo polarize membran dipnotlar, hücre içi Lümen morfogenez vivo içinde değerlendirilmesi için benzersiz yaparak bu kanalları oluşturmak için genişler ve tek hücreli tubulogenesis. Burada sunulan iletişim kuralı standart etiketleme, kazanç ve kayıp-in-fonksiyonlu genetik ya da RNA müdahale (RNAi) birleştirmek gösterilmiştir-ve görsel olarak incelemek ve işlevsel olarak bu işlemlerin moleküler düzeyde çözümlemek için bu modeli kullanmak için mikroskobik yaklaşımlar. Etiketleme bir yaklaşım örneği protokol Transjenik hayvanlar ile floresan füzyon protein üretimi canlı tubulogenesis çözümlenmesi için özetliyor. Genetik bir yaklaşım örneği, bu işlev kazanç Kistik kanal fenotip değiştirmek için tasarlanmış bir görsel RNAi tabanlı etkileşim ekran kilit noktaları vurgular. Belirli yöntemleri açıklanan nasıl yapılır: etiket ve floresan proteinler; ifade ederek Kanallar görselleştirmek hedeflenen RNAi kütüphane oluşturmak ve kanal morfogenez moleküler analiz için eleme RNAi strateji; Kanal fenotipleri değişiklikler görsel olarak değerlendirmek; Onları Floresans mikroskobu dissekan tarafından Puan edinildi; hücre altı kanal bileşenleri daha yüksek çözünürlükte confocal mikroskobu tarafından karakterize; ve görsel parametrelerini ölçmek. Belirlenmesi ve genler hücre içi Lümen filogenetik korunmuş süreçlerinde yer alan ve tek hücreli karakterize C. elegans boşaltım kanalı yararlanarak ilgilenen araştırmacı için yararlı bir yaklaşımdır morfogenez tüp.

Giriş

Tüm iç organları tüpler, taşıma ve gazlar, sıvılar ve besin alışverişini ve metabolik atık atılımı gibi birçok farklı fonksiyonları için çok önemli oluşur. Onların polarize karakterle ayrı apikal ve lumenal membran, bu belirli işlevler için uyarlanmış ve dipnotlar endo - ve plazma membran sistemlerinin hatalarını insan hastalık1,2sık bir nedenidir. Tüpler damarlara ve iç organlara çoğunluğu çok hücreli ve bir Lümen intercellularly oluşturur; Ancak, Lümen intracellularly oluşturan, tek hücreli tüpler, örneğin, insan kapiller yatak%230-50'si kadar temsil edebilir. Onların microdomains göre tüp'ın belirli işlevi (örneğin, boşaltım kanalı kanalcık Caenorhabditis bağırsak microvilli karşı farklı olabilir polarize membranları ile multi - tek hücreli tüpler kompozisyon, benzer olmakla birlikte elegans; bkz. kağıt üzerinde C. elegans bağırsak tubulogenesis eşlik eden)3. Polarize membran dipnotlar ve tubulogenesis ilkelerine metazoans arasında korunmuş ve benzer bir moleküler makineler onları1,2,4yönlendirir.

C. elegans boşaltım sistemi beş hücreleri oluşur: boşaltım hücre (EC), kanal hücre (DC), gözenek (PC) ve iki bezi hücreyi. Ablasyon EC, DC veya PC vücut boşluğu ve hayvanlar die erken bir larva sahne5sıvı birikimine neden olur. Bu üç tek hücreli tüpler intriguingly, onların Lümen üç farklı yöntemleri kullanarak oluşturmalısınız: hücre (EC) oymaya; Hücre kaydırma birleştiğinde autocellular junction oluşumu (PC); ve hücre kaydırma tarafından (DC); autofusion ile birleştiğinde Tüm filogenetik korunmuş6,7olan farklı mekanizmaları Lümen morfogenez. Posterior faringeal ampul yanal sol kısmında bulunan EC, iki yanal uzantıları dışarı hangi dört Kanallar anteriorly genişletmek için dışarı şube ve özafagusu (tarafında her iki sağ ve sol) solucan'ın burun ve kuyruk ucuna gönderir , sırasıyla (şekil 1)5,6,8. EC 2 x 1000 µm için yapım o büyük hücre içinde hayvan yaklaşık 1 µm kadar uzanır. Bir hücre altı düzeyde boşaltım kanalı bir Bazal membran doğru pseudocoelom yönettiği ve lumenal membran (endotube) tarafından tünel oluşturulmuş basit bir tüp var. Kanal lumenal membran kanal lumenal membran sadece hücreler arası kavşağında bağlanır; Kanallar aksi takdirde onların uzunlukları (şekil 1) junctionless. Boşaltım kanalı lumenal membran ve onun submembraneous sitoiskeleti apikal membran bileşimi ve submembraneous sitoiskeleti bağırsak gibi çok hücreli tüpler benzer moleküler onların kompozisyon tarafından tanımlanan apikal,, ve diğer (örneğin, düz) epiteli. Sitoplazmik organelleri, endomembranes kanal uzunluğu boyunca dağıtılır endosomal veziküler ve diğer (örneğin, Golgi) dahil olmak üzere. Ayrıca, birden çok canalicular veziküller - lumenal membran için bağlı ve/veya bağlı ya da izole - kanal sitoplazma7,8,9' dan,10 dişli . Bu dinamik plazma-membran/canalicular bağlantı daha fazla kanal'ın membran sistem genişletir ve her iki Lümen morfogenez ve ozmoregülasyon10için katkıda bulunur. Boşaltım kanalı böylece neredeyse tamamen endo - ve plazma membran, mükemmel bir model polarize membran dipnotlar çözümleme ve düzenleme, endo-plazma zarı arayüzü sağlayan oluşur. Apikal membran dramatik genişleme kanal morfogenez - bu tek hücreli sistemde Lümen uzantısıyla – çakışık sırasında da stabilize ve hücre içi lumenal membran Merkezi gerek tarafından kaynaklanan mimari sorunlarını analiz etmek için sağlar. . Bu iletişim kuralı kanal tüp ve Lümen'ın yapısal morfogenez ve bu işlemi için gereken hücre içi zar dinamiği analizi yerine AK 's konumda oluşturmak hücre hareketlerini doğrudan sinyalleri odaklanır boşaltım sistemi ve diğer hücresel öğelere (6' gözden), karmaşık bağlantıları oluşturun.

Bir daha fazla polarize membran ve hücre içi Lümen Biyogenez analizi için C. elegans tek hücreli kanal sistemi ayırmak, gelişimsel zaman içinde farklı bileşenleri, membran üretimi için onun yetenek avantajdır ve kavşak. EC ventral kapanış saatinde tarihi ve ventro-yanal sırasında zaman yanal kanal uzantısı ve dallanma ortaya orta embriyo5,6,8sırasında yutak yerleşir. Bu geç embriyogenez, L1-larva sahne (şekil 1) devam ediyor bir işlem sırasında ön-arka kanal uzantısı tarafından takip ediyor. Yeni taranmış bir larva, arka kanal ucunu solucan yaklaşık yarısı ulaşır, kuyruk L1 aşamasının sonunda hangi süre sonra kanal tam genişletme ile birlikte solucan8uzatıyor. İlk larva aşamasında etkin kanal büyüme bu hayvanın büyüme böylece aşan bir hızda biter, ancak, daha fazla büyüme paralelinde bütün hayvan büyüme ek larva aşamaları (L2-4) sırasında oluşur. Bu ayar farklı adımları polarize de novo membran dipnotlar polarize hücre bölünmesi veya geçiş bağımsız analiz etmek için fırsat sağlar. Ayrıca, bu bu işlem ayrılması (hangi Lümen başlatma önce embriyo içinde meydana) kavşaklar derlemesinden izin verir; onların tam membran polarizasyon içinde hala bir açık soru polarite alanındaki gereksinimdir. Son olarak, benzersiz olarak apikal Bazal membran genişleme, eski boşaltım Kanallar10' önceki ikinci işlem üzerinden ayırır. C. elegans boşaltım kanalı modeli bu nedenle bu avantajları polarize membran Biyogenez analizi için bir dizi hisse ama çok hücreli bir ortamda (bkz: yürütür bağırsak modeli özellikle bilgilendirici bir tamamlayıcıdır eşlik eden kağıt üzerinde bağırsak tubulogenesis3).

Vahşi-türü kanallar bu küçük solucan ultrathin tübüllerin olmakla birlikte, onların Lümen VI olabilirNomarski optik bu şeffaf hayvan tarafından doğrudan sualized. Aslında, mutant Kistik kanal türleri Morfoloji düşük büyütme ileri genetik ekranlarda büyük etkisi genlerin tubulogenesis11' de yer alan tanımlamak için kullanılmıştır mikroskobu dissekan kullanarak etiketsiz hayvanlarda karakterize edilebilir. Geliştirilmiş görsel Kanallar morfolojisi ve onların polarize membranlar, hücre iskeleti bileşenleri, farklı hücre içi organellerin ve diğer hücre altı yapıları, bir ayrım olarak ancak, etiketleme gerektirir ve daha yüksek güç floresan diseksiyon ve confocal mikroskobu. Etiketleme ve mikroskopi için zorluklar çok sayıda Kanallar fine yapısı pozlar rağmen belirli molekülleri her bölmesi için benzersiz üzerinden ayrılır membranlar ve hücre altı bileşenleri ve hayvanların güvenli bir şekilde mikroskopi için Eğer monte edilebilir (bkz: protokolü ve tartışma) eserler tanıtımı önlemek için bazı önlemler alındı. Etiketleme-ebilmek kılınmak sabit örnekler immünhistokimya veya transgenik solucanlar floresan füzyon protein kendi kontrolü altında ifade oluşturarak veya boşaltım kanalı özel Organizatör vivo içinde görüntüleme için. Bu iletişim kuralı ikinci etiketleme tekniği açıklar (eşlik eden kağıt3boyama antikor için bağırsak tubulogenesis bakınız).

Vivo kaybı veya kazanç-in-fonksiyonlu çalışmalar tek hücre analiz görüntüleme vivo içinde birleştirmek için yetenek düzey geliştirme yapar C. elegans boşaltım kanalı için moleküler özellikle güçlü bir model ve tek hücreli tubulogenesis hücresel analizi. İleriye veya geriye doğru genetik ekranlar gerçekleştirilen kanal morfogenez fenotipleri (örneğin, kistleri) tanımlamak için bir vahşi-türü veya etiketli transgenik hayvan ile başlayan ve onların temel gen kusurları. Alternatif olarak, bu tür ekranları mutant fenotip (örneğin, Kistik bir kanal) başlatmak ve bastırıcılarının veya bu fenotip arttırıcılar işlevsel olarak etkileşim genleri mutasyona uğramış fenotip neden gen ile tanımlamak için tanımlar. Mutant fenotip neden olan genetik bozukluk bir kaybı (örneğin, gen silme üzerinden ) ya da bir kazanç neden olabilir (örneğin, üzerinden aktive bir mutasyon ya da aşırı Gen kopya getirilmesi yolu ile) incelenen işlev. İleriye doğru mutagenesis ya da sistematik RNAi ekranlar önyargılarını gen işlevi olmadan ve genler faiz işlevinde yer tarafsız tanımlanmasına izin. Böyle ilgi herhangi bir gen veya gen (örneğin, hedeflenen ekranlar) herhangi bir grup da hızla probed genom çapında RNAi kitaplıkları besleme durumu göz önüne alındığında, hemen hemen her gen kolayca C. elegans, RNAi tarafından nakavt bir ters genetik yaklaşım kendi etki için. Yaklaşımlar olası birleşimini göstermek için biz burada bir hedeflenen RNAi etkileşimi ekran, bir işlev kazanç Kistik boşaltım kanalı mutant ile başlayan tarif sitoplazmik kanal yeşil flüoresan protein (GFP) ile Etiketlenmiş. Mutant fenotip erm-1, son derece korunmuş C. elegans overexpression tarafından oluşturulan ortholog membran-aktin bağlayıcı ailesinin Ezrin-Radixin-Moesin (ERM), lumen morfogenez ve membran karıştığı birçok tür12kuruluşta. C. elegans ERM-1 boşaltım kanalı ve bağırsak, gibi iç organların lumenal membranlar yerelleştirir ve her iki13Lümen oluşumu için gereklidir. ERM-1 overexpression fazla aktin ve akı Lümen artan ve kısa bir Kistik kanal ve bükük lumenal membran kalınlaşmış aktin astar boya9ile üreten kanal lumenal zar, veziküller acemi. Protokol transgenik suşları ile boşaltım kanalı ifade oluşturmak füzyon protein (veya diğer proteinler); etiketli açıklar nasıl bir kanal fenotip değiştiriciler tanımlamak için böyle suşları ile başlayan hedeflenen RNAi ekranlar gerçekleştirmek için; ve görsel olarak bilgilendirici tubulogenesis fenotipleri ölçmek için basit yollar dahil olmak üzere Floresans diseksiyon ve confocal mikroskobu tarafından bu tür ekranları sonuçlarını analiz etme. Etiketleme teknikleri ve öldürücü tubulogenesis genler için ayarlanmış RNAi ayrıntılarını alternatif bağırsak tubulogenesis3eşlik eden kağıda bulunabilir. Tüm yöntemleri çeşitli kombinasyonlarda kanal tubulogenesis diğer sorulara incelenmesi için kullanılabilir.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Protokol

1. C. elegans Excretory Canal floresan füzyon protein 14 tarafından etiketleme

Not: eşlik eden kağıt üzerinde bağırsak tubulogenesis bkz: 3 in situ antikor yordamlar boşaltım kanalı uyarlanabilir boyama tarafından etiketleme için. Tablo 1 C. elegans boşaltım kanalı endo - ve plazma membran, Tablo 2 ifade boşaltım kanalı için sürüş rehberleri örnekleri için görüntülenmesi için yararlı kanıtlanmış molekülleri örnekleri için bkz: ve Tablo 3 işaretleri ve Organizatör daha kapsamlı koleksiyonları için kaynaklar için farklı fluorophores yelpazesi tartışırken başvurular da dahil olmak.

  1. Doku belirli floresan marker plazmid restriksiyon enzimi tarafından inşası klonlama göre 15
    Not: alternatif teknikleri oluşturmak için tartışma görmek Floresan füzyon protein.
    1. Belirlenmesi (transkripsiyon füzyon için) düzenleyicinin veya WormBase 44, organizatörü (için translasyonel füzyon) ile ilgi tüm Gen dizisi.
      Not: için Organizatör, yaklaşık 1 – 3 kilobaz (kb) çoğu C. elegans genler için yeterli. Translasyonel füzyon protein de inşa bir gen bir boşaltım kanalı belirli organizatörü altında ilgi yerleştirerek (bkz. Tablo 2).
    2. (İçin transkripsiyon füzyon) düzenleyici ve/veya tam bir gen amplifikasyon organizatörü (için translasyonel füzyon) ile ileriye ve geriye doğru astar tasarım. Saat 5'te restriksiyon enzimi bağlayıcı ekleme ’ ve 3 ’ astar biter.
      Not: vektör plazmid (örneğin, pPD95.79) 16 ' mevcut olan enzimleri seçin. Translasyonel füzyon, 3 için ’ bağlayıcı restriksiyon enzimi sindirim ve vektör ile tüp ligasyonu sonra kodon çerçeve Ekle-ecek var olmak fluorophore, örneğin, GFP kodon ile sürekli tasarlanmış. Bir tipik restriksiyon enzimi halkalı 14 ' e 1 veya 2 daha fazla üsleri eklemeniz gerekebilir; bir kodonu yaratmaması için özen gösterin.
    3. Gerçekleştir Polimeraz zincir reaksiyonu (PCR) organizatörü veya tam uzunlukta gen canlı solucan veya vahşi tipi genomik DNA veya cDNA şablon 15 kullanarak yükseltmek için.
      Not: solucanlar şablon olarak kullanırken, ilk solucanlar lizis arabellek (PCR arabellek artı İndinavir K) 17 parçalayıcı. Karışık sahne solucanlar şablon olarak kullanılabilir. Aç kurt-ebilmek var olmak kullanılmış-bakteriyel DNA ile kirlenmesini önlemek için.
    4. Gerçekleştir özel (% 1) Jel Elektroforez güçlendirilmiş ürün doğru boyutunu tanımlamak için PCR ürünleri.
      Not: Grup boyutu doğru ise, bir sonraki adımla devam edin. Birden çok grup oluşturursa, tek bant üretmek için amplifikasyon koşullarını iyileştirmek. Eğer bu does değil iş, jel doğru grubudur kesip DNA standart yöntemleri 15 tarafından arındırmak ve sonra bir sonraki adımla devam edin.
    5. Gerçekleştir kısıtlama Özet PCR ürünü ve standart yöntemleri 15 tarafından ayrı borular içinde (örneğin, pPD95.79) fluorophore içeren vektör plazmid.
    6. Jel Elektroforez tarafından sindirilmiş DNA'lar ayrı ve PCR ürünü elute ve ayrı tüpler bantlarında DNA vektör.
    7. Jel dilimleri üzerinden DNA'lar standart yöntemleri 15 tarafından arındırmak. Spektrofotometre tarafından DNA toplama ölçmek.
    8. PCR ürünü ligate ve DNA standart yöntemlerle vektör ve rekombinant DNA'lar standart yöntemleri 15 tarafından yetkili hücrelere dönüşümü.
    9. 10 yaymak μL, 50 μL ve 50 μg/mL Ampisilin ile desteklenen üç bireysel Luria suyu (LB) plakalar dönüştürülmüş hücrelerin 100 μL.
      Not: dönüşüm verimliliği bir spektrum için farklı tabak üzerine hücrelerinin farklı tutarlarda yayıldı. Dönüştürme verimli ise mesela çok yoğun kaplama yalıtım kolonileri izin veremezsiniz.
    10. Gecede 37 ° C'de plakaları kuluçkaya. Ertesi sabah, kuluçka makinesi gelen tabak çıkarın.
      Not: kolonilere çok küçük ise, birkaç saat daha kuluçkaya.
    11. Hazırlama plazmid DNA'lar standart yöntemleri 15 tarafından tek kolonilerden. Mix şablon DNA ve astar ve (genellikle bir çekirdek hizmet merkezinde yapılır) sıralama için göndermek.
    12. Dizileri okumak ve füzyon yapısı bütünlüğünü doğrulayın.
      Not: CRITICAL: eklenen gen floresan marker gen çeviri füzyon için arasında doğru kodon çerçevesi onaylayın. İdeal olarak, hiçbir mutasyon PCR ve ligasyonu işlemler sırasında tanıtıldı onaylamak için bütün gen sıra.
    13. (Adım 1.1.11 kullanarak) daha fazla plazmid DNA adım 1.2 için enjeksiyon için oluşturmak.
  2. Mikroenjeksiyon DNA germline dönüşüm tarafından Transjenik hayvanlar nesil 18
    Not: transgenes tanıtmak için alternatif teknikleri için bkz. Anahatları belirlenmiş yordamları bir floresan füzyon protein veya ilgi diğer protein taşıyan Transjenik hayvanlar oluşturmak için kullanılabilir. Örneğin, bir eksojen protein Yeni tanıtılan (örneğin, kapaklı bir ortholog) olabilir veya endojen bir protein (örneğin, içine onun karşılık gelen germline mutant kurtarma için) yeniden girmesini veya bir fenotip (örneğin, enjeksiyon üretmek için overexpressed erm-1 / değişiklik için hedef olarak hizmet veren overexpression Kistik kanal fenotip oluşturmak için aşağıda açıklanan RNAi etkileşimi ekran tarafından kullanılan).
    1. Mix yapı DNA (1 – 50 ng/μL) işaretçisi plazmid DNA (genellikle 100 ng/μL), örneğin baskın marker rol-6 (su1006) ile (1.2.3 işaretçi seçenekleri için bkz:).
      Not: CRITICAL: enjekte DNA konsantrasyon ampirik olarak ne zaman artefactual fenotipleri (kistleri, uzantısı kusurları, ölümcül) giriş önlemek için belirlenen gerekir özellikle boşaltım kanallarında genlerin ifade duyarlı transgenes ifadesidir. Biri mesela yapabilirsiniz plazmid birkaç karışımları 1 ng/μL, 10 ng/μL, 50 ng/μL ve 100 ng/μL rol-6(su1006) ile 100 ng/μL konsantrasyonlarda konsantrasyonları bir dizi geçerli bir gerilme ile nesil sınamak için İstenen ifade veya fenotip (yüksek konsantrasyonda kanal morfogenez için özel olarak sigara zehirli olması muhtemeldir ve ölümcül olabilir).
    2. Filtre DNA karışımı bir 0,22-mikron (mikrometre) gözenek boyutu spin-x santrifüj tüpü filtreden.
      Not: tüpün kapağı mikroenjeksiyon iğneler engelleyebilirsiniz toz önlemek için açık bırakmak değil.
    3. Vahşi-türü veya mutant solucanlar germline dönüştürme için standart yöntemler tarafından erbezi içine rekombinant plazmid microinject (başvuru 18 yordamı Ayrıntılar için bakınız).
      Not: Standart marker plazmidleri vardır, örneğin: rol-6(su1006), dpy-20, unc-119, pha-1. Tahlisiye transgenes onların anılan sıraya göre mutantlar tanıtıldı ise rol-6(su1006) gibi baskın transgenes vahşi türü solucanlar tanıtıldı. Extrachromosomal transgenes hücre bölünmesi sırasında rasgele kayıp olduğundan marker plazmid transgenik çizgileri kolay bakım için ortak enjekte (1.2.8 bakın). Fluorophore füzyon için kodlama genler enjekte zaman, bir de fluorophore, GFP, işaretleyici olarak kendini kullanabilirsiniz. rol-6 sebep olur kendilerini genellikle morfogenez fenotipleri değerlendirme için avantajlı olan etrafında rulo için solucanlar.
    4. Enjekte transfer solucanlar Escherichia coli üzerine numaralı seribaşı Yuvarlak solucanlar büyüme orta (NGM) levhalar (örneğin, 5 kurt/plaka) (başvuru 19 standart C. elegans için bkz: Kültür ve bakım prosedürleri ve Tablo malzemelerin).
    5. Plakaları kuluçkaya ve yaklaşık 3 için 20 ° C'de geliştirmek döl izin ö
    6. F1 döl Rol (çalışırken) solucanlar (veya herhangi bir diğer belirli enjeksiyon marker, örneğin, GFP) diseksiyon mikroskop altında incelemek ve Silindirler t almako bireysel plakalar.
    7. Seçin F2 hayvanlar haddeleme ile tabaklar ve floresan diseksiyon floresan mikroskop altında varlığını doğrulamak (genellikle tüm silindir GFP olumlu hayvanlardır).
      Not: F2 Silindirler transgenik bir çizgi başarılı nesil belirtir. Tek tek satırlara-ebilmek var olmak farklı, örneğin, transgene iletim hızı ile ilgili olarak. Bu nedenle korumak ve birden fazla satır depolamak yararlıdır.
    8. İşareti pozitif hayvanlar için yeni tabaklar zenginleştirici tarafından transgenik satırları korumak.
      Not: Enjekte DNA germline extrachromosomal bir dizi olarak kurulmuştur. Extrachromosomal diziler için iletim hızları genellikle yaklaşık % ~ 50 ama değişkendir. Zorlanma kaybetmemek için bu nedenle el ile baskın işaretçileri (örneğin, negatif seçim tarafından güvenli değil satırları) olan satırları zenginleştirmek önemlidir.
    9. Tarafından-80 ° C 19 uzun süreli depolama için standart dondurma teknikleri transgenik satırları dondurmak.
      Not: Transgenes extrachromosomal diziler üzerinde de germline tarafından UV ışınlama homojen hatları 18 verim için ek bir adım de entegre edilebilir. Örneğin, erm-1 ERM-1 [++] gerilim elde etmek için UV ışınlama tarafından germline entegre edildi fgIs2[erm-1p::erm-1;rol-6p::rol-6(su1006)] nerede her hayvan taşıyan transgene, RNAi tabanlı kullanımı için bir gereklilik etkileşim ekran aşağıda açıklanmıştır. Bu zorlanma Ayrıca sitoplazmik boşaltım kanalı GFP üzerinden geçerken bir vha-1 p içeren bir yük etiketli oldu:: GFP transgene (yukarıda belirtildiği gibi aynı yordamlar tarafından oluşturulan; başvuru 20 için temel genetik bakın haçlar gibi prosedürler) ve [++]; ERM-1 olarak adlandırılan vha-1 p:: GFP zorlanma aşağıda.

2. Bir hedef RNAi Kütüphane ve bir kanal fenotip değiştirmek için tasarım bir RNAi etkileşim ekranın inşaat

Not: hedeflenen RNAi tabanlı genetik etkileşimi ekran kullanan bir overexpression Kistik kanal fenotip anlatılan etkileşen boşaltım kanalı morfogenez genler için arama. ERM-1 [++] zorlanma (bkz. Adım 1.2.9 yükleme) örnek 9 olarak hizmet vermektedir. Bu yaklaşım sadece bir boşaltım kanalı Lümen morfogenez genetik analizi için birçok olası yaklaşımlar sunuyor (genetik diğer yaklaşımlar için bkz: giriş ve tartışma). Bağırsak tubulogenesis 3 ve başvurular 17 , 21 , 22 için geçmiş RNAi, RNAi ayrıntılarını üzerinde eşlik eden kağıt görmek yordamlar, modülasyonu'nu (öldürücü tubulogenesis genler için ayarlanabilir) RNAi güç ve teknik sorunların tartışılması RNAi için bağlı. Başvuru 19 standart solucan kültür ve bakım ve malzemelerin tablo için bkz:.

  1. Veritabanları ve yayınlanmış makaleleri ERM-1 (veya diğer gen ilgi) ara etkileşen molekülleri.
    Not: Potansiyel ERM-1 interactors işlevsel olarak, genetik olarak veya fiziksel olarak herhangi bir tür ERM proteinler ile etkileşim deneysel olarak gösterilmiştir ve/veya herhangi bir silico tarafından yüksek üretilen iş yapmak için öngörülen tüm moleküller yer alacak veya sistemleri Biyoloji yaklaşım (Tablo 3 veritabanları ve kaynakları örnekleri için bkz:).
  2. Tüm genler listesini oluşturmak ve C. elegans homologs bulmak gerektiğinde.
    Not: faiz gen fonksiyonu dikkate alır ve interactors belirlenmesi için net genişler gen sınıfları için tanımlanmış genler listesi genişleyen düşünün (tüm actins seçin, örneğin, membran-aktin bağlayıcı ERM-1, ve aktin ile ilgili moleküller).
  3. Karşılık gelen RNAi klonlar piyasada bulunan genom çapında bakteriyel RNAi kütüphaneler tüm genler için besleme bakteriyel tanımlamak (örneğin, Ahringer genomik C. elegans RNAi Kütüphane 21 besleme; Tablo malzemelerin)
  4. Tüm genler ve onların karşılık gelen RNAi plaka ve iyi numarası için bir elektronik tablo oluşturmak.
  5. Al ve günlük LB/Ampisilin/tetrasiklin plakaları (antibiyotik seçimi Kütüphane İnşaat tarafından belirlenir) ~ 50 RNAi klonlar çizgi ve RNAi Kitaplığı tarafından üretilmesi hedeflenen kadar devam.
    Not: Kütüphane boyutu ve öngörülen iş akışı, bağlı olarak tam bir kütüphane oluşturma atlarsanız, doğrudan toplu iş çözümlemesi ile devam edin. Plakalar için artık (gerekirse, yeniden çizgi yeni plakalar üzerine bundan sonra) yaklaşık 2 hafta daha 4 ° C'de muhafaza edilebilir. Bunun tersi olarak, bir-80, uzun süreli depolama için Çoğalt 96-şey veya 384-şey biçimlerde daha büyük dondurulmuş kitaplıkları oluşturabilirsiniz ° C.
  6. Gecede 37 ° C'de plakaları kuluçkaya. Ertesi sabah, tabak kuluçka ve mağaza kaldırmak 4'te ° C.
  7. Steril bir kürdan bir plaka almak RNAi bakteri bakteriler ile 600 μL 1.5 mL microtube LB/Ampisilin (50 ng/μL) suyu karıştırın, tüpler 37 ° C'de kuluçkaya, sallamak için 6 h.
    Not: RNAi bakteri suyu çekme (ipucu kürdan veya micropipette) microtube kenarı boyunca sürtünme aşılamak.
  8. Tohum 70 μL bakteri yinelenen veya onaylatılacak kümeleri içinde 6-şey RNAi plakaların her kuyuya kültürlü. RNAi tabak 22 ° C'de gecede kuluçkaya.
    Not: RNAi plakaları standart yordamlar (Malzemeler tablo başvuruları 3 , 17 , ve 21) tarafından oluşturulan ve burada bir 6-şey dokuda kullanılan kültür plaka biçimi hala kanal morfogenez plakalar üzerinde canlı hayvanlarda mikroskobik değerlendirilmesi için izin veren bir yüksek üretilen iş yaklaşım.
  9. Sonraki sabah, çekme 3 L4 sahne ERM-1 [++]; vha-1 p:: GFP solucanlar RNAi plakaları her şey.
    1. (Bkz: başvuru 19) RNAi ile ilk müdahale OP50 bakteri ile kirlenmesini önlemek için solucanlar bakteri olmadan NGM plaka üzerine tohum ve yaklaşık 10 dakika için tarama hayvanlar izin. Sadece sağlıklı hayvanlar-hasret kullanın.
  10. Plakayı hayvanların döl üretmek izin vermek 3 d 22 ° C'de kuluçkaya.
  11. F1 döl diseksiyon floresan mikroskop altında incelemek kanal fenotipleri.

3. Vivo Floresans mikroskobu anatomi ve puanlama, Tubulogenesis fenotipleri C. elegans Excretory kanalının Imaging

  1. hazırla bir fenotip skor levha (Tablo 4 ' te gösterilen örnek ve şekil 5 ).
  2. Solucanlar doğrudan altında floresan dissectin agar plakalı yerleştiring mikroskop, değerlendirme, plaka açık kapak odaklanmak için daha düşük büyütme kullanın.
    Not: Bu protokol bir kapsam 1.5 X ve 10 X hedefleri ve 3,5 bir zum mesafesi 45 (Malzemeler tablo) ile açıklar.
  3. Hayvanlar değerlendirmek de ayrı ayrı her üzerinde odaklanarak, iyi 1'den başlayarak ve iş plaka.
    Not: Her zaman denetimleri değerlendirilmesi ile başlar. Örneğin, bir sahte (boş vektör) olumsuz denetim ((bkz: başvuran 17 , 21) HT115 RNAi bakteri bir ilişkisiz gen ekleme ile ya da olmadan) ve pozitif uygun kontrol eder, örneğin, içinde Bu etkileşim perde, erm-1 (bastırır ERM-1 [++] fenotip) RNAi ve sma-1 / spectrin (ERM-1 [++] kanal fenotip arttırır) RNAi.
  4. Önce genel fenotipleri parlak ışık altında görünür denetleyin (örneğin: Let/öldürücü, Clr/işaretini kaldırın, Emb/embriyonik öldürücü, Ste/steril, Unc/koordinasyonsuzluk, Dpy/bodur, vb), hayvanlar ve numarasını toplam sayısını sayarak fenotip ölçmek fenotip ile hayvanların (bkz. Tablo 4) numaralarını kaydetmek.
    Not: Kanal fenotipleri (örneğin, Emb, Ste), değerlendirilmesi etkileyebilir kusurları neden genlerin nakavtlar koşullu ile deneme tekrar düşünün için embriyonik göndermek RNAi (bkz: yordamlar 3 kağıt, eşlik eden ).
  5. İkinci, boşaltım kanalı fenotipleri floresan ışığı altında incelemek, ölçülebilir fenotipleri (örneğin, kanal uzunluğu, lumen, kistler genişliğini) puan, sayıları kaydetmek ve fenotipleri puanlama bir sayfada tarif (bkz. Tablo 4, < güçlü sınıfı "xfig" = > Şekil 5).
    Not: Daha yüksek büyütme zum mesafesine sahip daha fazla ince kanal fenotipleri değerlendirmek için gereklidir. İleri geri hareket kanal dikkatle değerlendirmek için düşük ve yüksek büyütme ’ s uzunluk ve genişlik ve başka bir kanal morfogenez fenotip. Miktar veya basit fenotipleri yarı miktar için 100 hayvan sayısı (örneğin, L4s bu hedeflenen RNAi ekrandaki; fenotipleri: Kanal 1/4, 1/2, 3/4 uzunluğunda ve tam arka kanalları uzatılması ve posterior kanallar, Lümen çapı küçük kistler (< 1/3 hayvan genişliği), büyük kistler (> 1/3 hayvan genişlikte); bkz. Tablo 4).
  6. Baskın fenotipleri mikroskop tarafından en az 3 farklı hayvanlardan edinme görüntülerini monte dijital şarj kuplajlı cihaz (CCD) kamera ve ilgili düşsel bilgisayar yazılımı (bkz. Tablo reçetesi)
      görüntüleri,
    1. ilk fotoğraf makinesini açın, ekli bilgisayarı, görüntü yakalama yazılımı simgesini çift tıklatın, solucan kalıbının düşük büyütme altında el ile bir alanı odaklanmak ve kamera Deklanşör açın.
    2. Tıklayın “ canlı önizleme ” görüntü yakalama yazılımı bilgisayar ekranında, solucanlar görselleştirmek için bilgisayar ekranında simgesini ayarla el ile açıkça ekrandaki solucanlar görselleştirmek için tıklatın odak “ yapış ” simgesini, ardından ' ı tıklatın “ Kaydet ” simgesi.
      Not: Hayvanlar daha hızlı floresan ışığı altında hareket edecek bu nedenle bir yandan bilgisayar fare üzerinde diğer elinizle ilgi alanı içine plaka hareket ederken hazır tutun. Hemen ardından “ yapış ” simgesi görüntü elde etmek için. Birkaç deneme ile iyi bir görüntü elde etmek genellikle mümkündür.
    3. Kaydı alınan görüntüleri uygun dosya adı ile (soy adı, RNAi klon adı ve tarihi dahil).
      Not: İnce ve uzun kanalları daha hızlı hareketli vahşi tipi Kurtlarla mutantlar görüntü daha zordur. Kistik kanallar ve/veya diğer fenotipleri mutantlarla görüntüleme böylece kolaylaştırmak yavaş, hareket ettirmek muhtemeldir. Marker plazmid Rol gibi görüntüleme için yararlı olabilir hayvanları tutarak “ yerinde ” yerine hareketli ileri ve de kendi etrafında haddeleme hayvan ile fenotip üzerinde geliştirilmiş bir görünüm sağlayabilir.

4. C. elegans Excretory kanal tarafından lazer tarama Confocal mikroskobu yüksek çözünürlükte görüntüleme

  1. bir pamuklu çubukla ucundaki veya ucundaki küçük bir miktar yağ veya vazelin koyun
    1. canlı hayvan montaj Dizin parmak ve çapı ile ultrathin bir daire oluşturmak için yağ yaymak ~ 6 – a temiz cam kaymak ortasında 8 mm.
    2. Yer 6 μL %5 lidokain çözüm (anestezik) bir micropipette tarafından çember içine.
      Not: Bir lidokain hisse senedi çözüm lidokain tozu suda çözülerek yapılabilir. M9 arabellek 19 (Malzemeler tablo) ile % 5 oranında seyreltin. Bu neden kistler rüptürü ve kanal fenotipleri teşvik ortak immobilizasyon çözümler (örneğin, sodyum azid) önlemek için boşaltım kanalı analiz için kritik.
    3. Birkaç hayvan--dan bir RNAi plaka almak ve çözüm içine solucan çekme 19 immerging tarafından lidokain çözüm içine koyun.
      Not: Tercihen bile montaj tarafından Tekdüzen kalınlığı kolaylaştıracaktır sahne özgü hayvan seç. Hayvanlar üzerinde diseksiyon floresan mikroskop önceden.
    4. 22 x 22 mm coverslip cam slayt üzerine yerleştirin; hafifçe gres daire yerleşmek izin.
      Not: Kanal Morfoloji, özellikle içinde mutantlar ya da tedavi RNAi Kurtlarla kanal ve muhtemelen diğer fenotipleri zarar verebilir coverslip üzerinde herhangi bir fiziksel Baskı uygulamayın. Bu nedenle bir kalın yağ daire önlemek için önemlidir; ideal olarak hayvanlar-hafifçe gözükeceksin cam slayt ve kapak kayma arasında.
    5. Buzlu cam slayt tarafında örnek adını yazın. Hemen analiz kanal fenotip ve görüntüleri elde etmek için confocal mikroskop için slayt olur.
      Not: Gecikmeler neden Kanal kistlerin zarar görmesine veya kanal Lümen Morfoloji değiştirmek.
  2. Acquiring confocal görüntüleri
    1. Slayt confocal mikroskop örnek sahnesinde yerini, solucanlar (10 X) düşük büyütmede odaklan.
    2. Görünümü ve seçme hayvanlar 60 X ve/veya 100 X hedefleri, altında incelemek boşaltım kanalı ’ s cep ve hücre altı fenotipleri, örneğin, lumen şekli ve çapı, boyutunu ve şeklini kistleri; veya çözümleme için etiketli hücre altı bileşenleri Örneğin, apikal/lumenal membran, Bazal membran, sitoplazma, endosomal karşı canalicular veziküller, diğer organelleri (bkz: tartışma, Şekil 2 ve şekil 4).
    3. Edinme görüntülerini ilgi belirli fenotip.
      Not: Bu protokol bir lazer confocal mikroskop (Tablo reçetesi) tarama açıklar. Hücre altı ince C. elegans bileşenlerinde gidermek için boşaltım kanallar, daha yüksek büyütme hedefleri (60 X 100 X için) gereklidir. İplik-disk confocal mikroskop zaman atlamalı görüntüleri elde etmek için kullanılabilir ancak daha az confocality sağlar (konuya bakın).
      1. Confocal görüntüleri elde etmek için bilgisayarı, çift tıkırtı üstünde confocal mikroskop bilgisayar yazılımı ve lazer bir özel lazer simgesini tıklatarak seçin.
      2. Tıklama “ tarama ” bilgisayar ekranında odaklı solucan görselleştirmek için simgesini ayarla lazer yoğunluğu ile yazılım ve tıkırtı bir daha üstünde “ inceden inceye gözden geçirmek ” taramayı durdur, o zaman tıkırtı üstünde için simgesini “ yakalamak ” resim yakalama, o zaman tıkırtı üstünde için simgesini “ kurtarmak ” simgesi.
      3. Görüntüleri uygun dosya adı ile kaydetmek ve RNAi klon adı, soy adı ve tarih içerir.
        Not: Tek ve birden çok bölüm görüntüleri elde (örneğin, 10 – z ekseni boyunca 15 bölümler). Kesit 3D görselleştirme sağlar. Projeksiyon görüntüleri ve ayrı ayrı (mikroskop bağlı olarak) gerekirse kaydedin. En iyi çözünürlük için lazer ayarları ile düşük kazanç kullanın, değil çok fazla iğne deliği açmak ve birkaç ortalama başına görüntü eklemek (bkz: başvuran 23 , 24 confocal görüntüleme genel tartışma). Görüntüleri bir parlaklık tarafından düşsel bilgisayar yazılımı (tercihen değiştirilmemiş kullanım görüntüleri) gerektiğinde değiştirilmek üzere izin vermek için doygunluk seviyesinin altında kendine iyi bak.
      4. Çift - görüntüleri elde etmek veya birden fazla lazer simgelerini tıklatarak aynı şekilde etiketlenmiş kanallar (örneğin yeşil, kırmızı ve mavi) çarpın ama taşma payı üzerinden kanal (eş yerelleştirme çalışmaları için kritik) arasındaki önlemek için sıralı tarama kullanın.
        Not: Bir sıralı (Bu da bir karşılık gelen sonuçları ağartma fotoğrafta artış) taramak için gereken süreyi dikkate almak ve tarayıcı ayarlarını değiştirmeniz gerekebilir. Hayvanlar için daha--dan 30 dk kanal Morfoloji belirsiz etkileri önlemek için en fazla bir slayttan taramayın. Daha uzun tarama gerekiyorsa yeni slayt monte.
      5. Elde karşılık gelen farklı girişim optik (DIC) / Nomarski resimler, özellikle miktarının Eğer canal uzunluğu ve Lümen çapı ile ilgili olarak solucan ’ s gövde uzunluğu ve çapı. Yerleşimi Floresans ve Nomarski imge yanında tıkırtı üstünde “ yer paylaşımı ” işaretlerini göstermek için simgeyi ( şekil 1 d ve şekil 4A – D).
    4. Miktar için etiketli bir bileşeni ilgi yoğunluğunu Floresans ölçmek ImageJ yazılım 25 tarafından ( şekil 5C).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

Bu iletişim kuralı, görsel ve tatlı tek hücreli tubulogenesis ve tek bir hücrede hücre içi Lümen morfogenez çözümlemek için C. elegans boşaltım Kanallar kullanmayı açıklamaktadır. Onların uzantısı sırasında orta embriyogenez zaman yetişkinlik, dört boşaltım Kanallar onların demiri ve apikal/lumenal membranlar için benzersiz bir model sağlar onların canalicular ve endosomal endomembrane sistemi ile birlikte genişlemeye devam de novo vivo içinde analizini membran ...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

C. elegans genetik çok yönlülük, şeffaflık, basit vücut planı ve sabit hücre soyu morfogenez analizi için mükemmel bir model olun. Bu iletişim kuralı standart genetik manipülasyon ve görüntüleme birleştirmek açıklar 2 mikron yararlanmak için çalışmalar ince polarize membran ve hücre içi Lümen Biyogenez bir tek hücre tüp çalışmaya C. elegans boşaltım kanallar.

Etiketleme
C. elegans boşaltım kanalları canlı analiz (burada açıklanan) izin floresan fü...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

Yazarlar onlar rakip hiçbir mali çıkarları var bildirin.

Teşekkürler

M. Buechner (University of Kansas, Kansas, ABD), K. Nehrke (Rochester Üniversitesi Tıp Merkezi, Rochester, New York, ABD) ve Caenorhabditis genetik Merkezi, Ulusal Sağlık Enstitüleri tarafından Office araştırma altyapı finanse teşekkür ediyoruz Programlar (P40 OD010440). Bu eser NIH GM078653, MGH olduğunu 224570 ve SAA 223809 V.G. için hibe tarafından desteklenmiştir

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
Klonlama
Plazmid pPD95.75AddgeneCat. 37464
PCR KitiQiagenCat. 27106
Ligasyon kitiNew England BiolabsKedisi. Hayır. E2611L
DNA işaretleyiciThermo ScientificCat. Hayır. SM1331
Agaroz DNA sınıfıFisher Bilimsel Kedi. Hayır. BP164-100
Yetkili hücrelerNew England BiolabsCat. Hayır. C2987H
TrisFisher Bilimsel Kedi. Hayır. BP154-1
EDTASigma Kedi. Hayır. ED-1KG
Asetik asitFisher Bilimsel Kedi. Hayır. A38S-500
Etidyum bromürFisher Bilimsel Kedi. Hayır. BP1302-10
Ekipmanlar< / güçlü >
PCR makinesi ve nbsp;MJ AraştırmaKedisi. Hayır. PTG-200 
SantrifüjEppendorf kedi. No. 5415C
Su BanyosuHassas Bilimsel kedi. Hayır. 666A3 
Jel koşu aletiFisher ScientificCat. 09-528-165
Jel çalışan güç kaynağıFisher ScientificCat. No. 45-000-465
Moleküler Görüntüleyici  Jel Doc XR SistemiBio-RadKedi. No. 1708195EDU
Nanodrop SpektrofotometreTermo BilimselKat. Hayır. ND1000
C elegans< / em> ilgili1< / sup>< / strong>1< / sup>bkz. referans<>sup19< / sup> standart C. elegans kültürü ve bakım prosedürleri için.
LB Orta ve plakalar22protokoller için reference19 bakın.
Tripton Acros OrganikKat. hayır. 611845000
Maya ÖzüBD BiosciencesCat. no. 212750
NaClSigma Cat. hayır. S7653
Bacto Agar BD BiosciencesCat. no. 214040
Ampisilin SigmaCat. no. A0116
TetrasiklinFisher ScientificCat. hayır. BP912
M9 Orta22protokoller için reference19 adresine bakın.
NaClSigma Kat. no. S7653
KH2< / sub>PO4< / sub>SigmaCat. no. P0662
Na2< / sub>HPO4< / sub>SigmaCat. no. S7907
MgSO4Sigma Cat. no. M2773
NGM plakaları 22protokoller için reference19 adresine bakın.
NaClSigma Kat. hayır. S7653
Peptone BD BiosciencesCat. no. 211677
Tripton Acros Organics Cat. no. 611845000
Bacto Agar BD BiosciencesCat. no. 214040
MgSO4SigmaKat. no. M2773
CaCl2SigmaKat. no. C3881
Kolesterol SigmaKat. no. C8667
K2HPO4 SigmaKat. no. P3786
KH2PO4SigmaCat. no. P0662
RNAi plakaları3sup>3protokoller için reference21 adresine bakın.
NaClSigma Kat. hayır. S7653
Peptone BD BiosciencesCat. no. 211677
Tripton Acros Organics Cat. no. 611845000
Bacto Agar BD BiosciencesCat. no. 214040
MgSO4SigmaKat. no. M2773
CaCl2SigmaKat. no. C3881
Kolesterol SigmaKat. no. C8667
K2HPO4 SigmaKat. no. P3786
KH2PO4SigmaCat. no. P0662
IPTG ABD BiyolojikKedisi. hayır. I8500
KarbenisilinFisher Bilimsel Kedisi. hayır. BP2648
NaOHFisher Bilimsel Kat. hayır. SS266-1
Sodyum hipokloritFisher ScientificCat. hayır. 50371500
Bakteriler< / güçlü>
OP50 bakteriCGC
HT115 bakteriCGC
Genom çapında RNAi kütüphaneleri< / güçlü>
Ahringer genom çapında RNAi besleme kütüphanesi (ref21,58,59)Kaynak: BioScience
C. elegans ORF-RNAi besleme kütüphanesi (ref60)Kaynak: BioScience
Imaging related
LidocaineMP Biomedicals,LLGCat. no. 193917
Malzemeler< / güçlü >
Vakumlu Gres SilikonBeckman Cat. no. 335148
Mikroskop slaytları Fisher Bilimsel Cat. no. 4448
Doku kültürü plakası, 6 kuyu Corning A.Ş.Kat. no. 08-772-33
Ekipman
SMZ-U diseksiyon mikroskobu (Nikon)
SZX12 diseksiyon mikroskobu (Olympus), yüksek güçlü stereo floresan eki (Kramer Scientific), Q yakalama yazılımına sahip CCD kamera ve X-Cite floresan lamba (Fotonik Çözümler).
TCS SL Lazer taramalı konfokal mikroskop (Leica Microsystem)
üzerine monte edilmiş C2 lazer taramalı konfokal
sup<ECLIPSE Ti-E ters çevrilmiş mikroskop (Nikon)

Kaynaklar

  1. Lubarsky, B., Krasnow, M. A. Tube morphogenesis: making and shaping biological tubes. Cell. 112 (1), (2003).
  2. Sundaram, M. V., Cohen, J. D. Time to make the doughnuts: Building and shaping seamless tubes. Semin. Cell Dev. Biol. S1084-9521, 30130-30136 (2016).
  3. Zhang, N. The C. elegans intestine as a model for intercellular lumen morphogenesis and in vivo polarized membrane biogenesis at the single-cell level. JoVE. , (2017).
  4. Andrew, D. J., Ewald, A. J. Morphogenesis of epithelial tubes: Insights into tube formation, elongation, and elongation. Dev. Biol. 341 (1), 34-55 (2010).
  5. Nelson, F. K., Albert, P. S., Riddle, D. L. Fine structure of the Caenorhabditis elegans secretory-excretory system. J. Ultrastruct. Res. 82 (2), 156-171 (1983).
  6. Sundaram, M. V., Buechner, M. The Caenorhabditis elegans Excretory System: A Model for Tubulogenesis, Cell Fate Specification, and Plasticity. Genetics. 203 (1), 35(2016).
  7. Altun, Z. F., Hall, D. H. Excretory system. WormAtlas. , (2009).
  8. Buechner, M. Tubes and the single C. elegans excretory cell. Trends Cell Biol. 12 (10), 479-484 (2002).
  9. Khan, L. A. Intracellular lumen extension requires ERM-1-dependent apical membrane expansion and AQP-8-mediated flux. Nat. Cell Biol. 15 (2), 143-156 (2013).
  10. Kolotuev, I., Hyenne, V., Schwab, Y., Rodriguez, D., Labouesse, M. A pathway for unicellular tube extension depending on the lymphatic vessel determinant Prox1 and on osmoregulation. Nat. Cell Biol. 15 (2), 157-168 (2013).
  11. Buechner, M., Hall, D. H., Bhatt, H., Hedgecock, E. M. Cystic canal mutants in Caenorhabditis elegans are defective in the apical membrane domain of the renal (excretory) cell. Dev. Biol. 214 (1), 227-241 (1999).
  12. Fehon, R. G., McClatchey, A. I., Bretscher, A. Organizing the cell cortex: the role of ERM proteins. Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 11 (4), 276-287 (2010).
  13. Gobel, V., Barrett, P. L., Hall, D. H., Fleming, J. T. Lumen morphogenesis in C. elegans requires the membrane-cytoskeleton linker erm-1. Dev. Cell. 6 (6), 865-873 (2004).
  14. Boulin, T., et al. Reporter gene fusions, WormBook. The C. elegans Research Community, WormBook. , April 5, 2006 http://www. wormbook.org (2006).
  15. Sambrook, J. Molecular cloning: a laboratory manual. Sambrook, J., DW, R. ussell , Cold Spring Harbor Laboratory Press . (2006).
  16. Fire, A., Harrison, S. W., Dixon, D. A modular set of lacZ fusion vectors for studying gene expression in Caenorhabditis elegans. Gene. 93 (2), 189-198 (1990).
  17. Ahringer, J. Reverse genetics, WormBook. The C. elegans Research Community, WormBook. 6, April 6, 2006 http://www. wormbook.org (2006).
  18. Transformation and microinjection, WormBook. The C. elegans Research Community, WormBook. Evans, T. C. , April 6, 2006 http://www.wormbook.org (2006).
  19. Maintenance of C. elegans, WormBook. The C. elegans Research Community, WormBook. Stiernagle, T. , February 11, 2006 http://www.wormbook.org (2006).
  20. Genetic mapping and manipulation: Chapter 7-Making compound mutants, WormBook. The C. elegans Research Community, WormBook. Fay, D. , February 17, 2006 http://www.wormbook.org (2006).
  21. Kamath, R. S., Ahringer, J. Genome-wide RNAi screening in Caenorhabditis elegans. Methods. 30 (4), 313-321 (2003).
  22. Timmons, L., Court, D. L., Fire, A. Ingestion of bacterially expressed dsRNAs can produce specific and potent genetic interference in Caenorhabditis elegans. Gene. 263 (1-2), 103-112 (2001).
  23. Pawley, J. B. Handbook of Biological Confocal Microscopy. , Springer. (2006).
  24. Hibbs, A. R. Confocal Microscopy for Biologists. , Springer. US. (2004).
  25. Bankhead, P. Analyzing fluorescence microscopy images with ImageJ. , (2014).
  26. Praitis, V., Casey, E., Collar, D., Austin, J. Creation of low-copy integrated transgenic lines in Caenorhabditis elegans. Genetics. 157 (3), 1217-1226 (2001).
  27. Frøkjaer-Jensen, C. Single-copy insertion of transgenes in Caenorhabditis elegans. Nat. Genet. 40 (11), 1375-1383 (2008).
  28. Mello, C. C., Kramer, J. M., Stinchcomb, D., Ambros, V. Efficient gene transfer in C. elegans: extrachromosomal maintenance and integration of transforming sequences. EMBO J. 10 (12), 3959-3970 (1991).
  29. Barrangou, R. Cas9 Targeting and the CRISPR Revolution. Science. 344 (6185), 707-708 (2014).
  30. Dickinson, D. J., Goldstein, B. CRISPR-Based Methods for Caenorhabditis elegans Genome Engineering. Genetics. 202 (3), 885-901 (2016).
  31. Esposito, D., Garvey, L. A., Chakiath, C. S. Gateway cloning for protein expression. Methods Mol. Biol. 498, 31-54 (2009).
  32. Gibson, D. G. Enzymatic assembly of DNA molecules up to several hundred kilobases. Nat. Methods. 6 (5), 343-345 (2009).
  33. Hobert, O. PCR fusion-based approach to create reporter gene constructs for expression analysis in transgenic C. elegans. Biotechniques. 32 (4), 728-730 (2002).
  34. Jorgensen, E. M., Mango, S. E. The art and design of genetic screens: caenorhabditis elegans. Nat. Rev. Genet. 3 (5), 356-369 (2002).
  35. Berry, K. L., Bulow, H. E., Hall, D. H., Hobert, O. A. C. elegans CLIC-like protein required for intracellular tube formation and maintenance. Science. 302 (5653), 2134-2137 (2003).
  36. Mattingly, B. C., Buechner, M. The FGD homologue EXC-5 regulates apical trafficking in C. elegans tubules. Dev. Biol. 359 (1), 59-72 (2011).
  37. Shaye, D. D., Greenwald, I. The disease-associated formin INF2/EXC-6 organizes lumen and cell outgrowth during tubulogenesis by regulating F-actin and microtubule cytoskeletons. Dev. Cell. 32 (6), 743-755 (2015).
  38. Lant, B. CCM-3/STRIPAK promotes seamless tube extension through endocytic recycling. Nat. Commun. 6 (6), 6449(2015).
  39. Paupard, M. C., Miller, A., Grant, B., Hirsh, D., Hall, D. H. Immuno-EM localization of GFP-tagged yolk proteins in C. elegans using microwave fixation. J. Histochem. Cytochem. 49 (8), 949-956 (2001).
  40. Lukyanov, K. A., Chudakov, D. M., Lukyanov, S., Verkhusha, V. V. Photoactivatable fluorescent proteins. Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 6 (11), 885-891 (2005).
  41. Bates, M., Huang, B., Dempsey, G. T., Zhuang, X. Multicolor super-resolution imaging with photo-switchable fluorescent probes. Science. 317 (5845), 1749-1753 (2007).
  42. Sherman, T. The abts and sulp families of anion transporters from Caenorhabditis elegans. Am. J. Physiol. Cell Physiol. 289 (2), C341-C351 (2005).
  43. Caenorhabditis Genetics Center (CGC). , http://cbs.umn.edu/cgc/home (2017).
  44. Wormbase. , http://www.wormbase.org/ (2017).
  45. Transgeneome website. , https://transgeneome.mpi-cbg.de/transgeneomics/index.html (2017).
  46. C. elegans expression pattern. , http://gfpworm.org/ (2017).
  47. National BioResource Project (NBRP)::C. elegans. , https://shigen.nig.ac.jp/c.elegans/ (2017).
  48. Heppert, J. K. Comparative assessment of fluorescent proteins for in vivo imaging in an animal model system. Mol. Biol. Cell. 27 (22), 3385-3394 (2016).
  49. Shaner, N. C., Steinbach, P. A., Tsien, R. Y. A guide to choosing fluorescent proteins. Nat Methods. 2 (12), 905-909 (2005).
  50. GeneMANIA. , http://genemania.org/ (2017).
  51. AceView. , http://www.ncbi.nlm.nih.gov/ieb/research/acembly/ (2017).
  52. iHOP. , http://www.ihop-net.org/UniPub/iHOP / (2017).
  53. Saccharomyces Genome Database. , http://www.yeastgenome.org (2017).
  54. Flybase. , http://www.flybase.org (2017).
  55. Mouse Genome Database. , http://www.informatics.jax.org (2017).
  56. Human Genome Database. , http://www.gdb.org (2017).
  57. BLAST. , https://blast.ncbi.nlm.nih.gov/Blast.cgi (2017).
  58. Kamath, R. S., Martinezcampos, M., Zipperlen, P., Fraser, A. G., Ahringer, J. Effectiveness of specific RNA-mediated interference through ingested double-stranded RNA in Caenorhabditis elegans. Genome Biol. 2 (1), RESEARCH0002(2001).
  59. Kamath, R. S. Systematic functional analysis of the Caenorhabditis elegans genome using RNAi. Nature. 421 (6920), 231-237 (2003).
  60. Rual, J. F. Toward improving Caenorhabditis elegans phenome mapping with an ORFeome-based RNAi library. Genome research. 14 (10B), 2162-2168 (2004).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Etiketler

Tek Hücreli TübülogenezGFP Füzyon EtiketlemeKonfokal Mikroskopi GörüntülemeFloresan Diseksiyon MikroskopisiTransgenik Hayvan OluşturmaFenotipik Skorlama Analizi
C. elegans Excretory kanal hücre içi Lumen morfogenez ve In Vivo polarize membran Biyogenez tek bir hücrede için bir Model olarak: etiketleme GFP-füzyon, RNAi etkileşimi ekran ve görüntüleme
Bize Ulaşın
Kütüphaneye Öner

Gizlilik

Kullanım Koşulları

Politikalar

Telif Hakkı © 2026 MyJoVE Corporation. Tüm hakları saklıdır.