Yöntem makalesi

Vivo Fare uyluk için bir MRI uyumlu Osteosentez aygıtı kullanma farelerde kemik iyileşme sırasında kırık Kallus gelişimi değerlendirme

9K görüntüleme

DOI:

10.3791/56679

14 Kasım 2017

* These authors contributed equally

Bu makalede

Özet

Endochondral kemik iyileşme sırasında kırık Kallus dokusu geliştirme değerlendirilmesi iyileşme süreci izlemek için önemlidir. Burada, bir manyetik rezonans görüntüleme (MRG) kullanımı raporu-uyumlu eksternal fiksatör fare uyluk için MRG izin farelerde kemik rejenerasyon sırasında tarar.

Özet

Endochondral kırık iyileşmesi fibröz kıkırdak ve kemik dokusunda kırık Kallus gelişimi içeren karmaşık bir işlemdir. Kallus farklı dokularda miktarda ilerleme şifa kırık önemli bilgiler sağlar. Dijital Radyografi ve µCT görüntüleme boyuna preklinik kırık iyileşmesi çalışmalar küçük hayvanlar kullanarak Kallus dokusu gelişiminde izlemek için kullanılabilir vivo içinde teknikleri içerir. Ancak, her iki teknikleri sadece mineralize ve mineralize olmayan doku arasında ayırt edebiliyoruz. Sonuç olarak, kıkırdak fibröz doku ayırt etmek mümkün değildir. Buna ek olarak, manyetik rezonans görüntüleme (MRG) su içeriğine göre anatomik yapıları görüntüler ve bu nedenle Noninvazif yumuşak doku ve kıkırdak içinde kırık Kallus tanımlamak mümkün olabilir. Burada, Mr uyumlu fare uyluk için fiksatör MRI taramaları farelerde kemik yeniden oluşturma işlemi sırasında izin vermek için dış kullanımı raporu Deneyler fiksatör ve ısmarlama montaj aygıt tekrarlayan MRI taramaları, böylece kırık-Kallus dokusu gelişimin boyuna analizi etkinleştirmek izin gösterdi.

Giriş

İkincil kırık iyileşmesi kemik iyileşme en yaygın şeklidir. Ontogenic endochondral ossifikasyon1,2,3, belirli özellikleriyle taklit karmaşık bir süreçtir. Erken kırık hematom ağırlıklı olarak bağışıklık hücreleri, granülasyon ve fibröz doku oluşur. Düşük oksijen gerilim ve yüksek biyomekanik suşları osteoblast farklılaşma kırık boşluğu, engel ama progenitör hücre farklılaşma kondrosit4,5,6içine teşvik. Bu hücreler kırık kemiğin ilk istikrar sağlayan bir kıkırdak matris oluşturmak için yaralanma sitesinde çoğalırlar başlar. Kallus olgunlaşma sırasında kondrosit Hipertrofik, haline geçmesi apoptosis veya trans-dokusunu ayırt etmek. Neovaskülarizasyon kıkırdak-kemik geçiş bölgesi, yüksek oksijen düzeyleri, kemik doku7oluşumunu sağlayarak verir. Kemik kırığı köprü sonra daha biyomekanik istikrarlı ve fizyolojik kemik kontur ve yapısı3kazanmak için sebep harici kırığı Kallus remodeling oluşur. Bu nedenle, kırık Kallus fibröz kıkırdak ve kemik dokusunda miktarda kemik iyileşme süreci hakkında önemli bilgiler sağlar. Rahatsız veya gecikmeli şifa değişiklikler Kallus dokusu gelişme hem insanlar ve fareler8,9,10,11tarafından görünür hale gelir. Dijital Radyografi ve12,13görüntüleme µCT boyuna preklinik kırık küçük hayvanlar kullanarak çalışmalar şifa Nasırlaşma doku gelişiminde izlemek için kullanılabilir vivo içinde teknikleri içerir. Ancak, her iki teknikleri sadece mineralize ve mineralize olmayan doku arasında ayırımcılık edebiliyoruz. Buna ek olarak, Mr mükemmel yumuşak doku kontrast sağlar ve bu nedenle yumuşak doku ve kıkırdak içinde kırık Kallus tanımlamak mümkün olabilir.

Önceki çalışma Intramembranous kemik-kusur şifa15sırasında farelerde post mortem MRI farelerde ile eklem kırıkları14 ve in vivo MRI için umut verici sonuçlar gösterdi. Bununla birlikte, her iki çalışmaları da sınırlı uzamsal çözünürlük ve doku kontrast belirtti. Biz daha önce yüksek çözünürlüklü vivo içinde Mr16şifa fare endochondral kırık sırasında yumuşak Kallus oluşumu boyuna değerlendirmesi için fizibilite gösterdi. Burada, Kallus dokusu geliştirme boyuna endochondral kırık iyileşme süreci sırasında izlemek için uyluk osteotomi farelerde için bir MRI uyumlu eksternal fiksatör kullanarak için protokol raporu. Eksternal fiksatör yerleştirilmesi için özel montaj aygıtının tasarım standart bir pozisyon tekrarlanan taramalar sırasında sağlamıştır.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Protokol

tüm hayvan deneyleri için bakım ve kullanım laboratuvar hayvanlarının uluslararası düzenlemelere uyulması ve bölgesel düzenleyici otoriteler tarafından (No 1250, Regierungspräsidium Tübingen, Almanya) kabul edildi. Bütün fareler yapılmaktadır 14-h ateşin üzerinde kafes başına iki ila beş hayvanların gruplarındaki 10-h karanlık sirkadiyen ritim su ve yiyecek ile sağlanan ad libitum.

1. cerrahi malzeme ve farelerin ön arıtma hazırlanması

  1. Sterilize tüm cerrahi malzeme. 120-135 ° C bir ısıyla sıcaklık sterilizasyon zaman için 20-30 dk kullanın.
  2. Satınalma C57BL/6 fare veya başka bir zorlanma arasında 19-35 g vücut ağırlığı olan fareler. Uygun hayvan bakımı ve araştırmacı tarafından onaylanmış Ulusal kurallara uygun olarak deneysel iletişim kuralları izleyin ' s kurumsal hayvan bakım ve kullanım Komitesi. 7 gün iklimlendirme süre yordamına başlamadan önce en az izin.
  3. Bir gün önce ameliyat üçüncü ameliyat sonrası güne kadar içme suyu ile tüm fareler analjezi sağlamak.

2. Cerrahi prosedür ve eksternal fiksatör uygulaması

  1. bir tüp içine fare preloaded 5-%7 isoflurane ve 60 mL/dak oksijen ile yer. Postürel refleks kaybı sonra fareyi anestezi indüksiyon tüpünden kaldırmak ve % 1-3 isoflurane ve 60 mL/dak oksijen sağlayan bir solunum maskesi ile anestezi korumak. Anestezi sırasında
    1. monitör nefes desen ve hind pençe refleks. Solunum hızı yaklaşık 100 devir/dk ve arka pençe refleks yoktur olun.
      ​ Not: yaş, cinsiyet, vücut ağırlığı ve zorlanma fare üzerinde gerekli gaz miktarını bağlıdır.
  2. Ameliyat öncesi, fareyi tek doz antibiyotik subkutan enjekte (Klindamisin, 45 mg/kg). Ayrıca, fizyolojik sıvı dengesi bakımı için fareyi 500 µL serum fizyolojik bir subkutan sıvı depo ile enjekte (% 0.9 NaCl).
  3. Kornea önlemek için
  4. kurutma, göz merhem fare gözler için geçerlidir. Anestezi sırasında bir ısıtma yüzeyi 37 ° C'de fare yerleştirin ve fizyolojik korumak için cerrahi müdahale vücut sıcaklığı.
  5. Kürk sağ arka bacak kaldırma ve cerrahi alan bir alkol bazlı dezenfektan ile fırçalayın. Sağ arka pençe ile hayır alanları önlemek için steril eldiven küçük bir bölümünü kapsar. Sağ arka bacak üç kez dezenfekte. Steril örtü cerrahi alan hariç tüm fare yerleştirin.
  6. Cilt yaklaşık 1 cm boyuna bir neşter ile sağ uyluk ön tarafındaki deşmek. Açık açık m. pazı kemiği ve m. vastus kasılmasına mikro makas ve Forseps ile ayırın. Ücretsiz kemiğin anterolateral parçası erişmesine izin vermek için mikro makas ile uyluk trochanter, tendon kökenli yan kesti. Siyatik sinir korunur emin olun.
  7. Eksternal fiksatör (3 N/mm, şekil 1 A eksenel sertlik) uyluk için paralel getirin. El ile 0,45 mm matkap ile korteks ile sondaj matkap ve iğne sondaj montaj seramik yer. En distal pim, ardından en proksimal PIN ve iki iğne ile arasında başlar.
    1. Hiçbir gerginlik, sıkıştırma veya yamultma stres fiksatör montaj prosedürü sırasında aksi takdirde elde osteotomi boşluğu fiksatör gevşeme nedeniyle yeterli olmayacaktır emin olun.
  8. Steril NaCl kesim işlemi sırasında kurutma önlemek için küçük bir miktar ile kemik nemlendirmek.
  9. Oluşturmak 0.4 mm gigli tel testere kullanarak iki iç iğne arasındaki bütün kemik üzerinden 0,4 mm osteotomi.
    Not: İsteğe bağlı olarak, salınan bir mikrop saw osteotomi oluşturmak için kullanılabilir. Herhangi bir metal cips osteotomi alanda testere gelen önlemek emin olun.
  10. Osteotomi boşluğu dikkatle 2 mL kemik parçası getirdi iki kırık cortices arasında kaldırmak için steril NaCl ile flush.
  11. Uyum kasları tekrar Emilebilen dikiş ile sürekli dikiş kullanarak (Tablo malzemeleri görmek). Sonra cilt kesintiye uğramış-tekrar Emilebilen dikiş (Tablo malzemeleri görmek) kullanarak uyum. Yara ısırma önlemek için dikiş yara kafatası kısmında koymayın.
    Not: deri yapıştırıcı kullanın veya fareler genellikle yara neden kaldırmak bu yana klipleri daha fazla zarar cilde.
  12. Cerrahi alan bir dezenfektan ile temiz ve fareyi onun kafes. monitör fare yerleştirin ve tedarik yeterli ısı (örneğin kızılötesi ışık tarafından) bu kadar tam olarak uyanık. izlemek su, gıda alımı ve vücut ağırlığı için ameliyattan sonra Hayvan acı ve sıkıntı içinde olmadığından emin olun. Üçüncü ameliyat sonrası güne kadar içme suyu ile tüm fareler analjezi sağlamak.
    Not: Fareler dört hayvan gruplarında yer alan.
  13. İzlemek fare ' ameliyat sonrası 1-5 gün faaliyete s. O zaman ders sırasında fare ağırlık işletilen bacak üzerinde ayı olmalıdır. Aksi takdirde, fare daha fazla analiz dışlanması gerekir.

3. MRI yordam ve görüntü analizi

  1. önceki yordamı, tarama MRG için fareyi adım 2.1 ve 2.3 protokolüne göre uyuşturan ve solunum hızı 100 civarında tutmak devir/dak. doğru arka bacak eksternal fiksatör Ekle fare dikkatle içine bir ısmarlama montaj aygıt ( şekil 1 B, C).
    1. Bu kırık iyileşmesi ile girişime neden olabilir beri bükme veya fiksatör sıkıştırma bu adımı sırasında önlemek emin olun.
      Not: MRI taramaları gibi erken 3 gün sonra cerrahi, hayvan bakımı ve deneysel protokol bağlı olarak yapılabilir.
  2. Bir sıcaklık kontrollü beşik için giriş içine MRI aygıt üzerinde fareyi getirin. Montaj aygıtlarını katı dört elemanlı baş bobinine bağlamak.
  3. 11.7 T. çalışan özel bir yüksek-alan küçük hayvan MRI sistemi kullanarak elde MRG veri
    ​ Not: MRG veri edinme geometri uyluk kemiği, uygun vidaları ile uyumlu. Bir proton-yoğunluk yağ bastırılmış çok dilim TSE sıra (PD-TSE) uygulayarak
    1. edinme veri toplama parametrelerini kullanarak: yankı/tekrarlama saat TE 5.8 ms/TR = 2500 ms, çözünürlük Δr = 52 × 52 × 350 µm³, görüş alanı (FOV) = = 20 × 20 mm ² ve bant genişliği Δω = 150 KHz.
    2. Not: 36 dk. 22 dilimleri toplam edinme zamanı
  4. Elde edilen veri görüntü analiz yazılımı ile açın. 0.05 0.05 0.35 mm 3 x x olarak Voksel boyutu girin. Aşağıdaki gibi onların şiddette, yarı otomatik eşik dayalı kırık Kallus (kemik, kıkırdak, fibröz doku/kemik iliği) farklı dokularda kesiminde.
    1. Tıklayın " yeni etiket alanı Düzenle ",'ı tıklatın " malzeme eklemek " ve malzeme için yeniden adlandırmak " Nasıra ". Kallus alan kapaklarini kullanarak hipo-yoğun sinyal temel çevre dokular ayırmak " Kement " aracı.
    2. Tıklama " malzeme eklemek ". ' I tıklatın " malzeme eklemek " ve malzeme için yeniden adlandırmak " kıkırdak ". Kıkırdak kullanarak segment " eşik " aracı ve " sadece geçerli malzeme seçin " üzerinden " Nasıra ". ' I tıklatın " kıkırdak " ve " malzeme eklemek ". Bu adımları yineleyin " kemik " ve " kemik iliği/fibröz doku ".
  5. Görüntü analiz yazılımı kullanarak doku segmentasyon verilere göre kırık uyluk 3B rekonstrüksiyonlar oluşturmak. ' I tıklatın " yüzey oluşturmak ", uygulamak " hiç " için " yumuşatma türü " ve'ı tıklatın " yüzey görünümü ".
    Not: tr çevreleyen çok küçük, hiper-yoğun alanlarkırık cortices DS eserler kemikli yumuşak doku geçiş nedeniyle olması muhtemeldir. Bu alanlarda daha fazla analiz dışlanmaları gerekir. Kırık ortasında Hyper-yoğun alanlarda temsil kıkırdak doku şifa kırık endochondral aşamasında Nasıra. Osteotomi boşluğu endochondral ossifikasyon faz üzerinden distal kırık Kallus hipo-yoğun alanlarda ve alanları daha sonra aşamaları şifa, bütün kırık Kallus boyunca aynı yoğunluğu ile yeni kurulan kemik Kallus dokusu temsil eder. Her ne kadar bu alanlarda hipo-yoğun bir sinyal, olgun kemik (korteks) üzerinden sinyal şiddeti daha düşük olduğunu. Eşik sonra sinyal yoğunluğu kemik doku ve kırık Kallus kıkırdak doku, kemik iliği olarak kalan doku ve fibröz doku işaretleyin. Doku bölümleme değerleri: kemik doku (olgun korteks, Trabeküler kemik ve kemik Kallus dokusu dahil) 3.4-5,4, menzili içinde kemik iliği/fibröz doku 1-3.3 (olgun korteks için normalleştirilmiş sinyal yoğunluğu), Aralık içinde parçalara ve kıkırdak Kallus dokusu 5.5-6,2 aralığında.
  6. Gerekirse, MRI tarama boyuna süreci şifa kırık sırasında yineleyin. Kıkırdak Kallus gelişimi izlemek için 10, 14 ve 21 gün ameliyat sonrası fareler tarama.
    Not: Zaman Puan hayvan bakımı ve deneysel iletişim kuralına bağlı olabilir.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

İlk olarak, cerrahi işlem başarısı analizi ( Şekil 2' deki örneğe bakın) MRI taramaları tarafından onaylanabilir. Tüm dört iğne ortasında femur şaft yerleştirilmemesi gerekir. Osteotomi boşluk boyutu 0.3-0.5 arasında olmalıdır mm. Osteotomi boşluk boyutunu büyük ölçüde bu değerler değişiyorsa, fare daha fazla analiz çıkarılmalıdır.

İkinci olarak, boyuna taramaları değerlendirme sırasında aynı hayvan...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

Değişiklikler ve sorun giderme:

Kallus dokusu geliştirme boyuna endochondral kırık iyileşmesi işlemi sırasında izleme olanağı ile uyluk osteotomi fare için bir MRI uyumlu eksternal fiksatör ile kullanmak için bir iletişim kuralı tanımlamak için bu çalışmanın ana hedefi oldu. Eksternal fiksatör yerleştirilmesi için özel montaj aygıtının tasarım standart bir pozisyon tekrarlanan taramalar sırasında sağlamıştır. Yarı otomatik doku segmentasyon kırık Kallus fibröz kıkırdak ve kemi...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

Romano Matthys yazar RISystem AG Davos, İsviçre implantlar üretir ve özel aletler bu makalede kullanılan implant bir çalışandır. Diğer yazarlar hiçbir rakip mali ilgi alanlarına sahip.

Teşekkürler

Sevil Essig, Stefanie Schroth, Verena Fischer, Katja Prystaz, Yvonne Hägele ve Anne Subgang mükemmel teknik destek için teşekkür ederiz. Ayrıca bu çalışmada finansmanı için AO travma Vakfı Almanya ve Alman Araştırma Vakfı (CRC1149, INST40/499-1) teşekkür ederiz.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
Anestezi tüpüFMI, Seeheim, AlmanyaZUA-82-ANA-TUB-Fare
Anestezi makinesi FMI, Seeheim, AlmanyaZUA-82-GME-MA
Arter forseps Aesculap, Tuttlingen, AlmanyaBH104R Otoklav
Systec, Wettenberg, AlmanyaDX-150
Otoklavlama ambalajıStericlin, Feuchtwangen, Almanya2301-04/06/10/12/16
Avizo yazılımıFEI, Burlington, ABD-Sürüm8.0.1
BioSpec 117/16 manyetik rezonans görüntüleme sistemiBruker Biospin, Ettlingen, Almanya117/16
Bulldog kelepçesi Aesculap, Tuttlingen, AlmanyaBH 021R
Karbon çeliği neşter no. 11/15Aesculap, Tuttlingen, AlmanyaBA211/215
Seramik montaj pimi 0,45 mm RISystem, Davos, İsviçreHS691490
Klindamisin (300 mg / 2ml)Ratiopharm, Ulm,Almanya-Pansuman
forseps 115 mm Aesculap, Tuttlingen, AlmanyaBD210R
Pansuman forseps 130 mm Aesculap, Tuttlingen, AlmanyaBD025R
Matkap ucu kaplamalı 0,45 mm RISystem, Davos, İsviçreHS820420
Durogrip iğne tutucu 125 mm Aesculap, Tuttlingen, AlmanyaBM024R
Folyo Örtüsü Hartmann, Heidenheim, Almanya2513026
FrekadermFresenius, Bad Homburg, Almanya4928211
Gigli testere 0.44 mm RISystem, Davos, İsviçreRIS.590.110.25
El matkabıRISystem, Davos, İsviçreRIS.390.130-01
Isıtma plakası FMI, Seeheim, AlmanyaIOW-3704
Hygonorm eldivenleri Hygi, Telgte, Almanya2706
IsofluraneAbbot, Londra, İngiltereForene
Mikro forseps 155 mm Aesculap, Tuttlingen, AlmanyaBD343R
Mikro makas 120 mm Aesculap, Tuttlingen, AlmanyaFD013R
Mouse FixEx L 0,7 mm RISystem, Davos, İsviçreRIS.611.300-10
Matkaplar için iğne kutusu Aesculap, Tuttlingen, AlmanyaBL911R
İğne tutucuAesculap, Tuttlingen, AlmanyaBB078R
OcteniseptSchü lke, Norderstedt, Almanya121403
Osirix yazılımıPixmeo SARL, Bernex,İsviçre-Sürüm4.0
Oksijen, tıbbi sınıfMTI, Ulm,Almanya-Resolon
5/0Resorba, Nü rnberg, Almanya88143
Saline 0.9%Braun, Melsungen, Almanya3570350
Neşter sapı 125 mmAesculap, Tuttlingen, AlmanyaBB073R
Makas 150 mm Aesculap, Tuttlingen, AlmanyaBC006R
Otoklav paketleme için sızdırmazlık maddesi Hawo GmbH, Obrigheim, AlmanyaHM500
Sterican 27 G Braun, Melsungen, Almanya4657705
Steril cerrahi bıçaklar no. 11/15 Aesculap, Tuttlingen, AlmanyaBB511/515
Cerrahi eldivenler Hartmann, Heidenheim, AlmanyaPeha-mikron 9425712
Cerrahi ışık Maquet SA, Ardon, FransaBlue line 80
Şırınga 5 ml Braun, Melsungen, AlmanyaInjekt 4606051V
Doku forseps 80 mm Aesculap, Tuttlingen, AlmanyaOC091R
Tramadol 25 mg/lGrü nenthal, Aachen, Almanya100mg/ml
Vasofix Güvenlik Braun, Melsungen, Almanya4268113S-01
Vicryl 5-0 Ethicon, Norderstedt, AlmanyaV30371
Visdisic göz merhemi Bausch & Lomb, Berlin, Almanya3099559

Kaynaklar

  1. Claes, L., Recknagel, S., Ignatius, A. Fracture healing under healthy and inflammatory conditions. Nat Rev Rheumatol. 8 (3), 133-143 (2012).
  2. Einhorn, T. A. The cell and molecular biology of fracture healing. Clin Orthop Relat Res. (355), Suppl S7-S21 (1998).
  3. Einhorn, T. A., Gerstenfeld, L. C. Fracture healing: mechanisms and interventions. Nat Rev Rheumatol. 11 (1), 45-54 (2015).
  4. Augat, P., et al. Local tissue properties in bone healing: influence of size and stability of the osteotomy gap. J Orthop Res. 16 (4), 475-481 (1998).
  5. Claes, L. E., Heigele, C. A. Magnitudes of local stress and strain along bony surfaces predict the course and type of fracture healing. J Biomech. 32 (3), 255-266 (1999).
  6. Claes, L. E., et al. Effects of mechanical factors on the fracture healing process. Clin Orthop Relat Res. (355), Suppl 132-147 (1998).
  7. Hu, D. P., et al. Cartilage to bone transformation during fracture healing is coordinated by the invading vasculature and induction of the core pluripotency genes. Development. 144 (2), 221-234 (2017).
  8. Hankenson, K. D., Zimmerman, G., Marcucio, R. Biological perspectives of delayed fracture healing. Injury. 45, Suppl 2 8-15 (2014).
  9. Meyer, R. A., et al. Age and ovariectomy impair both the normalization of mechanical properties and the accretion of mineral by the fracture callus in rats. J Orthop Res. 19 (3), 428-435 (2001).
  10. Nikolaou, V. S., Efstathopoulos, N., Kontakis, G., Kanakaris, N. K., Giannoudis, P. V. The influence of osteoporosis in femoral fracture healing time. Injury. 40 (6), 663-668 (2009).
  11. Haffner-Luntzer, M., Kovtun, A., Rapp, A. E., Ignatius, A. Mouse Models in Bone Fracture Healing Research. Current Molecular Biology Reports. 2 (2), 101-111 (2016).
  12. Garcia, P., et al. Rodent animal models of delayed bone healing and non-union formation: a comprehensive review. Eur Cell Mater. 26, 1-14 (2013).
  13. Histing, T., et al. Small animal bone healing models: standards, tips, and pitfalls results of a consensus meeting. Bone. 49 (4), 591-599 (2011).
  14. Zachos, T. A., Bertone, A. L., Wassenaar, P. A., Weisbrode, S. E. Rodent models for the study of articular fracture healing. J Invest Surg. 20 (2), 87-95 (2007).
  15. Taha, M. A., et al. Assessment of the efficacy of MRI for detection of changes in bone morphology in a mouse model of bone injury. J Magn Reson Imaging. 38 (1), 231-237 (2013).
  16. Haffner-Luntzer, M., et al. Evaluation of high-resolution In Vivo MRI for longitudinal analysis of endochondral fracture healing in mice. PLoS One. 12 (3), 0174283(2017).
  17. Beckmann, N., Falk, R., Zurbrugg, S., Dawson, J., Engelhardt, P. Macrophage infiltration into the rat knee detected by MRI in a model of antigen-induced arthritis. Magn Reson Med. 49 (6), 1047-1055 (2003).
  18. Al Faraj,, Shaik A, S. ultana, Pureza, A., A, M., Alnafea, M., Halwani, R. Preferential macrophage recruitment and polarization in LPS-induced animal model for COPD: noninvasive tracking using MRI. PLoS One. 9 (3), 90829(2014).
  19. Rolle, A. M., et al. ImmunoPET/MR imaging allows specific detection of Aspergillus fumigatus lung infection in vivo. Proc Natl Acad Sci U S A. 113 (8), 1026-1033 (2016).
  20. Niemeyer, M., et al. Non-invasive tracking of human haemopoietic CD34(+) stem cells in vivo in immunodeficient mice by using magnetic resonance imaging. Eur Radiol. 20 (9), 2184-2193 (2010).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya şekillerini yeniden kullanmak için izin iste

İzin iste

Etiketler

Kemik yile mesi FareleriFare Femur Fiksat rBoylamsal K r k AnaliziEksternal Fiksat r UygulamasMRI Doku SegmentasyonuK k rdak Kemik DokusuProton Yo unluklu Ya Bask lamalCerrahi Osteotomi Tekni i

İlgili makaleler