Yöntem makalesi

Geçici ifade, yabancı genlerin Protein fonksiyonel tahlil için böcek hücrelerindeki (sf9)

DOI:

10.3791/56693

⸱

22 Şubat 2018

 ,  ,  ,  , 
1Department of Biotechnology and Animal Science, National Ilan University, 2Department of Agricultural Biology, College of Agriculture Life Sciences, Chonbuk National University, 3Department of Entomology, National Taiwan University

Bu makalede

Özet

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Yabancı proteinler ifade veya anti-apoptotik etkinliğini potansiyel yabancı proteinler ve onların kesilmiş amino değerlendirmek için kullanılabilir bir ısı şok kaynaklı protein ifade sistemi (pDHsp/V5-O'nun/sf9 hücre), bu iletişim kuralını açıklar asitler böcek hücrelerinde.

Özet

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Geçici gen ifade sistem baculovirus vitro hücre kültür sistemi içinde protein fonksiyonel analiz gerçekleştirmek için en önemli teknolojileri biridir. Bu sistem geçici ifade plazmid baculoviral düzenleyicinin kontrolü altında ifade yabancı genleri için geliştirilmiştir. Ayrıca, bu sistemin fonksiyonel testin kendisi baculovirus veya yabancı proteinler için uygulanabilir. En yaygın ve ticari olarak kullanılabilir geçici gen ifade sistem Orgyia pseudotsugata multicapsid nucleopolyhedrovirus (OpMNPV) erken hemen gen (IE) organizatörü göre geliştirilmiştir. Ancak, düşük ifade düzey böcek hücreleri yabancı genlerin gözlendi. Bu nedenle, bir geçici gen ifade sistemi protein ifade artırmak için inşa edilmiştir. Bu sistemde, rekombinant plazmid Drosophila ısı şok 70 (Dhsp70) düzenleyicinin kontrolü altında hedef sıra içerecek şekilde inşa edilmiş. Bu iletişim kuralı bu ısı şok tabanlı pDHsp/V5-O'nun (V5 epitop 6 histidin ile) uygulanması sunar /Spodoptera frugiperda hücre (sf9 hücre) sistemi; Bu sistem sadece gen ekspresyonu böcek hücrelerinde aday proteinlerin anti-apoptotik etkinliğini değerlendirmek için de kullanılabilir. Ayrıca, bu sistem de bir rekombinant plazmid ile transfected ya da iki potansiyel olarak işlevsel antagonistik rekombinant plazmid böcek hücrelerinde ortak transfected. Protokol bu sistemin verimliliği gösterir ve bu teknik pratik olgusu sağlar.

Giriş

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

İki protein ifade sistemleri yaygın olarak kullanılan proteinler üretmek için: prokaryotlar protein ifade sistemleri (Escherichia coli gen ifade sistemi) ve ökaryot protein ifade sistemleri. Bir popüler ökaryot protein ifade baculovirus ifade vektör sistemi (BEVS)1sistemidir. Baculoviruses ilk dünya çapında biyolojik mücadele etmeni tarım kullanılmıştır ve orman zararlıları. Son birkaç on yıl içinde baculoviruses için protein ifade vektörel çizimler de Biyoteknolojik araçları olarak geliştirilmiştir. Baculoviruses genleri çift iplikçikli dairesel DNA ve saran nucleocapsids2oluşur. , Yetmiş sekiz baculovirus bugüne kadar fazla yalıtır sıralı3olmuştur. Baculoviral gen ifadeleri ana böcek hücrelerinde zamansal çağlayan dayanarak, gen transkripsiyonu gecikme-erken, geç ve çok geç genler4erken acil-dahil olmak üzere dört zamansal cascades sınıflandırılır olabilir.

Böylece çok geç gen rehberleri (Yani, polihedron veya p10 organizatörü) rekombinant baculovirus homolog rekombinasyon tarafından oluşturulan iken hedef genlerin sürücü için kullanılan BEVSs belirlenmiş. İfade içinde böcek hücreleri rekombinant baculovirus tarafından yabancı proteinlerin translasyonel modifikasyonlar (glikoprotein üretimi için uygun) memeli proteinlerin benzer. Böylece, baculovirus yaygın olarak kullanılan5,6,7oldu. Ancak, bir sınırlama böcek hücreleri7farklı N-glikozilasyon yolları varlığıdır.

Bu nedenle, yeni bir baculovirus ifade sistem geçici gen ifade sistem geliştirilmiştir. Bu sistem baculoviral erken hemen rehberleri (yani-1 organizatörü) böcek hücrelerinde sürücü altında yabancı genlerin ifade eder. Bu sistemi kullanarak, hedef protein hemen yani-1 düzenleyicinin kontrolü altında daha iyi N bağlı oligosakkaritler7' kaynaklanan N-glikozilasyon yolu böcek hücrelerinde değiştirirken ifade edilebilir. Ayrıca, baculoviral erken hemen genler konak hücre RNA polimeraz II tarafından transkripsiyonu ve viral herhangi bir faktör harekete geçirmek4için gerek yoktur. Bu nedenle, yabancı proteinler kısa bir süre içinde böcek hücrelerinde ifade edilebilir. Bugüne kadar geçici gen ifade sistem baculovirus vitro hücre kültür sistemi içinde protein işlevsel testleri gerçekleştirmek için kullanılan en önemli teknolojileri biridir. Sistem işlevi ya baculovirus ya da yabancı proteinler, analiz etmek için uygulanır. Piyasada bulunan geçici gen ifade sistemlerinden birini Orgyia pseudotsugata multicapsid nucleopolyhedrovirus (OpMNPV) (OpIE2 ve OpIE1 rehberleri) erken hemen gen (IE) Organizatör üzerinde temel alır.

Ancak, OpIE organizatörü tabanlı geçici gen ifade sistemi kullanılan8,9,10yaşındayken alt ifade düzeyinde böcek hücreleri yabancı genlerin hala bir sorun oldu. Böylece, başka bir geçici gen ifade sistem Drosophila ısı şok protein 70 (hsp70) gen8,9organizatörü dayalı inşa edilmiştir. Hsp70 organizatörü baculoviral IE organizatörü böcek hücreleri10şokta ısı çarpması çok daha etkili biçimde çalışır. Bu sistemde, Drosophila ısı şok 70 (Dhsp70) organizatörü sürücü altında hedef genlerin ifade edildi. Yabancı genlerin kolayca PCR tabanlı klonlama yöntemlerle geçici gen ifade plazmid kopyalanmış. Ayrıca, gen ekspresyonu için zamanlama kontrolünü ısı şok indüksiyon tarafından gerçekleştirilebilir.

Bu rapordaki yaklaşımı izleyin ve baculoviral gen (apoptosis 3 inhibitörü, Lymantria xylina MNPV dan iap3 ) üç farklı truncations ısı şok tabanlı geçici protein ifade sistemi kullanarak hızlı ve daha fazla ifade bu proteinler anti-apoptotik etkinlik analizi üzerinde uygulamak. Bu sistem de yabancı proteinler hızlı bir şekilde ifade edebilir ya da daha fazla protein anti-apoptotik faaliyet sf9 hücrelerdeki değerlendirilmesi de diğer protein etkinlik deneyleri için uygulanacak potansiyele sahip iken uygulanması.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Protokol

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. hazırlıkları

  1. Böcek hücre kültürü
    1. Hücre kültür ortamının 50 mL hazırlayın. Bunun için antibiyotik 500 µL ekleyin (Amfoterisin B 0,25 µg/mL, penisilin = 100 birim/mL, streptomisin = 100 µg/mL =) ve ısı inaktive fetal sığır serum serum serbest hücre kültür orta (olmadan FBS veya antibiyotik) 5 mL.
      Not: Fetal sığır serum için kullanmadan önce bir su banyosunda 30 dk 65 ° C'de ısı.
    2. Spodoptera frugiperda korumak (Lepidoptera: Noctuidae), sf9 böcek hücreleri. CA. 25 cm2 hücre kültür şişesi hücrelerinden % 80'i şişeye sallayarak bağlantısını kesin ve ışık mikroskobu altında kontrol edin. Sonra hücre süspansiyon % 50'si yeni 25 cm2 hücre kültür şişesi aktarmak ve hücreleri 15 dakika oda sıcaklığında takmak izin verir. Orta ile 5 mL taze hücre kültür orta yerine ve 28 ° C'de bir kuluçka büyümek Geçiş hücreleri hücre büyümesini bağlı olarak 2-3 günde.
  2. Plazmid hazırlanması için hücre transfection
    1. Hedef DNA parçalarının (Örneğin, Lymantria xylina MNPV (LyxyMNPV) iap3 gen ve onun silme yapıları) PCR tabanlı klonlama yöntemi11tarafından pDHsp/V5-onun yerleştirin. Kontrol dönüştürülmüş kolonilerin koloni tarafından büyüme PCR PCR Master Mix (2 X) ve pDhsp-F2/Op-IE2R astar kullanarak ayarlayın. Plazmid dizileri ticari sıralama hizmeti tarafından onaylayın.
      Not: Tablo 1 PCR ve karşılık gelen yapıları için kullanılan astar listeler.
    2. 200 mL LB orta içeren olarak anılan plazmid yapılar (Adım 1.2) içeren kültür tek sıralı bakteri kolonileri, antibiyotik (50 µg/mL), sırasıyla seçili.
    3. Plazmid MIDI plazmid seti üreticisinin yönergeleri12göre kullanarak kültürlü E. coli ayıklayın.
  3. Kaplama orta 1,5 mL hücre kültür ortamının ve 8,5 mL serum serbest hücre kültür ortamının karıştırarak hazırlayın.
  4. Hücre kültür orta 10 mL (1 mg/mL) ActD stokunun 1,5 µL ekleyerek Actinomycin D (ActD) hücre kültür ortamı hazırlamak (son konsantrasyonu 150 ng/mL =). 4 ° C'de mağaza

2. protein geçici ifade

  1. Tohum hücre
    1. Kültür şişesi sallayarak sf9 hücre hasat, devirmek ve hücre süspansiyon 50 mL tüp için düşmek ve 10 µL P10 pipet tarafından hemasitometre için transfer. Hafif bir mikroskop altında hücre saymak.
    2. Her şey bir 24-şey plaka 15 dakika oda sıcaklığında5 sf9 hücrelere plaka 3 × 10. Orta orta kaplama 0.5 mL ile değiştirin.
  2. Plazmid transfection
    1. Seyreltik hücre transfection reaktif: 8 seyreltik µL hücre transfection reaktif 100 µL serum serbest hücre kültür orta ve 1 için vortexing tarafından mix s.
    2. Plazmid DNA (pDHsp70-Ac-P35/V5-O'nun veya pDHsp70-Ly-IAP3/V5-O'nun veya pDHsp70-Ly-IAP3-BIR/V5-O'nun veya pDHsp70-Ly-IAP3-yüzük/V5-O'nun) 100 µL serum serbest hücre kültür orta ve karışımı içine 2 µg vortexing 1 için eklemek s (Şekil 2).
    3. Seyreltilmiş plazmid DNA ve seyreltilmiş hücre transfection reaktifi (210 µL) birleştirmek ve oda sıcaklığında 30 dk 1 s. Incubate için vortexing tarafından karıştırın.
    4. DNA transfection reaktif karışımdan dropwise hücreleri üzerine 210 µL P1000 pipet tarafından ekleyin. 28 ° c 5 h için kuluçkaya.
    5. Kaplama Orta hücre kültür P1000 pipet kullanarak Orta 0.5 mL ile değiştirin. Bant ile 24-şey plaka mühür ve 16 h için 28 ° C'de hücreler kuluçkaya.
  3. Isı şok transfected hücreleri: 42 ° C su banyosunda (su yüzeyinde yüzen) plaka koymak. 30 dk için ısı ve 24-şey plaka 28 ° C kuluçka dönmek.
  4. Protein ifade tespiti
    1. 1 h veya 5 h ısı şok sonra 0.5 mL 1 x PBS arabelleği hücrelerle kısaca üç kez yıkayın.
      Not: 9 mL steril GKD2için O 1 mL 10 x PBS arabelleği ekleyerek 10 x 1 x için PBS arabellek PBS arabellek sulandırmak
    2. 1 x SDS yükleme boya 40 µL hücrelerle yukarı ve aşağı pipetting tarafından parçalayıcı.
      Not: 4 x SDS yükleme boya 30 µL PBS arabellek x 1 ve 4 SDS örnek arabellek x 10 µL karıştırarak oranında seyreltin.
    3. Protein örnekleri için bir ısı blok 10 min 98 ° C'de ısı, 1 dk. için spin aşağı ve Western blot tahlil için buz koymak.
    4. Western blot tahlil
      Western blot tahlil eren ve Lujan13yordamı. SDS-sayfa14jelleri çalıştırın: Coomassie mavi (protein örnekleri her içinde yüklü miktarda de tutara eşit olduğunu kontrol etmek için yükleme denetimi) Boyama tabi bir jel ve diğer Batı tabi blot yöntemi, eren ve Lujan13 göre .
    5. V5 öğesini füzyon protein tavşan anti-V5 antikor (5 mg/mL) (1: 5000 seyreltme konsantrasyonu 1 µg/mL çalışmaya TBST arabelleği) ve keçi Anti-tavşan IgG-horseradish peroksidaz (HRP) eşlenik (0,8 mg/mL) (1:10000 seyreltme çalışma TBST arabelleğe ile tespit konsantrasyon 0,08 µg/mL).
      Not: Polyacrylamide %17.5 yüzdesini ayarlamak zaman olmak protein molekül ağırlığı < 17 kDa.

3. anti-apoptotik etkinliği tahlil

  1. Gene indüklenen hücre apoptosis: 2.3 için 2.1 üzerinden yukarıda belirtilen yordamı yineleyin. Transfect pDHsp/D-rpr/bayrak-O'nun plazmid DNA (içeren apoptosis uyarıcı gen) 1 µg 1 µg plazmid DNA'sı ile birlikte [pDHsp70/V5-O'nun vektör (negatif kontrol), pDHsp70-Ac-P35/V5-O'nun (pozitif kontrolü), pDHsp70-Ly-IAP3/V5-O'nun, pDHsp70-Ly-IAP3-BIR/V5-O'nun veya pDHsp70-Ly-IAP3-yüzük/V5-O'nun, sırasıyla.]. 5 h sonrası ısı şok tedavisi hücre canlılığı tahlil (Şekil 2) kuralları.
  2. Kimyasal kaynaklı hücre apoptosis: 2.3 için 2.1 üzerinden yukarıda belirtilen yordamı yineleyin. 2.1.2. adımda 1 x 106 sf9 hücreleri bir 6-şey plaka her kuyuya plaka. Plazmid DNA 4 µg transfect [pDHsp70/V5-O'nun vektör (negatif kontrol), pDHsp70-Ac-P35/V5-O'nun (pozitif kontrolü), pDHsp70-Ly-IAP3/V5-O'nun, pDHsp70-Ly-IAP3-BIR/V5-O'nun veya pDHsp70-Ly-IAP3-yüzük/V5-O'nun, sırasıyla.]. 5 h sonrası ısı şok, ActD hücre kültür orta 16 h için 2mL sf9 hücrelerle tedavi ve hücre canlılığı tahlil (Şekil 2) kuralları.
    Not: 6-şey plaka bir şey kapsayacak şekilde en az 1 mL birimdir.
  3. 3.1 ve 3.2 triplicates dahil olmak üzere yukarıda anti-apoptotik etkinliği tahlil deneyler, gerçekleştirin.

4. hücre canlılığı tahlil

  1. İşlem görmüş hücreleri 3 kez 1 mL 1 x PBS arabelleği için 1 dk ekleyerek yıkayın. Hücreleri %0,04 trypan mavi içeren 1 mL 1 x PBS arabellek pipetting tarafından resuspend ve 3 dakika oda sıcaklığında leke. Hücre süspansiyon 1.5 mL microtube aktarın.
    Not: %0,4 trypan mavi çözüm 9 mL 1 x PBS tamponu ve 1 mL %0,4 trypan mavi çözeltisi karıştırılarak sulandırmak.
  2. Hafif bir mikroskop altında uygun sağlam hücreleri saymak ve 10 µL trypan mavi lekeli hücre süspansiyon hemasitometre P10 pipet ile transfer.
  3. İstatistiksel analiz
    1. Kaydedilen verileri hesaplamak ve mevcut tüm saymak anlamına gelir ± SD olarak.
    2. Microsoft Excel ile öğrencinin iki kuyruklu t-testi ile kullanarak veri analiz. İstatistiksel olarak anlamlı veri Ptanımlamak-değeri < 0,05.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Tam uzunlukta ve diğer iki truncations (BIR ve yüzük etki alanları), Ly-IAP3 LyxyMNPV dan sf9 hücrelerinde ısı şok tabanlı pDHsp/V5-O'nun üzerinde dayalı overexpressed /Spodoptera frugiperda hücre (sf9 hücre) sistem. PDHsp/V5-O'nun hangi hücresel transkripsiyon faktörleri ve çeviri sistemi (şekil 1)8 kullanarak 42 ° C durumu bir ısıda aşağı akım gen ekspresyonu sürücüler bir Drosophila ısı şok protein organizatö...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Isı şok tabanlı pDHsp/V5-O'nun/sf9 hücre sistemi kavramı ilk Clem ve ark. 19948tarafından tanımlanmıştır. Drosophila hsp70 baculoviral gen Düzenleyici (IE1) ile karşılaştırması gösterdi o hsp70 daha yüksek bir verim sivrisinek hücreleri10dakika sonra vardı. Ayrıca, ısı şok indüksiyon nedeniyle protein ifade zamanlama tam olarak ısı şok tedavi sonrası kontrol. Bu sistem o zaman protein için karides ve nucleopolyhedrovirus (NBD) işlevsel te...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Yazarlar onlar rakip hiçbir mali çıkarları var bildirin.

Teşekkürler

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Dr. Jian-Horng Leu, Enstitüsü deniz biyoloji, Ulusal Tayvan Üniversitesi okyanus 3 plazmid yapılar sağlamak için teşekkür ederiz. Bu araştırma tarafından Grant 106-2311-B-197-001 - Bakanlığı bilim ve Teknoloji (en) destek verdi.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
Böcek hücre kültürü içinAntibiyotik-Antimikotik, 100XGibco15240-062
Sertifikalı Fetal Sığır SerumuBioind04-001-1A
Sf-900 II SFMThermo Fisher10902096serumsuz hücre kültürü ortamı
Sf9 hücreleriATCCCRL-1711
25cm2 hücre kültürü şişesiNunc, Thermo Fisher156340
Ters çevrilmiş ışık mikroskobuWHITEDWHITED WI-400
RBC HIT Yetkili HücreBiyomanıRH618-J80Escherichia coli (DH5&alfa;)
L.B. Et Suyu (Değirmenci)BiomanLBL407
Agar, Bakteriyolojik Sınıf BiomanAGR001
Zeosinİnvitrojenant-zn-1seçimi antibiyotik
PCR Master Mix (2X)ThermoFisherK0171
Geneaid Midi Plazmid Kiti (Endotoksin İçermez)GeneaidPIE25
Actinomycin DSIGMAA9415
Corning 50 mL santrifüj tüpleriSIGMACLS430829-500EA50 mL tüpler
HemositometreGizmo Tedarik CoB-CNT-SLDE-V2
24 Kuyulu Çok ÇanaklıNunc, Thermo Fisher14247524 oyuklu plaka
Cellfectin II ReaktifiThermo Fisher10362100hücresi transfektin reaktifi
PBS-Fosfat Tamponlu Tuzlu (10X) pH 7.4Thermo FisherAM9624
4 kez; SDS Yükleme BoyasıBiomanP1001
Immobilon-P (PVDF Lekeleme Membranları)Merck MiliporeIPVH00010PVDF membranları
Mini Trans-Blot Hücre sistemiBIO-RED1703930Kurutma cihazı
Ponceau S çözümüSIGMA6226-79-5
Anti-V5SIGMAV8137tavşan anti-V5 antikoru
Keçi anti-tavşan IgG-yaban turpu peroksidaz (HRP)Jackson111-035-003
Tween 20Merck817072
6 Kuyulu Çok TabaklıNunc, Thermo Fisher145380
%0,4 tripan mavisi çözeltiAMRESCOK940-100ML
P10 pipetleyiciGilsonF144802
P1000 pipetleyiciGilson
BantSymbioPPS724 kuyulu bant (19 mm ve kez; 36 M)
F123602

Kaynaklar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Miller, L. K. Baculoviruses as gene expression vectors. Annual Reviews in Microbiology. 42 (1), 177-199 (1988).
  2. Theilmann, D. A., et al. Family Baculoviridae. Virus Taxonomy: Eighth Report of the International Committee on Taxonomy of Viruses. Fauquet, C. M., Mayo, M. A., Maniloff, J., Desselberger, U., Ball, L. A. , Springer Press. New York. 1129-1185 (2005).
  3. Nai, Y. S., Huang, Y. F., Chen, T. H., Chiu, K. P., Wang, C. H. Determination of nucleopolyhedrovirus' taxonomic position. Biological Control of Pest and Vector Insects. Shields, V. D. C. , InTech Press. Rijeka. 169-200 (2017).
  4. Friesen, P. D. Regulation of baculovirus early gene expression. The Baculoviruses. Miller, L. K. , Plenum Press. New York. 141-170 (1997).
  5. Smith, G. E., Summers, M., Fraser, M. Production of human beta interferon in insect cells infected with a baculovirus expression vector. Mol. Cell. Biol. 3 (12), 2156-2165 (1983).
  6. Luckow, V. A., Summers, M. D. Trends in the development of baculovirus expression vectors. Nature Biotechnol. 6 (1), 47-55 (1988).
  7. Jarvis, D. L., Finn, E. E. Modifying the insect cell N-glycosylation pathway with immediate early baculovirus expression vectors. Nature Biotechnol. 14 (1996), 1288-1292 (1996).
  8. Clem, R. J., Miller, L. K. Control of programmed cell death by the baculovirus genes p35 and iap. Mol. Cell. Biol. 14, 5212-5222 (1994).
  9. Leu, J. H., Kuo, Y. C., Kou, G. H., Lo, C. F. Molecular cloning and characterization of an inhibitor of apoptosis protein (IAP) from the tiger shrimp, Penaeus monodon. Dev. Comp. Immunol. 32, 121-133 (2008).
  10. Zhao, Y. G., Eggleston, P. E. Comparative analysis of promoters for transient gene expression in cultured mosquito cells. Insect Mol. Biol. 8 (1), 31-38 (1999).
  11. Nai, Y. S., Yang, Y. T., Kim, J. S., Wu, C. Y., Chen, Y. W., Wang, C. H. Baculoviral IAP2 and IAP3 encoded by Lymantria xylina multiple nucleopolyhedrovirus (LyxyMNPV) suppress insect cell apoptosis in a transient expression assay. Appl. Entomol. Zool. 51, 305-316 (2016).
  12. Geneaid™. Geneaid™ Midi Plasmid Kit & Geneaid™ Midi Plasmid Kit (Endotoxin Free) Instruction Manual Ver. 05.11.17. , Available from: http://www.geneaid.com/sites/default/files/PI13_0.pdf (2017).
  13. Eslami, A., Lujan, J. Western Blotting: Sample Preparation to Detection. J. Vis. Exp. (44), e2359(2010).
  14. JoVE Science Education Database. Basic Methods in Cellular and Molecular Biology. Separating Protein with SDS-PAGE. , Cambridge, MA. Available from: https://www.jove.com/science-education/5058/separating-protein-with-sds-page (2017).
  15. Vucic, D., Kaiser, W. J., Harvey, A. J., Miller, L. K. Inhibition of reaper-induced apoptosis by interaction with inhibitor of apoptosis proteins (IAPs). Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 94, 10183-10188 (1997).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya şekillerini yeniden kullanmak için izin iste

İzin iste

Etiketler

Ge ici Gen EkspresyonuIs oku nd ksiyonuWestern Blot AnaliziH cre Canl l DeneyiApoptoz nd kleyici GenKo transfeksiyona Konuk PlazmidlerAnti apoptotik AktiviteBakulovir s Ekspresyon Sistemi

İlgili makaleler