Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliğiniz gereklidir. Giriş yapın veya ücretsiz denemenizi bugün başlatın.

Yöntem makalesi

Oleik asit enjeksiyon domuzlarda Akut Respiratuar Distress Sendromu için bir Model olarak

9.2K görüntülenme

⸱

DOI:

10.3791/57783

⸱

26 Ekim 2018

 ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Anesthesiology, University Medical Center of the Johannes Gutenberg-University

Bu makalede

Özet

Bu makalede, biz domuz akut akciğer yaralanmalara oleik asit Merkezi venöz enjeksiyonu ile ikna etmek için bir iletişim kuralı mevcut. Bu akut respiratuar distress Sendromu (ARDS) eğitim için kurulan bir hayvan modelidir.

Özet

Akut Respiratuar distress sendromu % 2.2 ve yoğun bakım hastalarının % 19 arasında değişen bir görülme sıklığı ile ilgili yoğun bakım hastalıktır. Son on yıl boyunca tedavi gelişmeler rağmen ARDS hasta hala 35 ve % 40 arasında ölüm oranları zarar. Hastalarda ARDS sonucunu iyileştirmek daha fazla araştırma için bir ihtiyaç var. Akut Respiratuar distress Sendromu karmaşık pathomechanism tek hayvan modeli taklit edebilirler ama farklı bölümlerini çalışmaya çeşitli modelleri mevcut bir sorundur. Oleik asit enjeksiyonu (OAI)-indüklenen akciğer yaralanma havalandırma stratejileri, eğitim için köklü bir model olduğunu akciğer mekaniği ve havalandırma/perfüzyon dağıtım hayvanlarda. OAI ağır engelli gaz değişimi, akciğer mekanik bozulma ve alveolo-kılcal bariyer bozulma yol açar. Bu modelin olumsuz yanı, bu modeli ve özellikle küçük hayvan modellerinde zorlu Merkezi venöz erişim için gerekliliğini tartışmalı mekanik ilgisi var. Özet, OAI kaynaklı akciğer hasarı küçük ve büyük hayvanlarda tekrarlanabilir sonuçlar yol açar ve dolayısıyla ARDS çalışmak için uygun bir model temsil eder. Yine de, daha fazla araştırma ARDS tüm parçaları taklit eder ve bugün mevcut farklı modeller ile ilgili sorunlar yoksun bir model bulmak gereklidir.

Giriş

Akut Respiratuar distress Sendromu (ARDS) ilk açıklamasını beri yaklaşık 50 yıl önce kapsamlı bir şekilde incelenmiştir bir yoğun bakım sendromu olan1. Bu vücut araştırma daha iyi Patofizyoloji anlamak için yol açtı ve geliştirilmiş hasta bakımı ve sonucu2,3ile sonuçlanan ARDS gelişimi neden olur. Yine de, ARDS acı hastalarda mortalite yaklaşık 35-%40 ile çok yüksek kalır4,5,6. ICU kabul yaklaşık yüzde 10'u ve mekanik havalandırma gerektiren ICU hastaların % 23 ARDS nedeniyle gerçeği alaka düzeyine göre daha fazla araştırma bu alandaki altını çiziyor.

Hayvan modelleri etyopatogenezi değişiklikleri ve çeşitli hastalıklar için olası tedavi yaklaşımları incelemek için araştırmalarda yaygın olarak kullanılmaktadır. ARDS karmaşıklığı nedeniyle, bu hastalığı taklit etmek için tek hayvan modeli, ancak farklı modelleri farklı yönleri7temsil yoktur. Bir iyi kurulmuş modelidir oleik asit enjeksiyonu (OAI)-akciğer yaralanmalara bağlı. Bu model hayvanlar, fareler8, fareler9, domuz10, köpekler11ve koyun12de dahil olmak üzere geniş bir yelpazede kullanılmaktadır. Oleik asit bir doymamış yağ asidi ve en yaygın yağ asidi sağlıklı insanlar13vücuttaki var. İnsan plazma, hücre zarlarında ve yağ dokusu13' te mevcuttur. Fizyolojik olarak, kan dolaşımına13-yapılır iken albümin için bağlıdır. Yağ asitleri kanda yüksek düzeyde farklı patolojiler ve bazı hastalıklar ilişkilendirir serum yağ asit düzeyleri13ile şiddeti ilişkilidir. Oleik asit ARDS-modeli bir girişim lipid emboli tarafından travma hastaları14' te görüldüğü gibi neden ARDS çoğaltmak için geliştirilmiştir. Oleik asit akciğerler13 ve Tetikleyiciler nötrofil birikimi15, inflamatuar arabulucu üretim16ve hücre ölümü13doğuştan gelen bağışıklık reseptörleri üzerinde doğrudan etkileri vardır. Fizyolojik açıdan, oleik asit hızla ilerliyor hipoksemi, pulmoner arter basıncı ve extravascular akciğer su birikimi artışa neden olmaktadır. Ayrıca, arteryel hipotansiyon ve miyokardiyal depresyon7neden olmaktadır. Bu model dezavantajları Merkezi venöz erişim için gerekliliğini, şüpheli mekanik alaka ve hızlı hipoksemi ve kardiyak depresyon neden potansiyel ölümcül ilerleme vardır. Küçük ve büyük hayvanlarda, ARDS, ARDS akut başlangıçlı enjeksiyon oleik asit, sonra patofizyolojik mekanizmaların geçerli tekrarlanabilirlik kullanılabilirlik diğer modellerle karşılaştırıldığında bu modelin avantajı olduğunu ve çalışma imkanı ARDS izole sistemik inflamasyon tarihlerde olmadan birçok diğer sepsis7modelleri. Aşağıdaki makalede, domuzlarda oleik asit kaynaklı akciğer hasarı detaylı bir tanımını vermek ve akciğer fonksiyonunda tavizler kararlılığını karakterize etmek için temsilcisi veri sağlamak. OAI kaynaklı akciğer yaralanma için farklı protokoller vardır. Protokol burada güvenilir bir şekilde akut akciğer hasarı ikna etmek için sağlanan.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Protokol

Burada açıklanan tüm hayvan deneyleri (Landesuntersuchungsamt Rheinland-Pfalz, Koblenz, Almanya; onay numarası G14-1-077) kurumsal ve devlet hayvan bakımı Komitesi tarafından onaylanmış ve kılavuzlarınıza uygun olarak yapılmıştır Avrupa ve Alman laboratuvar hayvan Bilimleri Derneği. Deneyler imzalat erkek domuzlar 27-29 kg ağırlığında 2-3 ay çağın (sus scrofa domestica) yapılmıştır.

1. anestezi, entübasyon ve mekanik havalandırma

  1. Anestezi aspirasyon riskini azaltır, ancak su stresi azaltmak için ücretsiz erişmesine izin vermek için önce 6 h için gıda kesintisi.
  2. Hayvan hayvan kutusunda ise sedasyon için ketamin (4 mg kg-1) ve Azaperone (8 mg kg-1) ve boyun veya domuz gluteal kas kas içi enjeksiyon (20 G) için iğneyle enjekte et.
    Dikkat: hayvan ile çalışırken eldiven kullanın.
  3. Periferik ven kateteri (20 G) bir kulak ven alkol ile yerel dezenfeksiyon sonra ekleyin.
  4. Fentanil (4 µg kg-1), propofol (3 mg kg-1) ve atracurium (0.5 mg kg-1) intravenöz anestezi indüksiyon için enjekte et.
  5. Domuz solunum durduğunda, sedye üzerinde sırtüstü pozisyonda yerleştirin ve sargı bezi ile immobilize.
  6. Periferik oksijen doygunluğu (SpO2) sensör kulakları birini veya hayvanın kuyruk kırpma tarafından izleme başlatın.
  7. Havalandırma köpekler, en yüksek inspiratory basınç altında 20 cm H2O 2, boyutuyla için bir maske domuzla havalandırmak, olumlu bir sona ekspiratuar basınç (PEEP) 5 cm H2O, solunum, 14-16 /min ve bir inspiratory oksijen fraksiyonu (FiO2) 1. 0 '.
  8. Sürekli infüzyon dengeli elektrolit çözüm ile başlatın (5 mLkg-1 h-1), propofol (8-12 mg kg-1 s-1) ve fentanil (0.1-0.2 mg kg-1 h-1) anestezi korumak için.
  9. Entübasyon için hayvan için uygun bir ortak Endotrakeal Tüp hazırlayın (Örn., ağırlığı 25-30 kg, endotrakeal tüp iç çapı (ID) 6-7 mm) Endotrakeal tüp uygulayıcıya ve ortak Laringoskop bir Macintosh Blade 4 ile silahlı.
    Not: İki kişi entübasyon için gereklidir.
  10. Kişi 1: bir yandan diliyle dışarı çıkarmak ve burun dorsally ile diğer tuşuna basın.
  11. Kişi 2: Laringoskop takın ve gırtlak kapağını görünüme gelene her zamanki gibi ilerlemek.
  12. Ventrally ses telleri görselleştirmek için Laringoskop çek.
    Not: Bazen gırtlak kapağını "yumuşak palatine stickler". Bu durumda, tüp ucu ile seferber.
  13. Ses tellerini tüpten eklemek ve uygulayıcıya çekin.
  14. Bir şırınga ile tüp manşet 10 mL hava ile engelleyin.
  15. Tüp vantilatöre bağlamak.
  16. Doğru tüp karbondioksit (CO2) düzenli soluk tarafından konumlandırma için capnography ve her iki akciğer oskültasyon ile eşit havalandırma başvurun.
  17. Mekanik havalandırma başlatmak (deprem ses 6-8 mL/kg, pozitif DİKİZLEMEK 5 cm H20, 94-%9817arasında karbon dioksit (etCO son gelgit baskı tutmak için solunum hızı periferik oksijen doygunluğu (SpO2) tutmaya FiO2 2) 35-45 mmHG arasında).

2. araçları

  1. Cilt için gerekli damarları catheterizing femur alanı üzerindeki germek için bandaj ile hindlegs geri çek.
  2. Hazırlamak bir 5 mL şırınga, 10 mL şırınga, bir Seldinger'ın iğne, 3 uygulayıcıya kaplamalar (5 Fr, 6 Fr, 8 Fr) ile guidewires, bir Merkezi venöz kateter ile 3 liman (7 Fr, 30 cm) embolisinin ve pulmoner arter kateteri ile (7,5 Fr, 110 cm).
  3. Cömertçe femur alan bir temizleme tekniği aşağı uygulamak cilt dezenfektan ile dezenfekte edin.
  4. Tamamen kateterler serum doldurmak.
  5. Ultrason sonda sağ inguinal ligament ve femur gemiler için tarama üzerine koyun.
  6. Sonda 90 ° tamamen uzun eksende femoral arter görselleştirmek için açın.
  7. Satır içi ultrason görselleştirme altında sağ femoral arter Seldinger'ın iğne ile cannulate.
    Not: Vasküler erişim veya ultrason olmadan kazanmak için farklı yolları vardır. Vasküler cannulation ultrason destekli bu model için gerekli değildir.
  8. Parlak kan akar dışarı titreşimli, rehberlik tel tanıtmak ve iğne geri çek.
  9. Femoral ven görselleştirmek ve satır içi ultrason görselleştirme ve sürekli aspirasyon altında ven iğneyle cannulate.
  10. Venöz kan aspirable olduğunda, şırınga kesin ve rehberlik kabloyu takın.
  11. İğne geri çek.
  12. Ultrason ile tel konumunu denetleyin.
  13. Arteryel uygulayıcıya kılıf Ekle (5 Fr) ve Merkezi venöz kateter (Seldinger'ın tekniği hakkında ayrıntılı bilgi bakın için yayımlanmış yöntemi-18) Seldinger'ın tekniği kullanarak.
  14. Arteryel ve venöz ponksiyon diğer tarafta tekrarlayın ve yukarıda açıklandığı gibi Seldinger´s tekniği kullanarak uygulayıcıya kaplamalar Ekle (arter 6 Fr, 8 ven Fr).
  15. Arteryel uygulayıcıya kılıf ve Merkezi venöz kateter izleme ekipmanları için uygun bir dönüştürücü sistemine bağlayın.
  16. İnvaziv atmosfer (sıfır) karşı izleme-atmosfer için üç-yol-Kesme muslukları açarak kalibre ve ekrandaki tüm sıfır tuşuna basın.
  17. 3-yol-Kesme muslukları hemodinami ölçmek için geri dön.
  18. Hemodinami izleme başlatın.
  19. Tüm basınç güç çeviriciler sağ atrium yükseklikte yerleştirin.
  20. Propofol infüzyonu geçiş (8-12 mg kg-1 h-1) ve fentanil (0,1-0,2 mg kg-1 h-1) anestezi korumak için Merkezi venöz hat bağlantı noktalarından biri için.

3. ultrafast kısmi oksijen basıncı (pO2) ölçümü

Not: pO2 ile ultrafast pO2sonda ölçümü-ölçüm zorunlu değil ama pO2 gerçek zamanlı değişiklikleri görselleştirme yardımcı olur.

  1. Yazılım NeoFox Görüntüleyicisi'ni açın ve Seçenekler' i tıklatın.
  2. Kalibrasyon sekmesini seçin ve Açık kalibrasyon düğmesini tıklatın.
  3. Kalibrasyon dosyası seçin ve Aç ve İndir' i tıklatın.
  4. Açılır pencerenin Evettıklayarak onaylayın.
  5. Seçenekleri iletişim kutusu açın.
  6. Kalibrasyon sekmesini seçin ve tek noktadan ayar' ı tıklatın.
  7. % 21 oksijen alanında ve sıcaklık sıcaklıkalanına girin.
  8. Kullanım geçerli Tau ve İndir' i tıklatın. Daha sonra açılır pencerenin Evettıklayarak onaylayın.
  9. Sonda pO2 sol atardamar uygulayıcıya kılıf ile ultrafast ölçümleri için ekleyin.

4. PULMONER ARTER KATETER EKLEME

  1. Pulmoner arter kateteri hasar için balon denetleyin.
  2. İzleme ekipmanları için uygun dönüştürücü sisteme bağlayın.
  3. Pulmoner arter basıncı atmosfer (sıfır) karşı izleme üç-yol-stopcock atmosfer ve basın sıfır monitörde açarak kalibre.
  4. Üç şekilde stopcock pulmoner arter basıncı ölçmek için geri dön.
  5. Pulmoner arter basıncının izlenmesi başlatın.
  6. Sol venöz uygulayıcıya Kılıf (balon sönük) aracılığıyla pulmoner arter kateteri yerleştirin.
  7. Pulmoner arter kateteri uygulayıcıya kılıf geçerken, 1 mL hava ile balon şişirmek.
  8. Pulmoner arter kateteri ilerlemek ve tipik dalga biçimleri (venöz gemiler, sağ atrium, sağ ventrikül, pulmoner arteria ve pulmoner kapiller wedge basınç) izleyebilirsiniz. Pulmoner arter kateteri ile tüm bağlantı noktaları üzerinden kan Aspire edin mümkünse balon ve onay, havasını boşaltmak.
    Not: pulmoner arter kateter ekleme hakkında ayrıntılı talimat için önceki yayın19' a bakın.

5. indüksiyon akciğer hasarı

  1. Oleik asit çözüm hazırlamak: 0.1 mL kg-1 oleik asit 20 ml şırınga ve 3 yol stopcock için bağlayın.
  2. 2 mL kan başka bir 20 mL şırıngada tutup toplam hacmi her iki şırınga 20 mL serum fizyolojik ekleyin.
  3. İkinci şırınga da 3-yol-stopcock için bağlanır.
    Dikkat: oleik asit ile çalışırken eldiven ve göz koruma kullanın.
  4. Norepinefrin (0.1 mg/mL) bolus enjeksiyon (10 µg/mL) ve sürekli infüzyon için hazırlayın.
  5. Norepinefrin şırınga pompa Merkezi venöz kateter noktalarından birine ezelî başlamak bağlayın.
  6. Ultrafast pO2başlamak-ölçüm.
  7. Akciğer hasarı indüksiyon önce tüm ilgili parametreler üzerinden (temel) değerlerini kaydedin.
  8. benO F2 1.0 için ayarla ve akciğer işe alım manevra yapmak (basınç 40 cm H2O 10 için Plato s).
  9. 3-yol-stopcock pulmoner arter kateter proksimal bağlantı noktasına bağlayın.
  10. Oleik asit ve kan/serum karışımı bu sürekli bir şırınga diğer yolu ile 3-yol-stopcock ve her zaman karıştırma tutun içine enjekte edilerek iyice karıştırın.
  11. Homojen bir emülsiyon olduğunda, emülsiyon 2 mL enjekte ve karıştırma devam.
    Not: karıştırma durdurulursa, emülsiyon bir lipofilik ve hidrofilik bir parçası ayırabilir.
  12. Yakından hemodinami oleik asit enjeksiyon sonra izlemek ve norepinefrin el altında tutmak. Gerekirse, norepinefrin bolus enjeksiyon (10-100 µg) veya ortalama arter basıncı 60 mmHg üzerinde tutmak için sürekli infüzyon olarak ver.
  13. Her 3 dakikada çözüm 2 mL enjeksiyon Arteryel oksijen (PaO2) kısmi basınç kadar tekrar / FiO2-200 mmHg altında oranıdır.
  14. Şırınga önce PaO2/FiO2boş ise-oranı 100 ve 200 mmHg arasında 5.1 adımda anlatıldığı gibi 2 daha fazla şırınga hazırla.
  15. 30 dakika bekleyin ve yeniden PaO2/FiO2değerlendirmek-oranı. Eğer hala 200 mmHg, 5.5-5,8 PaO2/FiO2kadar olan adımları tekrarlayın-oranı 100 ve 200 mmHg arasında düşer.
  16. Eğer PaO2/FiO2-oranı 100 ve 200 mmHg arasında için 30 dakika bekleyin ve tekrar kontrol edin.
  17. Altında 200 mmHg kalıcı ise deney/tedaviye başlamak, aksi takdirde 5.1 adımda anlatıldığı gibi 2 daha fazla şırınga hazırlamak ve adımları 5.5-5,9 tekrarlayın.
  18. Havalandırma ARDS ağ20önerilerini göre ayarlayın.

6. deney ve acısız ölüm sonu

  1. Derin anestezi Hayvan ötenazi için ekleme, fentanil Ayrıca sürekli anestezi ve 5 dk. enjekte 200 mg propofol ve potasyum klorür 40 mmol için beklemek için 0.5 mg.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

PaO2/FiO2-oranı azalır oleik asit (Şekil 1) fraksiyonlara uygulamadan sonra. Sunulan çalışmada 0.185 ± 0,01 ml kg-1 oleik asit akciğer hasarı indüksiyon için gerekliydi. Bütün hayvanlar daha fazla saat çeşitleri ile akciğer hasarı indüksiyon sonra Engelli bir oksijenasyonu gösterdi kurs. Hayvan 1 ve 3, bu küçük dalgalanmalar ile bir düzeyde kaldı; hayvan 2, biz hayvan 4 sürekli bir artış gösterirken bir düşüş sonunda, ardından...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

Bu makalede şiddetli ARDS çeşitli yönlerini çalışmak için bir yöntem oleik asit kaynaklı akciğer yaralanma bir model olarak. Orada da farklı emülsiyonlar, farklı enjeksiyon siteleri ve emülsiyon23,24,25,26,27,28 farklı sıcaklıklarda diğer protokolleri ,29. Bizim Yöntem akciğer işlev bir tek...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

Tüm yazarlar hiçbir mali veya başka herhangi bir çıkar çatışması ifşa.

Teşekkürler

Yazarlar Dagmar Dirvonskis mükemmel teknik destek için teşekkür etmek istiyorum.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
3 musluk mavisiBecton Dickinson İnfüzyon Terapisi AB Helsingborg, İsveç394602
3 musluk kırmızısıBecton Dickinson İnfüzyon Tedavisi AB Helsingborg, İsveç394605
AtracuriumHikma Pharma GmbH , Martinsried4262659
Canula 20 gBecton Dickinson SA Carretera Mequinenza Fraga, İspanya301300
Datex Ohmeda S5GE Healthcare Finland Oy, Helsinki, Finlandiya
DezenfeksiyonSchü lke & Mayr GmbH, Almanya104802
Endotrakeal tüpTeleflex Medical Sdn. Bhd, Malezya112482
Endotrakeal tüp tanıtıcıRü sch5033062
Engströ m Bakım İstasyonuGE Heathcare, Madison ABD
FentanylJanssen-Cilag GmbH, Neuss
EldivenPaul Hartmann, Almanya9422131
İncetomat-line 150 cmFresenius, Kabi Almanya GmbH9004112
KetamineHameln İlaç GmbH
LaringoskopTeleflex Tıp Sdn. Bhd, Malezya671067-000020
Mantıksal basınç izleme sistemiSmith- Medical Germany GmbHMX9606
Logicath 7 Fr 3 lümen 30cmSmith- Medical Germany GmbHMXA233x30x70-E
Masimo Radical 7Masimo Corporation Irvine, Ca 92618 ABD
Köpekleri havalandırmak için maskeHenry Schein, Almanya730-246
Neofox KitiOkyanus optiği Largo, FL ABDNEOFOX-KIT-PROBE
NorepinefrinSanofi-Aventis, Seutschland GmbH73016
Oleik asitApplichem GmbH Darmstadt, Almanya1,426,591,611
Orijinal Perfüzör şırınga 50ml Luer LockB.Braun Melsungen AG, Almanya8728810F
PA-Katheter Kuğu Ganz 7,5 Fr 110cmEdwards Lifesciences LLC, Irvine CA, ABD744F75
Perkütan kılıf tanıtıcı seti 8,5 und 9 Fr, 10 cm, entegre hemostaz valfi/yan paneli ileArrow international inc. Reading, PA, ABDAK-07903
Perfusör FM BraunB.Braun Melsungen AG, Almanya8713820
Potasyum klorürFresenius, Kabi Germany GmbH6178549
Propofol %2Fresenius, Kabi Almanya GmbH
SalineB.Braun Melsungen AG, Almanya
Sonosite Micromaxx Ultrason SistemiSonosite Bothell, WA, ABD
Paslanmaz Macintosh Boyut 4Teleflex Medical Sdn. Bhd, Malezya670000
SterofundinB.Braun Melsungen AG, Almanya
Stresnil 40mg / mlLilly Germany GmbH, Abteilung Elanco Hayvan Sağlığı
Şırıngası 10 mLBecton Dickinson S.A. Carretera Mequinenza Fraga, İspanya309110
Şırınga 2 mLBecton Dickinson S.A. Carretera Mequinenza Fraga, İspanya300928
Şırınga 20 mLBecton Dickinson S.A. Carretera Mequinenza Fraga, İspanya300296
Şırınga 5 mLBecton Dickinson S.A. Carretera Mequinenza Fraga, İspanya309050
venöz kateter 22GB.Braun Melsungen AG, Almanya4269110S-01

Kaynaklar

  1. Ashbaugh, D. G., Bigelow, D. B., Petty, T. L., Levine, B. E. Acute respiratory distress in adults. The Lancet. 2 (7511), 319-323 (1967).
  2. Brower, R. G., et al. Ventilation with lower tidal volumes as compared with traditional tidal volumes for acute lung injury and the acute respiratory distress syndrome. The New England Journal of Medicine. 342 (18), 1301-1308 (2000).
  3. Briel, M., et al. Higher vs lower positive end-expiratory pressure in patients with acute lung injury and acute respiratory distress syndrome: systematic review and meta-analysis. JAMA. 303 (9), 865-873 (2010).
  4. Bellani, G., et al. Epidemiology, Patterns of Care, and Mortality for Patients With Acute Respiratory Distress Syndrome in Intensive Care Units in 50 Countries. JAMA. 315 (8), 788-800 (2016).
  5. Chiumello, D., et al. Respiratory support in patients with acute respiratory distress syndrome: an expert opinion. Critical Care. 21 (1), 240(2017).
  6. Barnes, T., Zochios, V., Parhar, K. Re-examining Permissive Hypercapnia in ARDS: A Narrative Review. Chest. , (2017).
  7. Matute-Bello, G., Frevert, C. W., Martin, T. R. Animal models of acute lung injury. American Journal of Physiology-Lung Cellular and Molecular Physiology. 295 (3), 379-399 (2008).
  8. Kobayashi, K., et al. Thromboxane A2 exacerbates acute lung injury via promoting edema formation. Scientific Reports. 6, 32109(2016).
  9. Tian, X., Liu, Z., Yu, T., Yang, H., Feng, L. Ghrelin ameliorates acute lung injury induced by oleic acid via inhibition of endoplasmic reticulum stress. Life Sciences. , (2017).
  10. Kamuf, J., et al. Endexpiratory lung volume measurement correlates with the ventilation/perfusion mismatch in lung injured pigs. Respiratory Research. 18 (1), 101(2017).
  11. Du, G., Wang, S., Li, Z., Liu, J. Sevoflurane Posttreatment Attenuates Lung Injury Induced by Oleic Acid in Dogs. Anesthesia & Analgesia. 124 (5), 1555-1563 (2017).
  12. Prat, N. J., et al. Low-Dose Heparin Anticoagulation During Extracorporeal Life Support for Acute Respiratory Distress Syndrome in Conscious Sheep. Shock. 44 (6), 560-568 (2015).
  13. Goncalves-de-Albuquerque, C. F., Silva, A. R., Burth, P., Castro-Faria, M. V., Castro-Faria-Neto, H. C. Acute Respiratory Distress Syndrome: Role of Oleic Acid-Triggered Lung Injury and Inflammation. Mediators of Inflammation. 2015, (2015).
  14. Schuster, D. P. ARDS: clinical lessons from the oleic acid model of acute lung injury. American Journal of Respiratory and Critical Care Medicine. 149 (1), 245-260 (1994).
  15. Goncalves-de-Albuquerque, C. F., et al. Oleic acid induces lung injury in mice through activation of the ERK pathway. Mediators of Inflammation. 2012, 956509(2012).
  16. Ballard-Croft, C., Wang, D., Sumpter, L. R., Zhou, X., Zwischenberger, J. B. Large-animal models of acute respiratory distress syndrome. The Annals of Thoracic Surgery. 93 (4), 1331-1339 (2012).
  17. O'Driscoll, B. R., et al. BTS guideline for oxygen use in adults in healthcare and emergency settings. Thorax. 72, Suppl 1 90(2017).
  18. Ettrup, K. S., et al. Basic surgical techniques in the Gottingen minipig: intubation, bladder catheterization, femoral vessel catheterization, and transcardial perfusion. Journal of Visualized Experiments. (52), 2652(2011).
  19. Russ, M., et al. Lavage-induced Surfactant Depletion in Pigs As a Model of the Acute Respiratory Distress Syndrome (ARDS). Journal of Visualized Experiments. (115), 53610(2016).
  20. Brower, R. G., et al. Higher versus lower positive end-expiratory pressures in patients with the acute respiratory distress syndrome. The New England Journal of Medicine. 351 (4), 327-336 (2004).
  21. Hartmann, E. K., et al. Influence of respiratory rate and end-expiratory pressure variation on cyclic alveolar recruitment in an experimental lung injury model. Critical Care. 16 (1), (2012).
  22. Hartmann, E. K., et al. Inhalation therapy with the synthetic TIP-like peptide AP318 attenuates pulmonary inflammation in a porcine sepsis model. BMC Pulmonary Medicine. 15, 7(2015).
  23. Julien, M., Hoeffel, J. M., Flick, M. R. Oleic acid lung injury in sheep. Journal of Applied Physiology. 60 (2), 433-440 (1986).
  24. Wiener-Kronish, J. P., et al. Relationship of pleural effusions to increased permeability pulmonary edema in anesthetized sheep. Journal of Clinical Investigation. 82 (4), 1422-1429 (1988).
  25. Yahagi, N., et al. Low molecular weight dextran attenuates increase in extravascular lung water caused by ARDS. American Journal of Emergency Medicine. 18 (2), 180-183 (2000).
  26. Eiermann, G. J., Dickey, B. F., Thrall, R. S. Polymorphonuclear leukocyte participation in acute oleic-acid-induced lung injury. The American Review of Respiratory Disease. 128 (5), 845-850 (1983).
  27. Townsley, M. I., Lim, E. H., Sahawneh, T. M., Song, W. Interaction of chemical and high vascular pressure injury in isolated canine lung. Journal of Applied Physiology. 69 (5), 1657-1664 (1990).
  28. Young, J. S., et al. Sodium nitroprusside mitigates oleic acid-induced acute lung injury. The Annals of Thoracic Surgery. 69 (1), 224-227 (2000).
  29. Katz, S. A., et al. Catalase pretreatment attenuates oleic acid-induced edema in isolated rabbit lung. Journal of Applied Physiology. 65 (3), 1301-1306 (1988).
  30. El-Haddad, H., Jang, H., Chen, W., Soubani, A. O. Effect of ARDS Severity and Etiology on Short-Term Outcomes. Respiratory Care. 62 (9), 1178-1185 (2017).
  31. Wang, H. M., Bodenstein, M., Markstaller, K. Overview of the pathology of three widely used animal models of acute lung injury. European Surgical Research. 40 (4), 305-316 (2008).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Etiketler

Pulmoner Arter KateteriSantral Venöz KateterUltrason Eşliğinde KanülasyonAkciğer Rekrütman ManevrasıParsiyel Oksijen BasıncıHemodinamik İzlemAlveoler ÖdemHistolojik Analiz
Oleik asit enjeksiyon domuzlarda Akut Respiratuar Distress Sendromu için bir Model olarak
Bize Ulaşın
Kütüphaneye Öner

Gizlilik

Kullanım Koşulları

Politikalar

Telif Hakkı © 2026 MyJoVE Corporation. Tüm hakları saklıdır.