Method Article

Düğüm ve Notochordal plaka Gastrulating fare embriyo Tarama elektron mikroskobu ve bütün Dağı ayirt kullanarak görselleştirme

DOI:

10.3791/58321

⸱

November 6th, 2018

 ,  , 
1Graduate Program in Pharmacology and Experimental Therapeutics, University of Cologne, 2Department of Dermatology and Venereology, University Hospital of Cologne, 3Cologne Cluster of Excellence in Cellular Stress Responses in Aging-Associated Diseases (CECAD), University of Cologne, 4Department of General Ecology, Institute for Zoology, Biocenter Cologne, University of Cologne

In This Article

Summary

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Düğüm ve notochordal plaka gelişmekte olan çeşitli teknikler kullanarak görüntülenir fare embriyo organizatörler sinyal geçici. Burada, biz iki çalışma onların yapısı ve morfogenetik bozmak nasıl ayrıntılı olarak tarif: 1) Tarama elektron mikroskobu (SEM); ve 2) bütün Dağı ayirt (WMIF).

Abstract

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Sonrası implantasyon fare embriyo büyük şekil değişikliklerini gastrulasyon ve morfogenetik başlanmasından sonra uğrar. Morfogenez geçici organizatörleri, düğüm ve ilkel çizgi geçti hücrelerden notochordal plaka oluşumunu özelliğidir. Bu sinyal gönderme merkezlerinin uygun oluşumu vücut planı gelişimi için önemlidir ve teknikleri onları görselleştirmek için fare gelişimsel biyologlar yüksek ilgi. Düğüm ve notochordal plaka gastrulating fare embriyo embriyonik gün (E) kalkınma 7.5 ventral yüzeyinde yalan. Düğüm olan hücreleri bir tek ince cilium her sahip Kupası şeklindeki bir yapıdır. Uygun hücre altı yerelleştirme ve düğüm çukurunda kirpikler döndürme-sol asimetri belirler. Notochordal plaka hücreleri daha kısa da olsa bu düğüm hücrelerinin daha tek kirpikler de sahip olmak. Notochordal plaka somitogenesis ve sinirsel desenlendirme için önemli bir sinyal düzenleyici görevi gören notochord oluşturur. Düğüm ve notochordal plaka hücrelerinin yüzeyinde geçici varsa ve kirpikler sahip çünkü onlar Tarama elektron mikroskobu (SEM) kullanarak görüntülenmeyecektir. Görselleştirmek için kullanılan diğer teknikler arasında bu yapıların hücresel düzeyde son derece düğüm ve notochordal plaka ifade edilir proteinler karşı antikor kullanarak bütün Dağı ayirt (WMIF) olduğunu. Bu raporda, SEM ve düğüm ve notochordal plaka WMIF doku şekli ve vahşi-türü hücresel kuruluşta değerlendirmede yardımcı olmak için gelişmekte olan fare embriyo ve gastrulasyon mutant embriyo gerçekleştirmek için en iyi duruma getirilmiş bizim iletişim kurallarını açıklar.

Introduction

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Gastrulasyon ve beraberindeki morfogenetik hareketleri fare embriyo1şekillendirme için önemlidir. Hücresel şekli ve organizasyon morfogenez sırasında değişiklikleri hücre kader düzenleyen ve tam olarak yeni kurulan mikrop katmanlar1çeşitlendirmek için onların işlevleri gerçekleştirmek takip eden sinyal yollar sağlamak konumsal bilgi dikte. Gelişim programı2yürütülmesi için gerekli geçici yapıları düzenleme ve merkezleri düğüm ve notochord gibi sinyal oluşumdur. Gelişimsel biyologlar morfogenez bu yapıların en önemli hücresel gazetecilere ve canlı ex vivo hücre ve hücre altı davranış2 dinamikleri takip için görüntüleme kullanımı olduğu eğitim için çeşitli teknikler kullanmış ,3,4. Bu raporda, biz iki bu teknikler için en iyi duruma getirilmiş Protokolümüze ayrıntılarını açıklayan üzerinde odaklanmak: scanning elektron mikroskobu (SEM) ve bütün Dağı ayirt (WMIF), ve morfogenetik düğüm eğitim hala enstrümantal ve notochordal plaka, notochord habercisi.

Fare embriyonik düğüm gastrulasyon ve morfogenetik (embriyonik gün, E7.5-E8) sırasında geç baş kat aşamaları için erken etrafında fare embriyo ventral yüzeyinde bulunan bir gözyaşı damlası şeklindeki hücreler, bu,2,5, 6,7. Notochordal plaka morfolojik anteriorly düğüm3hayran kalacaksınız. Düğüm ve notochordal plaka her hücrede hangi düğümü hücrelerinde uzundur ama uzunluğu ile gelişimsel sahne2değişir dışına çıkıntı bir tek cilium karakterizedir. Kirpikler düğüm çukurunda dönüşü-sol asimetri4belirleyen sinyal için önemli olduğu gösterilmiştir. Notochordal plaka notochord bitişik somites ve üstteki nöral tüp3desenlendirme için önemlidir sinyal merkezi öncüsüdür.

Konum (yüzey), şekil (kupa) ve farklı dış hücresel yapılar (kirpikler) sahip özniteliklerini nedeniyle SEM düğüm ve notochordal plaka görselleştirmek ve onların oluşumu ve yapısı2, çalışma için geleneksel olarak kullanılmıştır 7. SEM de düğümü kendisini veya gastrulasyon, morfogenez gibi kirpikler oluşumu8,9,10etkiler mutasyonlar hücrelerine üzerinde kirpikler yapısını değişiklikleri incelemek için kullanılır. SEM odaklanmış ışın demeti elektron topolojik ultrastructure biyolojik örnekler11gibi malzemelerin dış yüzeyinin sorgulamaya kullanan bir tekniktir. Örnek genellikle sabit, kurutulmuş ve sonra sputter-metaller gözlem bir taramalı elektron mikroskobu altında için adım 1'de tarif olarak kaplanmış.

WMIF gen ürünleri, proteinler, üç-boyutlu (3D) gibi görselleştirmek için boyama bir tekniktir. WMIF dokuları, organları veya hatta bütün organizmalar kayma dağıtım işaret ve şekli 3D elde edilen yapısının Kılavuzu. Teknik sonra floresan conjugates ile boyama örnek gidermek için temel alır. Fare embriyo ~ E7.5 küçük ve şeffaf ve bu nedenle düğüm ve notochordal plaka görselleştirmek WMIF iletişim kuralları için ideal. Örneğin, Barchyury (T) çekirdek düğüm ve notochordal plaka ve daha az bir ölçüde de E7.5-E8 embriyonik gelişim ve T WMIF tarafından karşı iyi çalışma antikor çevresinde ilkel çizgi ile ifade edilir transkripsiyon faktörü olan ticari olarak kullanılabilir ve boyama işlemi mümkün kılar. Düğüm ve notochordal plaka hücreleri de dış yüzü ve böylece ile floresan Birleşik Phalloidin işaretine F-aktin, apikal boğumların boyanabilen dar apikal yüzeylerinde karakterizedir. Adım 2 8' göstermek gibi bu reaktifler örnek olarak kullanarak, T ve F-aktin WMIF tarafından boyama düğüm ve 3D notochordal tabak gastrulating fare embriyosu içinde bir gösterimini sağlar. Ancak, kirpikler, ARL13B veya acetylated tübülin yanı sıra düğümü ve notochordal plaka, FOXA2 gibi diğer işaretleri gibi işaretleri WMIF gelişmekte olan fare embriyo3,4üzerinde gerçekleştirmek için de kullanılabilir.

Striatin-etkileşim protein 1 (STRIP1) normal gastrulasyon ve morfogenetik fare embriyo8için gerekli olduğunu göstermiştir. STRIP1 striatin-etkileşim fosfatazlar ve kinazlar kompleksleri (STRIPAK), biz ve diğerleri içinde aktin sitoiskeleti organizasyon8,12karıştığı bir çekirdek bileşenidir. Bir büyük Strip1 mutant embriyo aksiyel mesoderm (düğüm ve notochordal plaka) oluşumu ve uzantısı antero-posterior vücut eksen kusurdur. SEM ve WMIF Temsilcisi sonuçları ve karşılık gelen rakamlar gösterdiği gibi düğüm ve vahşi-tipi (WT) ve Strip1 mutant embriyo notochordal plaka analiz etmek için kullandım.

Protocol

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Tüm deneylerin hayvan deneyleri içeren Kuzey Rhein Vestfalya (LANUV-NRW) sorumlu yetkililer tarafından kabul edildi.

1. Tarama elektron mikroskobu fare embriyonik düğümünün

  1. Hamile kadın fare, kurban ~ E7.5 (2-4 somite sahne) servikal çıkığı tarafından. Adımları 1.1 - diyagramları ile ayrıntılı bir açıklama 1.7 fare embriyo laboratuvar kılavuzları13' te kullanılabilir.
  2. Karın deri ve mesenteries açın ve makas ve iyi forseps kullanarak rahim çıkarın.
  3. Kısa bir süre içinde distile su rahim durulama ve küçük temiz Petri kabına (6 cm) içeren 1 fosfat tamponlu tuz çözeltisi (PBS) x yerleştirin.
  4. Bir mikroskop anatomi ve iyi forseps kullanarak altında bireysel deciduae veya implantasyon siteleri ücretsiz için Rahim kasları kaldırın.
  5. Her decidua forseps bir çift ile tutun ve diğer çift kırmızı bölümü (gelecekteki plasenta) ve beyaz kısmı (embriyo olduğu) arasındaki boyuna bir tam-kalınlık kesi yapmak için kullanın. Decidua beyaz kısmı boyunca dikey olarak yüzeysel delikler kesi ile bitişik olun. Decidua yatay olarak tamamlayan bir başka ayır ve dikkatle decidua beyaz kısmında embriyo dışarı kepçe.
  6. Taze steril filtre PBS ile yeni Petri kabına (35 mm) embriyo transfer edin. Tüm deciduae/embriyo için yineleyin.
  7. Reichert'ın membran kaldırmak için embriyo içine çeken nispeten opak bir membran alay tarafından her embriyo o uzakta gibi ectoplacental koni (kırmızımsı implantasyon sitesi) başlayan bir çorap. Genotipleme için küçük bir parça alın (~ 0,1 mm2) Bu aşamada sarısı kesesinin.
  8. Kimyasal kukuIeta ve uygun koruma (eldiven) giyen altında EM sınıf sabitleştirici % 2.5 oxazolidin steril filtre PBS oda sıcaklığında bir microcentrifuge (1,5 mL) tüp içinde oluşan embriyoların aktarın. Embriyo gecede 4 ° C'de düzeltmek
  9. Dikkatle embriyo dokunmadan tüpünden oxazolidin sabitleştirici kaldırmak ve uygun bir atık kap içinde. Embriyolar üç kez 15 dakika her oda sıcaklığında steril filtre PBS yıkayın.
  10. Embriyo 5 min için etanol dizi kurutmak: % 50, % 70, % 85 ve % 100 veya mutlak etanol içinde üç kez. −20 ° C de embriyo etanol depolamak veya doğrudan bir sonraki adıma geçin.
  11. Kritik noktası (GBM) bir kritik nokta makinesi kurutma için sepetler etanol embriyo transfer edin. Odası sepetleri tamamen karşılamak için etanol ile doldurun.
  12. Etanol dikkatle sıvı CO2 ile 10 ° C'de 10 kat için temizlenerek değişimi Odası yarı dolu olduğu kadar sıvı CO2 sonra son adım drenaj. İlâ 40 ° C ısı kadar basınç 80 bar (kritik nokta) ulaşır ve sıvı CO2 gaz için değiştirir. 10 dakikadır bekleyin sonra yavaş yavaş gaz kapalı yaklaşık 45 dakika içinde havaya.
  13. Kurutma için daha kolay bir alternatif CPD için hexamethyldisilazane (HMDS) 1:1 oranında embriyo etanol için 30 dk içinde ekleyin. Sonra embriyo bir pipet kullanarak sıvı dışarı 30 dk. Kaldır için saf HMDS embriyo transfer ve 30 dk kurumaya bırakın.
    Not: Her iki kurutma yöntem amele aynı derecede de bizim ellerde.
  14. İnce fırça çift taraflı bant ile bir SEM saplama üzerinde yukarı ventral yüzü (düğüm) kurutulmuş embriyo bağlamak için kullanın.
  15. Koçanları olan embriyoların bir sputter kaplama Makinası uzun ince kirpikler şarj etmek için tercih edilen altın parçacık kaplama için ekleyin. 120-150 bir tabaka uygulayın Å; zaman her örnek ile değişir mevcut üzerinde bağlıdır.
  16. Embriyo ile kaplı taslakları bir SEM mikroskobu yerleştirin, vakum uygulamak ve embriyonik düğüm ve 1000 X 15'e kadar büyütme, kirpikler hücrelerle notochordal plaka gözlemlemek 000 X.

2. bütün Dağı ayirt fare düğüm ve Notochordal plaka

  1. Buz gibi PBS ile % 0.05 kullanarak ara 20 (PBSTw), E7.75, embriyo kaldırmak ve PBSTw 35 mm Petri kabına buz üzerinde yer onları 1.1-1.7 Yukarıdaki adımları izleyin.
  2. Kimyasal bir başlık ve uygun koruma (eldiven) giyen altında embriyo PBS içinde %4 paraformaldehyde microcentrifuge tüp içinde bir sabitleştirici çözüm aktarın. Embriyo gecede 4 ° C'de düzeltmek
  3. Dikkatle embriyo dokunmadan tüpünden paraformaldehyde sabitleştirici kaldırmak ve uygun bir atık kap içinde. Embriyolar üç kez % 0,2 içeren PBS yıkama Triton X-100 (PBSTr) Oda sıcaklığında her 5 min için. Bir nutating shaker tüm yıkama ve sonraki kuluçka adımları gerçekleştirin.
  4. Son yıkama kaldırın ve % 10 ısı inaktive serum (ikincil antikor ana bilgisayar türlerden) ile PBSTr içeren engelleme çözüm ekleyin. 2 h blok için gece (veya daha uzun) bir nutator 4 ° C'de
  5. Belgili tanımlık kütük parçası kaldırmak ve eklemek ~ çözüm, örneğin bir anti-T antikor 1:500 seyreltme, engelleme seyreltilmiş birincil antikor 1 mL. Gecede (veya daha uzun) bir nutator 4 ° C'de üzerinde kuluçkaya
  6. Birincil antikor kaldırmak ve sodyum azid %0.02 (1 µL % 20 hisse için 1 mL antikor çözeltisi) son bir konsantrasyon ekleyerek daha sonra kullanmak üzere kaydedin. Antikor yeniden kullanılabilir ~ 10 kat. İki kez PBSTr ile embriyo durulama ve sonra onları bir nutator 4 ° C'de üzerinde her 30 dk için üç kez yıkamak
  7. Seyreltilmiş birincil antikor ana türler karşı Floresan Birleşik bir ikincil antikor, yıkama yerine ~ 1: 1000 gecede (veya daha uzun) bir nutator 4 ° C'de üzerinde
  8. İkincil antikor kaldırmak ve iki kez PBSTr, o zaman 30 dk ile PBSTr için üç kez yıkama ile durulayın.
  9. Son yıkama F-aktin ve 1: 1000 DAPI, çekirdek, oda sıcaklığında 1 h için leke leke 1:500 phalloidin, floresans Birleşik içeren PBSTr ile değiştirin.
  10. PBSTr iki kez yıkayın ve bir kez, oda sıcaklığında 30 dakika PBSTr ile yıkayın.
  11. PBSTr PBS ile değiştirin ve embriyoların buz üzerinde bırakın. Temiz olumlu tahsil slaytlar (60 x 24 mm) ve coverslips (24 x 24 mm) ve sulu montaj gliserol tabanlı medya, örneğin, 1xPBS % 90 gliserol ve embriyoların takmak için bir antifade reaktifi hazırlayın.
  12. Uzaklıkta açık bant iki adet koyun ~ 15 mm birbirinden slayt açık kısmında. Bu embriyoların düzleştirme ama tamamen onlara squishing sağlayacak yeterli 3B alanda (Z boyut) oluşturur.
  13. Diseksiyon mikroskop altında dikkatli bir şekilde kesilmiş bir P200 pipet (embriyo transfer ve zarar görmediğinden için yeterli alan izin vermek için) kullanarak slayda embriyo taşıyın.
  14. İyi forseps kullanarak, iki tam kesim sac sarısı embriyo açılmak için yan tarafta yapmak. Ventral yan (düğüm ve notochordal plaka) kadar ile embriyo (slaytta aşağı nöral tüp, dorsal) yerleştirin.
  15. Medya embriyo üzerinde montaj 50 µL ekleyin. 4-5 embriyo slayt başına yerleştirin. İlk slayt (üst veya alt tarafı) touch, daha sonra iki adet bant straddling yerleştirin ve hava kabarcıkları oluşturma kaçınırken iyi forseps veya bükülmüş ince iğne kullanarak embriyo üzerine yavaşça indirin medya coverslip tarafına montaj bir kurulamak ekleyin.
  16. Aşırı montaj medya emici bir temizleme işlemi kullanarak temizleyin. Bu süreç içinde coverslip oynatmamaya dikkat et.
  17. Tırnak cilası bol miktarda kullanarak, coverslip tarafına hareket ettirmeden kapatın.
  18. Tarama confocal mikroskop altında gözlemlemek.

Results

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

WT ve Strip1 mutant embriyolar düğümünde oluşumunu incelemek için ~ E7.5, 1. adımda açıklandığı ve gösterilen Şekil 18olarak SEM kullanılan biz. SEM kullanarak dış topolojisi ultrastructural ayrıntılarını oldukça bilgilendirici ve çukur şeklindeki düğümünde WT embriyolar, basık ve düzensiz düğüm mutant embriyo vardı hemen açıktı. Embriyoların daha yüksek büyütme karakteristik kirpikler belirsizliğe yer bırakmadan tanımlanan düğüm hücreleri üzerinde gösterdi. Kirpikler mutant içinde belirgin daha düşük yoğunluk düğüm çukur yapısı ve eğrilik veya sayı düğümü hücre kaybı atfedilebilecek olabilir. Düğümden yayılan görünen notochordal plaka da mutant embriyo düzensiz oldu. Onlar daha kısa onların kirpikler ile tanımlanabilir. Bu nedenle, SEM düğüm morfogenez kusurları Strip1 mutantlar8ortaya çıkarmak önemliydi. Biz de kirpikler yokluğu kirpikler9için şablon sağlamak centrioles yoksun mutantlar embriyonik düğümünü göstermek için önceki çalışmalarda SEM kullandık.

Aksiyel mesoderm oluşumu ekranlarda Strip1 mutant embriyo hücresel düzeyde bulunan, biz WMIF olarak 2. adımda açıklanan ve Şekil 2gösterilen çalışırdım. Bu tekniği kullanarak, düğüm ve notochordal plaka kolayca F-aktin ve T boyama tarafından tespit edilmiştir. WT düğüm ve notochordal plaka hücreleri burada F-aktin zenginleştirilmiş ve nükleer T boyama belirgin apikal etki alanları dar. Notochordal plaka rostrally WT genişletilmiş ama kısa ve mutant içinde düzensiz. Verileri F-aktin organizasyon mutant embriyo aksiyel mesoderm8de dahil olmak üzere farklı mikrop katmanlarda anormal olduğunu gösterdi. Böylece, WMIF düğüm hatalarını ve Strip1 mutant embriyo notochordal plaka oluşumunda etkili oldu.

figure-results-1
Resim 1 . Elektron mikroskobu tarama Strip1 mutant fare embriyo düğüm morfogenez hataları ortaya çıkarır. (Üst) SEM analizleri WT ve Strip1 mutant ventral embriyonik düğümlerin ve notochordal tabak (Noto)8. Örnek WT embriyo düşük büyütme görüntünün sol tarafta gösterilir. (Alt) Üst düğüm hücrelerden projelendirme uzun monocilia ifşa gösterilen düğümlerinin merkezinin daha yüksek büyütme. Önünde bütün panellerde doldu. Ölçek çubukları: 30 µm. Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.

figure-results-2
Resim 2 . Bütün Dağı ayirt Strip1 mutant embriyo anormal düğüm ve hücresel düzeyde notochordal plaka gösterir. (Üst) Ventral 3D render (Volocity yazılımı) WMIF floresan Birleşik phalloidin (F-aktin, kırmızı) ve T antikor (yeşil) boyama'nin birleşimiyle WT ve Strip1 mutant embriyo üzerinde. (Alt) Daha fazla örnek daha yüksek zoom ile düğüm üzerinde odaklanan ve DAPI dahil olmak üzere yukarıda gösterilen boyama. Önünde bütün panellerde doldu. Ölçek çubukları: 30 µm. Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.

Discussion

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Bu çalışmada, SEM ve WMIF fare embriyonik düğüm ve notochordal plaka görselleştirmek için gerçekleştirmek nasıl gösterir. Gastrulating fare embriyo küçük boyutunu ~ E7.5 ve bu yapıların yüzeyi varlığı teknikleri açıklanan2,7,8kullanarak eğitim ideal yapan. T ve kirpikler işaretleri gibi iyi antikorlar kullanılabilirliğini yapısı, organizasyonu ve bu temel embriyonik organizatörler8oluşumu WMIF kullanarak mükemmel 3D bilgileri verir.

Fare embriyonik gelişim çok hızlı bir tempoda devam eder ve düğüm ve notochordal plaka sadece geçici embriyo yüzeyinde mevcut oldukları için zamanlama bu deneyler2,3başarı için önemlidir. Örneğin, 2-4 somite embriyo olgun düğüm çukur uzun kirpikler ile SEM çözümlenmesi için iyidir. Çok daha erken ya da daha sonra embriyo (örneğin, 12 h önce veya sonra), düğüm yüzeyinde mevcut olmayabilir. WMIF bu konuda biraz daha esnek ama yapıları kendilerini geliştirme sırasında da geçici ve zamanlama Bu durumda araştırmacıların çıkarları üzerinde bağlıdır.

Reaktifleri saflığı da bu tekniklerin başarısı için çok önemlidir özellikle embriyolar için genellikle sopa SEM Tiny yabancı maddeler tarafından ultrastructure sondalama içinde büyük aktarımında neden.

Embriyo fiksasyon SEM bir için iki farklı yöntem test ettiğimiz yarım Karnovsky'nın sabitleştirici (% 2.5 oxazolidin, % 2 paraformaldehyde ve 0.1 M cacodylate arabellek) ve basit bir % 2.5 oxazolidin 1 x PBS kullanarak. 1. adımda açıklandığı gibi PBS sabitleştirici ve oxazolidin kullanmayı tercih, ancak, biz ve diğerleri de yarım Karnovsky'nın sabitleştirici başarıyla SEM için kullandık

Ayrıca SEM için embriyo kurutma için iki yöntem karşılaştırıldığında ve kritik nokta kurutma makinesi veya 1. adımda açıklandığı gibi HMDS kullanarak örnek kalitesini fark bulundu ve başka bir yerde14bildirdi.

Adım 2 için test ettik % 1 düşük erime özel son yıkama adımda bir 35 mm cam alt çanağı monte sonra embriyo yerleştirmesi ve sonra onunla Tepesi ~ 10 µL montaj orta. Bu gömme yöntemi çalışır ve embriyo orijinal 3D yapısı ve ilişkili yapıları korur; Ancak, multiphoton mikroskop düzenli confocal mikroskop sağlam embriyo derin ulaşamıyorum çünkü örnek görüntü için gereklidir (~ 1 mm).

Biz bu iki teknikleri kullanarak normal gelişim sırasında ve bu yapıların oluşumuna hataları gösteren mutantlar tamamlayıcı bilgileri yapısı düğümü ve notochordal plaka üzerinde verir inanıyorum.

Disclosures

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Yazarlar ifşa gerek yok.

Acknowledgements

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

HB Tıp Fakültesi ve SFB829 Köln Üniversitesi başlangıç fon tarafından desteklenir. C.X. DFG tarafından desteklenmektedir BA 5810/1-1 izni. CECAD araştırma merkezi ve Memorial Sloan Kettering Kanser Merkezi (New York, ABD) görüntüleme olanakları teşekkür etmek istiyorum. Joaquín Grego-Bessa (İspanyolca ulusal merkezi kardiyovasküler araştırma, Madrid, İspanya) embriyo WMIF için montaj üzerinde onun anlayış için teşekkür ediyoruz.

Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
1,1,1,3,3,3 Heksametildisilazan (HMDS)Carl Roth3840
Anti-T antikoruR& D SystemsAF2058
Kritik Nokta KurutucuBlazers UnionCPD 020
DAPIAppliChemA4099,0005
Glutardialdehit çözeltisi %25Merck1042390250
Triton X-100Sigma AldrichX100-100ML
Tween 20AppliChemA4974,0500
SEM kaplama ünitesi ElektronMikroskobu için PS3 Agar YardımcılarıPS3
SEM mikroskobu Quantum FEG 250ThermoFisher Scientific (FEI)Quantum FEG 250

References

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Rivera-Pérez, J. A., Hadjantonakis, A. K. The dynamics of morphogenesis in the early mouse embryo. Cold Spring Harbor Perspectives in Biology. , (2015).
  2. Lee, J. D., Anderson, K. V. Morphogenesis of the node and notochord: The cellular basis for the establishment and maintenance of left-right asymmetry in the mouse. Developmental Dynamics. 237 (12), 3464-3476 (2008).
  3. Balmer, S., Nowotschin, S., Hadjantonakis, A. K. Notochord morphogenesis in mice: Current understanding and open questions. Developmental Dynamics. 245 (5), 547-557 (2016).
  4. Yoshiba, S., et al. Cilia at the node of mouse embryos sense fluid flow for left-right determination via Pkd2. Science. , (2012).
  5. Jurand, A. Some aspects of the development of the notochord in mouse embryos. Journal of Embryology and Experimental Morpholog. 32 (1), 1-33 (1974).
  6. Poelmann, R. E. The head-process and the formation of the definitive endoderm in the mouse embryo. Anatomy and Embryology (Berl). , 41-49 (1981).
  7. Sulik, K., et al. Morphogenesis of the murine node and notochordal plate. Developmental Dynamics. 201 (3), 260-278 (1994).
  8. Bazzi, H., Soroka, E., Alcorn, H. L., Anderson, K. V. STRIP1, a core component of STRIPAK complexes, is essential for normal mesoderm migration in the mouse embryo. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 114 (51), 10928-10936 (2017).
  9. Bazzi, H., Anderson, K. V. Acentriolar mitosis activates a p53-dependent apoptosis pathway in the mouse embryo. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 111 (15), 1491-1500 (2014).
  10. Huangfu, D., Liu, A., Rakeman, A. S., Murcia, N. S., Niswander, L., Anderson, K. V. Hedgehog signalling in the mouse requires intraflagellar transport proteins. Nature. 426 (6962), 83-87 (2003).
  11. McMullan, D. Scanning electron microscopy 1928-1965. Scanning. 17 (3), 175-185 (2006).
  12. Bai, S. W., et al. Identification and characterization of a set of conserved and new regulators of cytoskeletal organization, cell morphology and migration. BMC Biology. 9, (2011).
  13. Behringer, R., Gertsenstein, M., Vintersen Nagy, K., Nagy, A. Manipulating the Mouse Embryo: A Laboratory Manual, Fourth Edition. Cold Harb Lab Press. , (2014).
  14. Braet, F., De Zanger, R., Wisse, E. Drying cells for SEM, AFM and TEM by hexamethyldisilazane: a study on hepatic endothelial cells. Journal of Microscopy. 186, Pt 1 84-87 (1997).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Tags

Node Notochordal PlateScanning Electron MicroscopyWhole Mount ImmunofluorescenceMouse Embryo DevelopmentGastrulation E7 75Cilia VisualizationEmbryo Handling ProtocolFixative PreparationEthanol DehydrationHMDS Treatment

Related Articles