Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliğiniz gereklidir. Giriş yapın veya ücretsiz denemenizi bugün başlatın.

Yöntem makalesi

Ekstrasellüler veziküllerin depolama Istikrarı değerlendirilmesi

14.2K görüntülenme

⸱

DOI:

10.3791/59584

⸱

22 Mayıs 2019

 ,  , 
1Helmholtz Institute for Pharmaceutical Research Saarland (HIPS), Helmholtz Centre for Infection Research (HZI), Biogenic Nanotherapeutics group (BION), 2Department of Pharmacy, Saarland University

Bu makalede

Özet

Burada, hücre tarafından üretilen doğal Nano opartiküllerden oluşan bir grup olan ekstrüllüler veziküller için depolama kararlılığını değerlendirmek üzere kolayca uygulanabilir bir protokol sunuyoruz. Veziküller bir model enzim olarak glukuronidaz ile yüklenir ve farklı koşullarda saklanır. Depodan sonra, fizikokimyasal parametreleri ve kapsüllenmiş enzimin aktivitesi değerlendirilir.

Özet

Ekstrelüler veziküller (EVs), ilaç, uyuşturucu taşıyıcıları ve Biyomarkörler olarak kullanılmak üzere mevcut araştırmalarda umut verici hedeflerdir. Onların klinik gelişimi için, sadece onların ilaç aktivitesi önemli değil, aynı zamanda üretim değerlendirilmesi gerekir. Bu bağlamda araştırma, EVs yalıtımına, onların karakterizasyonu ve depolarına odaklanır. Mevcut el yazısı, genetik manipülasyon veya spesifik fonksiyonel etkileri olmadan, EVs üzerinde farklı depolama koşullarının etkisini değerlendirmek için bir facile prosedürü sağlamayı amaçlamaktadır. Bu mümkün hızlı bir şekilde belirli bir depolama koşulu altında EVs istikrarı bir ilk izlenim almak için yapar, ve farklı hücre kaynaklarından türetilen EVs kolayca karşılaştırılabilir. Kararlılık ölçümü, EVs (boyut, parçacık konsantrasyonu ve morfoloji) ve onların kargo aktivitesinin korunması fizikokimyasal parametrelerine dayanır. İkincisi, EVS içine enzim Beta-glukuronidaz saponin-aracılı kapsülleme tarafından değerlendirilir. Glukuronidaz bir vekil olarak davranır ve bir floresan muhabir molekül bölünmesini ile kolay bir kantifikasyon sağlar. Mevcut protokol, klinik uygulamaya doğru EV araştırmalarını ilerletmek için EV özelliklerini en iyi şekilde korumak için depolama koşulları arayışında araştırmacılar için bir araç olabilir.

Giriş

EVs membran bağlı nanopartiküller neredeyse tüm hücre türleri tarafından üretilmektedir. Memeli hücreler için, EVS farklı üretim yolları1,2ile iki ana gruba ayrılabilir. Membran veziküller, yaklaşık 100-1000 Nm boyutunda bir boyutla, hücre zarından doğrudan tomurcuklanma tarafından üretilmektedir. Exosomes, ölçekli 30-200 Nm, daha sonra aynı anda birden fazla exosomes serbest bırakmak için hücre membranı ile sigorta endosomes içine içeri tomurcuklanan tarafından oluşturulan multiveziküler organları türetilmiştir. Bu veziküllerin ana fonksiyonu hücreler arasında bilgi taşımacılığında3. Bu amaçla RNA, DNA ve proteinler gibi kargolar aktif olarak onlara sıralanmaktadır. EVs, hem sağlık hem de hastalık durumunun etkileri ile hedefleri üzerinde çeşitli efektler iletebilir. Bir tarafta, onlar tedavi olarak gelişimi için onları uğurlu hedefler kılan doku rejenerasyon, antijen sunumu veya antibiyotik etkileri gibi olumlu etkileri Arabulmak4,5. Diğer tarafta, EVs tümör vaskülarizasyonu teşvik edebilir6, stres tepkiler7seyirci etkileri, ve otoimmün hastalıklarda rol oynayabilir8 ve inflamatuar hastalıklar9. Böylece, birçok patolojik etkinin daha iyi anlaşılması için önemli bir bileşen olabilirler. Ancak, manifold hastalıklarında değiştirilmiş EVS varlığı, kanser gibi10,11,12 ve kardiyovasküler bozukluklar13, ve kan ve idrar kolay erişilebilirlik onları ideal hale getirir biyolojik. Son olarak, onların iyi biyouyumluluk14 ve onların içsel hedefleme yeteneği EVS de ilaç teslim15için ilginç hale. Bu yazıda, hala az incelenmiş önemli bir özellik olan memeliler hücrelerinden elde edilen EVs 'nin depolama kararlılığının değerlendirilmesi için bir protokol açıklanmaktadır.

EVs 'nin klinik gelişimi için, tedavi edici etkileri, üretim, arıtma ve depolama17' nin değerlendirilmesi de dahil olmak üzere16' nın üzerinde hala birçok engel vardır. Süre-80 ° c, EV depolama18için altın standart olarak yaygın olarak görülür, gerekli dondurucular pahalıdır ve üretim hasta için gerekli soğuk zincir korumak zor olabilir. Dahası, bazı raporlar, depolama-80 °c ' de hala en iyi şekilde EVS koruymaz ve ev işlevselliği19,20bir kayıp indükler gösterir. Freeze-kurutma21,22 veya sprey-kurutma23gibi diğer yöntemler, EVS dondurulmuş depolama için potansiyel alternatifler olarak önerilmiştir.

Depolama stabilitesini değerlendirmesinin en uygun yolu, EVs 'i fonksiyonel testlerle veya belirli bir işaretçinin değerlendirilmesiyle, örneğin antibakteriyel aktivitesi19' a test etmek olacaktır. Bu veziküller istenen etkisi bilindiğinde ve bir ayrı grup EVs incelenecek olduğunda mümkündür. Farklı hücre kaynaklarından EVs karşılaştırıldığında (örneğin, ilaç Kapsülleme için) veya bilinen işlevsel bir okuma yoksa, artık değişiklikleri doğrudan bir şekilde depolama nedeniyle değerlendirmek mümkün değildir.

Öte yandan, sadece kendi fizikokimyasal parametrelerinde değişiklikleri değerlendirmek, boyut gibi, parçacık kurtarma, ve protein konsantrasyonu, her zaman değişiklikler tahmin etmez EV aktivite, son patent gösterildiği gibi20.

Burada, EVS 'in kargo için bir vekil olarak bir kapsüllü Beta-glukuronidaz enziminin aktivitesi ile birlikte fizikokimyasal parametrelerini değerlendirerek, ailelerinin depolama kararlılığını ölçmek için kolayca uygulanabilir bir protokol sağlıyoruz. Enzim yükleme saponin inkübasyon tarafından yapılır, farklı kaynaklardan EVS ile kurulan hafif bir yöntem21,24,25. Saponin, EV membranında enzim alımı sağlayan geçici gözenekleri oluşturur. Enzimlerin etkinliğini kaybetmek eğilimli olduğu gibi olumsuz depolama koşullarına tabi, onlar EVs fonksiyonel kargoların korunması değerlendirilmesi için ideal bir vekil vardır.

Bu protokol uygulamasının insan mezenkimal kök hücrelerinden (MSCS), insan göbek ven endotel hücrelerinden (huvecs) ve insan adenokarsinoma alveolar epitelyal hücrelerden (A549) elde edilmesi, gerçekten de büyük farklılıklar ortaya koyduğunu göstermiştir EV kaynak21seçerken dikkate alınmalıdır farklı hücre hatları arasında depolama stabilitesi.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Protokol

1. hücre kültürü ve hücre-Klima orta üretim

  1. Genellikle, ilgili hücre hattı için gerekli bireysel koşullar altında hücreleri yetiştirmek.
  2. Serum-serbest koşullarda veya orta içeren EV-tükenmiş fetal sığır serumu (FBS) 24-72 h için hücreleri yetiştirmek.
    Not: EV-depleted FBS kullanılırsa, sığır serumu türeyen EVs26ile kontaminasyonu önlemek için serumu verimli bir şekilde arındırma konusunda kanıtlanmış bir yöntem kullanın.
  3. Flasks orta toplayın. 300 x g 'de santrifüjler, hücreleri Pelet etmek için 10 dakika. Pelleted hücreleri rahatsız etmeden, hücre-Klima Orta (CCM) dikkatle toplayın. Tercihen, CCM 'yi doğrudan kullanın veya 4 °C ' de gece saklayın.
    Not: her zaman taze üretilen CCM kullanmak için tercih edilir. Daha uzun zaman dilimlerinin saklanması kaçınılamıyor, tüm ilgili parametreler MISEV2018 yönergelerine uygun olarak kaydedilmelidir ve elde edilen sonuçlarınpotansiyel önyargıları dikkate alınmalıdır.
  4. HUVECs için örnek protokol
    1. FBS ve diğer takviyeleri içeren EGM-2 orta 120 h için HUVEC hücreleri yetiştirmek.
    2. Ek takviyeleri ücretsiz EBM-2 bazal orta 48 h için HUVEC hücreleri yetiştirmek.
    3. Flsordan orta toplayın ve yukarıda belirtildiği gibi santrifüjleme adımını gerçekleştirin (adım 1,3). Genellikle, 100 mL orta bir EV-yalıtım için kullanın.

2. CCM 'nin ultracentasması

  1. Hemen önce (UC), 3.000 x g ve 4 °c ' de 15 dakika santrifüjler, hücre enkaz ve büyük agglomerates çıkarmak için santrifüj.
  2. Dikkatle UC tüpler için süpernatant aktarın. Sabit açılı rotor kullanıyorsanız, UC sonra EV Pelet alınmasını kolaylaştırmak için santrifüjdeki tüpler yönünü işaretleyin. Santrifüjlü 2 h at 120.000 x g, bir k-faktörü 259,4.
  3. UC sonra, özenle bir serolojik pipet kullanarak süpernatant atın, pelleted EVS rahatsızlık önlemek için.
    Not: Pelet görünmez olabilir.
  4. Ekleme 200 μL 0,2 μm-filtrelenmiş fosfat-tamponlu tuz (PBS) ilk tüp ve kullanmak PBS ve kalıntı süpernatant yukarı ve aşağı pipetleme tarafından Pelet pelletini. Elde edilen EV süspansiyonunu ilgili numunenin bir sonraki tüpüne aktarın ve Resuspension için kullanın. Yaklaşık 300-350 μL son hacminde numunenin tüm EVS yeniden pelletini bu şekilde devam edin.
  5. Resuspension sonra, nano madde izleme analizi (NTA) ile partiküllerin varlığını onaylayın. Aşağıdaki ayarlar gibi verilen EV türü için en iyi duruma getirilmiş ayarları kullanın (adım 2.5.1).
    Not: Gardiner ve al.27 ve vestad et al.28 ' ın kağıtları, EVS ölçümleri için parametrelerin optimizasyonu hakkında değerli bilgiler içerir.
    1. Aşağıda açıklanan sonuçları yeniden oluşturmak için, yeşil lazer ile donatılmış enstrümanları (örneğin, NanoSight LM14) kullanın. 1,0 ekran kazanç ve 13 kamera seviyesi ile 30 s üç video kaydedin. Analiz için 1,0 bir ekran kazanç ve 5 algılama eşik kullanın.
  6. Mümkünse Pelet hemen kullanın; Aksi takdirde, gece 4 °C ' de saklayın.

3. EVs içine glucuronidase kapsülleme

  1. Resuspended Pellet, eklemek Beta-glukuronidaz (10 mg/mL PBS) son konsantrasyon 1,5 mg/mL ve saponin (10 mg/mL H2O) son konsantrasyon 0,1 mg/ml. 3 s için vortekslenir tarafından iyi karıştırın.
  2. Tüp hafifçe Flicking ile inter, karıştırma ile Oda sıcaklığında 10 dk için inkübe. Kuluçlantıktan sonra, boyut-dışlama Kromatografi (SEC) ile doğrudan arındırın (Bölüm 5 ' e bakın).
    Not: bir kez çözülmüş glukuronidaz örnekleri refreeze etmeyin, donma nedeniyle enzim bozulması önlemek için.

4. Liposome üretimi

  1. EVs ile karşılaştırıldığında lipozomlar hazırlamak için, 1, 2-dimyristoyl-sn-glisero-3-fosfokolin (dmpc) ve 1, 2-Dipalmitoyl-sn-glisero-3-FOSFATKOLIN (DPPC) 5 mm son konsantrasyonuna kloroform bir 2:3 molar rasyon çözülür. Yüksek performanslı sıvı kromatografi (HPLC) şişeleri 1 ml plakaya hazırlamak ve onları bir lipid film oluşturmak için bir gecede kuru izin.
    DIKKAT: Chloroform toksik ve kancerogenic olduğundan şüpheleniliyor. İşlerken uygun önlemler alın.
  2. 1,5 mg/mL glukuronidaz içeren 1 mL PBS ile lipid-film rehydrate. 42 °C ' ye ısı ve 1 dak. Ekstruder montajını 42 °C ' ye ısıtın ve bir 200 Nm Polikarbonat membrandan lipid süspansiyonu 11x ekstrüze edilir. Doğrudan SEC tarafından arındırır (bkz. Bölüm 5).

5. SEC tarafından arıtma

  1. Aşağıdaki protokolü kullanarak SEC sütununu hazırlayın.
    1. Sadece taze arıtılmış su ve taze hazırlanmış tamponlar kullanın. Bir 0,2 μm membran filtresi ile tüm tamponları filtreleyin ve sütunda hava kabarcıklarının oluşmasını önlemek için onları Degas.
    2. Bir sec sütun hazırlanması için, agaroz jel filtrasyon tabanlı matris (örneğin, Sepharose CL-2B) veya başka bir sec orta protein kirleri ve aşırı enzim EVS ve lipozomlar ayırmak için uygun kullanın. İlk olarak, orta saklanır% 20 EtOH solüsyonu kaldırmak, sütunda hava kabarcık oluşumu önlemek için. Bu amaçla, SEC orta 3.000 x g 10 dakika Santrifüjü, EtOH kaldırmak ve gaz su ile değiştirin.
    3. Bir cam sütunu (10 mm iç çapı ile) SEC orta ile 15 mL işaretine doldurun.
      Not: birimler farklı ölçümlendirmelere sahip sütunlar için farklılık gösterecektir. Jel tamamen yerleşmek izin emin olun.
    4. Bir çalıştırmadan önce, sütunu en az iki sütun hacmine sahip PBS ile dengelenmiş olarak ayarlayın. Sütun saklamak için, önce su bir sütun hacmi ile yıkayın, en az iki sütun hacimleri tarafından takip 20% EtOH. Depodan sonra, ilk olarak PBS ile dengelenmiş önce bir sütun hacmi su ile sütun yıkayın.
    5. En fazla 400 μL 'ye kadar kullanın. 1 mL fraksiyonları toplayın. SEC sonra, ya saf EVs saklamak (Bölüm 7 bakın) veya bir glukuronidase tahlil onları konu (Bölüm 6 bakın).
  2. EVs ve lipozomların kontaminasyon proteinlerini ve ücretsiz glukuronidaz ayrılması onaylayın. Bu amaçla, toplanan fraksiyonlar partikül konsantrasyonlarını protein konsantrasyonu ve glukuronidaz aktivitesi ile ilişkilendirir.
    1. NTA tarafından partikül konsantrasyonunu değerlendir (bkz. 2,5)
    2. Protein içeriği bicinchoninik asit (BCA) tahlil veya başka bir uygun protein ölçüm tahlil tarafından değerlendirmek. Üreticinin protokolüne göre tahlil gerçekleştirin.
    3. Glukuronidase etkinliğini glucuronidase assay ile değerlendir (bkz. Bölüm 6).
  3. İsteğe bağlı olarak, iletim elektron mikroskobu (TEM) ve Tarama elektron mikroskobu (SEM) ile EV morfolojisi değerlendirin.
    1. TEM örneklerinin hazırlanması için, bir TEM ızgarasına 10 μL EV süspansiyon ekleyin, 10 dakika boyunca inküye yapın ve ardından filtre kağıdı kullanarak aşırı sıvıyı uzaklaştırın. 10 μL% 4 paraformaldehit ile 10 dak için sabitleme ve herhangi bir fazlalıktan uzakta leke gerçekleştirin. 3x su ile yıkayın. 30 μL% 1 phosphor-Tungstic asit hidrat ile 20 s inkübasyon ile veziküller leke. Aşırı uzakta Blot sonra, bir gecede veziküller kuru. TEM ile görselleştirin.
      DIKKAT: Phospho-Tungstic asit son derece kostik; Böylece, cilt ve gözleri korumak.
    2. SEM için, daha önce hazırlanan TEM örneklerini karbon disklerine düzeltin ve 50 nm kalınlığında altın tabakaya sahip onları sputter. SEM tarafından görselleştirin.

6. glukuronidaz tahlil

  1. Parçacık numarası ve enzim aktivitesini ilişkilendirerek farklı numune ve depolama koşulları arasında bir karşılaştırmaya izin vermek için, ilk olarak NTA tarafından numunenin parçacık konsantrasyonunu ölçün (bkz. Adım 2,5).
  2. 1 μL bileşik (10 mg/mL H2O) 199 ΜL PBS ekleyerek fluorcein di-β-D-glukuronid çalışma çözeltisi hazırlayın. 8,3 μg/mL 'Lik son bir konsantrasyon elde etmek için 125 μL 'yi saflaştırılmış EVs 'e eklemek için bu çözümün 25 μL değerini ekleyin. Numuneyi siyah 96-kuyu plakasına pipet. Ölçmek zaman noktası 0 h bir plaka okuyucu ile, kullanarak 480 uyarma olarak nm ve 516 emisyon dalga boyu olarak Nm.
  3. Plakayı sıkı bir şekilde (örn., PCR plakaları için kullanılan şeffaf plastik folyo ile) buharlaşmaya en aza indirmek ve 37 °C ' de 18 saat boyunca karanlıkta inkübasyon yapın. 6,2 adımda listelenen plaka okuyucu parametrelerini kullanarak floresan üretimini ölçün.

7. EVs ve lipozomların depolanması

Not: tüm depolama amaçları Için, düşük bağlayıcı tüpler adsorpsiyon nedeniyle EV kaybı azaltmak için kullanılması tavsiye edilir.

  1. Aşağıda verilen temsili sonuçları yeniden oluşturmak için bu bölümdeki parametreleri izleyin. 400 μL 'nin EV süspansiyonunu içeren örnekleri kullanın.
    1. 4 °C veya-80 °C ' de saklayın veya aşağıda belirtilen adımlara geçin.
    2. EVs 'e lyophilize.
      1. Trehaloz Ekle (40 mg/ml H2O) son konsantrasyon kadar 4 mg/ml arıtılmış EVS için. Numuneleri-80 °C ' de en az 1 saat dondurur.
      2. Aşağıdaki parametreleri kullanarak örnekleri lyophilize. Ana kurutma için, raf sıcaklığını 15 °C ' ye ayarlayın ve 0,180 mbar 'a baskı yapın ve örnekleri 46 h için kurumaya bırakın. Son kurutma için, raf sıcaklığını 25 °c ' ye ayarlayın ve 0,0035 mbar 'a baskı yapın ve numuneleri 2 saat boyunca kurumaya bırakın. liyofilize numuneleri 4 °c ' de saklayın.
      3. Numuneleri yeniden nemlendirmek için H2O, başlangıç olarak ev süspansiyonu miktarına eşit (genellikle 400 μL) ekleyin. Rehydration için herhangi bir arabellek kullanmayın.

8. depolama sonrası analiz

  1. Enzim etkinliğini değerlendirmek için, önce depolama sırasında EVs sızdırılmış olabilir ücretsiz glukuronidaz, çıkarın. Bu, SEC (bkz. Adım 5) veya asimetrik akış alanı-akış fraksiyonasyonu (AF4) (bkz. Adım 8.1.2) tarafından gerçekleştirilen arıtma ek bir adım ile elde edin.
    Not: her iki yöntemin de EV örneğinin seyreltilmesine yol açmaları önerilir; Böylece, NTA miktarlandırma sınırının altına taşınmamak için depolama öncesinde yeterli EV konsantrasyonları kullanın. SANIYE veya AF4 nedeniyle parçacıkların bir 1:10 seyreltme bekliyoruz.
    1. SEC arıtma için yukarıda açıklanan protokolü izleyin (bkz. Bölüm 5).
    2. AF4 arıtma gerçekleştirin.
      1. 350 μm spacer ve 30 kD molekül ağırlığı kesilmiş selüloz membranlı küçük bir kanal kullanarak cihazı ayarlayın. HPLC pompası ve AF4 kanalı arasında 0,1 μm gözenek boyutu filtresi yerleştirin. Hafif saçılma dedektörlerinde parçacık yükünü ve gürültüyü azaltmak için taze hazırlanmış 0,1 μm-filtrelenmiş PBS 'i mobil faz olarak kullanın.
      2. 280 nm olarak ayarlanan bir UV dedektörü kullanarak proteinleri algılayın. Parçacıkları algılamak için, 658 nm 'ye kadar lazer seti ile multiangle ışık saçılma kullanın.
      3. Aşağıdaki Run yöntemini kullanın. 1 mL/dak netleme debisi ile 1 dakika ön odak; daha sonra 0,2 mL/dak hızında örnek 300 μL enjekte edin ve odak akışını 10 dakika tutun. Enjeksiyondan sonra, numuneyi 1 mL/dak 'da 2 mL/dk 'dan 0,1 mL/dk 'dan 8 dk. arası akımlı bir çapraz akış uygularken 10 dk. çapraz akış olmadan başka bir on dakika için elute. 12,5 dk sonra başlayan ve 27 dakika kadar devam 1 mL kesirler toplayın.
    3. Yukarıda açıklandığı gibi glucuronidase tahlil gerçekleştirin (Bölüm 6 bakın).
  2. Boyutu ve konsantrasyonu değerlendirmek için, yukarıda açıklandığı gibi NTA kullanın (bkz. Adım 2,5).
  3. İsteğe bağlı olarak, depolama sonrası EVs morfolojisi değerlendirmek için TEM ve SEM gerçekleştirin (bkz. 5,3).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

Şekil 1 , huvecs 'den Izole edilen EVS 'nin depolama özelliklerini görüntüler. EVs UC tarafından izole edildi, glukuronidaz kapsüllenmiş, ve SEC sonra, saflaştırılmış EVs NTA tarafından Fizikokimyasal özellikleri için değerlendirildi. Veziküllerin bir örneği daha sonra AF4 arıtılmasına maruz kalmıştır ve glukuronidaz aktivitesi ölçülmüştür.

Veziküller daha sonra 4 °C veya-80 °C ' de 7 d ve likofilize formda 4 °C ' de, ikinci durumda ise% 4 trehalose eklenmesiyle saklanır. Depo...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

Bu yazıda, EVs 'in farklı depolama koşullarında istikrarını incelemek için kapsamlı bir protokol sunuyoruz. Fonksiyonel bir okuma ve EVs fizikokimyasal parametrelerin değerlendirilmesi olarak kapsüllenmiş glukuronidaz kombinasyonu ile, protokol EVs ve farklı hücreden EVs karşılaştırılması basit bir depolama stabilitesi değerlendirilmesi için izin verir Satır. SEM ve TEM, tamamlayıcı yöntemler olarak tek parçacık düzeyinde EVs değişikliklerine ilişkin bir anlayış sağlar. Burada sunulan sonuçlar, EVs ve lipozomların bir kr...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

Yazarların ifşa etmesi gereken hiçbir şey yok.

Teşekkürler

Federal Eğitim ve Araştırma Bakanlığı NanoMatFutur küçük araştırma programı, Almanya (Grant numarası 13XP5029A) bu işi destekliyor. Maximilian Richter, Doktora Bursu ile Studienstiftung des Deutschen Volkes (Alman Akademik Burs Vakfı) tarafından desteklenmektedir.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
1,2 dimyristoyl-sn glisero-3-fosfo-kolin (DMPC)Sigma-AldrichP2663-25MG
1,2-dipalmitoil-sn-glisero-3-fosfo-kolin (DPPC)Sigma-AldrichP4329-25MG
225 cm ve sup2; hücre kültürü şişeleriCorning43108225 ml ortam
30 kDa rejenere selüloz membranWyatt Technology Europe1854
350 ve mikro; m ara parçasıWyatt Technology Europe
Otomatik fraksiyon toplayıcıThermo Fisher Scientific
Beta-glukuronidazSigma-AldrichG7646-100KU
KloroformFisher scientificC/4966/17
Sütunlu fırınHitachi Yüksek Teknolojiler Avrupa
D-(+)-Trehaloz dihidratSigma-AldrichT9531-10G
DAWN HELEOS II, Çok açılı ışık saçılma dedektörü  Wyatt Technology Europe
Durapore Membran filtre, PVDF,  0,1  &mikro; m, 47  mmMerckVVLP04700AF4
EBM-2Lonza Verviers, S.p.r.CC-3156Endotel Hücre Büyümesi bazal ortam, HUVEC hücrelerinin serumsuz kültürü için kullanılır
Eclipse dualtecWyatt Technology Europe
EGM-2Lonza Verviers, S.p.r.CC-3162Endotel Hücre Büyüme ortamı, HUVEC hücrelerinin normal kültürü için kullanılır
ELISA Plaka KapatıcılarR& Glukuronidaz tahlili için 96 oyuklu plakaların sızdırmazlığı için kullanılanDY992
EtanolFisher scientificE / 0665DF / 17
Tutucu / Isıtma Bloklu Ekstruder SetiAvanti Polar Lipids610000-1EA
Filtre desteğiAvanti Polar Lipids610014-1EAlipozom hazırlama için kullanılır
Floresein di-β -D-glukoronidThermo Fisher ScientificF2915
Gibco PBS-tabletler+CA10:F36Thermo Fisher Scientific18912014
Hettich Universal 320 RAndreas Hettich GmbH & Co.KGR'de hücrelerin peletlenmesi için kullanılır
AndreasHettich GmbH & Co.KG3000 g HUVEC hücrelerinde daha büyük döküntüleri peletlemek için kullanılır
Lonza Verviers, Öğr.C2517A
Kimble  FlexColumn 1X30CMKimble420401-1030
Liyofilizatör ALPHA 2-4 LSCMesih Mikrosantrifüj
Tüpleri, PolipropilenVWR uluslararası525-0255tüm EV işlemleri için kullanılan tüplerin, partikül geri kazanımı konusunda diğer tedarikçilerin karşılaştırılabilir ürünlerinden daha uygun olduğu bulundu
Nanosight LM14 yeşil lazer ile donatılmışMalvern Pananalytical
Nanosight yazılım sürümü 3.1Malvern Pananalitik
Nükleopore 200 nm iz-aşındırma polikarbonat membranlarWhatman/GE Healthcare110406lipozom hazırlama için kullanılır
PEEK Satır içi filtre tutucuWyatt Technology Europe
Fosfotungstik asit hidratSigma-Aldrich79690-25G
Ultrasantrifüjleme için polikarbonat şişelerBeckman Coulter355622
QuantiPro BCA Test KitiSigma-AldrichQPBCA-1KT
SaponinSigma-Aldrich47036
Taramalı elektron mikroskobu Zeiss EVO HD 15Carl Zeiss AG
Sepharose Cl-2bGE Sağlık17014001
SEM bakır karbon filmli ızgaralarPlanoS160-4
Küçük AF4 kanalıWyatt Technology Europe
Sputter-coater Q150R ESQuorum Technologies
Transmisyon elektron mikroskobu JEOL JEM 2011Oxford Instruments
Tip 45 Ti ultrasantrifüj rotoruBeckman Coulter339160
Ultimate 3000 Dionex otomatik numune alma cihazıThermo Fisher Scientific Ultimate
3000 Dionex izokratik pompaThermo Fisher Scientific
Ultimate 3000 Dionex online vakumlu gaz gidericiThermo Fisher Scientific
Ultrasantrifüj OptimaTM L-90 KBeckman Coulter
UV dedektörüThermo Fisher Scientific
Whatman 0.2 ve mikro; m gözenek boyutu karışık selüloz filtreWhatman/GE Healthcare10401712EV'lerde ve SEC'de kullanılan tüm tamponların filtrasyonu için kullanılır
ile kullanılır için tamponların hazırlanmasında kullanılır.D Systems 300 g Hettich Rotina 420

Kaynaklar

  1. Stremersch, S., De Smedt, S. C., Raemdonck, K. Therapeutic and diagnostic applications of extracellular vesicles. Journal of Controlled Release. 244, Part B 167-183 (2016).
  2. Fuhrmann, G., Herrmann, I. K., Stevens, M. M. Cell-derived vesicles for drug therapy and diagnostics: Opportunities and challenges. Nano Today. 10 (3), 397-409 (2015).
  3. Goes, A., Fuhrmann, G. Biogenic and Biomimetic Carriers as Versatile Transporters To Treat Infections. ACS Infectious Diseases. 4 (6), 881-892 (2018).
  4. György, B., Hung, M. E., Breakefield, X. O., Leonard, J. N. Therapeutic Applications of Extracellular Vesicles: Clinical Promise and Open Questions. Annual Review of Pharmacology and Toxicology. 55, 439-464 (2015).
  5. Schulz, E., et al. Biocompatible bacteria-derived vesicles show inherent antimicrobial activity. Journal of Controlled Release. 290, 46-55 (2018).
  6. Feng, Q., et al. A class of extracellular vesicles from breast cancer cells activates VEGF receptors and tumour angiogenesis. Nature Communications. 8, 14450(2017).
  7. Bewicke-Copley, F., et al. Extracellular vesicles released following heat stress induce bystander effect in unstressed populations. Journal of Extracellular Vesicles. 6, 1340746(2017).
  8. Xu, Y., et al. Macrophages transfer antigens to dendritic cells by releasing exosomes containing dead-cell-associated antigens partially through a ceramide-dependent pathway to enhance CD4(+) T-cell responses. Immunology. 149 (2), 157-171 (2016).
  9. Buzas, E. I., György, B., Nagy, G., Falus, A., Gay, S. Emerging role of extracellular vesicles in inflammatory diseases. Nature Reviews Rheumatology. 10, 356(2014).
  10. Rajappa, P., et al. Malignant Astrocytic Tumor Progression Potentiated by JAK-mediated Recruitment of Myeloid Cells. Clinical Cancer Research: An Official Journal of the American Association for Cancer Research. 23 (12), 3109-3119 (2017).
  11. Umezu, T., et al. Exosomal miR-135b shed from hypoxic multiple myeloma cells enhances angiogenesis by targeting factor-inhibiting HIF-1. Blood. 124 (25), 3748-3757 (2014).
  12. Costa-Silva, B., et al. Pancreatic cancer exosomes initiate pre-metastatic niche formation in the liver. Nature Cell Biology. 17 (6), 816-826 (2015).
  13. Boulanger, C. M., Loyer, X., Rautou, P. -E., Amabile, N. Extracellular vesicles in coronary artery disease. Nature Reviews Cardiology. 14, 259(2017).
  14. Zhu, X., et al. Comprehensive toxicity and immunogenicity studies reveal minimal effects in mice following sustained dosing of extracellular vesicles derived from HEK293T cells. Journal of Extracellular Vesicles. 6 (1), 1324730(2017).
  15. Vader, P., Mol, E. A., Pasterkamp, G., Schiffelers, R. M. Extracellular vesicles for drug delivery. Advanced Drug Delivery Reviews. 106, Part A 148-156 (2016).
  16. Ingato, D., Lee, J. U., Sim, S. J., Kwon, Y. J. Good things come in small packages: Overcoming challenges to harness extracellular vesicles for therapeutic delivery. Journal of Controlled Release. 241, 174-185 (2016).
  17. Gimona, M., Pachler, K., Laner-Plamberger, S., Schallmoser, K., Rohde, E. Manufacturing of Human Extracellular Vesicle-Based Therapeutics for Clinical Use. International Journal of Molecular Sciences. 18 (6), 1190(2017).
  18. Jeyaram, A., Jay, S. M. Preservation and Storage Stability of Extracellular Vesicles for Therapeutic Applications. The AAPS Journal. 20 (1), 1(2017).
  19. Lőrincz, ÁM., et al. Effect of storage on physical and functional properties of extracellular vesicles derived from neutrophilic granulocytes. Journal of Extracellular Vesicles. 3, 25465(2014).
  20. Processes for producing stable exosome formulations. US patent. , Beverly Hills, CA. WO/2016/090183 (2016).
  21. Frank, J., et al. Extracellular vesicles protect glucuronidase model enzymes during freeze-drying. Scientific Reports. 8 (1), 12377(2018).
  22. Charoenviriyakul, C., Takahashi, Y., Nishikawa, M., Takakura, Y. Preservation of exosomes at room temperature using lyophilization. International Journal of Pharmaceutics. 553 (1), 1-7 (2018).
  23. Kusuma, G. D., et al. To Protect and to Preserve: Novel Preservation Strategies for Extracellular Vesicles. Frontiers in Pharmacology. 9 (1199), (2018).
  24. Haney, M. J., et al. Exosomes as drug delivery vehicles for Parkinson's disease therapy. Journal of Controlled Release. 207, 18-30 (2015).
  25. Fuhrmann, G., Serio, A., Mazo, M., Nair, R., Stevens, M. M. Active loading into extracellular vesicles significantly improves the cellular uptake and photodynamic effect of porphyrins. Journal of Controlled Release. 205, 35-44 (2015).
  26. Théry, C., et al. Minimal information for studies of extracellular vesicles 2018 (MISEV2018): a position statement of the International Society for Extracellular Vesicles and update of the MISEV2014 guidelines. Journal of Extracellular Vesicles. 7 (1), 1535750(2018).
  27. Gardiner, C., Ferreira, Y. J., Dragovic, R. A., Redman, C. W. G., Sargent, I. L. Extracellular vesicle sizing and enumeration by nanoparticle tracking analysis. Journal of Extracellular Vesicles. 2 (1), 19671(2013).
  28. Vestad, B., et al. Size and concentration analyses of extracellular vesicles by nanoparticle tracking analysis: a variation study. Journal of Extracellular Vesicles. 6 (1), 1344087(2017).
  29. Bosch, S., et al. Trehalose prevents aggregation of exosomes and cryodamage. Scientific Reports. 6, 36162(2016).
  30. Bhattacharjee, S. DLS and zeta potential - What they are and what they are not. Journal of Controlled Release. 235, 337-351 (2016).
  31. Van Deun, J., et al. The impact of disparate isolation methods for extracellular vesicles on downstream RNA profiling. Journal of Extracellular Vesicles. 3 (1), 24858(2014).
  32. Taylor, D. D., Shah, S. Methods of isolating extracellular vesicles impact down-stream analyses of their cargoes. Methods. 87, 3-10 (2015).
  33. Patel, D. B., et al. Impact of cell culture parameters on production and vascularization bioactivity of mesenchymal stem cell-derived extracellular vesicles. Bioengineering & Translational Medicine. 2 (2), 170-179 (2017).
  34. Gardiner, C., et al. Techniques used for the isolation and characterization of extracellular vesicles: results of a worldwide survey. Journal of Extracellular Vesicles. 5 (1), 32945(2016).
  35. Zhang, H., et al. Identification of distinct nanoparticles and subsets of extracellular vesicles by asymmetric flow field-flow fractionation. Nature Cell Biology. 20 (3), 332-343 (2018).
  36. Linares, R., Tan, S., Gounou, C., Arraud, N., Brisson, A. R. High-speed centrifugation induces aggregation of extracellular vesicles. Journal of Extracellular Vesicles. 4 (1), 29509(2015).
  37. Lobb, R. J., et al. Optimized exosome isolation protocol for cell culture supernatant and human plasma. Journal of Extracellular Vesicles. 4, 27031(2015).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Daha fazla makale keşfet

Asimetrik Akış Alanı FraksiyonlamasıBoyut Dışlama KromatografisiBeta Glukuronidaz EnkapsülasyonuNanopartikül İzleme AnaliziGeçirimli Elektron MikroskobuLiyofilizasyon ProtokolüEnzim Aktivite AnaliziPartikül Geri Kazanım Ölçümü
Ekstrasellüler veziküllerin depolama Istikrarı değerlendirilmesi
Bize Ulaşın
Kütüphaneye Öner

Gizlilik

Kullanım Koşulları

Politikalar

Telif Hakkı © 2026 MyJoVE Corporation. Tüm hakları saklıdır.