Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliğiniz gereklidir. Giriş yapın veya ücretsiz denemenizi bugün başlatın.

Yöntem makalesi

Hücre viability ve ölüm kanser hücrelerinin 3D Küroid kültürlerde değerlendirilmesi

28.6K görüntülenme

⸱

DOI:

10.3791/59714

⸱

16 Haziran 2019

 ,  , 
1Section for Cell Biology and Physiology, Department of Biology, Faculty of Science, University of Copenhagen

Bu makalede

Özet

Burada, 2D kültürden çok daha iyi in vivo tümörlerin fiziko-kimyasal degradelerini taklit eden 3D kanser hücresi kürelerinin içinde canlanıyor ve ölümü değerlendirmek için birkaç basit yöntem sunuyoruz. Bu nedenle, küroid modeli, kanser ilaç etkinliğinin değerlendirilmesi için gelişmiş çeviri ile in vivo koşullara izin verir.

Özet

Kanser hücrelerinin üç boyutlu kürüler hem kanser ilaç ekranları için önemli araçlar ve kanser hücresi biyoloji içine mekanik fikir kazanmak için. Bu preparatın gücü, hızlı, ucuz ve nispeten yüksek verim taramasına izin verecek kadar çok yönlü olmakla beraber, tümörün in vivo koşullarının birçok yönünü taklit etme yeteneğiyle yatıyor. Küroid kültürü koşulları, bir tümördeki fiziko-kimyasal degradeleri, artan ekstrellüler asitliği, artan lakdamak, ve glikoz ve oksijen kullanılabilirliğini azaltarak, küre çevresinden çekirdeğine kadar tekrar edebilir. Ayrıca, in vivo tümörlerin mekanik özellikleri ve hücre hücre etkileşimleri kısmen bu model tarafından taklit edilmiştir. Özel özellikleri ve sonuç olarak en iyi büyüme koşulları, 3D kürler, farklı kanser hücrelerinin türleri arasında farklıdır. Ayrıca, 3D Kürklerde hücre cancılığı ve ölümün değerlendirilmesi, 2D kültürler için istihdam edenler kısmen farklılık yöntemleri gerektirir. Burada kanser hücrelerinin 3D kürleri hazırlamak için çeşitli protokoller açıklamak ve antikanser ilaçların etkinliğini değerlendirmek bağlamında hücre canlılığı ve ölüm değerlendirmek için bu tür kültürler kullanmak için.

Giriş

Kanser biyolojisinde çok hücreli küre modellerinin kullanımı birkaç yıl eski1,2, ama son yıllarda önemli momentum kazanmıştır. Büyük ölçüde, bu kanser hücrelerinin phenoype onların mikroçevre ve spesifik büyüme koşullarına bağlı olduğu ne kadar güçlü farkındalığını arttırmaktadır. Solid tümörlerde mikroçevre, karşılık gelen normal dokularda temelde farklıdır. Bu pH gibi fiziko-kimyasal koşulları içerir, oksijen gerilimi, yanı sıra interstisyel basınç, besin gibi çözünür faktörlerin konsantrasyon degradeler, atık ürünler, ve salgılanmış sinyalizasyon bileşikleri (büyüme faktörleri, sitokinler). Ayrıca, hücre içi matris (ECM), hücreli hücre etkileşimleri ve hücresel sinyalizasyon organizasyonu ve tümör3,4, belirli üç boyutlu (3D) mimarisi diğer yönlerini içerir 5,6. Kanser hücrelerinin mevcut olduğu spesifik mikroçevresel koşullar, gen ifade profilini ve fonksiyonel özelliklerini derinden etkiler ve 2D 'de yetiştirilen hücrelerle karşılaştırıldığında, 3D kürelerinin fenotipini çok daha yakından taklit ettiği açıktır. In vivo tümörleri7,8,9,10,11. 2D modelleri, hipotoksi, Asidik pH ve yüksek laktat konsantrasyonları tümör mikroortamın bilinen yönlerini taklit etmek bile, hala tümör içinde doğan fizico-Kimyasal parametrelerin degradeleri yakalamak için başarısız, yanı sıra onların 3D tümör Mimari. Öte yandan, hayvan modelleri, pahalı, yavaş ve etik problemli, ve genellikle, aynı zamanda insan tümörü koşullarını tekrar etme yeteneğinde eksiklikleri vardır. Sonuç olarak, 3D Kürtler en katı kanserlerin çoğu özellikleri geniş bir yelpazede çalışmalarda bir ara karmaşıklık modeli olarak uygulanmıştır9,11,12,13, 14,15,16,17.

3B kürlerin yaygın olarak istihdam edilmesi, antikanser terapisi etkinliğini9,18,19,20' ye göre taramasında yer almaktadır. Tedavi tepkiler özellikle tümör mikroortama duyarlıdır, hem tortuların etkisini yansıtan, kısıtlı difüzyon, yüksek interstisyel basınç, ve ilaç teslim asidik çevresel pH, ve hipoksi ve diğer etkisi hücre ölüm tepkisi üzerinde mikroçevre yönleri9,17. 3D küre içerisindeki çevre, tüm bu özellikleri7,8,9,10,11olarak geliştirdiğinden, 3D hücre kültürlerini istihdam edebilir sonuçların in vivo koşullarına çevirisini önemli ölçüde iyileştirebilir, ancak net büyümenin verimli ve uygun maliyetli yüksek verim taramasına izin verir. Ancak, kanser hücrelerinin ilaç tepkisi üzerinde çalışmaların büyük çoğunluğu hala 2D koşullar altında gerçekleştirilir. Bu büyük olasılıkla, bazı deneyleri nispeten kolayca 3D hücre kültürler için uygulanabilir iken, birçok, gibi canlılığı gibi, Batı blotting, ve immünofluorescence analizi, çok daha uygun 2D 3D daha yapılır.

Mevcut çalışmanın amacı, Anti-kanser ilaçları ile tedavinin etkisinin analiz edilmesi için, 3 boyutlu bir tümördeki ayarı taklit eden kanser hücresi kalabilirlik ve hayatta kalma konusunda kolayca sağlamlık ve hassas protokoller sağlamaktır. Özellikle, biz sağlamak ve küresel oluşumu için üç farklı yöntemler karşılaştırmak, büyüme, canlılığı ve ilaç tepkisi nitel ve niceliksel analizler için yöntemler izledi.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Protokol

1. kürler üretimi

  1. Hücre süspansiyonları için küroid oluşumu hazırlanması
    Not:     farklı hücre hatları çok farklı yapışma özelliklerine sahiptir ve her durumda en uygun küroid oluşumu Protokolü kurulmalıdır. Biz MCF-7 ve BxPC-3 hücrelerin spontan küre oluşumu için uygun olduğunu bulduk, MDA-MB-231, SKBr-3, panc-1 ve MiaPaCa başarıyla küroidler oluşturmak için reconstituted Bodrum membran ilavesi gerektirir. Asılı bırakma protokolü için yalnızca MDA-MB-231 ve BxPC-3 hücreleri kullanıldı, ancak diğer hücre hatları kesinlikle uygulanabilir.
    1. % 70-80 konfluency kadar hücreleri tek tabakalı olarak büyütün.
    2. Fosfat tamponlu tuz ile yıkama hücreleri (1x PBS, 5 ml için 25 cm2 veya 10 ml için bir 75 cm2 Flask), hücre ayrışma enzim ekleyin (0,5 ml için bir 25 cm2 veya 1 ml için bir 75 cm2 Flask) ve bir hücre inküserle 2-5 min için 37 °c % 5 CO2 ve 95% nem cinsinden.
    3. Bir mikroskop altında hücre dekolmanı kontrol edin ve büyüme orta ekleyerek hücre dağılma enzim nötralize (6-10% serum hücre hattına bağlı olarak) Toplam hacmine 5 mL bir 25 cm2 veya 10 ml için bir 75 cm2 Flask.
    4. Hücreleri saymak ve hücre hazırlama başına Oda 8 kareler saymak için bir BüRkEr odası kullanın kürelerin boyutunun yüksek bir yeniden üretilebilirliği elde etmek.
      Not: Her bir küroid oluşumu için farklı bir yöntem açıklayan üç protokol aşağıda sunulmuştur. Protokol 1,2 ve 1,3, sunulan tüm sonraki analitik protokoller için kullanılabilir, protokol 1,4 en iyi gömme ve lysate preparatları için uygundur. Hücre hattına bağlı olarak, kullanılan yönteme bakılmaksızın, küroid oluşumu 2-4 gün sürer.
  2. Spontan küroid oluşumu
    1. 1.1.1-1.1.4 arasındaki adımları gerçekleştirin.
    2. 0.5-2 x 104 hücre/ml (her hücre hattı için en uygun hücre yoğunluğunun belirlenmesi gerekir) elde etmek Için 15 ml tüpte hücre süspansiyonunu seyreltin (Şekil 1a (ii)).
    3. Kalan kuyuların buharlaşma azaltmak için 1x PBS veya büyüme ortamı ile kuyuların dış yüzük doldurun. Hücre süspansiyonunu steril bir rezervuar olarak aktarın ve çok kanallı pipet kullanarak 200 μL/Well 'i Ultra düşük ataşman 96-kuyu yuvarlak alt plakalara yerleştirin (Şekil 1a (III)).
    4. 5% CO2, 95% nem Ile 37 °c ' de bir kuluçte plakayı inkübe et.
    5. Her 2-3 gün, kürlerin hafif mikroskobik görüntülerini elde ederler.
      Not: Bu kağıttaki resimler, bu protokoller kullanılarak hazırlanan çoğu küre için uygun olan 11.5 x büyütmede alınır.
    6. Her 2-3 gün (görüntü aldıktan sonra) 100 μL orta yerine (harcanan orta 100 μL kaldırın ve yeni orta 100 μL ile değiştirin.
      Not: Orta değiştirirken küratörlerin kaldırılmasını önlemek için, bu plaka biraz eğmek için tavsiye edilir yavaş orta kaldırarak ve onu atarak önce görünür kürler için ipuçları emişli orta incelemek.
  3. Reconstituted Bodrum membran-aracılı küroid oluşumu.
    Not:     laktoz dehidrogenaz yükseltme virüsü (LDEV)-ücretsiz azaltılmış büyüme faktörü reconstituted Bodrum membran (rBM) kullanıldı. rBM sıcaklığa duyarlıdır ve her zaman buzda tutulmalıdır, çünkü 15 °C ' ye ulaşırsa pıhtısı olacaktır. RBM 'yi buzda bir gecede 4 °C ' de ya da kaplama öncesi oda sıcaklığında (RT) 2-4 h olarak çözün.
    1. Buz üzerinde çözme rBM (bkz. malzeme tablosu).
    2. Kullanmadan önce buzun üzerinde plaka ve rezervuar (ayrı olarak sarılmış ise) tutun.
    3. 1.1.1-1.1.4 arasındaki adımları gerçekleştirin.
    4. Kalan kuyuların buharlaşma azaltmak için 1x PBS veya büyüme ortamı ile kuyuların dış yüzük doldurun. 0.5-2 x 104 hücre/ml (her hücre hattı için en uygun hücre yoğunluğunun belirlenmesi gerekir) elde etmek Için 15 ml tüpte hücre süspansiyonunu seyreltin (Şekil 1a (ii)).
    5. Seyreltilmiş hücre süspansiyonunu içeren 15 mL tüpü buzun üzerine yerleştirin (örn. cam kabı içinde) (Şekil 1A (IIa)).
    6. Soğutulmuş plakaları ve rezervuar kaputu aktarın. Plastik kapları durulayın, buzla doldurun ve plakaların ve rezervuar tüm prosedür sırasında buzun üzerine yerleştirilmesine izin vermek için kaput içine aktarın.
    7. Homojen bir jel sağlamak için hafifçe resuspend rBM.
    8. % 1-2 rBM Ekle (her hücre hattı için optimum konsantrasyon belirlenmesi gerekir) soğutulmuş hücre süspansiyonları (Şekil 1A (IIb)).
    9. Süspansiyonu plakaya dağıtmadan önce rBM ve hücre süspansiyonunun uygun şekilde karıştırılmasını sağlamak için 15 mL tüpünü tersine çevirin.
    10. RBM içeren hücre süspansiyonunu steril bir rezervuar olarak aktarın ve 200 μL/Well 'i çok kanallı pipet kullanarak soğutulmuş Ultra düşük ataşman 96-kuyu plakalarına dağıtın (Şekil 1a (III)).
      Not: Birkaç hücre süspansiyonları (örn., birden fazla hücre hattı) ile çalışıyorsanız, erken jellenme önlemek için rBM ek hemen sonra her hücre süspansiyon dağıtmak için esastır.
    11. Plaka Santrifüjü 15 dakika 750 x g ' yumuşak terbiyeli ' kullanarak/frenleme (mümkünse, 4 °c ' de santrifüjler, RBM sıvısını daha uzun tutmak için ancak başarılı bir küroid oluşumu için bir gereksinim değil), RBM olduğunda hücrelerin birlikte kümelenmesini sağlamak için tek bir küroid oluşumunu kolaylaştırarak sertleşir.
    12. Plakayı bir kuluçte (37 °C,% 5 CO2, 95% nem) ile inkübe et.
    13. Her 2-3 gün küroid büyümesini değerlendirmek için ışık mikroskobik görüntüler elde.
    14. Her 2-3 gün 100 μL orta yerine (100 μL kaldırın ve 100 μL taze orta ile değiştirin).
  4. Asılı damla kürler.
    1. Adım 1.1.1-1.1.4 gerçekleştirin.
    2. Uygun bir seyreltme elde etmek için hücreleri seyreltin. Pratik bir seyreltme 50.000 hücreler/mL 'dir.
    3. 10 cm2 hücreli kültür çanak kapağını çıkarın ve yukarı bakacak şekilde yerleştirin. Yemek için 6 mL 1x PBS ekleyin (Şekil 1B (ı)).
    4. Hücre süspansiyonunu steril bir rezervuar halinde dökün ve çok kanallı pipet (Şekil 1B (ii)) kullanarak hücre kültürü çanak kapağına 40 μL hücre süspansiyonunun 30 damla kadar dikkatle yerleştirin ve 2.000 hücre/damla konsantrasyonu ile sonuçlanır. Bu damlalar aşağıdaki adımda kapak ters zaman yüzey gerilimi kaybetmek daha olasıdır gibi çok kapak kenarına yakın damla yerleştirerek kaçının.
    5. Kapağı hızlı ama kontrollü bir hareketle tersine çevirin ve onu 1x PBS içeren hücre kültürü çanak üstüne yerleştirin (Şekil 1B (III)).
    6. Çanağı 37 °C ' de,% 5 CO2 ve% 95 nem ile bir kuluçla yerleştirin ve onları 4-6 gün boyunca büyümeye bırakın.
    7. Eğer protein endoglikozidazları veya gömme için kullanılmak üzere, havuz küreler kapağı kaldırarak ve eğim, ısıtılmış orta 1 ml ile damla yıkamak için. Elde edilen orta içeren kürleri bir 1,5 mL tüpüne aktarın ve tüpün altına yerleşmelerine izin verin. 4,4 içinde açıklandığı gibi devam edin ve 6.2.2 protein endoglikozidazları ve katıştırma için sırasıyla.

2. kürlerin ilaç tedavisi

Not: Uzun vadeli ilaç tedavisi, bir ilaç ilgi etkileri için ekran için kürler uygulanabilir. İlaç tedavisi başlatmadan önce, deneysel tedavi için uygun bir doz bulmak için, ilaç (ler) bir doz yanıtı deneyi gerçekleştirmek için tavsiye edilir. Dozlar bu değerin 0.2 x-10X civarında belirlenen ıC50/kı ilaç ve aralığı dayalı olmalıdır.

  1. 1,2 veya 1,3 ' de açıklandığı gibi istenilen koşul başına 6-12 küre ayarlayın ve 2 gün boyunca kuluçko (37 °C,% 5 CO2,% 95 nem) olarak yerleştirin.
  2. 2. gün, kürlerin hafif mikroskobik görüntülerini alın.
  3. İlk tedavi dozlarını hazırlayın (görüntüleri aldıktan sonra).
    Not: İlk tedavi konsantrasyonu, iyi içeren 100 μL ortamına ek olarak 1:2 seyreltilmiş olacak şekilde istenilen son konsantrasyon iki katı olmalıdır. Önerilen ilaç tedavi aralıkları (ilaç yarı ömrü bağlıdır): gün 2, 4 ve 7.
  4. Çok kanallı bir pipet kullanarak, 100 μL 'i yavaşça çıkarın ve 100 μL ilaç içeren medyası ile değiştirin.
  5. 96-kuyu plakasını, 37 °C ' de% 5 CO2 ve% 95 nem ve tekrar 2,3 ve 2,4 tedavi sırasında, ancak şimdi doz ikiye katlayarak doğru son doz elde etmek için
  6. Protokol/tedavi zamanlamanın son gününde, aşağıdaki kuraldan biri veya birkaçı gerçekleştirilebilir.

3. kürler için hücre viability tahlil

  1. 1,2 veya 1,3 ' de açıklandığı gibi istenilen koşul başına 4-6 küre ayarlayın ve% 5 CO2 ve% 95 nem Ile 37 °c ' de kuluçla yerleştirin.
    Not: Bu durumda, hücre canlılığı tahlil gün yapılmıştır 7 veya 9, sonra izlenen küroid büyüme her 2-3 gün ışık mikroskobu tarafından yukarıda açıklandığı gibi (nokta 1.2.5 ve 1.3.13).
  2. Çözünme testi reakajının çözülmesi ( malzeme tablosunabakın) ve kullanım öncesinde RT 'ye doğrultma edelim.
  3. Homojen bir çözüm elde etmek için tersine çevirme ile yavaşça karıştırın.
  4. Tahlil yapmadan önce, kültür ortamının% 50 'ini kürlerden (100 μL) çıkarın.
  5. Her bir iyi bir 1:3 oranı iyi bir hücre canlılığı reaktif ekleyin (Şekil 2a (ı)) bir 96-kuyu plaka için, 50 μL reaktif, 100 μL orta için ekleyin.
  6. Hücre Lizi (Şekil 2A (ii)) için 5 dakika boyunca şiddetle içeriği karıştırın.
  7. Luminesans sinyalini stabilize etmek için RT 'de 25 dakika boyunca inküye yapın (Şekil 2A (III)).
  8. Işıksaçan sinyali kaydedin (Şekil 2A (iv)).

4.3D küre kültürler Batı blotting için protein Lysates hazırlanması

Not: Kürleri topladığınızda, bir P200 pipet kullanmak ve daha büyük bir açılış ve dolayısıyla kendi yapısını rahatsız etmeden kürelerinin daha kolay bir yakalama sağlamak için ucunun sonunu kesmek için tavsiye edilir.

  1. Her koşul için, havuz en az 12, ideal 18-24 küre (küroid boyutuna bağlı olarak) bir 1,5 mL tüp (önlemek 2 mL tüpler, sonraki adımlar daha az sivri alt nedeniyle daha zor hale gelecek gibi).
    Not: Eğer orta miktarı, tüm kürler toplanan önce 1,5 mL aşıyor, toplanan kürlerin alt yerleşmek için izin (çok hızlı olur, santrifüjleme gerekli değildir) ve toplama devam etmeden önce tüp yarı hacminin atmak kalan kürler.
  2. Boru buzun üzerine yerleştirin ve kürlerin 1,5 mL tüpünün altına yerleşmesine izin verin.
  3. Steril hücre laboratuvarından düzenli laboratuvara taşıyın.
  4. 1 mL buz soğuk 1x PBS içinde iki kez yıkayın küreler. Her yıkama adımı arasında 1x PBS çıkarmadan önce küreler yerleşmek edelim.
  5. Kürleri rahatsız etmeden veya çıkarmadan mümkün olduğunca fazla 1x PBS aspirate.
  6. Fosfataz ve proteaz inhibitörleri ile 5 μL ısıtmalı liziz tamponu (LB) ekleyin (örn., 10 küroid = 50 μL LB).
  7. Girdap tekrarı aralıkları, kürler çözülene kadar aşağı doğru spin ile takip edilir. 30 s santrifüjleme (bir masa santrifüj kullanarak hızlı bir spin yeterli) için 10 s için yaklaşık 5-10 dk boyutuna bağlı olarak ve kürlerin kompaktum için vortekslenir bir döngü gerçekleştirin.
    Not: Protokol burada duraklatılmış olabilir. Bir standart 2D protein lysate protokolü olarak sonication, homojenizasyon ve protein belirlenmesi devam edene kadar-20 °c ' de endoglikozidazları tutun, standart protokolleri kullanarak Batı Blot izledi.

5. propidium Iodide (PI) kürlerin boyama

  1. 1,2 veya 1,3 ' de açıklandığı gibi istenilen koşul başına 3-6 küre ayarlayın ve% 5 CO2 ve% 95 nem Ile 37 °c ' de kuluçla yerleştirin.
  2. Steril bir hücre kültürü laboratuarında, 1x PBS-37 °C sıcaklığa sahiptir.
  3. 1x PBS 'de stok çözeltisi seyreltilerek 4 μM ' lik bir PI çözeltisi yapın: 1x PBS 'de 1 mg/mL sulu stokunun PI 1:350 seyreltilmesi.
    Not: Bu konsantrasyon, 2 μM. 100 μL 'ye son konsantrasyon veren kuyulara çözümün eklenmesi üzerine daha da yarıya inecektir.
    Dikkat: Propidium iyodide (PI) bir duman kaputu ve eldiven giyen ele alınmalıdır. PI hafif duyarlıdır. İşlerken ışığa karşı koruyun.
  4. 100 μL 'den, 96-kuyu plakasının her bir kuyunda kürleri kaldırmadan çıkarın.
  5. Tüm kuyulara 100 μL ısıtmalı 1x PBS ekleyerek, kuyularda 100 μL sıvının kaldırılmasını sağlayarak kalan ortamı yıkayın. Bu yıkama adımını 3 kez tekrarlayın.
  6. Her bir kuyu için PI çözeltisi 100 μL ekleyin, plakayı alüminyum folyoyla Kapla ve 37 °C ' de% 5 CO2 ve% 95 nem ile 10-15 min.
  7. 4,5 'de açıklanan 3 yıkama adımını, görüntüleme sırasında arka plan sinyalini azaltmak için PI çözümünü yıkamak üzere tekrarlayın.
  8. Kürleri görüntü için bir epifluorescence mikroskop kullanın. Küre çekirdeğindeki hücrelerin canlılığı değerlendirmek için z-yığınlar kürid değişen derinliklerinde görüntüleri almak için almak.
    Not: Küroid boyutuna bağlı olarak her dilim arasında 18-35 μm civarında bir adım boyutu tavsiye edilir, her küroid başına yaklaşık 11-18 yığınları verir. Z-yığınları ımagej 'de, tüm z-yığınlarını bir son resme birleştirebilir ve bu amaçla ımagej 'nin kullanımı hakkında daha fazla kılavuz için (https://imagej.net/Z-functions) görmek suretiyle, bir final resmine birleştirmek için z-projeksiyon fonksiyonunu kullanarak işlenebilir.

6.3B kürlerin gömülmesi

  1. (Yalnızca gerekli ilk kez protokol gerçekleştirirken) kürlerin gömülü olduğu agaroz jel hazırlayın.
    1. 1 gr bactoagar Mix 50 mL ddH2O.
    2. Bactoagar çözünmüş ve homojen bir jel meydana gelene kadar mikrodalga fırında yavaşça ısı. Jelin kaynatmasına izin verme.
    3. 60 °C ' de su banyosundan bactoagar sıcak tutun.
    4. Deneyler arasında 4 °C ' de tutun.
  2. Kürlerin gömülmesi.
    1. Gün 1, her koşul için, havuz bir 1,5 mL tüp en az 12 kürler.
    2. 1 mL buz soğuk 1x PBS ile bir kez yıkayın.
    3. Kürleri düzeltmek için 1 mL% 4 paraformaldehyde ekleyin.
      Not: Paraformaldehitin işlenmesi bir duman kaputu içinde yapılmalıdır.
    4. Onları RT 24 saat için inkük edelim.
    5. 2. gün, agaroz jelini bir mikrodalga fırınında su dolu bir beber içine yerleştirerek dikkatlice ısıtın. Jel kaynatmadığından emin olun! 60 °C ' de kullanıma kadar sıcak bir Isıtma plakasında ısınmaya devam edin.
    6. 1 mL buz soğuk 1x PBS ile iki kez yıkayın.
    7. 1x PBS 'nin çoğunu aspirate (Bu noktada yaklaşık 100 μL bırakarak, kürelerin işlenmesi için pratiktir).
    8. Daha büyük bir delik ile sivri bir uç elde etmek için bir eğim içinde Pipet ucunu keserek 20 μL pipet hazırlayın (resme bakın).
      Not: Bir sonraki bölümde optimum küroid transferini sağlamak ve jel damlası katılaşma önlemek için hızlı bir şekilde yapılmalıdır. Isıtma bloğu mevcut değilse, ilk önce kürleri yakalamak ve sonra agaroz damlası (yani, 6.2.9 ve 6.2.10 noktalarının sırasını değiştirme) yapmak için tavsiye edilir.
    9. Bir mikroskop slayt üzerinde agaroz jel damla olun. Agaroz 'nin katılaşma yapılmasını önlemek için slaytı sıcak bir Isıtma bloğuna yerleştirin.
    10. Değiştirilmiş Pipet ucunu kullanarak (bkz 6.2.8), 15-20 μL hacminde mümkün olduğunca çok sayıda kürü yakalayın.
    11. 15-20 μl küroid içeren 1x PBS 'i, mikroskop kaydırağı dokunmadan agaroz jel damlası merkezine dikkatle enjekte etmek.
      Not: Bu biraz zor bir nokta. Pipet Ucu, kürleri jel damlası içine enjekte ederken mikroskop kaydırağı dokunursa, kürler kaybolacak. Bu agaroz damla yapma ve damla içine renkli bir sıvı enjekte ederek kürler enjekte tüm süreci pratik tavsiye edilir. Renkli sıvı slayt üzerine sızdıracak gibi bu, damla yoluyla potansiyel bir penetrasyon görselleştirme izin verecektir.
    12. RT 'de veya 4 °c ' de 5-10 dk için inkübe ederek agaroz jel damla sertleşmesine izin verin. Jel damlası biraz (ama hala oldukça yumuşak) katılaştırılmış bir kez, dikkatle bir neşter ile bir plastik doku kaseti içine mikroskop slayt jel damla itin.
    13. 70% etanol içinde plastik doku kasetleri kapak.
      Not: Bu noktada kürler doğrudan kullanılabilir veya aylar boyunca depolanabilir.
    14. Parafin içinde agarose gömülü küre katıştırmak, 2-3 μm kalınlığında katman slaytlar içine bölüm ve hematokslin ve eozin ile leke veya immüno-histolojik boyama tabi.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

Şekil 1A ve Şekil 1B'de şematik olarak gösterilen küroid oluşumu protokolüne dayalı olarak küre büyüme, Anti-kanser ilaç tedavilerinin 3D tümördeki etkilerini analiz etmek için bir başlangıç noktası olarak kullanılmıştır. ayar taklit. Hangi kürler oluşturulur kolaylığı hücre hattına özeldir ve bazı hücre hatları tutarlı kürler22oluşturmak Için RBM ile takviyesi gerektirir. Eklenen rBM konsantrasyonu, kürl...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

3D kanser hücresi kürüler kullanımı sadece antikanser ilaç taraması için değerli ve çok yönlü bir araç kanıtlanmıştır, aynı zamanda tümör bu taklit koşullar altında kanser hücresi ölüm ve canlılığı düzenlenmesi içine mekanik fikir kazanmak için Mikro. Bu özellikle erişilebilirlik, hücresel alımı ve kemoterapötik ilaçların hücre içi etkileri gibi tümör, pH, oksijen gerilimi, tortuluk ve fiziksel ve fiziko-kimyasal koşullar tarafından derinden etkilenir çok önemlidir kimyasal hücre-hücre etkileşimleri9

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

Yazarlar hiç bir ilgi çatışması bildirmiyor.

Teşekkürler

Biz Katrine Franklin Mark ve Annette Bartels için mükemmel teknik yardım ve Asbjørn Nøhr-Nielsen şekil 1D deneyler gerçekleştirmek için minnettarız. Bu çalışma Einar Willumsen Vakfı, Novo Nordisk Vakfı ve Fondation Juchum (tüm SFP için) tarafından finanse edildi.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
2- (4-amidinofenil) -1H-indol-6-karboksamidin (DAPI)İnvitrojen# C10595 ve nbsp;Çekirdekleri boyamak için
5-Fluorourasil (5-FU)Sigma-Aldrich#F6627Kemoterapötik tedavide
5- (N-etil-izopropil) amilorid (EIPA)Yaşam Teknolojileri#E3111sinyalizasyonuna karşı NHE1 Antikorunun İnhibitörü
# 9542Batı blotlamada kullanılır
Ki-67Hücre sinyalizasyonuna# 9449IHC
için kullanılırp53 Hücre Sinyaline karşı antikor #2524 IHC için kullanılır
β-aktin Sigma'ya karşı antikor A5441Batı lekelemede kullanılır
BactoagarBD Bioscience# 214010Agaroz jel hazırlama için kullanılır
Benchmark protein merdiveniInvitrogen# 10747-012SDS-PAGE
Bio-Rad DC Protein Test kitiiçin kullanılır Bio-Rad Laboratuvarları# 500-0113, # 500-0114, # 500-0115 & nbsp;  Lizatlardan protein tayini için kullanılır
Bü rker odasıMarienfeld610311Hücre sayımı için 
BX63 epifloresan mikroskobuOlympusFloresan görüntüleme için kullanılır
CellTiter-Glo 3D Hücre Canlılık TestiPromega#G9681Hücre canlılığı testi için kullanılır
CisplatinSigma-Aldrich#P4394 Kemoterapötik tedavide bileşen
Corning Sferoid Mikroplaka, 96 kuyulu, şeffaf yuvarlak tabanlı siyah,  Ultra düşük ataşman, Kapaklı, SterilCorning# 4520Uç nokta olarak lüminesans ölçümleri ile sferoidleri büyütmek için kullanılır
Corning 96 kuyusu, şeffaf yuvarlak alt,  Ultra düşük bağlantılı mikroplaka, Kapaklı, SterilCorning# 7007Uç nokta olarak lüminesans ölçümleri olmadan küresel büyüme için yeterli
Criterion TGX Prekast JellerSDS-PAGE
DoksorubisinAbcam# 120629için Kullanılan Bio-Rad 5671025 Kemoterapötik tedavide bileşen
FLUOStar Optima Mikroplaka okuyucuBMG LabtechLüminesans kaydetmek için kullanılır 
Formaldehit VWR Kimyasalları #9713.1000 Hücre fiksasyonu için kullanılır
Geltrex LDEV-İçermeyen Azaltılmış Büyüme Faktörü Bodrum Membran MatrisiGibco#A14132024 °C'de tutun; Katılaşmayı önlemek için C. Protokolde rBM olarak anılır.
Isıyla inaktive edilmiş FBSSigma#F9665Büyüme ortamı için serum
ImageJNIHBilimsel Görüntü analizi
Medim Uni-safe casetteMedim Histotechnologie10-0114Gömülü sferoidlerin depolanması için kullanılır
Mini proteaz inhibitörü kokteyl tabletleriRoche Diagnostics GmBH # 11836153001Lizis tamponu hazırlığı için kullanılır
MZ16 mikroskobuLeicaIşık mikroskobik görüntüler için kullanılır
NuPAGE LDS 4x Örnek Tamponu Invitrogen#NP0007Batı lekeleme için kullanılır
Pierce ECL Batı kurutma substratıThermo scientific# 32106Batı kurutma için kullanılır
Ponceau SSigma-Aldrich#P7170-1LProtein bandı boyama için kullanılır
Prism 6.0GraphpadBilimsel grafik ve istatistik yazılımı
Propidium iyodür (suda 1mg/ml çözelti)Canlandırıcı P3566Işığa duyarlı 
Steril rezervuarlar, çok kanallıSPL yaşam bilimleri21002Küresel oluşumu için hücreleri tohumlamak için kullanılır
Superfrost Ultra-Plus Yapışma slaytı Menzel-Glä ser#J3800AMNZgömmek için kullanılan mikroskop cam slayt
#T5648Kemoterapötik tedavi olarak kullanılır
Trans-blot Turbo 0.2 & mikro; m nitroselüloz membranlarBio-Rad# 170-4159Batı blotlama Tris
/ Glisin / SDS çalışma tamponu için kullanılır Biyo-Rad # 161 0732SDS-PAGE
Trypsin-EDTA çözümüSigma#T4174 için kullanılır;Hücre ayrışma enzimi
bileşen PARP ve cPARP Hücre karşı antikor Tamoksifen Sigma-Aldrich'i

Kaynaklar

  1. Sutherland, R. M. Cell and environment interactions in tumor microregions: the multicell spheroid model. Science. 240 (4849), 177-184 (1988).
  2. Mueller-Klieser, W., Freyer, J. P., Sutherland, R. M. Influence of glucose and oxygen supply conditions on the oxygenation of multicellular spheroids. British Journal of Cancer. 53 (3), 345-353 (1986).
  3. Gaedtke, L., Thoenes, L., Culmsee, C., Mayer, B., Wagner, E. Proteomic analysis reveals differences in protein expression in spheroid versus monolayer cultures of low-passage colon carcinoma cells. Journal of Proteome Research. 6 (11), 4111-4118 (2007).
  4. Chen, J. L., et al. The genomic analysis of lactic acidosis and acidosis response in human cancers. PLoS Genetics. 4 (12), 1000293(2008).
  5. Cukierman, E., Pankov, R., Stevens, D. R., Yamada, K. M. Taking cell-matrix adhesions to the third dimension. Science. 294 (5547), 1708-1712 (2001).
  6. Gudjonsson, T., Ronnov-Jessen, L., Villadsen, R., Bissell, M. J., Petersen, O. W. To create the correct microenvironment: three-dimensional heterotypic collagen assays for human breast epithelial morphogenesis and neoplasia. Methods. 30 (3), 247-255 (2003).
  7. Pampaloni, F., Reynaud, E. G., Stelzer, E. H. The third dimension bridges the gap between cell culture and live tissue. Nature Reviews in Molecular and Cell Biology. 8 (10), 839-845 (2007).
  8. Hirschhaeuser, F., et al. Multicellular tumor spheroids: an underestimated tool is catching up again. Journal of Biotechnology. 148 (1), 3-15 (2010).
  9. Jacobi, N., et al. Organotypic three-dimensional cancer cell cultures mirror drug responses in vivo: lessons learned from the inhibition of EGFR signaling. Oncotarget. 8 (64), 107423-107440 (2017).
  10. Rodriguez-Enriquez, S., et al. Energy metabolism transition in multi-cellular human tumor spheroids. Journal of Cell Physiology. 216 (1), 189-197 (2008).
  11. Kunz-Schughart, L. A. Multicellular tumor spheroids: intermediates between monolayer culture and in vivo tumor. Cell Biology International. 23 (3), 157-161 (1999).
  12. Andersen, A. P., et al. Roles of acid-extruding ion transporters in regulation of breast cancer cell growth in a 3-dimensional microenvironment. Molecular Cancer. 15 (1), 45(2016).
  13. Swietach, P., Patiar, S., Supuran, C. T., Harris, A. L., Vaughan-Jones, R. D. The role of carbonic anhydrase 9 in regulating extracellular and intracellular ph in three-dimensional tumor cell growths. Journal of Biological Chemistry. 284 (30), 20299-20310 (2009).
  14. Walenta, S., Doetsch, J., Mueller-Klieser, W., Kunz-Schughart, L. A. Metabolic imaging in multicellular spheroids of oncogene-transfected fibroblasts. Journal of Histochemistry and Cytochemistry. 48 (4), 509-522 (2000).
  15. Kunz-Schughart, L. A., Groebe, K., Mueller-Klieser, W. Three-dimensional cell culture induces novel proliferative and metabolic alterations associated with oncogenic transformation. International Journal of Cancer. 66 (4), 578-586 (1996).
  16. Feng, H., et al. Homogeneous pancreatic cancer spheroids mimic growth pattern of circulating tumor cell clusters and macrometastases: displaying heterogeneity and crater-like structure on inner layer. Journal of Cancer Research and Clinical Oncology. 143 (9), 1771-1786 (2017).
  17. Santini, M. T., Rainaldi, G., Indovina, P. L. Apoptosis, cell adhesion and the extracellular matrix in the three-dimensional growth of multicellular tumor spheroids. Critical Reviews in Oncology/Hematology. 36 (2-3), 75-87 (2000).
  18. Vinci, M., et al. Advances in establishment and analysis of three-dimensional tumor spheroid-based functional assays for target validation and drug evaluation. BMC Biology. 10, 29(2012).
  19. Pickl, M., Ries, C. H. Comparison of 3D and 2D tumor models reveals enhanced HER2 activation in 3D associated with an increased response to trastuzumab. Oncogene. 28 (3), 461-468 (2009).
  20. Wong, C., Vosburgh, E., Levine, A. J., Cong, L., Xu, E. Y. Human neuroendocrine tumor cell lines as a three-dimensional model for the study of human neuroendocrine tumor therapy. Journal of Visual Experiments. (66), e4218(2012).
  21. Friedrich, J., et al. A reliable tool to determine cell viability in complex 3-d culture: the acid phosphatase assay. Journal of Biomolecular Screening. 12 (7), 925-937 (2007).
  22. Ivascu, A., Kubbies, M. Diversity of cell-mediated adhesions in breast cancer spheroids. International Journal of Oncology. 31 (6), 1403-1413 (2007).
  23. Crouch, S. P., Kozlowski, R., Slater, K. J., Fletcher, J. The use of ATP bioluminescence as a measure of cell proliferation and cytotoxicity. Journal of Immunological Methods. 160 (1), 81-88 (1993).
  24. Andersen, A. P., et al. The net acid extruders NHE1, NBCn1 and MCT4 promote mammary tumor growth through distinct but overlapping mechanisms. International Journal of Cancer. , (2018).
  25. Vaupel, P. Tumor microenvironmental physiology and its implications for radiation oncology. Seminars in Radiation Oncology. 14 (3), 198-206 (2004).
  26. Vaupel, P. W., Frinak, S., Bicher, H. I. Heterogeneous oxygen partial pressure and pH distribution in C3H mouse mammary adenocarcinoma. Cancer Research. 41 (5), 2008-2013 (1981).
  27. Helmlinger, G., Yuan, F., Dellian, M., Jain, R. K. Interstitial pH and pO2 gradients in solid tumors in vivo: high-resolution measurements reveal a lack of correlation. Nature Medicine. 3 (2), 177-182 (1997).
  28. Zhang, X., Lin, Y., Gillies, R. J. Tumor pH and its measurement. Journal of Nuclear Medicine. 51 (8), 1167-1170 (2010).
  29. Gillies, R. J., Raghunand, N., Karczmar, G. S., Bhujwalla, Z. M. MRI of the tumor microenvironment. Journal of Magnetic Resonance Imaging. 16 (4), 430-450 (2002).
  30. Vukovic, V., Tannock, I. F. Influence of low pH on cytotoxicity of paclitaxel, mitoxantrone and topotecan. British Journal of Cancer. 75 (8), 1167-1172 (1997).
  31. Song, C. W., Griffin, R., Park, H. J. Cancer Drug Resistance. Teicher, B. A. , Humana Press. 21-42 (2006).
  32. Lotz, C., et al. Role of the tumor microenvironment in the activity and expression of the p-glycoprotein in human colon carcinoma cells. Oncology Reports. 17 (1), 239-244 (2007).
  33. Sant, S., Johnston, P. A. The production of 3D tumor spheroids for cancer drug discovery. Drug Discovery Today: Technologies. 23, 27-36 (2017).
  34. Stratmann, A. T., et al. Establishment of a human 3D lung cancer model based on a biological tissue matrix combined with a Boolean in silico model. Molecular Oncology. 8 (2), 351-365 (2014).
  35. Kuen, J., Darowski, D., Kluge, T., Majety, M. Pancreatic cancer cell/fibroblast co-culture induces M2 like macrophages that influence therapeutic response in a 3D model. PLoS One. 12 (7), 0182039(2017).
  36. Bochet, L., et al. Adipocyte-derived fibroblasts promote tumor progression and contribute to the desmoplastic reaction in breast cancer. Cancer Research. 73 (18), 5657-5668 (2013).
  37. Amann, A., et al. Development of a 3D angiogenesis model to study tumour - endothelial cell interactions and the effects of anti-angiogenic drugs. Scientific Reports. 7 (1), 2963(2017).
  38. LaBonia, G. J., Ludwig, K. R., Mousseau, C. B., Hummon, A. B. iTRAQ Quantitative Proteomic Profiling and MALDI-MSI of Colon Cancer Spheroids Treated with Combination Chemotherapies in a 3D Printed Fluidic Device. Analytical Chemistry. 90 (2), 1423-1430 (2018).
  39. Hulikova, A., Vaughan-Jones, R. D., Swietach, P. Dual role of CO2/HCO3(-) formula buffer in the regulation of intracellular pH of three-dimensional tumor growths. Journal of Biological Chemistry. 286 (16), 13815-13826 (2011).
  40. Wallace, D. I., Guo, X. Properties of tumor spheroid growth exhibited by simple mathematical models. Frontiers in Oncology. 3, 51(2013).
  41. Michel, T., et al. Mathematical modeling of the proliferation gradient in multicellular tumor spheroids. Journal of Theoretical Biology. 458, 133-147 (2018).
  42. Meijer, T. G., Naipal, K. A., Jager, A., van Gent, D. C. Ex vivo tumor culture systems for functional drug testing and therapy response prediction. Future Science OA. 3 (2), (2017).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Etiketler

3B Sferoid KültürüKanser Hücre CanlılığıHücre Ölümü DeğerlendirmesiAntikanser İlaç TaramaTümör MikroçevresiEl Damlatma Yöntemiİmmünohistokimya GömmePropidyum İyodür BoyamaZ-Yığını GörüntülemerBM Konsantrasyon Etkileri
Hücre viability ve ölüm kanser hücrelerinin 3D Küroid kültürlerde değerlendirilmesi
Bize Ulaşın
Kütüphaneye Öner

Gizlilik

Kullanım Koşulları

Politikalar

Telif Hakkı © 2026 MyJoVE Corporation. Tüm hakları saklıdır.