Yöntem makalesi

Bakteri ve Kimyasalların Caenorhabditis elegans'ın Bağırsak Geçirgenliği Üzerine Etkilerinin Ölçülmesi

DOI:

10.3791/60419

⸱

3 Aralık 2019

 ,  ,  , 
1Gangneung Institute of Natural Products, Korea Institute of Science and Technology, 2Division of Bio-Medical Science & Technology, Korea University of Science and Technology (UST)

Bu makalede

Özet

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Bu protokol, Caenorhabditis elegansbağırsak geçirgenliği ölçmek için nasıl açıklar. Bu yöntem bağırsak bakterileri ve ev sahibi arasındaki etkileşim ile ilgili bağırsak sağlığı temel biyolojik araştırma ve sızıntılı bağırsak sendromu ve inflamatuar barsak hastalıkları nın tedavisi için probiyotik ve kimyasal ajanları belirlemek için tarama için yararlıdır.

Özet

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Yaşayan organizmalarda, bağırsak hiperpermeability birçok inflamatuar barsak hastalıklarına yol açan ciddi bir belirtidir (IbDs). Caenorhabditis elegans, kısa ömrü, şeffaflığı, maliyet etkinliği ve hayvan etiği sorunlarının eksikliği nedeniyle yaygın olarak bir tahsin sistemi olarak kullanılan memeli olmayan bir hayvan modelidir. Bu çalışmada, c. elegans'ın yüksek işlemli görüntü analiz sistemi ile bağırsak geçirgenliği üzerine farklı bakterilerin ve 3,3'-diindolylmethane (DIM) etkilerini araştırmak için bir yöntem geliştirilmiştir. Solucanlar farklı bağırsak bakterileri ile enfekte edildi veya 48 saat dim ile birlikte tedavi edildi ve floresan isotiyoyanat ile beslenen (FITC)-dextran gecede. Daha sonra, bağırsak geçirgenliği floresan görüntüleri ve solucan cisimleri içindeki floresan yoğunluğu karşılaştırılarak incelendi. Bu yöntem aynı zamanda hayvan modelinde bağırsak geçirgenliğini etkileyen probiyotik ve patojenik bağırsak bakterileri belirlemek için potansiyele sahip olabilir ve bağırsak geçirgenliği ve bağırsak sağlığı üzerinde zararlı veya sağlık teşvik kimyasalların etkilerini incelemek için etkilidir. Ancak, bu protokol aynı zamanda genetik düzeyde bazı önemli sınırlamalar vardır, özellikle hangi genlerin hastalığı kontrol etmek için değiştirilir belirlemek için, Bu yöntem çoğunlukla fenotipik belirlenmesi için kullanılır çünkü. Buna ek olarak, bu yöntem tam olarak hangi patojenik substratların inflamasyona neden olduğunu belirlemek veya enfeksiyon sırasında solucanların bağırsaklarının geçirgenliğini artırmakla sınırlıdır. Bu nedenle, mutant bakteri ve nematodların moleküler genetik mekanizmasının araştırılması nın yanı sıra bakterilerin kimyasal bileşen analizi de dahil olmak üzere daha derinlemesine çalışmalar, bağırsak geçirgenliğini belirlemede bakteri ve kimyasalların işlevini tam olarak değerlendirmek için gereklidir.

Giriş

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Bağırsak geçirgenliği bağırsak mikrobiyotası ve mukozal bağışıklık ile ilgili ana engellerden biri olarak kabul edilir ve bağırsak mikrobiyota modifikasyonları, epitel bozukluğu veya mukus tabakası değişiklikleri gibi çeşitli faktörlerden etkilenmesi muhtemeldir1. Son kağıtlar bağırsak hücretabakası2 genelinde floresan akı oranları analiz ederek kültürlü insan bağırsak hücrelerinin bağırsak geçirgenliğini ölçmek için etkili protokoller bildirdin 2 , ama daha az araştırma kağıtları nematodlarda bağırsak geçirgenliğini ölçmek için uygun bir prosedür mevcut, Özellikle C. elegans, FITC-dextran boyama kullanarak.

Nil kırmızısı3 ve erioglaucine disodyum (veya Şirin tayini) 4,5kullanarak C. elegans bağırsak geçirgenliğini ölçmek için iki temsili protokol vardır. Bu protokolde, Nil kırmızısı (MW = 318,37) ve erioglaucin disodyum (MW = 792,85) çok daha yüksek molekül ağırlığına sahip FITC-dextran (ortalama molekül ağırlığı 10.000) kullanıldı. FITC-dextran, Nil kırmızısı veya erioglaucine disodyum boyalarından bağırsak tabakası yoluyla emilen karbonhidratlar gibi gerçek makromoleküler besinlere daha benzer. Erioglaucine disodyum (mavi Şirin boya) ile beslenen C. elegans bağırsak geçirgenliği kolayca floresan mikroskopi olmadan değerlendirilebilir. Ancak Şirin tahlillerinde, bağırsak geçirgenliğinin kantitatif analizi standardizasyon eksikliği nedeniyle zordur ve elle değerlendirilmelidir4,5. Nil kırmızısı tetkik durumunda, Nil kırmızısı da hücrelerde lipid damlacıkları lekeler, Hangi C. elegansbağırsak geçirgenliği tam belirlenmesi ni engelleyebilir6. Bu protokoller, spesifik olmayan lipid boyamakaçınArak çeşitli bağırsak bakteri ve kimyasallar ile tedavi Edilen C. elegans bağırsak geçirgenliğinin hızlı ve kesin kantitatif analizini sağlar.

C. elegans biyolojik alanlarda uygun fiyat, kolay manipülasyon, sınırlı hayvan etiği sorunları ve hızlı deneme 7için yararlı olan kısa ömrü nedeniyle tipik bir modeldir. Özellikle C. elegans genomunun tamamı yayınlandıktan sonra C. elegans genomundaki genlerin yaklaşık %40'ının insan hastalıklarına neden olan genler için ortolog olduğu bulunmuştur8. Ayrıca, şeffaf vücut hücresel olayları araştırmak ve hücre biyolojisi floresan uygulamaları için avantajlı organizma içinde gözlem sağlar, örneğin, DAPI veya immünohistokimya ile kök hücre boyama9. C. elegans genellikle bağırsak mikrobiyota ve konak arasındaki etkileşimi incelemek için deneysel bir hayvan olarak kullanılır; buna ek olarak, C. elegans tarama için kullanılır sağlık teşvik probiyotik bakteriler10,11,12 yanı sıra diyet kimyasallar bağırsak sağlığını teşvik13,14.

Pseudomonas aeruginosa ve Enterococcus faecalis olumsuz gastrointestinal sistemi etkileyen iyi bilinen bağırsak bakterileri, bağırsak sistemi özellikle kolon epitel hücreleri15,16. Bu nedenle, bu bakterilertarafından tetiklenen bağırsak geçirgenliğinin ölçülmesi, bakteriyel inflamasyon ve enfeksiyonun neden olduğu hasarı geri kazanabilen ve azaltabilecek yeni ilaçların taranması ve geliştirilmesi için gereklidir. Bu protokolde, bu bağırsak bakterilerinin C. elegansbağırsak geçirgenliği üzerindeki etkilerini test ettik.

Ayrıca C. elegansbağırsak geçirgenliği üzerinde kimyasallar test etmek için optimize edilmiş bir protokol rapor. Bu amaçla, dim indole-3-karbinol elde edilen bir biyoaktif metabolit bileşik olduğu için bir model kimyasal olarak 3,3'-diindolylmethane (DIM) kullanılan, Brassica gıda tesislerinde mevcut olan, ve farelerde IBD üzerinde tedavi edici etkileri olduğu bildirilmiştir17,18. Buna ek olarak, son zamanlarda DIM hem kültürlü insan bağırsak hücrelerinde bağırsak geçirgenliği disfonksiyonu yanı sıra model nematode C. elegans19geliştirir keşfetti.

Bu çalışmada üç farklı deneysel koşul kullandık. İlk olarak, farklı bakterilerin, P. aeruginosa ve E. faecalis'in bağırsak geçirgenliği üzerindeki etkilerini ölçtük(Şekil 1). İkinci olarak, canlı ve ısıya bağlı P. aeruginosa'nın bağırsak geçirgenliği üzerindeki etkilerini ölçtük(Şekil 2). Üçüncü olarak, Dim 'in (bir model kimyasal) P. aeruginosa ile beslenen C. elegans'ın bağırsak geçirgenliği üzerindeki etkilerini ölçtük(Şekil 3).

Bu çalışmanın amacı, çeşitli bağırsak bakterileri ile tedavi ile de değişen C. elegansbağırsak geçirgenliğini ölçmek optimize protokoller geliştirmek oldu yanı sıra kimyasallar ile.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Protokol

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. P. aeruginosa PAO1 ve Escherichia coli OP50 Kültürünün hazırlanması

  1. 500 mL sterilize Edilmiş Luria-Bertani (LB) ortamı(Tablo 1)hazırlayın ve p. aeruginosa kolonisini ortama aşılayın. Kültürü 37 °C'de 150 rpm sallayarak 14 ila 15 saat kuluçkaya yatırın.
  2. Bakteri kültürünü eşit olarak iki 500 mL santrifüj tüpüne dağıtın ve tüpleri 30 dakika boyunca 4 °C'de 3.220 x g'de santrifüj edin.
  3. Hacim 50 mL (ilk hacmin onda biri) olana kadar supernatant çıkarın ve bakteriyel pelet resuspend.
  4. Konsantre bakteri kültürünü kullanıma kadar 4 °C'de saklayın. P. aeruginosa kültürünün depolama süresi kadar olabilir 1 ay, ama taze kültür bağırsak hasarı neden olmak için daha iyidir.
    NOT: Protokol burada duraklatılmış olabilir. Tüm canlı bakterilere ek olarak, bakteri kültürünün supernatant bağırsak bakterilerin etkilerini test etmek için kullanılabilir19.
  5. E. coli OP50 hazırlamak için, dyt ortamda kültür E. coli OP50(Tablo 1)ve daha sonra yukarıda açıklananlar için benzer adımlar uygulayın ama orijinal hacmin altıda birine hacmi azaltmak. Örneğin, ilk hacim 500 mL ise, supernatant çıkardıktan sonra, kalan hacim yaklaşık 83 mL'dir.
    NOT: Protokol burada duraklatılmış olabilir.

2. Enterococcus faecalis KCTC 3206 Kültür hazırlanması

  1. Sterilize beyin kalp infüzyonu (BHI) suyu 500 mL hazırlayın(Tablo 1).
  2. Bir koloniyi BHI suyu 500 mL'ye dönüştürün ve 37 °C ve 150 rpm'de sallanan bir kuluçka makinesinde 14-15 saat boyunca kültürü kuluçkaya yatırın.
  3. Bakteri kültürünü eşit olarak iki 500 mL santrifüj tüpüne dağıtın ve tüpleri 30 dakika boyunca 4 °C'de 3.220 x g'de santrifüj edin.
  4. Hacim 50 mL (ilk hacmin onda biri) olana kadar supernatant çıkarın ve pelet yeniden askıya.
  5. Konsantre bakteri kültürünü kullanıma kadar 4 °C'de saklayın. Taze kültür bağırsak geçirgenliği üzerindeki etkilerini test etmek için daha iyidir.
    NOT: Protokol burada duraklatılmış olabilir.

3. Isı ile inaktive E. coli OP50 ve Isı ile inaktive P. aeruginosa PAO1 Kültürlerin Hazırlanması

  1. Kültür ve hasat yukarıda açıklandığı gibi bakteri (adım 1.1-1.3).
  2. Isı-E. coli OP50 veya P. aeruginosa PAO1 kültür daha önce açıklandığı gibiinaktive 20,21,22. Isı inaktivasyonu için, 65 °C 'de (su banyosu) 30 dakika boyunca resuspended bakterileri kuluçkaya yatırın.
  3. Konsantre bakteri kültürünü oda sıcaklığına kadar soğutun ve kullanıma kadar 4 °C'de saklayın. Depolama süresi 1 aya kadar olabilir.
    NOT: Protokol burada duraklatılmış olabilir.

4. C. elegans Bağırsak Geçirgenliği Farklı Bakterilerin Etkilerini Test etmek için Nematod Büyüme Orta (NGM) Plakaların Hazırlanması

  1. 500 mL cam şişeye 1,25 g pepton, 1,5 g NaCl, 8,5 g agar, manyetik karıştırıcı ve 487,5 mL distile su yerleştirin(Tablo 1).
  2. Karışımı iyice karıştırın, 121 °C'de 15 dk karışımı otoklavlayın ve karışımı 30 dk su banyosunda 55 °C'ye kadar soğutun.
  3. Ortayı su banyosundan çıkarın, bileşenleri (0,5 mL 1 M CaCl2,0,5 mL kolesterol, 0,5 mL MgSO4, 12,5 mL KPO4)(Tablo 1) NGM'ye ekleyin ve iyice karıştırın.
    NOT: Kolesterol (mutlak etanol içinde çözünmüş) dışında tüm bireysel bileşenler otoklavlı olmalıdır ve her deneysel adım temiz bir tezgah üzerinde yapılmalıdır.
  4. Her 90 x 15 mm Petri kabına 20 mL NGM dağıtın ve agarın oda sıcaklığında (yaklaşık 20 °C) temiz bir tezgahta katılamasını bekleyin. NGM plakaları 4 °C'de bir aya kadar saklanabilir.
    NOT: Protokol burada duraklatılmış olabilir. FITC-dextran boyama için kullanılan NGM plakaları aynı prosedürle (4.1-4.3. basamaklardan) hazırlanmıştır. Her 60 x 15 mm Petri kabına 10 mL NGM dağıtıldı ve oda sıcaklığında (yaklaşık 20 °C) temiz bir tezgahta katılaşmaya izin verildi.
  5. Bakteri kültürünü 4 °C buzdolabından çıkarın ve kültürü NGM plakalarına yaymadan önce kültürü iyice girdaplayın.
  6. Her taze NGM plakasına toplam 800°L bakteri kültürü ekleyin ve plakaların bir gecede 20 °C'lik bir kuluçka makinesinde kurumasını bekleyin.
    NOT: İlk deney için(Şekil 1), E. coli OP50 ile iki NGM plaka, P. aeruginosa PAO1 ile bir NGM plaka ve E. faecalis KCTC3206 ile bir NGM plaka sı hazırlanmıştır. İkinci deney için(Şekil 2), canlı E. coli OP50 ile iki NGM plaka, canlı P. aeruginosa PAO1 ile bir NGM plaka ve ısı yalıtımlı P. aeruginosa PAO1 ile bir NGM plaka sıyrıklı p. aeruginosa PAO1 hazırlandı.

5. P. aeruginosa ile beslenen C. elegans Fed'in Bağırsak Geçirgenliği Üzerine Kimyasal (DIM) Etkilerini Test Etmek Için NGM Plakalarının Hazırlanması

  1. 500 mL cam şişeye (NGM agar) 0,5 g pepton, 0,6 g NaCl, 195 mL distile su, manyetik karıştırıcı ve 6,8 g agar ekleyin.
  2. 0,5 g pepton, 0,6 g NaCl, 195 mL distile su ve başka bir 500 mL cam şişe (NGM suyu) için agar olmadan bir manyetik karıştırıcı ekleyin.
  3. Otoklav iki şişe (adımlar 5.1-5.2), bir boş 100 mL cam şişe ve 15 dakika için boş 500 mL cam şişe 121 °C. Daha sonra, şişe içeren ortamın 30 dakika su banyosunda 55 °C'ye soğumasını bekleyin.
  4. Katkı kimyasallarını NGM suyuna ekleyin: 0.4 mL 1 M CaCl2,0.4 mL kolesterol etanol (mL), 0.4 mL 1 M MgSO4 ve 10 mL 1 M KPO4 (bu bileşenlerin hepsi etanoldeki kolesterol dışında sterilize edilmelidir). Daha sonra karışımı 55 °C'de manyetik bir karıştırıcı ile iyice karıştırın.
  5. Otoklavlı boş 500 mL cam şişeyi dimetil sülfoksit (DMSO) ve otoklavlı boş 100 mL cam şişeyi DIM ile etiketleyin.
  6. 50 mL NGM suyu midim etiketli 100 mL şişeye aktarın. Şişeye 500 μL 20 mM DIM stok ekleyin ve iyice karıştırın.
    NOT: DIM, DMSO'da (20 mM DIM stok) çözünür.
  7. NGM agar ortamını su banyosundan hızlıca çıkarın, DIM etiketli şişeye 50 mL'lik NGM agar ortamı ekleyin ve iyice karıştırın.
  8. Her 90 mm x 15 mm Petri kabına 20 mL DIM içeren NGM ortamı yerleştirin. Bu adımdan yaklaşık beş DIM içeren NGM plakası yapılabilir.
    NOT: Her NGM plakasındaki DIM'in son konsantrasyonu 100 μM olacaktır.
  9. DMSO içeren NGM plakasını hazırlamak için 150 mL NGM suyu DMSO etiketli 500 mL şişeye aktarın. Şişeye 1,5 mL DMSO ekleyin ve iyice karıştırın.
  10. DMSO etiketli şişeye 150 mL NGM agar ortamı ekleyin ve iyice karıştırın.
  11. Her 90 mm x 15 mm Petri kabına 20 mL DMSO içeren NGM ortamı yerleştirin. Bu adımdan yaklaşık on beş DMSO içeren NGM plakası yapılabilir.
    NOT: Her NGM plakasında KiDSO'nun son konsantrasyonu %0.5 olacaktır.
  12. Plakaları oda sıcaklığında en az 3 saat katıhale getirin ve kullanıma kadar 4 °C'de saklayın.
    NOT: Protokol burada duraklatılmış olabilir.
  13. E. coli OP50 veya P. aeruginosa PAO1 kültürünü 4 °C buzdolabından (adım 1.4)'ten çıkarın ve NGM plakalarına yayılmadan önce kültürü düzgün bir şekilde girdaplayın.
  14. Her taze NGM agar plaka üzerine 800 μL E. coli OP50 veya P. aeruginosa PAO1 bakteri kültürünü koyun ve plakaların bir gecede 20 °C'lik bir kuluçka makinesinde kurumasını bekleyin.
    NOT: Protokol burada duraklatılmış olabilir. Üçüncü deney için(Şekil 3),canlı E. coli OP50 ile kaplanmış iki DMSO içeren NGM plakası, canlı P. aeruginosa PAO1 ile kaplanmış bir DMSO içeren NGM plakası ve canlı P. aeruginosa PAO1 ile kaplanmış bir DIM içeren NGM plakası hazırlanmıştır.

6. Yaş senkronize C. elegans hazırlanması

  1. Katı bir NGM plaka üzerinde solucanlar büyümek ve istenilen nüfusa ulaşınkadar E. coli OP50 ile beslemek.
  2. Daha önce açıklandığı gibi zamanlanmış yumurta döşeme yöntemi veya beyazlatma çözeltisi tedavisi kullanarak yumurta senkronize20,23,24.

7. Bakteri veya DIM ve FITC-dextran Besleme tedavisi

  1. Canlı E. coli OP50 ile desteklenen NGM plakalarında 20 °C'de yaş senkronize yumurtaları 64 saat boyunca kuluçkaya yatırın.
  2. Yaş senkronize L4 larvasını S-tampon ile yıkayın ve bunları (yaklaşık 500'den fazla solucan) farklı bakteri ve kimyasallar içeren tedavi NGM plakalarına aktarın (adım 4.6 ve 5.14'ten sonra NOT'ta açıklanmıştır). 20 °C'de 48 saat kuluçkaya yatırın.
    NOT: Kullanılan bakteri ve kimyasallara göre tedavi süresi 24 ile 72 saat arasında değişmektedir. DIM terapötik veya önleyici etkisi de patojenler ile solucanlar pretreating ve daha sonra DIM (terapötik etkisi) ile solucanlar tedavi veya DIM ile solucanlar pretreating ve daha sonra patojenler ile tedavi (önleyici etkisi)19değerlendirilebilir.
  3. FITC-dekstran takviyesi plakaları hazırlamak için 2 mL ısı yalıtımlı E. coli OP50 ile 4 mg FITC-dextran'ı karıştırın. Daha sonra, FITC-dextran ve E. coli OP50 karışımının 100 μL'sini yirmi taze NGM agar plakaya (60 mm x 15 mm) bölün ve plakaların temiz bir tezgahta 1 saat kurumasını bekleyin.
    NOT: Her NGM plakasında KI FITC-dextran'ın son konsantrasyonu 20 g/mL olacaktır.
  4. Araç kontrol tedavisi için FITC-dextran olmadan beş Adet E. coli OP50 içeren NGM plakası hazırlayın. Bu amaçla, 100 μL ısı yalıtımlı E. coli OP50'yi her taze NGM agar plakasına (60 mm x 15 mm) bölün ve plakaların temiz bir tezgahta 1 saat kurumasını bekleyin.
    NOT: Her bağımsız deney için, on beş FITC-dextran takviyesi NGM plakaları ve FITC-dextran olmadan beş NGM plakaları gereklidir.
  5. 48 saat tedaviden sonra (adım 7.2'den itibaren), solucanları S-tampon ile yıkayın, solucanları FITC-dextran takviyesi plakalara ve STK plakalarına FITC-dextran olmadan aktarın ve plakaları bir gecede kuluçkaya yatırın (14-15 saat).
    NOT: Her tedavi grubu için FITC-dextran boyama (veya araç kontrol beslemesi) 5 kopyagereklidir.
  6. Solucanları S-tampon ile yıkayın ve taze NGM agar plakasında 1 saat boyunca sürünmelerine izin verin.
    NOT: Her bağımsız deney için toplam 20 adet taze NGM plakasına ihtiyaç vardır. Bu adımda, E. coli OP50 olmadan veya E. coli OP50 ile desteklenen NGM plakasını kullanabilirsiniz.
  7. Siyah 96 kuyulu düz alt plakanın her kuyuya %4 formaldehit çözeltisi 50 μL ekleyin. Floresan ölçümleri için her NGM plakasından yaklaşık 50 solucanı her kuyuya aktarın. 1 ila 2 dakika sonra, iyice her kuyudan tüm formaldehit çıkarın ve kuyuları kaplamak için montaj ortamı 100 μL ekleyin.
    NOT: Formaldehit çözeltisi (%4) solucanları hareketsiz hale getirmek ve onarmak için kullanılır. Her tedavi grubu için görüntü analizi için 5 kuyu (5 çoğaltma) kullanılır.

8. Operet Görüntüleme Sistemi ile Görüntüleme C. eleganlar ve FITC-dekstran Floresan Alımı Ölçülerek Bağırsak Geçirgenliğinin Tayini

NOT: Floresan stereomikroskopi Operet sistemi yerine görüntü analizi için kullanılabilir.

  1. Floresan görüntüleri yakalayın ve Operet Yüksek İçerikli Görüntüleme Sistemi'ni kullanarak floresan yoğunluğunu ölçün ve Harmony yazılımı ile görüntüleri analiz edin.
  2. Harmony yazılımında, kapağı açmak ve plakayı makineye koymak için kapağı aç simgesine basın.
  3. Parametreleri ayarlayın.
  4. Ayarla'yıtıklatın, plaka türünü seçin (96-iyi corning düz alt) ve kanalları ekleyin (parlak alan ve EGFP kanalları).
  5. Düzeni ayarlayın. Düzen seçiminegidin ve ardından Parça'yı seçin ve parametreleri ayarlayın (ilk resim 1 μm, düzlem sayısı 10, mesafe 1 μm' dir).
  6. Tedavi kuyularından birini seçin ve bir yakalama alanı seçin ve resimlerin Çalıştır deneyi bölümünde tatmin edici olup olmadığını kontrol etmek için Test tuşuna basın.
  7. Resimler tatmin ediciyse, Ayarla bölümüne dönün ve ekranın sonundaki Sıfırla simgesine basın. Ardından, tüm hedef kuyuları ve uygun sayıda yakalama alanını seçin.
  8. Denemeyi Çalıştır'a tekrar gidin ve plaka adını girin, ardından işleme başlamak için Başlat'a basın.
  9. Floresan yoğunluğunu ölçmek için görüntü analizi bölümüne gidin ve görüntüyü girin. EGFP kanalını ve yöntemini seçerek hücreyi bulun B. Ortak eşiği 0,5'e,alanı >200 μm 2'ye, bölme faktör'ü 3,0'a, bireysel eşiği 0,18'e ve 0,18'den fazlasına göre ayarlayın. Ardından, yoğunluk özelliklerini hesaplayın ve çıkış olarak ortalamayı seçin. Kurulumu kaydetmek için Uygula simgesine basın.
  10. Bir ısı haritası ve veri tablosu alarak yoğunluğuölçmek için Değerlendirme bölümüne gidin. Okuma parametresini Hücrelere ayarlayın — Yoğunluk Hücresi EGFP Ortalaması — İyi Başına Ortalama ve değerlendirmeye başlayın.
    NOT: Protokol burada duraklatılmış olabilir.
  11. Operet'ten veri ayıklamak için Ayar düğmesini tıklatın ve Veri yönetiminiseçin.
  12. Arşiv Yaz'ıseçin ve ardından gözatlayı açın ve dosyayı seçin.
  13. Dosyayı seçmek için sol köşedeki küçük + sinyali tıklatın ve ardından Ölçüm'ü tıklatın ve Plaka adınıseçin.
  14. Dosyayı seçin ve Tamam'ıtıklatın.
  15. Etkin yolda Gözat sinyalini tıklatarak dosyayı kaydetme yolunu seçin.
  16. Veri dosyasını kaydetmek için Başlat'ı tıklatın.
    NOT: Protokol burada duraklatılmış olabilir.

9. C. eleganların FITC-dekstran Floresanlarının İstatistiksel Analizi

  1. Verileri içe aktarın ve bir istatistik yazılımı kullanarak ortalama ve standart sapmayı (SD) hesaplayın.
  2. Tukey'nin çoklu karşılaştırma testini takip eden tek yönlü varyans analizi (ANOVA) ile önemli farkı analiz edin.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

P. aeruginosa PAO1 ile kuluçkadan sonra, C. elegans diğer iki bakteri suşları ile kuluçka sonrası gösterilen floresan göre solucan vücudunda FITC-dextran floresans önemli bir artış gösterdi(Şekil 1). E. coli OP50, P. aeruginosa PAO1 ve E. faecalis KCTC3206 ile beslenen solucanların floresan yoğunlukları sırasıyla 100.0 ± 6.6, 369.7 ± 38.9 ve 105.6 ± .6 idi. Veriler P. aeruginosa epitelyal bağırsak bariyerinde daha hayati hasara neden oldu...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Otomatik floresan mikroskobu ve kantitatif görüntü analizini birleştiren C. elegans'ta bağırsak geçirgenliğini belirlemek için bu yeni yöntem kullanılarak, bağırsak mikroorganizmalarının veya kimyasallarının neden olduğu farklar özellikle C. elegans bağırsağında invivo olarak belirlenebilir. Bu protokol bağırsak geçirgenliği araştırmaları için yararlıdır ve rahatlığı ve kolay manipülasyonu nedeniyle reaktif oksijen türlerinin (ROS) stres koşulları altında belirlenmesi ve morfolojik incelemeler gibi birç...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Yazarların açıklayacak bir şeyi yok.

Teşekkürler

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Bu çalışma Kore Bilim ve Teknoloji Enstitüsü intramural araştırma hibe (2E29563) tarafından desteklenmiştir.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
3,3'-diindolilmetan SigmaD9568
90 kez; 15 mm Petrikapları SPL Yaşam Bilimleri, Güney Kore10090
60&kez; 15 mm Petri kaplarıSPL Yaşam Bilimleri, Güney Kore10060
Bactor AgarBeckton DickinsonREF. 214010
Formaldehit çözeltisi SigmaF1635
Beyin Kalp İnfüzyonu (BHI) Becton DickinsonREF. 237500
Caenorhabditis elegans N2Caenorhabditis Genetik Merkezi (CGC)Yabani tip 
KolesterolSigmaC3045
Costa Test Plakası, Şeffaf Düz Tabanlı 96 Kuyulu Siyah İşlenmemiş, Kapaksız PolistirenCorning IncorporatedREF. 3631
Dimetil sülfoksitSigmaD2650
Enterococcus faecalis KCTC 3206Tip Kültürü için Kore KoleksiyonuKCTC NO. 3206Falcutatif anaerobik
Escherichia coli OP50Caenorhabditis Genetics Center (CGC)
Floresein izotiyosiyanat - dextranSigmaFD10S
Harmony yazılımı PerkinElmerverson 3.5
Luria-Bertani LB ortaMerckVM743185 626  1.10285.5000
Magnezyum sülfat heptahidrat Fisher BioreagentsBP2213-1
Fluoromount sulu montaj ortamıSigmaF4680
Operetta CLS Yüksek İçerikli Analiz SistemiPerkinElmer 
PeptoneMerckEMD 1.07213.1000
Pseudomonas aeruginosa PA01Kore Tip Kültürü KoleksiyonuKCTC NO. 1637
Sodyum KlorürFisher BiyoreaktifleriBP358-1
Stereo MikroskopNikon, JaponyaSMZ800N
Maya özüBecton DickinsonREF. 212750
HH16000000

Kaynaklar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Bischoff, S. C., et al. Intestinal permeability–a new target for disease prevention and therapy. BMC Gastroenterology. 14 (1), 189(2014).
  2. Peng, L., Li, Z. R., Green, R. S., Holzman, I. R., Lin, J. Butyrate enhances the intestinal barrier by facilitating tight junction assembly via activation of AMP-activated protein kinase in Caco-2 cell monolayers. The Journal of Nutrition. 139 (9), 1619-1625 (2009).
  3. Ren, M., et al. Developmental basis for intestinal barrier against the toxicity of graphene oxide. Particle Fibre Toxicology. 15 (1), 26(2018).
  4. Kissoyan, K. A. B., et al. Natural C. elegans microbiota protects against infection via production of a cyclic lipopeptide of the viscosin group. Current Biology. 29 (6), 1030-1037 (2019).
  5. Gelino, S., et al. Intestinal autophagy improves healthspan and longevity in C. elegans during dietary restriction. PLoS Genetics. 12 (7), 1006135(2016).
  6. Escorcia, W., Ruter, D. L., Nhan, J., Curran, S. P. Quantification of lipid abundance and evaluation of lipid distribution in Caenorhabditis elegans by Nile red and oil red O staining. Journal of Visualized Experiments. (133), e57352(2018).
  7. Johnson, T. E. Advantages and disadvantages of Caenorhabditis elegans for aging research. Experimental Gerontology. 38 (11-12), 1329-1332 (2003).
  8. Culetto, E., Sattelle, D. B. A role for Caenorhabditis elegans in understanding the function and interactions of human disease genes. Human Molecular Genetics. 9 (6), 869-877 (2000).
  9. Hubbard, E. J. A. Caenorhabditis elegans germ line: A model for stem cell biology. Developmental Dynamics. 236 (12), 3343-3357 (2007).
  10. Park, M. R., et al. Probiotic Lactobacillus fermentum strain JDFM216 stimulates the longevity and immune response of Caenorhabditis elegans through a nuclear hormone receptor. Scientific Reports. 8, 7441(2018).
  11. Kim, Y., Mylonakis, E. Caenorhabditis elegans immune conditioning with the probiotic bacterium Lactobacillus acidophilus strain NCFM enhances gram-positive immune responses. Infection and Immunity. 80 (7), 2500-2508 (2012).
  12. Nakagawa, H., et al. Effects and mechanisms of prolongevity induced by Lactobacillus gasseri SBT2055 in Caenorhabditis elegans. Aging Cell. 15 (2), 227-236 (2016).
  13. Dinh, J., et al. Cranberry extract standardized for proanthocyanidins promotes the immune response of Caenorhabditis elegans to Vibrio cholerae through the p38 MAPK pathway and HSF-1. PLoS One. 9 (7), 103290(2014).
  14. Vayndorf, E. M., Lee, S. S., Liu, R. H. Whole apple extracts increase lifespan, healthspan and resistance to stress in Caenorhabditis elegans. Journal of Functional Foods. 5 (3), 1236-1243 (2013).
  15. Huycke, M. M., Abrams, V., Moore, D. R. Enterococcus faecalis produces extracellular superoxide and hydrogen peroxide that damages colonic epithelial cell DNA. Carcinogenesis. 23 (3), 529-536 (2002).
  16. Laughlin, R. S., et al. The key role of Pseudomonas aeruginosa PA-I lectin on experimental gut-derived sepsis. Annals of Surgery. 232 (1), 133-142 (2000).
  17. Huang, Z., et al. 3,3'-Diindolylmethane decreases VCAM-1 expression and alleviates experimental colitis via a BRCA1-dependent antioxidant pathway. Free Radical Biology, Medicine. 50 (2), 228-236 (2011).
  18. Jeon, E. J., et al. Effect of Oral Administration of 3,3'-Diindolylmethane on Dextran Sodium Sulfate-Induced Acute Colitis in Mice. Journal of Agricultural and Food Chemistry. 64, 7702-7709 (2016).
  19. Kim, J. Y., et al. 3,3'-Diindolylmethane improves intestinal permeability dysfunction in cultured human intestinal cells and the model animal Caenorhabditis elegans. Journal of Agricultural and Food Chemistry. 67 (33), 9277-9285 (2019).
  20. Lee, S. Y., Kang, K. Measuring the Effect of Chemicals on the Growth and Reproduction of Caenorhabditis elegans. Journal of Visualized Experiments. (128), e56437(2017).
  21. Schmeisser, S., et al. Neuronal ROS signaling rather than AMPK/sirtuin-mediated energy sensing links dietary restriction to lifespan extension. Molecular Metabolism. 2 (2), 92-102 (2013).
  22. Lee, S. Y., Kim, J. Y., Jung, Y. J., Kang, K. Toxicological evaluation of the topoisomerase inhibitor, etoposide, in the model animal Caenorhabditis elegans and 3T3-L1 normal murine cells. Environmental Toxicology. 32 (6), 1836-1843 (2017).
  23. Sutphin, G. L., Kaeberlein, M. Measuring Caenorhabditis elegans life span on solid media. Journal of Visualized Experiments. (27), e1152(2009).
  24. Porta-de-la-Riva, M., Fontrodona, L., Villanueva, A., Ceron, J. Basic Caenorhabditis elegans methods: synchronization and observation. Journal of Visualized Experiments. (64), e4019(2012).
  25. Al Atya, A. K., et al. Probiotic potential of Enterococcus faecalis strains isolated from meconium. Frontiers in Microbiology. 6, 227(2015).
  26. Hanchi, H., Mottawea, W., Sebei, K., Hammami, R. The Genus Enterococcus: Between Probiotic Potential and Safety Concerns-An Update. Frontiers in Microbiology. 9, 1791(2018).
  27. Pollack, M. The role of exotoxin A in pseudomonas disease and immunity. Reviews of Infectious Diseases. 5, Suppl 5 979-984 (1983).
  28. Vasil, M. L., Liu, P. V., Iglewski, B. H. Temperature-dependent inactivating factor of Pseudomonas aeruginosa exotoxin A. Infection and Immunity. 13 (5), 1467-1472 (1976).
  29. Horii, T., Muramatsu, H., Monji, A., Miyagishima, D. Release of exotoxin A, peptidoglycan and endotoxin after exposure of clinical Pseudomonas aeruginosa isolates to carbapenems in vitro. Chemotherapy. 51 (6), 324-331 (2005).
  30. Kirikae, T., et al. Biological characterization of endotoxins released from antibiotic-treated Pseudomonas aeruginosa and Escherichia coli. Antimicrobial Agents and Chemotherapy. 42 (5), 1015-1021 (1998).
  31. Morlon-Guyot, J., Mere, J., Bonhoure, A., Beaumelle, B. Processing of Pseudomonas aeruginosa exotoxin A is dispensable for cell intoxication. Infection and Immunity. 77 (7), 3090-3099 (2009).
  32. Kim, Y. H., et al. 3,3'-diindolylmethane attenuates colonic inflammation and tumorigenesis in mice. Inflammatory Bowel Diseases. 15 (8), 1164-1173 (2009).
  33. Kanmani, P., et al. Probiotics and its functionally valuable products-a review. Critical Reviews in Food Science and Nutrition. 53 (6), 641-658 (2013).
  34. Nguyen, M. T., Gotz, F. Lipoproteins of Gram-Positive Bacteria: Key Players in the Immune Response and Virulence. Microbiology and Molecular Biology Reviews. 80 (3), 891-903 (2016).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya şekillerini yeniden kullanmak için izin iste

İzin iste

Etiketler

C elegansY ksek kt l G r nt lemeFITC DekstranBakteriyel EnfeksiyonDIM TedavisiFloresan Yo unlu uOperetta CihazHarmony Yaz l mBa rsak Bariyeri

İlgili makaleler