Yöntem makalesi

Transkriptomik Profilleme için İnsan Periferik Kan Mononükleer Hücrelerinin ve CD4 + T hücrelerinin Sézary Sendromu Hastalarından İzole Edilmesi

5.5K görüntüleme

⸱

DOI:

10.3791/61470

⸱

14 Ekim 2021

 ,  , 
1Department of Dermatology, University of Arkansas for Medical Sciences

Bu makalede

Özet

Periferik kan mononükleer hücrelerinin Sézary Sendromu tanısı alan hastalardan elde edilen tam kandan izole edilmesi, ardından CD4 + T hücrelerinin seçimi, forbol12-miristat13-asetat ve A23187 iyonofor ile uyarılmaları ve transkriptomik profilleme için RNA'nın hazırlanması için basit bir protokol sunuyoruz.

Özet

Kutanöz T hücreli lenfomalar (KTHL), olgun cilde ev sahipliği yapan T hücrelerinin transformasyonu ve kontrolsüz proliferasyonundan kaynaklanır ve mikozis fungoides (MF) ve Sézary sendromu (SS) en sık görülen alt tipleri temsil eder. KTHL'nin gen ekspresyonu, genetik değişiklikleri ve epigenetik anormalliklerini karakterize eden bir dizi çalışmaya rağmen, MF / SS'nin moleküler patogenezi belirsizliğini korumaktadır. MF, deri baskınlığı olan daha yaygın KTHL'yi ifade eder ve genellikle deri ile sınırlıdır, oysa SS, yaygın cilt tutulumu olan ve esas olarak kan, deri ve lenf nodunu içeren neoplastik dağılım ile karakterize agresif bir lösemik BT varyantıdır. Klinik uygulamaya odaklanıldığında, gen ekspresyonu biyobelirteçlerinin tanımlanması, MF / SS'nin tanı ve tedavisini iyileştirmek için muazzam bir potansiyele sahiptir. Gerçekten de, son transkriptomik çalışmalar, normal ve malign T hücreleri arasındaki gen ekspresyonundaki farklılıklardan potansiyel tanısal biyobelirteçleri tanımlamıştır, bu da SS biyolojisi hakkındaki anlayışımızı geliştirebilir ve potansiyel terapötik hedefleri ortaya çıkarabilir. Bu yazıda, SS tanısı alan hastalardan taze tam kandan periferik kan mononükleer hücrelerinin izolasyonu, CD4+ bellek T hücrelerinin (CD4+CD45RO+T hücreleri) seçimi, kimyasal stimülasyon ve hastalık etiyolojisinde ek içgörü kazanmak üzere yeni prognostik moleküler belirteçleri keşfetmek üzere transkriptomik profillemeye uygun RNA'nın hazırlanması için ayrıntılı bir tekrarlanabilir protokol anlatılmaktadır. Nükleer regülasyonu aktive etmek için kimyasal agonist kullanılarak yapılan stimülasyon, dinamik transkripsiyon regülasyonu ve gen ekspresyonunda önemli olan yollar için daha spesifik bir değerlendirme sağlar ve hücre zarındaki TCR antijen kaybından kaynaklanan yukarı akış sinyal kusurlarından kaynaklanabilecek kafa karıştırıcı kusurları ortadan kaldırır. Uyarılmamış SS T hücrelerinin transkriptomunun karşılaştırılmasından elde edilen veriler, sessiz uyarılmamış hücrelerin analizinden belirgin olmayan fonksiyonel düzenleyici gen ekspresyon kusurlarının maskesini düşürmektedir. Ayrıca, bu yaklaşımdan özetlenen yöntem, diğer T hücresi bağışıklık hastalıklarında T hücresi gen ekspresyon kusurlarını incelemek için uyarlanabilir.

Giriş

En sık görülen alt tipler mikozis fungoides (MF) ve Sézary sendromu (SS) dahil olmak üzere kutanöz T hücreli lenfoma (KTHL), olgun cilt homing T hücrelerinin transformasyonu ve kontrolsüz proliferasyonundan kaynaklanan heterojen bir hastalık grubudur 1,2. Neoplastik T hücreleri olgun CD4 + CD45RO +, bellek fenotipi3'e sahiptir ve özellikle erken hastalıkta döküntü olarak ortaya çıkan epidermotropizmi4'ü artıran deri homing adezyon belirteçlerini eksprese eder. MF'nin klinik seyri, rutin yönetilen bakım altındayken genellikle tembeldir, ancak hastaların bir alt kümesi daha ileri hastalığa ilerleyebilir. Bu MF vakalarında, deri lezyonları büyür ve kalınlaşarak büyük tümörlere dönüşür ve neoplastik T hücreleri lenf düğümlerine ve viseral organlara yayılabilir. Buna karşılık, SS, CTCL5'in daha agresif, lösemik bir varyantıdır ve bir semptom üçlüsü ile karakterizedir: jeneralize eritroderma (toplam vücut yüzey alanının% >80'ini etkileyen olarak tanımlanır), lenfadenopati ve Sézary hücreleri olarak adlandırılan serebriform çekirdekli 1000 /mm3'ten fazla dolaşımdaki klonal atipik T hücrelerinin varlığı 6,7 . SS hastalarının prognozu MF'den anlamlı derecede kötüdür. SS, 0.1/100.000 insidans oranı ile nadirdir ve toplam KTHL vakalarının yaklaşık% 3'ünü temsil eder8,9. CTCL tipik olarak yaşlı erişkinlerde ortanca yaşı yaklaşık 60 yıl10 olan kişilerde ortaya çıkar. KTHL insidansı artmaktadır ve nedeni belirsiz olsa da, oran 1998'den beri stabilize olmuştur11,12.

SS'nin moleküler patogenezi belirsizliğini korumaktadır. Genetik, epigenetik ve gen ekspresyon çalışmaları çok sayıda yeni veri üretmiştir, ancak öncelikle incelenen küçük hasta kohortları2'nin yanı sıra deneysel tasarım ve kontrol popülasyonlarındaki farklılıklar nedeniyle tutarsız bulgular kalmıştır13,14. Geliştirilmiş genomik ve transkriptomik karakterizasyon, hem hastalık mekanizmalarına hem de daha önce keşfedilmemiş terapötik hedeflere ışık tutabilir. Bu nedenle, bu heterojen maligniteyi daha iyi anlamak için daha geniş bir hasta popülasyonundan daha fazla çalışmaya ihtiyaç vardır. Bir SS kohortunda oldukça hassas ve spesifik olan biyobelirteç panelleri, SS16 için güvenilir tanısal ve prognostik biyobelirteçlerin geliştirilmesinde ciddi bir engel teşkil eden diğer kohortlarda15'te daha az düzgün performans göstermiştir. İdeal tanısal biyobelirteçler, malign T hücrelerinde tutarlı ve yüksek oranda aşırı eksprese edilirken, normal T hücrelerinde yoktur veya neredeyse yoktur17. Hastalığa özgü biyobelirteçlerin keşfi, SS için tanı ve tedavi protokollerinin geliştirilmesi açısından önemlidir.

Hem malign hem de normal T hücreleri için yüksek kaliteli transkriptomik veriler, numune hazırlamada etkili ve güvenilir bir yaklaşım gerektirir. Burada, SS ile ilgili T hücre popülasyonlarından RNA örnekleri elde etmek için ayrıntılı ama basit bir stratejiyi tartışacağız. Periferik kan mononükleer hücrelerinin (PBMC) tam kandan izolasyonu, hastalıkla ilgili CD4 + CD45RO + T hücre popülasyonlarının negatif manyetik seçimi, fonksiyonel yanıtlardaki farklılıkları ortaya çıkarmak için kimyasal aktivasyon ve transkriptomik profilleme için RNA'nın hazırlanması tartışılacaktır. Mevcut protokolde, forbol miristat asetat (PMA) ve kalsiyum iyonofor (A23187)18,19 kullanılarak kimyasal aktivasyon gerçekleştirilmiştir, çünkü önceki çalışmalar CTCL'de kusurlu T hücresi reseptör sinyallemesi olduğunu göstermiştir ve PMA / A23187 ile stimülasyon, T hücresi reseptörü20,21'i atlar. Ayrıca, PMA / A23187, sitokin gen aktivasyonu için gerekli olan nükleer sinyallerin daha doğrudan proksimal aktivasyonuna izin verir. Son olarak, T hücrelerinin uyarılması, dinamik değişimin olmadığı dinlenme T hücrelerinden elde edilemeyen gen ekspresyonunun düzenlenmesi hakkında ek bir fikir seviyesi sağlar.

Protokol

İnsan hücreleri potansiyel olarak bulaşıcıdır. Bu nedenle, deneyler kesinlikle iş sağlığı ve güvenliği yönetimi (OSHA) ve kişisel koruma ekipmanları (KKD) olarak tartışılan gerekli önlemler ve prosedürlere uygun olarak gerçekleştirilir.

1. PBMC'lerin tam kandan izolasyonu

  1. Tablo 1'den ihtiyaç duyulan tüm malzemeleri toplayın ve oda sıcaklığına (RT) getirin. Sıcak RP10F ila 37 °C. Santrifüjlemeler ve hücre sayımı dışında, biyolojik bir güvenlik kabinindeki canlı hücreleri kullanarak tüm adımları gerçekleştirin.
  2. Antikoagülan içeren beş adet 10 mL tüpte (istenilen miktarda) kan elde edin. Tam kanı ortam sıcaklığında (18\u201224 °C) saklayın. 50 mL ayırma tüplerini, işlenecek kan örneği için insan araştırma konusu numarası ile etiketleyin.
  3. 10\u201215 mL kanı eşleşen denek numarasıyla her bir ayırma tüpüne aktarın. Kanı Hank'in dengeli tuz çözeltisi (HBSS) ile en az 2 kat seyreltin. Tüp başına 35 mL seyreltilmiş kanı aşmayın.
  4. Kanı ~ 13 mL yoğunluk ortamı ile dikkatlice ve yavaşça alttan yerleştirin. Tüpün altındaki saydam yoğunluk ortamını izleyin ve pipet neredeyse boşken pipetlemeyi durdurun (kabarcık salınımını önlemek için). Kan ve yoğunluk orta tabakalarının karışmasını önlemek için pipeti dikkatlice çıkarın.
  5. Doldurulmuş ayırma tüplerini, katmanları rahatsız etmeden dikkatlice santrifüje aktarın.
  6. Santrifüj freni kapalıyken 30 dakika boyunca 500 x g'de santrifüj yapın (yavaşlama sıfıra ayarlandı).
    NOT: Santrifüjde yalnızca rpm görüntüleniyorsa, 500 x g için rpm eşdeğerini tahmin etmek üzere rotor teknik özelliklerine bakın.
  7. Ayırma tüplerini, katmanları rahatsız etmeden santrifüjden dikkatlice çıkarın. Yoğunluk ortamı ve plazma katmanları arasında oluşan kabarık kaplamayı gözlemleyin.
  8. Üst plazma fraksiyonunun çoğunu çıkarmak ve atmak için üstten pipet, böylece buffy katın üzerinde 10 mL kalır. Buffy paltoyu dikkatlice ve yavaşça toplayın. Buffy katları iki ayırma tüpünden Şekil 1'de gösterildiği gibi önceden etiketlenmiş ve steril yeni bir 50 mL tüpe aktarın.
  9. PBMC'leri HBSS ile en az 2 kat seyrelterek her yeni tüpteki hacmi 50 mL'ye çıkarın. Santrifüj frenini tam olarak değiştirmeyi unutmayın. Pelet PBMC'leri 10 dakika boyunca 400 x g'de santrifüjleme ile. Süpernatantı mümkün olduğunca çıkarın ve peleti gevşetmek için tüpün dibine dokunun.
  10. Artık kırmızı kan hücrelerini (RBC) lize etmek için, her hücre peletini 10 mL orijinal kan hacmi başına 1\u20122 mL amonyum-klorür-potasyum (ACK) lizis tamponunda yeniden askıya alın. Tam olarak 5 dakika boyunca kuluçkaya yatırın. Eşit veya daha büyük bir HBSS hacmiyle lizizi derhal durdurun ve ses seviyesini 50 mL'ye ayarlayın. 10 dakika boyunca 400 x g'de santrifüj.
  11. Süpernatantı çıkarın ve hücre peletini gevşetmek için tüpün dibine dokunun. Aynı donörden havuz hücreleri. HBSS ile 50 mL'ye kadar ses getirin. 10 dakika boyunca 400 x g'de santrifüj.
  12. Süpernatantı çıkarın ve hücre peletini gevşetmek için tüpün dibine dokunun. Hücreleri 10 mL sıcak RP10F ortamında yeniden askıya alın ve tripan mavisi kullanarak canlı hücre sayımı için bir aliquot alın.
  13. Bir hemositometre kullanarak her numunedeki toplam hücre sayısını hesaplayın.

2. CD4 + CD45RO + T hücrelerinin PBMC'lerden saflaştırılması

NOT: CD4 + CD45RO + T hücrelerinin PBMC'lerden saflaştırılması, küçük değişikliklerle ticari olarak temin edilebilen manyetik ayırma (bkz. Her ticari kitin kendi talimatları olduğu için kuluçka süresi için kit kılavuzunu takip etmek tercih edilir.

  1. İstenilen miktarda PBMC'yi 10 mL seçim tamponunda yıkayın. 10 dakika boyunca 400 x g'de santrifüj. Süpernatantı çıkarın ve peleti gevşetmek için tüpün dibine dokunun.
  2. PBMC'leri seçim tamponunda 5 x 107 hücre/mL'ye kadar seyreltin ve 5 mL'lik polistiren yuvarlak tabanlı tüpe (12 x 75 mm) aktarın.
  3. 1 mL numune başına 50 μL antikor kokteyli ekleyin ve yavaşça karıştırın. Oda sıcaklığında 5 dakika inkübe edin.
  4. Kullanımdan hemen önce, yüksek hızda 30 saniye boyunca vorteks manyetik parçacıkları. PBMC'leri içeren tüpe 1 mL numune başına 50 μL manyetik parçacık ekleyin ve yavaşça karıştırın.
  5. Seçim tamponu ile hacmi 2,5 mL'ye kadar çıkarın ve nazikçe karıştırın. Tüpü (kapaksız) mıknatısa yerleştirin ve RT'de 2,5 dakika inkübe edin.
  6. Mıknatısı alın ve sürekli bir hareketle, zenginleştirilmiş hücre süspansiyonunu yeni bir steril tüpe dökmek için mıknatısı ve tüpü ters çevirin.
  7. Geri kazanımı artırmak için, hareketsiz boncukları rahatsız etmeden mıknatısta kalan tüpe 2,5 mL seçim tamponu ekleyin. Mıknatısta 2,5 dakika daha tutun ve ek hücreleri kurtarmak için adım 2,6'yı tekrarlayın.
  8. Tripan mavisi kullanarak canlı hücre sayımı için bir aliquot alın. Bir hemositometre veya hücre sayacı kullanarak toplam hücre sayısını hesaplayın.
  9. Saflığı akış sitometrisi ile onaylayın (Şekil 3).

3. Kimyasal aktivasyon

  1. CD4 + CD45RO + T hücrelerini sıcak RP10F ortamıyla 5 x 106 hücre / mL'ye ayarlayın ve hücreleri istenen boyuttaki kültür tabaklarına dağıtın. Nemlendirilmiş 37 °C %5 CO2 inkübatöründe gece boyunca dinlenme hücreleri.
  2. Pelet dinlenmiş hücreler 400 x g'da 10 dakika boyunca santrifüjleme ile. Süpernatantı çıkarın ve hücre peletini gevşetmek için tüpün dibine dokunun.
  3. Sıcak RP10F ortamıyla hücre konsantrasyonunu 5 x 106 hücre/mL'ye ayarlayın ve üç steril, vidalı kapaklı tüpün her birine 0,5\u20121 x 107 hücre dağıtın.
    NOT: Yeterli hücre varsa, deneysel tasarıma yinelenen stimülasyonlar veya ek zaman noktaları dahil edilebilir.
  4. PMA ve A23187 ile tüp 2 ve 3'teki hücreleri uyarın. PMA'yı 25 ng / mL'ye ve A23187'yi 500 ng / mL'ye ekleyin ve yavaşça karıştırın. Tüp 1'deki hücrelere eşit miktarda dimetil sülfoksit (DMSO) ekleyin ve bu hücreler bir araç (kontrol) görevi görür. Örneğin, 1 μL PMA ve 1 μL A23187 kullanıyorsanız, araç tüpüne 2 μL DMSO ekleyin. DMSO'nun son konsantrasyonunu tüm tüplerde% 0.5'in altında tutun.
  5. Tüplerin üzerindeki kapakları gevşetin ve hücreleri 2 saat (tüp 2) ve 6 saat (tüp 1 ve 3) için 37 ° C% 5 CO2 inkübatöre geri döndürün. Belirtilen zamanda, hücreleri 10 dakika boyunca 500 x g'de santrifüj yapın.
  6. Lizisten önce, hücre peletini rahatsız etmeden süpernatantın mümkün olduğunca çoğunu atın.
  7. Ticari olarak temin edilebilen RNA izolasyon kitinden gelen talimatlarla yönlendirildiği gibi hücreleri derhal lize edin (bakınız Malzeme Tablosu). RNA izolasyonu ile devam edin veya daha sonra ek örneklerle işlemek için lizatı -80 ° C'de dondurun.
    NOT: RNA saflığı ve bütünlüğü mikrokapiller elektroforez kullanılarak doğrulanabilir.
  8. İsteğe bağlı: Saflaştırılmış RNA örneğinden tüm DNA izlerini tamamen çıkarmak için, üreticinin talimatlarına göre RNA temizleme kiti kullanın (bkz.

Sonuçlar

Bu protokol, PBMC'lerin SS kanından izolasyonu, CD4 + CD45RO + T hücrelerinin negatif seleksiyonla saflaştırılması, saflaştırılmış T hücrelerinin uyarılması ve transkriptomik profilleme için toplam RNA'nın izolasyonu için prosedürleri içerir. Şekil 1, PBMC'nin tam kandan izolasyon sürecini açıklamaktadır. SS PBMC'lerin toplam veriminin, her hastanın başlangıç kan hacmine ve dolaşımdaki tümör yüküne göre değişeceğini lütfen unutmayın. Laboratuvarımızda SS PBMC'lerin ortalama verimi 4.6 × 10 6 hücre/mL tam kan idi (1.85 × 7 SS için 106 – 3.25 x 107

figure-results-1

figure-results-2

figure-results-3

figure-results-4

Tartışma

PBMC'leri izole etmenin çeşitli yolları geliştirilmiştir ve her birinin kendi avantajları ve sınırlamaları vardır28. Antikoagülan içeren beş adet 10 mL'lik tüpte rutin olarak 50 mL'ye kadar kan topluyoruz. PBMC izolasyonu için kanın hacmi, araştırma konusunun sağlığı ve yaşı gibi çeşitli faktörlere ve ayrıca flebotomist uzmanlığa bağlıdır. Protokoldeki kritik bir prosedürel adım, adım gradyanının oluşturulmasıdır. Kötü katmanlama, PBMC'lerin arabirimdeki tortuya kısmen veya tamamen başarısız olmasına neden olabilir. Alt katmanı başlatmak kolay olduğu için burada açıklanan alt katmanlama yöntemini tercih ediyoruz. Kanın altındaki tüm yoğunluk ortamını tamamen dağıtmak için, hava sızıntısı olmayan bir pipet yardımcısı kullanmak çok önemlidir. PBMC fraksiyonunun istenmeyen hücre tipleri tarafından kontaminasyonu, her izolasyon için aynı şekilde yapılması gereken buffy katın dikkatli ve tutarlı bir şekilde toplanmasıyla en aza indirilebilir. PBMC'ler daha fazla fraksiyone edilmeyecekse, izolasyonlar arasında yoğunluk gradyanı ve plazma katmanlarının farklı miktarlarının toplanmasından kaçınılmalıdır. RBC lizisi, kirletici RBC ve retikülosit türevi RNA'nın aşağı akış gen ekspresyon analizleri üzerindeki potansiyel etkisini en aza indirmek için gerçekleştirilir. Hipotonik lizis, aşırı izotonik tampon tarafından inhibe edilecektir.

T hücre alt kümesinin daha fazla izolasyonu moleküler çalışmalar için önemlidir. Burada, istenmeyen hücre tiplerini çıkarmak için negatif seçimle sonraki CD4 + CD45RO + T hücre seçimini tanımladık. Negatif seçilim, istenmeyen tüm hücreler için spesifik hücre yüzey belirteçlerini tanıyan antikorlara dayanır. Antikor kaplı hücreler daha sonra manyetik boncuklarla uzaklaştırılır. Bu seçim protokolü, el değmemiş ve uyarılmamış hedef hücrelerin serbest yüzer kalmasına izin verirken istenmeyen hücreleri ortadan kaldırır, bu da gen aktivasyonunu incelemek için gereklidir. Bununla birlikte, seçilen CD4 + CD45RO + T hücrelerinin son saflığını azaltan hücre kümelerinden kaçınmak için özen gösterilmelidir. Seçim tamponunda bulunan etilendiamintetraasetik asit (EDTA) hücre kümelenmesini en aza indirir. T hücrelerinin verimi, kanın başlangıç hacmi, hastaya uygulanan tedavi gibi hasta değişkenleri ve numune toplama sırasındaki hastalık evresi gibi faktörlere bağlıdır. Hastalara verilen tedavi hücre canlılığını da etkileyebilir. Ek olarak, fotoferez gibi herhangi bir işlemden önce numune toplanması da CD4 + CD45RO + T hücrelerinin saflığı üzerinde olumlu etkiye sahiptir. Fotoferez tedavisi sonrası örnek toplanmasının CD4+CD45RO+T hücre verimini olumsuz etkilediğini gözlemledik.

SS hastalarından alınan neoplastik T hücre klonları en sık olgun, bellek CD4 T hücre fenotipi29,30 ile tutarlı yüzey belirteçleri eksprese eder. Bununla birlikte, CD4, CD45RO, CD45RA, CD7 ve / veya CD2631 gibi yüzey belirteçlerine göre zaman zaman fenotipik plastisite gözlenmiştir. Önceki çalışmalar ayrıca SS hastaları29 arasında CD45RO ve CD45RA ekspresyonundaki heterojenliği gösterirken, SS vakalarının çoğunluğu hala CD45RO + 'dır. Roelens ve ark.31 ayrıca SS'nin karışık naif (TN), merkezi bellek (TCM), geçiş belleği (TTM), efektör bellek (TEM) ve terminal efektör bellek (TEMRA) alt kümelerinin karışık popülasyonu ile bireyler arası ve bireyler arası heterojenlik sergileyebileceğini göstermiştir. Bununla birlikte, sonuçları SS hücrelerinin çoğunun TCM fenotipine sahip olduğunu açıkça göstermektedir. Çalışmamızı SS hastalarında en sık görülen CD45RO+ yüzey immünofenotipine odakladık ve akım sitometrisi ile fenotipi doğruladık. Hastalarda T hücre alt gruplarının planlanmasında, çalışılan hastalığın fenotipik heterojenliğinin göz önünde bulundurulması önemlidir ve bu nedenle saflaştırma stratejisi, analiz için istenen T hücresi popülasyonunu elde etmek için gerektiği gibi ayarlanabilir.

Fonksiyonel gen ekspresyonunu incelemek için T hücrelerini ve PBMC'leri uyarmanın birkaç yolu vardır. Çekirdekteki gen regülasyonu ile ilgilendiğimiz için kimyasal aktivasyonu (PMA + A23187 iyonofor) tercih ediyoruz. Kimyasal aktivasyon bu amaç için en iyi seçenektir, çünkü geniş bir aktivatör görevi görür ve antijene özgü stimülasyona kıyasla daha homojendir. PMA, hücre zarından sitoplazmaya yayılan ve doğrudan protein kinaz C. A23187'yi aktive eden küçük bir organik bileşiktir. Bu bileşikler yüzey reseptörlerini atlar ve birlikte CD28'in aracılık ettiği ko-stimülasyon ile T hücresi reseptör ligasyonunun etkilerini taklit eder. Kimyasallar çeşitli hücre içi sinyal yollarını aktive eder, bu da nükleer transkripsiyon faktörü aktivasyonu ve transkripsiyon aktivasyonuna erişilebilen sitokin genlerinin upregülasyonuna neden olur. Kimyasal aktivasyon ve CD3CD28 ligasyonu normal hücrelerde çarpıcı derecede benzer küresel gen ekspresyon profilleri üretse de32, PMA + A23187 ile kimyasal aktivasyon iyi bir seçimdir, çünkü SS T hücreleri TCR bileşenleri33 dahil yüzey reseptörlerinin ekspresyonunu kaybedebilir. Chong ve ark.22, normal, erken MF / CTCL ve geç MF / CTCL hastalarından PBMC'lerde PMA / A23187 ile anti-CD3 ve anti-CD28 antikorları arasındaki sitokin genlerinin aktivasyonunu karşılaştırmıştır. PMA / A23187'nin, anti-CD3 / CD28 stimülasyonuna kıyasla IL-2 geninin daha hızlı ve yoğun aktivasyonuna neden olduğunu bildirmişlerdir. Ek olarak, anti-CD3 / CD28 antikorlarına sahip daha yavaş aktivasyon kinetiğinin, potansiyel olarak stimülasyon için gerekli olan çapraz bağlama ve membran sinyallemesinden kaynaklandığını gösterdiler. Ayrıca, incelenen farklı hücre popülasyonları arasında sitokinlerin ekspresyonundaki eğilimler PMA / A23187 ile korunmuştur. Gen ekspresyon aktivasyonu ile ilgilendiğimizden, kimyasal stimülasyon ideal bir yaklaşımdır çünkü geniş bir aktivatör görevi görür ve antijen spesifik stimülasyona kıyasla daha tutarlıdır. CD3/CD28 ligasyonu, membran bazlı sinyal iletiminde önemli olan yolları araştırmak için idealdir. Ek olarak, kimyasal aktivasyon daha ucuzdur ve özel ekipman gerektirmez. Bu çalışmada, PMA + A23187, ND hücrelerinde sitokin genlerini önemli ölçüde aktive etti, ancak SS T hücrelerinde değil, SS T hücrelerinin TCR'nin aşağı yönünde fonksiyonel eksiklikleri olduğunu düşündürdü.

Özetle, bu protokol değerli hasta kaynaklı kandan fenotipik saf T hücreleri ve fonksiyonel gen ekspresyonundaki genom çapındaki değişiklikleri değerlendirmek için bir yöntem sağlar. SS T hücrelerinin normal CD45RO + T hücrelerine kıyasla transkriptomik profillenmesinin, CTCL'li hastalardan taze insan T hücrelerinde gen aktivasyonunda derin farklılıklar ortaya koyduğunu gösterdik. Bu çalışmalar, KTHL'de yeni belirteçleri hedef alan tanısal biyobelirteçlerin ve terapötik stratejilerin geliştirilmesine yardımcı olacaktır. Ek olarak, birincil insan T hücrelerini incelemedeki bu strateji ve protokol, diğer T hücresi aracılı hastalıkların çalışmalarına uyum sağlamada değerli olabilir.

Açıklamalar

Yazarların açıklayacak hiçbir şeyleri yoktur.

Etik Açıklama:
Bu araştırma protokolü, Arkansas Üniversitesi Tıp Bilimleri Kurumsal İnceleme Kurulu (IRB) tarafından onaylanmıştır (UAMS, Little Rock, AR) Bu çalışmada sunulan mikroarray verileri, Henry Ford Hastanesi IRB (Detroit, MI) tarafından onaylanan bir araştırma protokolü kapsamında işe alınan örnekler üzerinde yapılmıştır.

Teşekkürler

Araştırmamıza katılan hastalara ve gönüllülere teşekkür ederiz.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
1.5 ml mikrosantrifüj tüpleriFisher Scientific02-681-320
10 ml Tek Kullanımlık Plastik PipetThermo Scientific170356
1000 ul Pipet uçlarıVWR10017-038
15 ml Konik TüplerCorning352196
25 ml Tek Kullanımlık Plastik PipetThermo Scientific170357
5 ml Tek Kullanımlık Plastik PipetThermo Scientific170355
50 ml Konik TüplerThermo Scientific339652
A23187 iyonoforFisher ScientificBP595
SantrifüjThermo Scientific75004381
DMSOSigmaD2650-5x5ml
EasySep İnsan Hafızası CD4 + T hücresi Zenginleştirme KitiKök Hücre19157
FBSGIBCO16140-071
HBSSGIBCO14185-052
HEPESFisher BiyoreaktifleriBP310-500
KHCO3Fisher BiyoreaktifleriP184-500
Lenfosit Ayırma OrtamıCorning25-072-CV
Na2EDTAACROS10378-23-1
NaHCO3Fisher BiyoreaktifleriS233-500
NH4ClFisher BiyoreaktifleriA661-500
Penisilin-streptomisin çözeltisiGIBCO15140122
phorbol12-miristate13-asetat (PMA)SigmaP-8139
Pipet-Lite LTS Pipet L-1000XLS +YAĞMUR17014382
Pipet-Lite LTS Pipet L-10XLS+RAININ17014388
Pipet-Lite LTS Pipet L-200XLS+RAININ17014391
Pipet-Lite LTS Pipet L-20XLS+RAININ17014392
RNA Temiz & Yoğunlaştırıcı-5Zymo ResearchR1013
Rneasy Plus Mini KitQiagen74136
RPMI 1640GIBCO31800-022
T-25 ŞişeTermo Bilimsel2024-10

Kaynaklar

  1. Kim, E. J., et al. Immunopathogenesis and therapy of cutaneous T cell lymphoma. Journal of Clinical Investigation. 115, 798-812 (2005).
  2. Wong, H. K., et al. Evolving Insights in the Pathogenesis and Therapy of Cutaneous T-cell lymphoma (Mycosis Fungoides and Sezary Syndrome). British Journal of Haematology. 155 (2), 150-166 (2011).
  3. Whittaker, S. Biological insights into the pathogenesis of cutaneous T-cell lymphomas (CTCL). Seminars in oncology. 33 (3), 3-6 (2006).
  4. Kallinich, T., et al. Chemokine receptor expression on neoplastic and reactive T cells in the skin at different stages of Mucosis Fungoides. Journal of Investigative Dermatology. 121 (5), 1045-1052 (2003).
  5. Rodd, A. L., et al. Current and Emerging Therapeutics for Cutaneous T-Cell Lymphoma: Histone Deacetylase Inhibitors. Lymphoma. 2012, Article ID 290685 1-10 (2012).
  6. Olsen, E., et al. Revisions to the staging and classification of mycosis fungoides and Sezary syndrome: a proposal of the International Society for Cutaneous Lymphomas (ISCL) and the cutaneous lymphoma task force of the European Organization of Research and Treatment of Cancer (EORTC). Blood. 110, 1713-1722 (2007).
  7. Hameetman, L., et al. EPHA4 is overexpressed but not functionally active in Sézary syndrome. Oncotarget. 6 (31), 31868-31876 (2015).
  8. Willemze, R., et al. WHO-EORTC classification for cutaneous lymphomas. Blood. 105, 3768-3785 (2005).
  9. Bradford, P. T., et al. Cutaneous lymphoma incidence patterns in the United States: a population-based study of 3884 cases. Blood. 113, 5064-5073 (2009).
  10. Wilson, L. D., et al. Age, race, sex, stage, and incidence of cutaneous lymphoma. Clinical Lymphoma Myeloma and Leukemia. 12, 291-296 (2012).
  11. Li, Y., et al. Management of cutaneous T cell lymphoma: new and emerging targets and treatment options. Cancer Management and Research. 4, 75-89 (2012).
  12. Korgavkar, K., et al. Changing incidence trends of cutaneous T-cell lymphoma. Jama Dertmatology. 149 (11), 1295-1299 (2013).
  13. Dulmage, B. O., Geskin, L. J. Lessons learned from gene expression profiling of cutaneous T-cell lymphoma. British Journal of Dermatology. 169 (6), 1188-1197 (2013).
  14. Boonk, S. E., et al. Evaluation of Immunophenotypic and Molecular Biomarkers for Sézary Syndrome Using Standard Operating Procedures: A Multicenter Study of 59 Patients. Journal of Investigative Dermatology. 136 (7), 1364-1372 (2016).
  15. Scarisbrick, J. J., et al. Cutaneous Lymphoma International Consortium Study of Outcome in Advanced Stages of Mycosis Fungoides and Sézary Syndrome: Effect of Specific Prognostic Markers on Survival and Development of a Prognostic Model. Journal of Clinical Oncology. 10 (33), 3766-3773 (2015).
  16. Benoit, B. M., et al. CD164 identifies CD4+ T cells highly expressing genes associated with malignancy in Sézary syndrome: the Sézary signature genes, FCRL3, Tox, and miR-214. Archives of Dermatological Research. 309, 11-19 (2017).
  17. Dulmage, B., et al. The biomarker landscape in mycosis fungoides and Sézary syndrome. Experimental Dermatology. 26 (8), 668-676 (2017).
  18. Pick, E., et al. Intracellular Mediation of Lymphokine Action: Mimicry of Migration Inhibitory Factor (MIF) Action by Phorbol Myristate Acetate (PMA) and the Ionophore A23187. Annals of the New York Academy of Sciences. 94 (332), 378-394 (1979).
  19. Chong, B. F., et al. Induced Sézary syndrome PBMCs poorly express immune response genes up-regulated in stimulated memory T cells. Journal of Dermatological Science. 60 (1), 8-20 (2010).
  20. Fargnoli, M. C., et al. Diminished TCR signaling in cutaneous T cell lymphoma is associated with decreased activities of Zap70, Syk and membrane-associated Csk. Leukemia. 11, 1338-1346 (1997).
  21. Hansen, E. R., et al. Leukemic T cells from patients with cutaneous T-cell lymphoma demonstrate enhanced activation through CDw60, CD2, and CD28 relative to activation through the T-cell antigen receptor complex. Journal of Investigative Dermatology. , 667-673 (1993).
  22. Chong, B. F., et al. Immune Function Abnormalities in Peripheral Blood Mononuclear Cell Cytokine Expression Differentiates Stages of Cutaneous T-Cell Lymphoma/Mycosis Fungoides. Clinical Cancer Research. 14 (3), 646-653 (2008).
  23. Moerman-Herzog, A. M., et al. Transcriptome analysis of Sézary syndrome and lymphocytic-variant hypereosinophilic syndrome T cells reveals common and divergent genes. Oncotarget. 10, 5052-5069 (2019).
  24. Fanok, M. H., et al. Role of Dysregulated Cytokine Signaling and Bacterial Triggers in the Pathogenesis of Cutaneous T-Cell Lymphoma. Journal of Investigative Dermatology. 138, 1116-1125 (2018).
  25. Su, M. W., et al. Aberrant expression of T-plastin in Sezary cells. Cancer Research. 63, 7122-7127 (2003).
  26. van Doorn, R., et al. Aberrant expression of the tyrosine kinase receptor EphA4 and the transcription factor twist in Sezary syndrome identified by gene expression analysis. Cancer Research. 64, 5578-5586 (2004).
  27. Booken, N., et al. Sezary syndrome is a unique cutaneous T-cell lymphoma as identified by an expanded gene signature including diagnostic marker molecules CDO1 and DNM3. Leukemia. 22, 393-399 (2008).
  28. Dagur, P. K., McCoy, J. P. Collection , storage, and preparation of human blood cells. Current Protocol Cytometry. 73, 1-16 (2016).
  29. Fierro, M. T., et al. Heterogeneity of Circulating CD4+ Memory T-cell Subsets in Erythrodermic Patients: CD27 Analysis Can Help to Distinguish Cutaneous T-cell Lymphomas From Inflammatory Erythroderma. Dermatology. 216 (3), 213-221 (2008).
  30. Campbell, J. J., et al. Sézary syndrome and mycosis fungoides arise from distinct T-cell subsets: a biologic rationale for their distinct clinical behaviors. Blood. 116 (5), 767-771 (2010).
  31. Roelens, M., et al. Circulating and skin-derived Sezary cells: clonal but with phenotypic plasticity. Blood. 130 (12), 1468-1471 (2017).
  32. Diehn, M., et al. Genomic expression programs and the integration of the CD28 costimulatory signal in T cell activation. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 99 (18), 11796-11801 (2002).
  33. Fuji, K. New therapies and immunological findings in cutaneous T-cell lymphoma. Frontiers in Oncology. 8, 12-28 (2018).

Yeniden basım ve izinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya şekillerini yeniden kullanmak için izin iste

İzin iste

Etiketler

H cre zolasyonuAk SitometrisiManyetik Boncuk Se imiRNA EkstraksiyonuH cre Stim lasyonuCanl l k De erlendirmesi

İlgili makaleler