-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

TR

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

tr_TR

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Cancer Research
Doğal Öldürücü (NK) ve Membran Bound-IL-21-Modifiye B Hücre Hattı Kullanarak CAR-NK Hücre Genleşm...

Research Article

Doğal Öldürücü (NK) ve Membran Bound-IL-21-Modifiye B Hücre Hattı Kullanarak CAR-NK Hücre Genleşme Yöntemi

DOI: 10.3791/62336

February 8, 2022

Minh Ma1,2, Saiaditya Badeti1, James K. Kim1, Dongfang Liu1,3

1Department of Pathology, Immunology and Laboratory Medicine,Rutgers-New Jersey Medical School, 2Department of Microbiology, Biochemistry & Molecular Genetics, Public Health Research Institute Center, New Jersey Medical School,Rutgers University, 3Center for Immunity and Inflammation, New Jersey Medical School,Rutgers-The State University of New Jersey

Cite Watch Download PDF Download Material list
AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

In This Article

Summary Abstract Introduction Protocol Representative Results Discussion Disclosures Acknowledgements Materials References Reprints and Permissions

Erratum Notice

Important: There has been an erratum issued for this article. View Erratum Notice

Retraction Notice

The article Assisted Selection of Biomarkers by Linear Discriminant Analysis Effect Size (LEfSe) in Microbiome Data (10.3791/61715) has been retracted by the journal upon the authors' request due to a conflict regarding the data and methodology. View Retraction Notice

Summary

Burada, periferik kan doğal öldürücü (PBNK), karaciğer dokularından NK hücreleri ve periferik kan mononükleer hücrelerinden (PBMC'ler) veya kordon kanından (CB) türetilen kimerik antijen reseptörü (CAR)-NK hücrelerini genişletmek için bir yöntem sunuyoruz. Bu protokol, genişlemiş NK hücrelerinin optimize edilmiş saflığına ek olarak, 221-mIL-21 besleyici hücreler kullanılarak NK ve CAR-NK hücrelerinin genişlemesini göstermektedir.

Abstract

Kimerik antijen reseptörü (CAR) modifiye immün hücre tedavisi, kanserler ve bulaşıcı hastalıklar için gelişmekte olan bir tedavi haline gelmiştir. NK bazlı immünoterapi, özellikle CAR-NK hücresi, hayatı tehdit eden ciddi toksisite olmaksızın en umut verici 'kullanıma hazır' gelişmelerden biridir. Bununla birlikte, başarılı bir CAR-NK tedavisi geliştirmenin darboğazı, üçüncü bir taraftan yeterli sayıda kapsamlı olmayan, uzun ömürlü, 'kullanıma hazır' CAR-NK hücresi elde etmektir. Burada, genetiği değiştirilmiş bir interlökin-21 (IL-21) membran formunu ifade eden bir Epstein-Barr virüsü (EBV) dönüştürülmüş B hücre hattı kullanarak yeni bir CAR-NK genişleme yöntemi geliştirdik. Bu protokolde, NK ve CAR-NK hücrelerini kordon kanı ve periferik kandan ve ayrıca katı organ dokularından genişletmek için adım adım prosedürler sağlanmaktadır. Bu çalışma, CAR-NK immünoterapisinin klinik gelişimini önemli ölçüde artıracaktır.

Introduction

Doğal öldürücü (NK) hücreler, CD56'yı eksprese eden ve T hücre belirteci CD3 1,2'nin ekspresyonundan yoksun lenfositlerin önemli bir alt kümesidir. Konvansiyonel NK hücreleri, viral olarak enfekte olmuş hücrelerin ve kanserli hücrelerin immünsüveyöründen sorumlu doğuştan gelen immün hücreler olarak sınıflandırılır. T hücrelerinin aksine, NK hücreleri CD16 veya diğer aktive edici reseptörleri kullanarak enfekte veya malign hücreleri tanır ve antijen peptitleri ile majör histokompatibilite kompleksi (MHC) sınıf I molekülleri 3,4 arasında bir kompleks oluşumunu gerektirmez. Relaps veya refrakter CD19 pozitif kanserleri (Hodgkin dışı lenfoma veya kronik lenfositik lösemi [CLL]) tedavi etmek için kimerik antijen reseptörü (CAR)-NK hücrelerini kullanan son klinik araştırmalar, CAR-NK hücrelerinin olağanüstü güvenlik avantajlarını göstermiştir5. Örneğin, CAR-NK hücre infüzyonu minimal veya ihmal edilebilir greft versus host hastalığı (GVHD), nörotoksisite, kardiyotoksisite ve sitokin salınım sendromu (CRS) 6,7,8,9,10 ile ilişkilidir. Bununla birlikte, insan NK hücrelerini genişletmeye yönelik geleneksel yöntemler, güçlü kardeş öldürücü öldürme ve telomer kıtlığı ile kapsamlı fenotipler göstermiştir, bu da evlat edinilmiş immünoterapi için yeterli sayıda fonksiyonel NK hücresi elde etmede büyük bir zorluk teşkil etmektedir11.

Bu zorlukların üstesinden gelmek için, birincil NK hücrelerini doğrudan fraksiyone edilmemiş periferik kan mononükleer hücrelerinden (PBMC'ler) veya kordon kanından (CB) ışınlanmış ve genetiği değiştirilmiş bir 721.221 (bundan böyle 221) hücre hattı, MHC sınıf I moleküllerinin düşük ekspresyonuna sahip bir insan B-lenfoblastoid hücre hattı kullanarak genişletmek için bir yöntem geliştirilmiştir3. Önceki çalışmalar IL-21'in NK hücre genişlemesindeki önemini göstermiştir; Bu nedenle, 721.221 hücre hattının bir versiyonunu ifade eden genetiği değiştirilmiş membrana bağlı bir IL-21 (şu andan itibaren, 221-mIL-21) 11,12,13,14,15 geliştirilmiştir. Sonuçlar, 221-mIL-21 besleyici hücre genişletilmiş birincil NK hücrelerinin, yaklaşık 2-3 hafta boyunca kalıcı yüksek NK hücre saflığı ile ortalama >40.000 kata kadar genişlediğini göstermiştir. Bu protokolün uygulanmasıyla ilgili ek bilgiler Yang ve ark.16'da bulunabilir.

Bu protokol, PBNK, CBNK, doku kaynaklı NK ve CAR-NK hücrelerinin ex vivo olarak yeni genişlemesinin adım adım prosedürünü göstermeyi amaçlamaktadır.

Protocol

Bu protokoldeki insan dokuları ve kanla ilgili çalışmalar, Rutgers Üniversitesi Kurumsal İnceleme Kurulu'nun (IRB) yönergelerini takip etmektedir.

1. Şekil 1'de gösterildiği gibi karaciğer dokularından NK hücresi genişlemesi (Gün 0).

NOT: İlk hücre sayısı ve canlılık, organ çıkarılmasından bu yana geçen süre ve ilk doku numune miktarı ile güçlü bir şekilde ilişkilidir. Bununla birlikte, dokular 30 mL'lik Hank'in Dengeli Tuz Çözeltisine (HBSS) yerleştirilirse ve gece boyunca 4 ° C'de buzda veya buzdolabında tutulursa, NK hücreleri hala 24 saate kadar yüksek saflıkta ve canlılıkta genişletilebilir.

  1. Steril cerrahi ekipman kullanarak dokulardan ve kesitlerden lenfositler elde etmek için uygun doku alanlarını tanımlayın.
  2. Dokuları 30 mL HBSS'ye (kalsiyum veya magnezyum olmadan) yerleştirin ve izolasyona hazırlanmaya hazır olana kadar buz üzerinde tutun.
  3. Bir biyogüvenlik kabini içinde steril tıraş bıçağı veya makas ve forseps kullanarak dokuyu <0,5 cm'lik küpler halinde kesin.
  4. HBSS'de 10x stoğu seyrelterek 1x kollajenaz IV çözeltisi (1 mg / mL) hazırlayın (10x Kollajenaz IV: 10 mg / mL veya ~ 200 U / mL).
  5. Kıyılmış doku parçalarını doku ayrışma tüplerine yerleştirin. Tüpleri en fazla 4 g doku ile doldurun ve doku parçalarını ~ 10 mL 1x kollajenaz IV içine batırın.
    NOT: DNase I kullanılması, NK canlılığını ve verimini biraz azaltabileceğinden önerilmez. Kullanılan spesifik doku ayrıştırıcı tüpler için lütfen Malzeme Tablosuna bakın.
  6. Doku ayrıştırıcı tüplerini bir doku ayrıştırıcısına yerleştirin ve dokuyu iyice kıymak için 37 ° C'de karıştırın.
    NOT: Karaciğer dokusu için bu işlem 30 dakikadan fazla sürebilir. Daha fazla gevrek doku için, yaklaşık 15 dakika yeterli olabilir. Lütfen spesifik doku ayrıştırıcı tüpler ve kullanılan doku ayrıştırıcısı için Malzeme Tablosuna bakın.
  7. Doku ayrıştırıcı tüplerini çıkarın ve 5 mL'lik bir şırınganın arka ucunu kullanarak 40 μm naylon hücre süzgecinden tritüre edin. Kaçağı toplayın ve sindirilmemiş büyük parçaları atın.
  8. Elüenti oda sıcaklığında 5 dakika boyunca 400 x g'da döndürün. Süper natantı aspire edin.
  9. Hücre peletlerini% 30 polivinilpirolidon (PVP) kaplı silika içinde yeniden askıya alarak, aksi takdirde nihai lenfosit fraksiyonunu kirletecek yağ hücrelerini uzaklaştırın.
    1. 1x PVP kaplı silika hazırlamak için, 10x PBS'de PVP kaplı silikanın 9:1 seyreltilmesini kullanın.
      NOT: Kullanılan belirli PVP kaplı silika için Malzeme Tablosuna bakın.
    2. %30 PVP kaplı silika hazırlamak için 1x PVP kaplı silikayı PBS/HBSS ile seyreltin.
  10. Hücre peletini oda sıcaklığında 5 dakika boyunca 400 x g'da döndürün. Süper natantı aspire edin.
  11. Hücre peletini 9 mL R-10 ortamında yeniden askıya alın.
    NOT: R-10 ortamının bileşimi için Malzeme Tablosuna bakınız
  12. Lenfositleri kırmızı kan hücrelerinden ve polimorfonükleer hücrelerden ayırmak için hücre süspansiyonunu 4 mL Ficoll veya lenfosit ayırma ortamı üzerine dikkatlice katlayın.
  13. Hızlanma ve frenler kapalıyken veya en düşük ayarda oda sıcaklığında 23 dakika boyunca 400 x g'de santrifüj yaparak katmanları ayırın. Üst-orta tabakayı dikkatlice boşaltın ve dokuya sızan lenfositleri içeren interfazı toplayın.
  14. Hücreleri 10 mL ortam ile durulayın ve hücre sayımına, akış sitometrisine, hücrelerin alikotasyonuna ve dondurulmasına veya birincil NK genişleme protokolüne geçin.

2. Şekil 2'de gösterildiği gibi PBMC'lerden (veya CB veya organ dokularından) birincil NK hücre genişlemesi (Gün 0).

  1. Dondurulmuş PBMC'yi ve dondurulmuş, ışınlanmış besleyici hücreleri 37 °C su banyosunda çözün.
  2. PBMC ve 100 Gama ışınlanmış (Gy-ışınlanmış) 221-mIL-21 hücresini, 10 mL R-10 ortam ile 5 dakika boyunca 400 x g'de santrifüjleme yoluyla ayrı ayrı yıkayın.
  3. Akış sitometrisi için 1 x 106 PBMC hücresi kaydedin.
    NOT: Başlangıçtaki NK hücresi saflığı, NK hücresi genişleme hızının hesaplanmasında önemli bir faktördür.
  4. Hücreleri 1 mL R-10 ortamında yeniden askıya alın. Trypan Blue kullanarak hücreleri sayın.
  5. 5x 10 6 PBMC hücresini, 100 Gy-ışınlanmış 221-mIL-21 hücreli 10 x 106 hücreli özel bir6 delikli plakada karıştırın (bkz.
  6. İnsan IL-2 (200 U / mL) ve insan IL-15 (5 ng / mL) ile desteklenmiş 30 mL R-10 ortamı ekleyin (bkz.
  7. Özel 6 delikli plakayı 37 °C'de% 5 CO2 ile inkübe edin.
  8. NK hücrelerini her 3-4 günde bir korumak için medyayı insan IL-2 (200 U / mL) ve insan IL-15 (5 ng / mL) ile desteklenmiş R-10 ortamı ile değiştirin.
    NOT: Her ortam değişikliğinde daha fazla genişleme için kuyu başına 20 x 106 hücreden daha az hücre bulundurun. En iyi canlılık için, her bir kuyucuktaki toplam hücre sayısının 100 x 106 hücreyi geçmediğinden emin olun.
  9. Toplam hücre sayısını, canlılığını kaydedin ve NK hücresi genişleme hızını hesaplamak için her 3-4 günde bir akış sitometrisi yapın.

3. Şekil 2'de gösterildiği gibi 293T hücrelerinin bağlanması (Gün 2).

  1. İşlem görmüş 100 mm plaka başına 11 mL D-10 ortama 1,8 x 106 293T hücreyi bölün.
    NOT: D-10 ortamının bileşimi için Malzeme Tablosuna bakınız
  2. 293T hücreleri 37 °C'de %5 CO2 ile inkübe edin.

4. Retrovirüs transfeksiyonu (3. Gün)

  1. 1.7 mL'lik bir tüpte, 470 μL indirgenmiş serum ortamını 30 μL transfeksiyon reaktifi ile karıştırın.
    NOT: Kullanılan spesifik indirgenmiş serum ortamı ve transfeksiyon reaktifi için Malzeme Tablosuna bakınız.
  2. Ayrı bir 1.7 mL tüpte, indirgenmiş serum ortamına 2.5 μg pRDF plazmid, 3.75 μg Pegpam3 plazmid ve 2.5 μg CAR yapısı SFG vektörü ekleyin, böylece son hacim 500 μL olur.
  3. Çözümleri 4.1 ve 4.2 adımlarında damla damla karıştırın.
  4. Tüpü oda sıcaklığında 15 dakika boyunca inkübe edin.
  5. 1. günde 4.4. adımdan 293T hücre plakasına 1 mL karışımı damla damla bir şekilde ekleyin.
  6. Plakaları 37 °C'de 48-72 saat boyunca% 5 CO2 ile inkübe edin.

5. Retronektin plaka kaplama (Gün 3)

  1. Retronektin proteinini Fosfat Tamponlu Salin (PBS) ile 50-100 μg / mL'lik bir son konsantrasyona kadar seyreltin.
  2. Seyreltilmiş retronektinin 500 μL'sini, işlenmemiş 24 kuyucuklu bir plakanın her bir kuyucuğuna ekleyin (CAR yapısı başına 5 kuyu). Plakayı parafilm kullanarak kapatın ve plakayı gece boyunca 4 ° C'de inkübe edin.

6. Transdüksiyon (4. Gün)

  1. Retronektin plakasını 2103 x g'de 4 ° C'de 30 dakika boyunca santrifüj edin. Süper natantı atın.
  2. 24 delikli plakanın her bir kuyusunu 1 mL R-10 ortamı ile bloke edin.
  3. Plakayı 37 ° C'de 1 saat boyunca% 5 CO2 ile inkübe edin.
  4. Retronektin plakası bloke edilirken santrifüjü önceden 32 ° C'ye ısıtın.
  5. Transfekte edilmiş 293T hücrelerini 0,45 μm'lik bir filtre kullanarak filtreleyerek retrovirüs süpernatantını toplayın.
  6. Aliquot filtrelenmiş retrovirüs süpernatantının 2 mL'si her bir kuyucuğun içine.
  7. 24 delikli plakayı 32 °C'de 2 saat boyunca 2103 x g'de santrifüj yapın.
  8. Plaka santrifüjleme sırasında, genişletilmiş PBNK hücrelerini 0. Gün'den toplayın ve Trypan Blue kullanarak hücreleri sayın.
    NOT: IL-2 (200 U/mL) ve IL-15 (5 ng/mL) ile desteklenmiş R-10 ortamı ekleyerek PBNK hücrelerini genişletmeye devam edin.
  9. Genişlemiş PBNK hücrelerini, IL-2 (200 U/mL) ve IL-15 (5 ng/mL) ile desteklenmiş R-10 ortamı ile seyreltin ve 2,5 x 10 5-5 x 105 hücre/mL (kuyucuk başına0,5 x 10 6-1 x 106 hücre) elde edin.
    NOT: Toplam hücre sayısını, canlılığını kaydedin ve akış sitometrisi için 5 x 105 genişletilmiş PBNK hücresini kaydedin, çünkü bu değerler NK hücresi genişleme hızını belirlemede önemlidir.
  10. Santrifüjlemeden sonra, retrovirüs süpernatantını her bir kuyucuktan kısmen aspire edin.
    NOT: Tamamen aspirasyon yapmayın, yani kuyu başına yaklaşık 100 μL retrovirüs süpernatant bırakın, çünkü bu transdüksiyon verimliliğini azaltacaktır.
  11. Seyreltilmiş genişlemiş PBNK hücrelerinin Aliquot 2 mL'si adım 6.8'den her bir kuyucuğa kadar.
  12. Plakayı 32 ° C'de 10 dakika boyunca 600 x g'de santrifüj yapın. Plakayı 37 ° C'de 48-72 saat boyunca% 5 CO 2 ile inkübe edin.
    NOT: Plakayı parafilme almayın.

7. Şekil 2'de gösterildiği gibi CAR-NK hücrelerinin toplanması (Gün 6 veya 7).

  1. Hücreleri 24 delikli plakadan yavaşça toplayın ve hücreleri 50 mL'lik bir santrifüj tüpüne aktarın
    NOT: Kabarcıklar oluşturmamaya çalışın, çünkü bu hücre canlılığında bir azalmaya neden olur.
  2. Tüpü 5 dakika boyunca 400 x g'de santrifüj yapın.
  3. Peleti 1 mL R-10 ortamı ile yeniden askıya alın ve Trypan Blue kullanarak hücreleri sayın.
    NOT: Transdüksiyon verimliliğini belirlemek üzere akış sitometrisi için 5 x 105 hücre kaydedin.
  4. Yeniden askıya alınan hücreleri, IL-2 (200 U / mL) ve IL-15 (5 ng / mL) ile desteklenmiş 30 mL R-10 ortamı içeren özel bir 6 delikli plakaya aktarın.
  5. Özel 6 delikli plakayı 37 °C'de% 5 CO2 ile inkübe edin.
  6. NK hücrelerini her 3-4 günde bir korumak için IL-2 (200 U / mL) ve IL-15 (5 ng / mL) ile desteklenmiş R-10 ortamını değiştirin.
    NOT: Her değişiklikte daha fazla genişleme için kuyu başına 20 x 106 hücreden daha az hücre bulundurun. En iyi canlılık için, her bir kuyucuktaki toplam hücre sayısının 100 x 106 hücreyi geçmediğinden emin olun.
  7. Toplam hücre sayısını, canlılığını kaydedin ve NK hücresi genişleme hızını hesaplamak için her 3-4 günde bir akış sitometrisi gerçekleştirin.
  8. Hücreleri uygun in vitro veya in vivo testler için kullanın.
    NOT: Ex vivo genişlemiş PBNK ve CAR-NK hücreleri yaklaşık 4 hafta boyunca 37 °C'lik bir inkübatörde kültürlenebilir.
  9. NK hücre sayısını ve saflığını 7. gün, 11. gün, 14. gün, 18. gün ve 21. günde akış sitometrisi ile inceleyin.

Representative Results

221-mIL-21 besleyici hücre metodolojisini kullanarak dokuya sızan NK hücre izolasyonu ve PBNK hücre genişlemesinin şematik bir iş akışı Şekil 1 ve Şekil 2'de gösterilmiştir. Genişlemiş PBNK hücreleri, hücreleri anti-insan CD56 ve anti-insan CD3 ile boyayarak NK hücre saflığını belirlemek için akış sitometrisi için her 3 veya 4 günde bir toplandı. Deney, genişleme sisteminin tekrarlanabilirliğini göstermek için iki farklı donör kullanılarak tekrarlandı (Şekil 3). 221-mIL-21 ile genişleyen PBNK hücrelerinin yaklaşık 5 × 104 kat genişlediği gösterilmiştir (Şekil 3A). Ayrıca, NK hücresi saflığı, 21 günlük genişleme boyunca yaklaşık% 85 oranında korunmuştur (Şekil 3B). 221-mIL-21 besleyici hücre genişletme sistemini kullanarak, NK hücre saflığı, donörlerden bağımsız olarak% 85 -% 95 arasında tutarlı bir şekilde değişmiştir (veriler gösterilmemiştir). 221-mIL-21 genişleme sisteminin sağlamlığını göstermek için, PBMC'ler genişlemeden önce anti-CD56 ve anti-CD3 için boyandı, bu da NK hücreleri için% 7.09'luk bir hücre saflığı ve yüksek oranda T hücresi gösterdi (Şekil 4A). PBMC'ler, NK hücrelerini genişletmek için 221-mIL-21 ile birlikte kültürlendi; NK saflığı, 4. günde CAR-NK transdüksiyonundan önce kontrol edildi (Şekil 4A). CAR-NK hücreleri toplandı ve anti-CD56, anti-CD3 ve anti-hIgG(H+L) F(ab')2 için boyandı,

Figure 1

Figure 2

Figure 3

Figure 4

Discussion

Yazarlar rakip çıkarlar olmadığını beyan ederler.

Disclosures

Burada, periferik kan doğal öldürücü (PBNK), karaciğer dokularından NK hücreleri ve periferik kan mononükleer hücrelerinden (PBMC'ler) veya kordon kanından (CB) türetilen kimerik antijen reseptörü (CAR)-NK hücrelerini genişletmek için bir yöntem sunuyoruz. Bu protokol, genişlemiş NK hücrelerinin optimize edilmiş saflığına ek olarak, 221-mIL-21 besleyici hücreler kullanılarak NK ve CAR-NK hücrelerinin genişlemesini göstermektedir.

Acknowledgements

Liu laboratuvarı üyelerine (Dr. Hsiang-chi Tseng, Dr. Xuening Wang ve Dr. Chih-Hsiung Chen) el yazmaları hakkındaki yorumları için teşekkür ederiz. SFG vektörleri için Dr. Gianpietro Dotti'ye ve 721.221 hücreleri için Dr. Eric Long'a teşekkür ederiz. Bu çalışma kısmen HL125018 (D. Liu), AI124769 (D. Liu), AI129594 (D. Liu), AI130197 (D. Liu) ve Rutgers-Health Advance Funding (NIH REACH programı), U01HL150852 (R. Panettieri, S. Libutti ve R. Pasqualini), S10OD025182 (D. Liu) ve D. Liu Laboratuvarı için Rutgers Üniversitesi-New Jersey Tıp Fakültesi Başlangıç fonundan desteklenmiştir.

Materials

için sitometri CAR yapısı üretildi % alıntı üretilen üretilmiştir, , ,
100 mm yüzey işlem görmüş steril doku kültürü kaplarıVWR10062-880Transfeksiyon
293T hücreleriATCCCRL-3216Transfeksiyon için
6 kuyulu G-REX plakasıWilson Wolf80240MNK hücre genişlemesi için
AF647-konjuge AffiniPure F (ab ') 2 parça keçi anti-insan IgG (H + L) Jackson ImmunoResearch109-606-088Akış için SFG
vektöründeDr. Dongfang Liu'nun laboratuvarındaTransfeksiyon için
Kollajenaz IVSigmaC4-22-1GTIL izolasyonu için
Kriyoprezervasyon ortamı
Bileşen: Fetal Sığır Serumu (FBS)
Corning35-010-CV%90
Kriyoprezervasyon ortamı
Bileşen: Dimetil sülfoksit (DMSO)
SigmaD2050% 10
D-10 medya
Bileşen: DMEM
VWR45000-304
D-10 medya
Bileşen: Fetal Sığır Serumu (FBS)
Corning35-010-CV
10 D-10 media
Bileşen: Penisilin Streptomisin
VWR45000-6521%
FastFlow & Düşük Bağlayıcı Millipore Express PES MembranMillexSLHPR33RBTransdüksiyon için
Genejuice transfeksiyon reaktifiVWR80611-356Transfeksiyon
için gentleMACS C-tüpleriMiltenyi Biotec130-093-237TIL'ler için izolasyon
gentleMACS OctoMiltenyi BiotecTILizolasyonu için
Hank'in Dengeli Tuz Çözeltisi (HBSS - olmadan kalsiyum veya magnezyum)ThermoFisher14170120TIL izolasyonu için
İnsan IL-15Peprotech200-15NK hücre genişlemesi için
İnsan IL-2Peprotech200-02NK hücre genişlemesi için
Işınlanmış 221-mIL21 besleyici hücrelerDr. Dongfang Liu'nun laboratuvarındaüretildi Kriyorezervasyon ortamında donduruldu
Lenfosit Ayırma OrtamıCorning25-072-CVTIL izolasyonu için
OPTI-MEMThermoFisher31895Transfeksiyon için
PE anti-insan CD3 klonu HIT3aBiolegend300308Akış sitometrisi için
PE / Cy7 anti-insan CD56 (NCAM) klonu 5.1H11BioLegend362509Akış sitometrisi için
Dr. Dongfang Liu'nun laboratuvarındaPegpam3 plazmidiİçin transfeksiyon
PercollGE Healthcare17089101TIL'lerin izolasyonu için
Periferik kan mononükleer hücreleri (PBMC'ler)New York Kan MerkeziSağlıklı donörlerin plazmasından izole edilmiş, kriyoprezervasyon ortamında dondurulmuştur
Fosfat Tampon Salin (PBS)Corning21-040-CVTransdüksiyon için
pRDF plazmidiDr. Dongfang Liu'nun laboratuvarındaTransfeksiyon için
R-10 media
İçindekiler: RPMI 1640
VWR45000-404
R-10 media
Bileşen: L-glutamin
VWR45000-304%1
R-10 media
Bileşen: Penisilin Streptomisin
VWR45000-652%1
R-10 media
Bileşen: Fetal Sığır Serumu (FBS)
Corning35-010-CV%10
RetronektinDr. Dongfang Liu'nun laboratuvarında üretildi:ev yapımı,Transdüksiyon için,
Trypan BlueCorning25-900-ClHücre sayımı için
İşlenmemiş 24 oyuklu plaka, Fisher Scientific13-690-071Transdüksiyon için

References

  1. Van Acker, H. H., et al. CD56 in the immune system: More than a marker for cytotoxicity. Frontiers in Immunology. 8, 892 (2017).
  2. Caligiuri, M. A. Human natural killer cells. Blood. 112 (3), 461-469 (2008).
  3. Shimizu, Y., et al. Transfer and expression of three cloned human non-HLA-A,B,C class I major histocompatibility complex genes in mutant lymphoblastoid cells. Proceedings of the Nationall Academy of Sciences of the United States of America. 85 (1), 227-231 (1988).
  4. Wu, J., Lanier, L. L. Natural killer cells and cancer. Advances in Cancer Research. 90, 127-156 (2003).
  5. Liu, E., et al. Use of CAR-transduced natural killer cells in CD19-positive lymphoid tumors. The New England Journal of Medicine. 382 (6), 545-553 (2020).
  6. Alonso-Camino, V., et al. Efficacy and toxicity management of CAR-T-cell immunotherapy: a matter of responsiveness control or tumour-specificity. Biochemical Society Transactions. 44 (2), 406-411 (2016).
  7. Bonifant, C. L., Jackson, H. J., Brentjens, R. J., Curran, K. J. Toxicity and management in CAR T-cell therapy. Molecular Therapy Oncolytics. 3, 16011 (2016).
  8. Kalaitsidou, M., Kueberuwa, G., Schitt, A., Gilham, D. E. CAR T-cell therapy: toxicity and the relevance of preclinical models. Immunotherapy. 7 (5), 487-497 (2015).
  9. Gust, J., et al. Endothelial activation and blood-brain barrier disruption in neurotoxicity after adoptive immunotherapy with CD19 CAR-T cells. Cancer Discovery. 7 (12), 1404-1419 (2017).
  10. Hay, K. A., et al. Kinetics and biomarkers of severe cytokine release syndrome after CD19 chimeric antigen receptor-modified T-cell therapy. Blood. 130 (21), 2295-2306 (2017).
  11. Zhang, Y., et al. In vivo kinetics of human natural killer cells: the effects of ageing and acute and chronic viral infection. Immunology. 121 (2), 258-265 (2007).
  12. Vidard, L., et al. CD137 (4-1BB) Engagement fine-tunes synergistic IL-15- and IL-21-driven nk cell proliferation. Journal of Immunology. 203 (3), 676-685 (2019).
  13. Venkatasubramanian, S., et al. IL-21-dependent expansion of memory-like NK cells enhances protective immune responses against Mycobacterium tuberculosis. Mucosal Immunology. 10 (4), 1031-1042 (2017).
  14. Ojo, E. O., et al. Membrane bound IL-21 based NK cell feeder cells drive robust expansion and metabolic activation of NK cells. Scientific Reports. 9 (1), 14916 (2019).
  15. Denman, C. J., et al. Membrane-bound IL-21 promotes sustained ex vivo proliferation of human natural killer cells. PLoS One. 7 (1), 30264 (2012).
  16. Yang, Y., et al. Superior expansion and cytotoxicity of human primary NK and CAR-NK cells from various sources via enriched metabolic pathways. Molecular Therapy. Methods & Clinical Development. 18, 428-445 (2020).
  17. Liu, S., et al. NK cell-based cancer immunotherapy: from basic biology to clinical development. Journal of Hematology & Oncology. 14 (1), 7 (2021).
  18. Gong, J. H., Maki, G., Klingemann, H. G. Characterization of a human cell-line (Nk-92) with phenotypical and functional-characteristics of activated natural-killer-cells. Leukemia. 8 (4), 652-658 (1994).
  19. Tam, Y. K., et al. Characterization of genetically altered, interleukin 2-independent natural killer cell lines suitable for adoptive cellular immunotherapy. Human Gene Therapy. 10 (8), 1359-1373 (1999).
  20. Robertson, M. J., et al. Characterization of a cell line, NKL, derived from an aggressive human natural killer cell leukemia. Experimental Hematology. 24 (3), 406-415 (1996).
  21. Hu, Y., Tian, Z. G., Zhang, C. Chimeric antigen receptor (CAR)-transduced natural killer cells in tumor immunotherapy. Acta Pharmacologica Sinica. 39 (2), 167-176 (2018).
  22. Tseng, H. C., et al. Efficacy of anti-CD147 chimeric antigen receptors targeting hepatocellular carcinoma. Nature Communications. 11 (1), 4810 (2020).
  23. Easom, N. J. W., et al. IL-15 overcomes hepatocellular carcinoma-induced NK cell dysfunction. Frontiers in Immunology. 9, 1009 (2018).
  24. Granzin, M., et al. Highly efficient IL-21 and feeder cell-driven ex vivo expansion of human NK cells with therapeutic activity in a xenograft mouse model of melanoma. Oncoimmunology. 5 (9), 1219007 (2016).
  25. Liu, E. L., et al. Cord blood derived natural killer cells engineered with a chimeric antigen receptor targeting CD19 and expressing IL-15 have long term persistence and exert potent anti-leukemia activity. Blood. 126 (23), (2015).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article
Request Permission

Play Video

Doğal Öldürücü (NK) ve Membran Bound-IL-21-Modifiye B Hücre Hattı Kullanarak CAR-NK Hücre Genleşme Yöntemi
JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code