Yöntem makalesi

Tahılların ve baklagillerin serbest çözünür fenolik asit bileşimini ve antioksidan kapasitesini belirlemek için genelleştirilmiş bir yöntem

DOI:

10.3791/62467

⸱

10 Haziran 2022

 ,  , 
1Department of Food and Human Nutritional Sciences, University of Manitoba, 2Richardson Centre for Functional Foods and Nutraceuticals, University of Manitoba

Bu makalede

Özet

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Fenolik asitler, kepekli tahıllarda bulunan önemli fitokimyasallardır. Antioksidan koruyucu fonksiyonlar gibi biyoaktif özelliklere sahiptirler. Bu çalışma, HPLC tanımlaması, toplam fenolik içerik tahmini ve tahıl ve baklagillerde fenolik asitlerin antioksidan kapasitesinin belirlenmesi için genelleştirilmiş bir yöntemin raporlanmasını amaçlamıştır.

Özet

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Fenolik asitler, hem fenolik bir grubu hem de bir karboksilik grubu taşıyan bir organik bileşik sınıfıdır. Tahıllarda bulunurlar ve tahılların kepeğinde veya baklagillerin tohum kabuğunda yoğunlaşırlar. Son yıllarda potansiyel antioksidan koruyucu sağlık işlevleri hakkında çok fazla araştırma ilgisi yaratan antioksidan özelliklere sahiptirler. Bu çalışma, serbest çözünür fenolik asitlerin kepekli tahıllardan ekstraksiyonu ve antioksidan kapasitelerinin analizi için genelleştirilmiş bir yöntem sunmaktadır. İki tahıl (buğday ve sarı mısır) ve üç baklagilden (börülce fasulyesi, barbunya fasulyesi ve soya fasulyesi) oluşan beş tam tahıl örneği kullanılmıştır. Taneler un haline getirildi ve serbest çözünür fenolik asitleri sulu metanol kullanılarak ekstrakte edildi. Bileşikler daha sonra yüksek basınçlı sıvı kromatografı (HPLC) kullanılarak tanımlandı. Toplam fenolik içeriklerini belirlemek için Folin-Ciocalteu yöntemi kullanılırken, antioksidan kapasiteleri DPPH radikal süpürme kapasitesi, Trolox eşdeğer antioksidan kapasitesi (TEAC) ve oksijen radikal absorbans kapasitesi (ORAC) testleri kullanılarak belirlendi. Tanımlanan fenolik asitler vanillik, kafeik, p-kumarik ve ferulik asitleri içeriyordu. Vanillik asit sadece börülcede tanımlanırken, kafeik asit sadece böbrek fasulyesinde tanımlanmıştır. p-Kumarik asit sarı mısır, börülce ve soya fasulyesinde tanımlanırken, tüm örneklerde ferulik asit tanımlanmıştır. Ferulik asit, tanımlanan baskın fenolik asitti. Numunelerdeki fenolik asitlerin toplam konsantrasyonu aşağıdaki sırayla azalmıştır: soya fasulyesi > börülce fasulyesi > sarı mısır = buğday > barbunya fasulyesi. Toplam antioksidan kapasitesi (DPPH, TEAC ve ORAC tahlillerinin değerlerinin toplamı) aşağıdaki gibi azalmıştır: soya fasulyesi > böbrek fasulyesi > sarı mısır = börülce fasulyesi > buğday. Bu çalışma, HPLC analizinin yanı sıra DPPH, TEAC ve ORAC tahlillerinin kepekli tahılların fenolik asit bileşimi ve antioksidan özellikleri hakkında yararlı bilgiler sağladığı sonucuna varmıştır.

Giriş

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Fenolik asitler, otçul ve mantar enfeksiyonuna karşı bitki savunmasında oynadıkları hayati rol ve bitki dokularında yapısal destek ve bütünlüğün korunmasından dolayı bitkilerde incelenen en önemli fitokimyasallar arasındadır 1,2. Tahılların kepeğinde ve baklagillerin tohum kabuğunda bol miktarda bulunurlar3. Yapısal olarak, iki gruba ayrılırlar: hidroksibenzoik asitler (Şekil 1) ve hidroksisinnamik asitler (Şekil 2). Tahıllarda ve baklagillerde yaygın hidroksibenzoik asitler gallik, p-hidroksibenzoik, 2,4-dihidroksibenzoik, protokateşik, vanillik ve şırıngalik asitleri içerirken, yaygın hidroksisinnamik asitler kafeik, p-kumarik, ferulik ve sinapik asitleri içerir3. Fenolik asitler ayrıca yağlarda oksidatif kokululuğa neden olan serbest radikalleri temizleyebildikleri ve fizyolojik sistemlerde radikal kaynaklı oksidatif stresi başlatıp çoğaltabildikleri için antioksidan özelliklere sahiptirler 4,5. Antioksidanlar olarak bu hayati fizyolojik rol nedeniyle, son araştırmaların konusudur. Bunun nedeni, bitkisel gıdaların bileşenleri olarak tüketildiğinde, antioksidan koruma uygulayabilmeleridir.

Tahıllar ve tahıl ürünleri, dünya çapında insanlar ve hayvanlar için başlıca karbonhidrat besin kaynaklarıdır6. Tahıllar arasında buğday, pirinç, mısır (mısır), arpa, tritikale, darı ve sorgum bulunur. Bunlar arasında, 2019/2020 yıllarında tahmini 1.135,7 milyon ton küresel kullanım ile mısır en çok kullanılanıdır, bunu aynı dönemde tahmini 757,5 milyon ton küresel kullanım ile buğday izlemektedir7. Tahıl gıdaları, zengin karbonhidrat kaynakları oldukları için tüketiciler için harika enerji kaynaklarıdır. Ayrıca bazı protein, yağ, lif, vitamin ve mineraller sağlarlar6. Besin değerlerine ek olarak, tahıllar, fizyolojik sistemi radikal kaynaklı oksidatif hasardan koruma potansiyeline sahip fitokimyasal antioksidanların, özellikle fenolik asitlerin iyi kaynaklarıdır3. Baklagiller de iyi besin kaynaklarıdır ve genellikle protein bakımından tahıllardan daha yüksektir. Ayrıca vitamin ve mineral içerirler ve çeşitli yiyeceklerin hazırlanmasında kullanılırlar8. Ek olarak, baklagiller fenolik asitler, flavonoidler, antosiyaninler ve proantosiyanidinler 9,10 dahil olmak üzere çeşitli fitokimyasal antioksidanların iyi kaynaklarıdır. Farklı tahıl ve baklagil çeşitleri farklı bir fenolik asit bileşimine sahip olabilir. Bu nedenle, fenolik antioksidanlarla ilgili potansiyel sağlık yararlarını bilmek için tahılların ve baklagillerin fenolik asit bileşimini ve çeşitlerini incelemeye ihtiyaç vardır.

Tahıl ve baklagil tanelerindeki fenolik asitlerin miktarını ölçmek ve antioksidan aktivitelerini belirlemek için bir dizi tahlil bildirilmiştir. Tam tahıllı fenolik asitler için en yaygın analiz yöntemleri spektrofotometri ve sıvı kromatografisi11'dir. Bu çalışmanın amacı, serbest çözünür fenolik asit bileşimini belirlemek için genelleştirilmiş yüksek basınçlı sıvı kromatografik bir yöntem ve bazı tam tahıllı tahılların ve baklagillerin toplam fenolik içeriğini ve antioksidan kapasitesini belirlemek için spektrofotometrik yöntemleri göstermektir.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Protokol

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. Numune türü

  1. Bu çalışma için iki tahıl (örneğin, durum buğdayı ve sarı mısır) ve üç baklagilden (örneğin, Blackeye börülce fasulyesi, soya fasulyesi ve kırmızı barbunya fasulyesi) oluşan beş tam tahıl örneği kullanın.
  2. Her bir tahılın 50 gramını bir kahve değirmeni kullanarak üç kat un haline getirin ve 500 μm'lik bir elek ile geçirin.
  3. Bunları -20 °C'de saklayın.

2. Numune hazırlama

  1. Kuru madde içeriğinin belirlenmesi ve kuru ağırlık esasının ifadesi
    NOT: Her toz numunenin kuru madde içeriğini AOAC (2000)12 yöntemine göre belirleyin.
    1. Zorla konveksiyonlu bir fırını açın ve sıcaklığı 130 ° C'ye ayarlayın.
    2. Fırında 30 dakika ila 1 saat kuru kurutucu (silika jel) ve kurutulmuş silika jeli bir kurutucuya aktarın.
    3. Her numunenin 2 gramını temiz, önceden kurutulmuş ve tartılmış bir alüminyum kutuya doğru şekilde tartın.
    4. Tartılan numuneleri 130 °C'de cebri konveksiyonlu fırında 1 saat kurutun.
    5. Kurutulmuş numuneyi kurutucuya aktarın ve ortam sıcaklığına soğumaya bırakın.
    6. Kurutulmuş, soğutulmuş numuneyi tartın ve ağırlığını kaydedin.
    7. Her numunenin kuru madde içeriğini aşağıdaki gibi hesaplayın:
      figure-protocol-1
    8. Aşağıdaki formülü kullanarak kuru ağırlık bazında ölçülen her parametreyi ifade edin:
      figure-protocol-2
  2. Fenolik asit ekstraksiyonu
    NOT: Tahıl numunelerindeki çözünür serbest fenolik bileşikleri, tam tahılların miligram miktarlarından fenolik ekstraksiyonu sağlayan Y. Qiu ve ark.5 yönteminin bir modifikasyonunu kullanarak çıkarın.
    1. 100 mg tam tahıllı un numunesini doğrudan amber renkli 2 mL kapasiteli mikrosantrifüj tüpüne doğru bir şekilde tartın. Tüpün koyu rengi, karışımın ışığa maruz kalmasını önlemeye yardımcı olur.
    2. Numuneleri içeren tüplerin her birine 1 mL% 80 sulu HPLC sınıfı metanol ekleyin.
    3. Metanol çözeltisini ve numuneleri karıştırmak için kısaca vorteks.
    4. Serbest çözünür fenolik bileşikleri çıkarmak için örnekleri 60 dakika boyunca sonikleştirin. Işıktan ek koruma için sonikasyon süresi boyunca örneklerin üzerine bir kapak koyun.
    5. Sonikasyondan sonra, süpernatantı üstte bırakan katı kalıntıları tortulamak için karışımı 20.000 × g'da 5 dakika boyunca santrifüj edin. Santrifüjlemeden sonra süpernatantta serbest fenolik bileşikler bulunacaktır.
    6. Süpernatantı temiz bir mikrosantrifüj tüpüne aktarın.
      NOT: Süpernatantın HPLC cihazına enjekte edilmeden önce filtrelenmesi gerekir. Süpernatanı filtrelemek için, 3 mL'lik bir şırınganın pistonunu çıkarın ve bir şırınga filtresi takın. Filtre, 0,22 μm'den büyük olmayan bir gözenek boyutuna sahip olmalıdır.
    7. Süpernatantın yaklaşık 0,4 mL'sini şırınganın üst kısmına pipetleyin. Pistonu tekrar takın ve sıvıyı filtreden bir şişe eki içeren bir HPLC şişesine itin.
    8. Cihaz, HPLC analizi için makalede özetlenen yöntemi çalıştıracak şekilde ayarlandıktan sonra, numune listesine karşılık gelmesi için şişeleri atlıkarıncaya yükleyin.
    9. Farklı fenolik bileşikleri temsil eden farklı zirveleri gösteren 320 nm ve 280 nm'de HPLC kromatogramları elde edin.
    10. Uygun standart eğrileri kullanarak, hidroksisinnamik asitleri 320 nm'de sayısallaştırın, çünkü bu dalga boyunda maksimum emilime sahiptirler. Aynı prensibe göre, hidroksibenzoik asitleri 280 nm'de sayısallaştırın.
    11. Diğer analizler için kalan ekstraktları -20 °C'de saklayın.

3. Fenolik kompozisyon

  1. J. Xiang, F.B. Apea-Bah, V. U. Ndolo, M.C. Katundu ve T. Beta 4 yöntemine dayanarak, numunelerde ekstrakte edilen fenolik bileşikleri tanımlamak ve ölçmek için yüksek basınçlı bir sıvı kromatograf (Malzeme Tablosu) kullanın.
  2. Ekstraktlardaki kurucu fenolik bileşikleri tanımlamak ve ölçmek için fenolik asit standartlarını (vanilik asit, kafeik asit, p-kumarik asit, ferulik asit ve sinapik asit) hazırlayın.
  3. Bunu yapmak için, her standardın 1 mg'ını tartın ve her standardın 1.000 μg / mL'sini üretmek için 1 mL% 50 sulu metanol içinde çözün.
  4. Her biri 200 μg / mL'lik bir konsantrasyona sahip bir standart kokteyli üretmek için beş standardın eşit hacimlerini 2 mL amber santrifüj tüpünde karıştırın.
  5. Yeni bir tüpe bir hacim alarak ve sulu metanol çözücünün eşit hacmiyle seyrelterek standart kokteylin seri seyreltmelerini hazırlayın.
  6. Seri seyreltmeleri 3.125 μg / mL'lik bir konsantrasyona kadar tekrarlayın.
  7. Ayrıca, her standardın 25 μg / mL konsantrasyonunu elde etmek için her standardı çözücü ile 40 kez ayrı ayrı seyreltin.
  8. Kolon sıcaklığını 35 °C'ye ve numune fırın sıcaklığını 15 °C'ye ayarlayın.
  9. Mobil faz A'yı (% 0.1 sulu formik asit) hazırlamak için, 1 mL formik asidi 1 L kapasiteli bir hacimsel şişeye aktarın ve 1 L işaretine HPLC sınıfı su ekleyin. Karıştırmak için iyice çalkalayın.
  10. Mobil faz B (metanolünde% 0.1 formik asit) hazırlamak için, 1 mL formik asidi 1 L kapasiteli hacimsel şişeye aktarın ve 1 L işaretine HPLC sınıfı metanol ekleyin. Karıştırmak için iyice çalkalayın.
  11. Gerekirse ses seviyelerini 1 L işaretine ayarlayın.
  12. Her iki mobil fazı da 0,45 μm hidrofilik filtre kağıdından filtreleyin.
  13. Analiz için, ters faz kolonuna her bir ekstraktın veya standardın (25 μg / mL standartları ve standart kokteyller) 10 μL'sini enjekte edin.
  14. 25 dakikalık bir çalışma için doğrusal gradyan programına göre mobil fazlarla aşağıdaki gibi salın: 0-3.81 dakika,% 9 -% 14 B; 3,81-4,85 dakika, - B; 4,85-5,89 dk, - B, 5,89-8,32 dk, - B; 8,32-9,71 dk, - B; 9,71-10,40 dakika, - B; 10,40-12,48 dk, -&




Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Tablo 2, tahıl ve baklagil tanelerinde tanımlanan fenolik asitleri göstermektedir. Mevcut otantik standartlara dayanarak, örneklerde dört fenolik asit tanımlanmıştır ve bunlar: vanillik, kafeik, p-kumarik ve ferulik asitler. Vanillik asit bir hidroksibenzoik asittir, diğer üçü ise hidroksisinnamik asitlerdir. Vanillik asit sadece Blackeye börülce fasulyesinde tanımlanırken, kafeik asit sadece böbrek fasulyesinde tanımlanmıştır. p-Kumarik asit sarı mısır, börülce fasulyesi ve soya fasuly...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Kepekli tahıllar, dünya çapında geniş gıda uygulamaları bulan temsili tahıl taneleri ve baklagiller olarak seçildi. Her tahılın çeşitleri arasında farklılıklar olsa da, bu çalışmanın odak noktası, tam tahıllar için serbest fenolik asit ekstraksiyonu ve analizi için genelleştirilmiş bir yöntem göstermekti. Ekstraksiyon yöntemi, bu tür deneyler yapıldığında çevreye salınacak kimyasalların miktarını azaltmak için numune ve çözücü miktarlarını önemli ölçüde azaltarak değiştirildi. Modifikasyon ayrıca miligram miktarlarındaki...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Yazarlar çıkar çatışması olmadığını beyan ederler.

Teşekkürler

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Yazarlar, Bayan Alison Ser ve Bayan Hannah Oduro-Obeng'in teknik desteğinin yanı sıra Bayan Janice Fajardo ve Bay Miguel del Rosario'nun video düzenleme desteğini minnetle kabul etmektedir.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
15 mL Falcon konik santrifüj tüpleriFisher Scientific05-527-90
2 mL Amber cam ID Surestop flakonThermo ScientificC5000-2W
2 mL Amber mikrosantrifüj tüpleriVWR20170-084
2,2′-Azobis (2-amidinopropan) dihidroklorür (AAPH)Sigma-Aldrich440914-100G
2,2'-Azino-bis (3-etilbenzotiazolin-6-sülfonik asit (ABTS) (C < alt > 18 < / alt >H < alt >18 < / alt > N < alt > 4< / alt >O< alt > 6 < / alt > S < alt > 4< / alt >) ≥ % 98,Sigma AldrichA1888-2G
2,2-Difenil-1pikrilhidrazil (DPPH) (C < alt > 18 < / alt >H < alt > 12 < / alt >N < alt > 5 < / alt >O < altı > 6 < / alt >)Sigma AldrichD913-2
6-Hidroksi-2,5,7,8-tetrametilkroman-2-karboksilik asit (Trolox) (C < alt > 14 < / alt >H < alt > 18 < alt > O < alt > 4< / alt >), ≥ %98Fluka Chemika56510
9 mm Otomatik Numune Alma Cihazı Flakon Vida Dişi KapaklarıThermo Scientific60180-670
96 kuyulu düz tabanlı plakalarFisher Scientific12565501
Agilent BioTek ELx800 mikroplaka okuyucuFisher ScientificBT-ELX800NB
Agilent BioTek Precision 2000 96/384 Otomatik Mikroplaka Pipetleme SistemiFisher ScientificN/A
Agilent BioTek FLx800 Mikroplaka Floresan OkuyucuFisher ScientificN/A
Analitik terazi SI-114Denver InstrumentSI-114.1
Otomatik Numune Alma Cihazı, Waters 717 PlusWatersWAT078900
BD 3 mL şırınga Luer-Lok TipBD309657
Bransonic ultrasonik temizleyici, Branson 5510Millipore SigmaZ245143
Corning LSE Vorteks KarıştırıcıCorning6775
Durapore Filtre (0.45 & mikro; m PVDF Membran)Merck Millipore LtdHVLP04700 
Durapore Membran Filtreler (0.45 &mikro; m HV)Merck Millipore LtdHVHP04700
Eppendorf Araştırma  artı, 0.5-10 ve mikro; LEppendorf3123000020
Eppendorf Araştırma  artı, 0.5-5 mLEppendorf3123000071
Eppendorf Research  artı, 100-1000 ve mikro; LEppendorf3123000063
Eppendorf Araştırma  artı, 10-100 ve mikro; LEppendorf3123000047
Etil asetat, HPLC sınıfıFisher ChemicalE195-4
Ferulik asit standardıSigma Aldrich128708-5G
FloreseinFisher ScientificAC119245000
Folin & Ciocalteu fenol reaktifiSigma AldrichF9252
Formik asit,% 99Acros Organics, Janssen Pharmaceuticalaan 3a27048-0010
Gallik asit standardıSigmaG7384
Yüksek performanslı sıvı kromatografı (HPLC), Waters 2695Sular960402
Metanol, HPLC sınıfıFisher ChemicalA452-4
Mikro pipet uçları, 0,5-10 & LFisherbrand21-197-2F
Mikrosantrifüj Sorvall Legend Micro 21 santrifüjThermo Scientific75002435
Çok kanallı mikropipet, Proline Plus, 30-300 & mikro; LSartorius728240
Fotodiyot dizi dedektörü, Waters 2996Waters720000350TR
Pipet uçları, 1000 ve mikro; LVWR83007-382
Pipet uçları, 1-5 mLVWR82018-840
Potasyum persülfat (K2S2O8), ≥ % 99.0Sigma Aldrich216224-100G
Potasyum fosfat dibazik susuz (K2< / sub>HPO4< / sub>)Fisher ScientificP288-500
Potasyum fosfat monobazik (KH2< / sub>PO4< / sub>)Fisher ScientificP285-500
PYREX 250 mL Kısa Boyunlu Kaynatma Şişesi, Yuvarlak AltCorning4321-250
Ters faz C18 Analitik Kolon (100 x 3 mm) Accucore aQThermo Scientific17326-103030
Roto evaporatör, IKA RV 10IKA 
Sodyum karbonat (NaCO3) susuzFisher ChemicalS263-1
Sodyum klorür (NaCl)Mallinckrodt AR®7581
Sodyum fosfat dibazik susuz (Na2< / sub>HPO4< / sub>)Fisher ScientificBP332-500
Sodyum fosfat monobazik susuz (NaH2< / sub>P sub4< / sub>)Fisher biyoreaktifleriBP329-500
Standardizasyon pipet uçları 0-200 & mikro; LFisherbrand02-681-134
Şırınga Tahrikli Filtre ünitesi (0.22 & mikro; m)  Millex®-GVSLGVR04NL
Hedef mikro-sertler flakon eki (400 & mikro; L)Thermo ScientificC4011-631
Ultra saf su (Pompalı doğrudan Q-3 UV sistemi)MilliporeZRQSVP030
0010005185

Kaynaklar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Huitu, O., et al. Silicon, endophytes and secondary metabolites as grass defenses against mammalian herbivores. Frontiers in Plant Science. 5, 478(2014).
  2. Joshi, J. R., Burdman, S., Lipsky, A., Yariv, S., Yedidia, I. Plant phenolic acids affect the virulence of Pectobacterium aroidearum and P. carotovorum ssp. brasiliense via quorum sensing regulation. Molecular Plant Pathology. 17 (4), 487-500 (2016).
  3. Dykes, L., Rooney, L. W. Phenolic compounds in cereal grains and their health benefits. Cereal Foods World. 52 (3), 105-111 (2007).
  4. Xiang, J., Apea-Bah, F. B., Ndolo, V. U., Katundu, M. C., Beta, T. Profile of phenolic compounds and antioxidant activity of finger millet varieties. Food Chemistry. 275, 361-368 (2019).
  5. Qiu, Y., Liu, Q., Beta, T. Antioxidant properties of commercial wild rice and analysis of soluble and insoluble phenolic acids. Food Chemistry. 121 (1), 140-147 (2010).
  6. Beverly, R. L. Encyclopedia of Food Safety. Motarjemi, Y. 3, Academic Press. 309-314 (2014).
  7. FAO. Food Outlook - Biannual report on global food markets. Food and Agriculture Organization. , Rome, Italy. (2020).
  8. Erbersdobler, H. F., Barth, C. A., Jahreis, G. Legumes in human nutrition. Nutrient content and protein quality of pulses. Ernahrungs Umschau. 64 (9), 134-139 (2017).
  9. Dueñas, M., Hernández, T., Estrella, I. Assessment of in vitro antioxidant capacity of the seed coat and the cotyledon of legumes in relation to their phenolic contents. Food Chemistry. 98 (1), 95-103 (2006).
  10. Khang, D. T., Dung, T. N., Elzaawely, A. A., Xuan, T. D. Phenolic profiles and antioxidant activity of germinated legumes. Foods. 5 (2), 27(2016).
  11. Hefni, M. E., Amann, L. S., Witthöft, C. M. A HPLC-UV method for the quantification of phenolic acids in cereals. Food Analytical Methods. 12 (12), 2802-2812 (2019).
  12. AOAC. Official Methods of Analysis. 17th edn. , Association of Official Analytical Chemists. Gaithersburg, MD, USA. (2000).
  13. Apea-Bah, F. B., Head, D., Scales, R., Bazylo, R., Beta, T. Hydrothermal extraction, a promising method for concentrating phenolic antioxidants from red osier dogwood (Cornus stolonifer) leaves and stems. Heliyon. 6 (10), 05158(2020).
  14. Apea-Bah, F. B., Minnaar, A., Bester, M. J., Duodu, K. G. Sorghum-cowpea composite porridge as a functional food, Part II: Antioxidant properties as affected by simulated in vitro gastrointestinal digestion. Food Chemistry. 197, Pt A 307-315 (2016).
  15. Robbins, R. J., Bean, S. R. Development of a quantitative high-performance liquid chromatography-photodiode array detection measurement system for phenolic acids. Journal of Chromatography A. 1038 (1-2), 97-105 (2004).
  16. Singleton, V. L., Rossi, J. A. Colorimetry of total phenolics with phosphomolybdic-phosphotungstic acid reagents. American Journal of Enology and Viticulture. 16, 144-158 (1965).
  17. Prior, R. L., Wu, X., Schaich, K. Standardized methods for the determination of antioxidant capacity and phenolics in foods and dietary supplements. Journal of Agricultural and Food Chemistry. 53 (10), 4290-4302 (2005).
  18. Ainsworth, E. A., Gillespie, K. M. Estimation of total phenolic content and other oxidation substrates in plant tissues using Folin-Ciocalteu reagent. Nature Protocols. 2 (4), 875-877 (2007).
  19. Waterhouse, A. L. Determination of total phenolics. Current Protocols in Food Analytical Chemistry. 1, 1-8 (2002).
  20. Huang, D., Ou, B., Prior, R. L. The chemistry behind antioxidant capacity assays. Journal of Agricultural and Food Chemistry. 53 (6), 1841-1856 (2005).
  21. Esterbauer, H., Wäg, G., Puhl, H. Lipid peroxidation and its role in atherosclerosis. British Medical Bulletin. 49 (3), 566-576 (1993).
  22. Esterbauer, H., Gebicki, J., Puhl, H., Jürgens, G. The role of lipid peroxidation and antioxidants in oxidative modification of LDL. Free Radical Biology and Medicine. 13 (4), 341-390 (1992).
  23. Apea-Bah, F. B., Serem, J. C., Bester, M. J., Duodu, K. G. Phenolic composition and antioxidant properties of Koose, a deep-fat fried cowpea cake. Food Chemistry. 237, 247-256 (2017).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya şekillerini yeniden kullanmak için izin iste

İzin iste

Etiketler

Phenolic Acid CompositionAntioxidant CapacityWhole GrainsCereals LegumesHPLC AnalysisDPPH AssayTrolox EquivalentORAC AssayFree Soluble PhenolicsTotal Phenolic Content

İlgili makaleler