Yöntem makalesi

In Vitro Vasküler Hastalık Modellemesi ve İlaç Testi için Fare Embriyonik Kök Hücreleri Kullanılarak Anjiyogenezin Üç Boyutlu Filizlenme Testi

DOI:

10.3791/62554

⸱

11 Mayıs 2021

 ,  ,  , 
1Einthoven Laboratory for Experimental Vascular Medicine, Department of Internal Medicine (Nephrology), Leiden University Medical Center, 2Institute Physics for Medicine Paris, INSERM U1273, ESPCI Paris, CNRS FRE 2031, 3MEMOLIFE Laboratory of Excellence and PSL Research University

Bu makalede

Özet

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Bu tahlil, filizlenen anjiyogenezi in vitro olarak kontrol eden biyolojik süreçleri analiz etmek için 3D-kollajen jel içinde kültürlenmiş embriyoid cisimlere farklılaştırılmış fare embriyonik kök hücrelerini kullanır. Bu teknik, ilaçları test etmek, hastalıkları modellemek ve embriyonik olarak ölümcül olan delesyonlar bağlamında spesifik genleri incelemek için uygulanabilir.

Özet

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

İndüklenmiş pluripotent kök hücreler (iPSC) ve gen düzenleme teknolojilerindeki son gelişmeler, fenotipik ilaç keşif (PDD) programları için yeni insan hücresi tabanlı hastalık modellerinin geliştirilmesine olanak sağlamaktadır. Her ne kadar bu yeni cihazlar insanlarda araştırma ilaçlarının güvenliğini ve etkinliğini daha doğru bir şekilde tahmin edebilse de, kliniğe gelişimleri hala memeli verilerine, özellikle de fare hastalığı modellerinin kullanımına dayanmaktadır. İnsan organoid veya çip üzerinde organ hastalığı modellerine paralel olarak, ilgili in vitro fare modellerinin geliştirilmesi, türler ile in vivo ve in vitro koşullar arasındaki doğrudan ilaç etkinliğini ve güvenlik karşılaştırmalarını değerlendirmek için karşılanmamış bir ihtiyaçtır. Burada, embriyoid cisimlere (EB'ler) farklılaşmış fare embriyonik kök hücrelerini kullanan bir vasküler filizlenme testi tanımlanmıştır. 3D-kollajen jel üzerine kültürlenen vaskülarize EB'ler, filizlenen anjiyogenez adı verilen bir süreç olan genişleyen yeni kan damarları geliştirir. Bu model, endotel ucu hücre seçimi, endotel hücre göçü ve proliferasyonu, hücre rehberliği, tüp oluşumu ve duvar hücresi alımı dahil olmak üzere önceden var olan bir vasküler ağdan kan damarlarının in vivo filizlenen anjiyogenez-oluşumunun temel özelliklerini özetlemektedir. Anjiyogenezi modüle eden ilaçların ve genlerin taranmasına uygundur ve insan iPSC teknolojilerine dayanan yakın zamanda tarif edilen üç boyutlu (3B) vasküler tahlillerle benzerlikler gösterir.

Giriş

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Son otuz yılda, hedefe dayalı ilaç keşfi (TDD), ilaç endüstrisi tarafından ilaç keşfinde yaygın olarak kullanılmaktadır. TDD, bir hastalıkta önemli bir rol oynayan tanımlanmış bir moleküler hedef içerir ve nispeten basit hücre kültürü sistemlerinin geliştirilmesine ve ilaç taraması için okumalara dayanır1. TDD programlarında kullanılan en tipik hastalık modelleri, kanser hücreleri veya yapay ortamlarda yetiştirilen ölümsüzleştirilmiş hücre hatları ve fizyolojik olmayan substratlar gibi geleneksel hücre kültürü yöntemlerini içerir. Bu modellerin birçoğu başarılı ilaç adaylarını tanımlamak için uygun araçlar sağlamış olsa da, bu tür sistemlerin kullanımı, zayıf hastalık alaka düzeyleri nedeniyle sorgulanabilirolabilir 2.

Çoğu hastalık için, altta yatan mekanizmalar gerçekten karmaşıktır ve çeşitli hücre tipleri, bağımsız sinyal yolları ve çoklu gen kümelerinin genellikle spesifik bir hastalık fenotipine katkıda bulunduğu bulunmuştur. Bu, birincil nedenin tek bir gendeki mutasyon olduğu kalıtsal hastalıklar için de geçerlidir. İnsan kaynaklı pluripotent kök hücre (iPSC) teknolojilerinin ve gen düzenleme araçlarının son zamanlarda ortaya çıkmasıyla, in vivo insan karmaşıklığını daha iyi özetleyebilecek 3D organoidler ve çip üzerinde organ hastalığı modelleri üretmek artık mümkündür 3,4. Bu tür teknolojilerin gelişimi, fenotipik ilaç keşif (PDD) programlarına olan ilginin yeniden canlanmasıyla ilişkilidir1. PDD, belirli bir ilaç hedefinin kimliği bilgisine veya hastalıktaki rolü hakkında bir hipoteze dayanmadıkları için ampirik tarama ile karşılaştırılabilir. PDD yaklaşımı, birinci sınıf ilaçların keşfine güçlü bir şekilde katkıda bulunmak için giderek daha fazla tanınmaktadır5. İnsan organoid ve çip üzerinde organ teknolojilerinin gelişimi henüz emekleme aşamasında olduğundan, iPSC modellerinin (yenilikçi görüntüleme ve makine öğrenme araçları6,7 ile tamamlanan) yakın gelecekte, TDD yaklaşımının zayıf üretkenliğinin üstesinden gelmek için ilaç taraması ve ilgili PDD programları için çoklu yeni karmaşık hücre tabanlı hastalık modelleri sağlaması beklenmektedir8, 9.

İnsan organoid ve çip üzerinde organ modelleri, hastalık karmaşıklığı ve yeni ilaçların tanımlanması konusunda önemli bilgiler sağlayabilirken, ilaçları yeni klinik uygulamaya getirmek, etkinliklerini ve güvenliklerini değerlendirmek için hayvan modellerinden elde edilen verilere de güçlü bir şekilde dayanmaktadır. Bunlar arasında genetiği değiştirilmiş fareler kesinlikle en çok tercih edilen memeli modelleridir. Memeliler için nispeten kısa bir üretim süresine sahip olduklarından, insan hastalıklarına benzer birçok fenotipe sahip olduklarından ve genetik olarak kolayca manipüle edilebildiklerinden birçok avantaja sahiptirler. Bu nedenle ilaç keşif programlarında yaygın olarak kullanılmaktadırlar10. Bununla birlikte, fareler ve insanlar arasındaki boşluğu kapatmak, önemli bir zorluk olmaya devam etmektedir11. İnsan organoid ve çip üzerinde organ modellerine eşdeğer in vitro fare modellerinin geliştirilmesi, in vivo fare ve in vitro insan verileri arasında doğrudan ilaç etkinliği ve güvenlik karşılaştırmalarına izin vereceği için bu boşluğu en azından kısmen doldurabilir .

Burada, fare embriyoid cisimlerinde (EB'ler) vasküler filizlenme testi tanımlanmıştır. Kan damarları endotel hücrelerinden (damar duvarlarının iç astarı), duvar hücrelerinden (vasküler düz kas hücreleri ve perisitler)12 oluşur. Bu protokol, fare embriyonik kök hücrelerinin (mESC'ler), de novo endotel hücresini ve duvar hücresi farklılaşmasını özetleyen asılı damlacıklar kullanılarak vaskülarize EB'lere farklılaşmasına dayanmaktadır13,14. Fare ESC'leri izole günden itibaren kültürde kolayca kurulabilir 3.5 Farklı genetik geçmişe sahip fare blastosistleri15. Ayrıca klonal analiz, soy izleme için olanaklar sağlar ve hastalık modelleri oluşturmak için genetik olarak kolayca manipüle edilebilir13,16.

Kan damarları tüm organları beslediğinden, hepsi olmasa da birçok hastalığın mikrovaskülatürdeki değişikliklerle ilişkili olması şaşırtıcı değildir. Patolojik durumlarda, endotel hücreleri aktif bir durumu benimseyebilir veya duvar hücresi ölümü veya kan damarlarından uzaklaşma ile sonuçlanan işlevsiz hale gelebilir. Bunlar aşırı anjiyogenez veya damar nadirliği ile sonuçlanabilir, anormal kan akışını ve immün hücre ekstravazasyonuna yol açan kusurlu kan damarı bariyerini ve inflamasyonu indükleyebilir12,17,18,19. Bu nedenle, kan damarlarını modüle eden ilaçların geliştirilmesine yönelik araştırmalar yüksektir ve terapötik hedefleme için çoklu moleküler oyuncular ve kavramlar zaten tanımlanmıştır. Bu bağlamda, açıklanan protokol, endotel ucu ve sap hücresi seçimi, endotel hücre göçü ve proliferasyonu, endotel hücre rehberliği, tüp oluşumu ve duvar hücresi alımı dahil olmak üzere in vivo filizlenen anjiyogenezin temel özelliklerini özetlediği için hastalık modelleri oluşturmak ve ilaç testi için özellikle uygundur. Ayrıca, insan iPSC teknolojilerine dayanan yakın zamanda tarif edilen 3D vasküler tahlillerle benzerlikler göstermektedir20.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Protokol

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. Medya hazırlığı ve mESC kültürü

  1. %10 (vol/vol) ısı ile aktive edilmiş Fetal Sığır Serumu (FBS), 0,05 mM β-merkaptoetanol, 1x esansiyel olmayan amino asitler (NEAA 1x), 2 mM L-glutamin ve 1 mM sodyum piruvat içeren 1x Glasgow MEM (G-MEM BHK-21) besiyeri kullanarak koşullandırılmış ortam +/- (CM+/-) hazırlayın.
  2. Lösemi İnhibitör Faktörü (LIF) (1.500 U / mL) ve 0.1 mM β-merkaptoetanol içeren CM + / - ortamını kullanarak şartlandırılmış ortam +/+ (CM + / +) hazırlayın.
  3. 1 μM PD0325901 ve 3 μM CHIR99021 ile ek CM+/+ ortamını kullanarak iki inhibitör (CM +/+ 2i) varlığında şartlandırılmış ortam +/+ hazırlayın.
  4. Kalsiyum ve magnezyum (DPBS) içermeyen 500 mL fosfat tamponlu salin içinde 25 mL önceden ısıtılmış% 2 jelatin çözeltisini karıştırarak% 0.1 jelatin çözeltisi hazırlayın.
  5. Tripsin (%2,5) ile TVP 1x (%9,5 10x DPBS, 1 mM EDTA, %0,01 tavuk serumu, %0,01 Tripsin (%2,5)H2O) (1:10 oranı, hacim/hacim) karıştırarak 10x Tripsin Versene Fosfat (TVP 10x) tamponu hazırlayın.
    NOT: Tüm çözeltileri 0,22 μm gözenekli bir filtreyle filtreleyin. Kültür ortamını uzun süre -20 ° C'de saklayın ve diğer reaktifleri 3 haftaya kadar 4 ° C'de tutun ( bkz.
  6. İki adet 12 delikli hücre kültürü plakasını% 0.1 jelatin çözeltisi (kuyucuk başına 500 μL) ile kaplayın ve bir CO 2 inkübatöründe (37 ° C,% 5 CO2, nemli atmosfer) 30 dakika boyunca inkübe edin.
  7. Jelatin kaplı plakaları PBS ile yıkayın ve 500 μL CM+/- ortam ekleyin.
  8. İki şişe 1 x 106 kriyokorunmuş ışınlanmış fare embriyonik fibroblastlarını (MEF'ler) 37 ° C'de çözün ve hücre süspansiyonunu 5 mL CM + / - ortam içeren konik bir tüpe aktarın.
  9. Hücreleri oda sıcaklığında (RT) 5 dakika boyunca 200 x g'de santrifüj edin. Ortamı aspire edin ve hücre peletini mL başına 1.67 x 105 hücre konsantrasyonunda 12 mL CM + / - ortamda yavaşça askıya alın.
  10. 500 μL MEF süspansiyonunu 12 delikli bir hücre kültürü plakasına (cm2 başına 2,4 x 105 hücre) tohumlayın ve plakayı bir CO2 inkübatöründe gece boyunca (o / n) inkübe edin.
  11. Bir şişe kriyokorunmuş mESC'yi (1 x 106) CM+/+ 2i ortamında çözün.
  12. mESC süspansiyonunu MEF'lerle önceden yıkanmış 12 kuyucuklu bir plakaya 1 mL CM+/+ 2i ortamında tohumlayın ve plakayı bir CO2 inkübatörüne aktarın. Ortamı günlük olarak yenileyin.
  13. % 70 akıcılıkta, mESC kolonilerini DPBS ile yıkayın. 150 μL sıcak 10x TVP tamponu ekleyin ve enzimatik ayrışmayı başlatmak için RT'de 30 saniye inkübe edin.
  14. TVP tamponunu dikkatlice çıkarın, hücreleri 1 mL CM+/+ 2i ortamında yeniden askıya alın ve kolonileri nazik pipetleme ile tek hücrelere ayırın.
  15. Hücreleri MEF'lerle yeni bir 12 delikli hücre kültürü plakasına aktararak geçirin (bölme oranı: 1: 3-1: 5). Hücreleri dağıtmak için yavaşça karıştırın ve bir CO2 inkübatöründe inkübe edin.
  16. Kültür ortamını (2-3 mL) yenileyin ve hücre büyümesini / morfolojisini günlük olarak gözlemleyin. Seri geçişi her 2 günde bir% 70 akıcılıkta tekrarlayın. Hücre farklılaşmasını başlatmadan önce iki pasaj için CM+/+ ortamına geçin.

2. Asılı damlada EB oluşumu

  1. CM+/- besiyerine bazik Fibroblast Büyüme Faktörü (bFGF) (50 ng·mL-1) ve Kemik Morfogenetik Protein 4 (BMP-4) (5 ng·mL-1) takviyesi yaparak taze mezoderm diferansiyasyon ortamı hazırlayın ve kullanıma kadar 4 °C'de tutun.
  2. 6 delikli hücre kültürü plakasının bir kuyusunu 500 μL% 0.1 jelatin çözeltisi ile kaplayın ve 30 dakika boyunca bir CO2 inkübatörüne yerleştirin.
  3. Jelatin kaplı plakaları PBS ile yıkayın ve 500 μL CM+/- ortam ekleyin.
  4. Saf bir mESC popülasyonu elde etmek için, hücre kültürü plakasını RT'de 30 s boyunca 10x TVP tamponu ile deneyin, hücreleri 1 mL mezoderm farklılaşma ortamında yeniden askıya alın ve daha sonra 30 dakika boyunca jelatin kaplı 6 delikli plakaya aktarın, böylece mESC'ler süspansiyonda kalırken MEF'lerin yapışmasına izin verin.
  5. Hücre süspansiyonunu 50 mL'lik bir konik tüpte toplayın ve canlı/ölü hücre dışlaması için Neubauer hemositometresi ve Trypan mavisi boya kullanarak hücreleri sayın.
  6. Süpernatantı çıkarın ve hücre peletini mezoderm farklılaşma ortamında mL başına 4.55 x 104 hücreye ulaşacak şekilde yeniden askıya alın.
  7. 94 mm düşük ataşmanlı polistiren tabakların tabanını 15 mL steril su ile doldurun.
    NOT: 3D filizlenen anjiyogenez testi kullanılarak belirli bir durumu test etmek için asılı damla içeren dört kap (3.52 mL ortamda 1.6 x 105 hücre) gerekecektir.
  8. Hücre süspansiyonunu steril bir plastik hazneye aktarın ve kanal başına 22 μL hücre süspansiyonu (22 μL damla başına 1 x 103 hücre) ile çok kanallı bir pipetin dört pozisyonunu yükleyin.
  9. 94 mm'lik çanağın kapağını kaldırıp ters çevirin ve iç tarafı yukarı bakacak şekilde akış kabininin temiz yüzeyine yerleştirin.
  10. Her kapağın iç yüzeyine 40 damla hücre süspansiyonu koyun. Kapağı rahatsız etmeden dikkatlice ters çevirin ve tekrar kabın üzerine yerleştirin, böylece damlalar suya bakacaktır.
  11. Bulaşıkları bir CO2 inkübatöründe inkübe edin. Bunu farklılaşma günü 0 olarak düşünün. EB'leri oluşturmak için plakaları 4 gün boyunca koruyun.

3. Uç hücre pozisyonu için rekabet testi

  1. Kültür daha önce tarif edildiği gibi bir floresan ve bir floresan olmayan mESC hattı13. Örnek olarak, sarı renkle etiketlenmiş 7ACS/EYFP mESC'ler ve R1 mESC'ler kullanılmıştır.
  2. İki mESC hattının eşit miktarlarını (1: 1 oranı) karıştırarak mozaik EB'ler hazırlayın ve 2. adımda açıklandığı gibi asılı damla bulaşıkları bir CO2 inkübatöründe inkübe edin.

4. Vasküler farklılaşma için yüzen EBs kültürü

  1. EB'leri asılı damlalardan toplamadan önce, aşağıdakileri hazırlayın.
    1. H2O'da %5 agarçözeltisi hazırlayın ve otoklavlama ile sterilize edin (120 °C'de 20 dakika).
    2. % 1 agar içeren G-MEM BHK-21 ortamını hazırlamak için ılık% 5 agar çözeltisini kullanın ve 60 mm polistiren tabaklardan birine hızlı bir şekilde 3 mL dökün. Agarın RT'de 1 saat katılaşmasına izin verin. bulaşıkları kullanılana kadar 4 ° C'de saklayın.
  2. CM+/- besiyerine bFGF (100 ng·mL-1) ve VEGF-A (50 ng·mL-1) ekleyerek taze 2x vasküler farklılaşma ortamı hazırlayın. Ortamı kullanıma kadar 4 °C'de saklayın.
  3. Asılı damlaları bir P1000 pipet kullanarak 15 mL'lik bir konik tüpte toplayın ve birkaç dakikalık EB çökelmesinden sonra süpernatantı çıkarın.
  4. EB'leri 3 mL'lik 2x vasküler farklılaşma ortamında yeniden askıya alın, EB süspansiyonunu agar kaplı bir kaba aktarın ve toplanmayı önlemek için EB'leri homojen olarak dağıtın.
  5. Bulaşıkları CO 2 inkübatöründe inkübe edin ve bFGF (50 ng · mL-1) ve VEGF-A (25 ng · mL-1) varlığında 1x vasküler farklılaşma ortamı kullanarak 9. güne kadar her2 günde bir ortamı yenileyin.
  6. Alternatif olarak, duvar hücresi farklılaşmasını teşvik etmek için vasküler farklılaşma ortamına Trombosit Türetilmiş Büyüme Faktörü-BB (PDGF-BB) (4. günde 10 ng · mL-1 ve 6. ve 8. günlerde 5 ng · mL-1) ekleyin.

5. Akış sitometri analizi

  1. 9 günlük EB'leri P1000 pipet kullanarak 15 mL'lik konik bir tüpte toplayın ve bir kez ılık PBS ile yıkayın.
  2. 0.2 mg · mL-1 kollajenaz A içeren 1 mL G-MEM BHK-21 ortamı ekleyin ve hücreleri bir CO2 inkübatöründe 5 dakika boyunca inkübe edin.
  3. Bir P1000 pipet ile yavaşça yukarı ve aşağı pipetleme yaparak EB'lerin ayrışmasını sağlayın.
  4. % 10 FBS ile 1 mL soğuk G-MEM BHK-21 ortamı ekleyerek kollajenaz aktivitesini durdurun.
  5. RT'de 5 dakika boyunca hücreleri 200 x g'de santrifüj edin.
  6. 500 μL PBS'deki hücreleri% 2 FBS ile yeniden askıya alın.
  7. Neubauer hemositometresi kullanarak hücreleri sayın.
  8. Boyama koşulu başına %2 FBS ile 100 μL PBS'de 400.000 hücreyi yeniden askıya alın.
  9. Hücreleri 4 ° C'de 45 dakika boyunca aşağıdaki antikorlarla inkübe edin: APC konjuge sıçan anti-fare PECAM-1 antikoru (klon MEC13.3) ve FITC konjuge sıçan anti-fare CD45 (klon 30-F11) veya izotip kontrol antikorları.
  10. Hücreleri% 2 FBS içeren 1 mL PBS ile iki kez yıkayın.
  11. mL başına 5 x 106 hücrelik nihai konsantrasyona ulaşmak için hücreleri yeniden askıya alın.
  12. Hücreleri, hücre süzgeci çıtçıtlı kapağı olan yuvarlak tabanlı bir polistiren test tüpü kullanarak filtreleyin.
  13. Akış sitometrisi ile 20.000 PECAM-1 (+) olayını analiz edin.

6.3D filizlenen anjiyogenez testi ve immünofloresan boyama

  1. 9. günde,% 10 FBS (hacim / hacim), bFGF (50 ng · mL-1), VEGF-A (25 ng · mL-1), insan rekombinant Eritropoietin (hEPO) (20 ng · mL-1), insan interlökin-6 (IL-6) (10 ng · mL-1), 0.05 mM β-merkaptoetanol, NEAA (1x), L-glutamin (1x), sodyum piruvat (1x), tip I sıçan kuyruğu kollajeni (1.25 mg · mL-1), ekleyerek filizlenen bir ortam hazırlayın, ve NaOH (3.1 mM) GMEM BHK-1 ortamına.
  2. Kollajen jelleşmesini önlemek için, filizlenen ortamı kullanıma kadar buz üzerinde tutun.
  3. Pro/anti-anjiyojenik moleküllerin etkisini değerlendirmek için, seçilen ilacı veya aracı seçilen konsantrasyonda filizlenen ortama ekleyin.
  4. 15 mL'lik bir konik tüpte (bir koşula eşdeğer) 60 mm'lik bir agar kabından 9 günlük EB'leri toplayın ve birkaç dakikalık çökeltmeden sonra süpernatantı çıkarın.
  5. 35 mm'lik bir kültür kabının tabanını 1 mL filizlenme ortamı ile örtün ve jelleşmeyi indüklemek için 5 dakika boyunca 37 ° C'de inkübe edin.
  6. EB'leri 2 mL soğuk filizlenme ortamında yeniden askıya alın.
  7. Süspansiyonu, ilk filizlenme ortamı katmanı ile kaplanmış 35 mm'lik kültür kabına aktarın.
  8. EB'leri plakanın her yerine dağıtın ve birbirlerinden eşit mesafede olduklarından emin olun. Çanağı bir CO2 inkübatöründe inkübe edin. İlk filiz oluşumu 24-48 saat içinde gerçekleşir.
  9. 12. günde, EB'leri içeren kollajen jeli, bir spatula kullanılarak dikkatlice bir cam slayta (75 x 26 mm) aktarılır.
  10. Fazla sıvıyı bir pipet (P1000) kullanarak çıkarın ve jelin üzerine bir gazlı bez tabakası naylon keten ve emici filtre kartları (jel lekeleme kağıdı) yerleştirerek jeli kurutun. 2 dakika boyunca bir ağırlık (250 g) koyarak basınç uygulayın. Naylon / filtre kağıtlarını dikkatlice çıkarın ve slaytların RT'de 30 dakika boyunca kurumasını bekleyin.
  11. Slaytları RT'de 5 dakika boyunca PBS ile üç kez yıkayın.
  12. EB'leri çinko çözeltisi kullanarak sabitleyin ( Malzeme Tablosuna bakınız) o / n 4 ° C'de. Alternatif olarak, mozaik floresan EB'leri karanlıkta 4 ° C'de Paraformaldehit (PFA) (% 4) o / n ile sabitleyin.
  13. Fiksatifi çıkarın. Slaytları RT'de 5 dakika boyunca PBS ile beş kez yıkayın.
  14. PBS'deki EB'leri RT'de 15 dakika boyunca %0.1 Triton-X100 içerecek şekilde geçirgenleştirin.
  15. Geçirgenleştirme çözeltisini çıkarın. Slaytları PBS ile beş kez 5 dakika boyunca yıkayın.
  16. EB'leri RT'de 1 saat boyunca bloke edici tamponda (% 2 Sığır Serum Albümini ile PBS, BSA) inkübe edin.
  17. Endotel filizlerini boyamak için, 4 °C'de tampon o / n'yi bloke etmek için bir sıçan anti-fare anti-PECAM-1 primer antikoru (1:100 seyreltme) kullanın.
  18. Slaytları PBS ile beş kez 5 dakika boyunca yıkayın.
  19. Slaytları, bloke edici tamponda keçi anti-sıçan Alexa 555 sekonder antikoru ile inkübe edin (1:250 seyreltme) ve gerektiğinde karanlıkta RT'de 2 saat boyunca duvar hücrelerini boyamak için bloke tamponda FITC-konjuge anti-α-SMA antikoru (1:250 seyreltme) ile.
  20. Slaytları monte etmeden önce PBS ile üç kez 5 dakika ve bir kez H20 ile yıkayın.

7. EB endotel filizlerinin konfokal görüntüleme, morfometrik ve kantitatif analizi

  1. Konfokal mikroskop kullanarak odak düzlemi birleştirme (z-istifleme) ile immün boyalı EB'lerin yüksek çözünürlüklü görüntülerini elde edin. EB'lerin tamamını görüntülemek için 10x büyütme hedefini kullanın.
  2. Morfolojiyi değerlendirmek ve PECAM-1 pozitif endotel filizlerinin özelliklerini belirlenmiş niceleme yöntemlerine göre ölçmek için ImageJ kullanılarak elde edilen görüntüleri analiz edin13,14,21.
    1. EB'ler başına ortalama endotel filizi sayısını, EB'ler başına toplam filiz sayısını manuel olarak sayarak hesaplayın.
    2. ImageJ çizim aracını kullanarak tek tek filiz uzunluklarını ölçün. EB çekirdek alanından başlayarak endotel filizinin tabanını tanımlayın ve filiz ucu bitene kadar manuel olarak bir çizgi çizin.
    3. Tek tek filiz başına uç hücresi sayısını manuel olarak sayarak filiz başına ortalama uç hücresi sayısını hesaplayın ve ardından EB başına ortalamayı hesaplayın.
    4. Ana filizin eksenini manuel olarak belirleyerek filopodia yönünü hesaplayın ve ImageJ yazılım açısı aracını kullanarak aralarındaki keskin açıyı ölçün. Filizlerin sayısını >50 ° 'lik bir yönelimle hesaplayın ve ilgilenilen EB'nin toplam filiz sayısına bölün.
      NOT: Açılar her zaman 0° ile 90° arasında değişmiştir.
  3. Konfokal mikroskop kullanarak immün boyalı EB'lerin yüksek çözünürlüklü görüntülerini elde edin. Tek endotel filizlerinin yüksek çözünürlüklü görüntülerini gerçekleştirmek için 40x büyütme hedefini kullanın.
  4. ImageJ yazılımını kullanarak α-SMA pozitif MC'lerle çevrili PECAM-1 pozitif EC filizlerinin kap kapsamını ölçün.
    1. Birleştirilen görüntüleri ayrı kırmızı ve yeşil kanallara bölün.
    2. Görüntüleri ikili biçimine dönüştürün.
    3. PECAM-1 (kırmızı ile etiketlenmiş endotel hücreleri) ve α-SMA (yeşil ile etiketlenmiş duvar hücreleri) pozitif hücreler tarafından ayrı ayrı işgal edilen filizin toplam hücresel alanını ölçün.
    4. Görüntü hesaplayıcı işlevini ve AND işlecini kullanarak birleştirilmiş görüntüyü oluşturun. Görüntünün toplam hücresel alanını ölçün. Kapsama alanını hesaplamak için, birlikte yerelleştirilmiş görüntünün alanını PECAM-1 ikili görüntüsünün alanına bölün.
  5. Mozaik EB'ler tarafından geliştirilen filizlerin endotel ucu / sap hücresi pozisyonu için hücre rekabetini analiz etmek için, uç hücrelerinin sayısını manuel olarak puanlayın ve floresan sinyaline dayanarak genotipik kökenlerini işaretleyin. EB başına ortalama değerleri hesaplayın.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Filizlenme tahlilinin kan damarı testine genel bakışı Şekil 1'de gösterilmiştir. Üç bağımsız 129 / Ola mESC hattından (Z / Red, R1 ve E14) türetilen dokuz günlük EB'ler, kollajenaz A kullanılarak enzimatik olarak tek hücrelere ayrıştırıldı. Tüm hücre hatları sağlam endotel farklılaşması sergiledi ve endotel hücrelerine farklılaşma yeteneklerinde hiçbir fark gözlenmedi. Tüm hücre hatları endotel hücrelerinin yaklaşık% 10.5 ±% 1.3'ünü üretti (Şekil 2A). PECAM-1 (+...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Bu protokol, anjiyogenezi modüle eden ilaçların ve genlerin taranmasına uygun, tarafsız, sağlam ve tekrarlanabilir bir 3D EB tabanlı vasküler filizlenme testini tanımlar. Bu yöntem, göçü izlemek için İnsan Göbek Damarı Endotel Hücreleri (HUVEC'ler) gibi endotel hücre kültürlerini kullanan yaygın olarak kullanılan birçok iki boyutlu (2D) tahlile göre avantajlar sunar (lateral çizik testi veya Boyden odası tahlili)22,23 veya proliferasyonu (hücre sayısını sayma, DNA sentezinin tespiti, proliferasyon belirteçleri...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Yazarların açıklayacak hiçbir şeyi yok.

Teşekkürler

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Bu çalışma, Nederlandse organisatie voor gezondheidsonderzoek en zorginnovatie (ZonMW 446002501), Health Holland (LSHM19057-H040), Leading Fellows Programme Marie Skłodowska-Curie COFUND ve Association Maladie de Rendu-Osler (AMRO) tarafından desteklenmiştir.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
2-merkaptoetanolMilipore, Merck805740Biyolojik tehlike:
Agar NobleDifco, BD Pharmigen214220
Alexa Fluo 555 keçi anti sıçan IgGLife teknolojileriA21434
APC konjuge sıçan anti-fare PECAM-1 antikoru (klon MEC13.3)BD Biosciences551262
APC Sıçan IgG2a & kappa; İzotip Kontrolü (Klon  R35-95)BD Biosciences553932
Axiovert 25 ters faz kontrast doku kültürü mikroskobuZEISS
Temel Fibroblast Büyüme Faktörü-2 (bFGF)Peprotech450-33
Masaüstü Santrifüj, Allegra X-15RBeckman Coulter392932
Biyogüvenlik kabini BioVanguard (Yeşil Hat)Telstar133H401001
Sığır Serum Albümini (BSA)Sigma-AldrichA9418
Hücre sayma odası, Buerker, 0.100mmMarienfeld640211
Hücre kültürü kapları 60 x 15mmCorning353802
Hücre kültürü kapları, 35 x 10 mmCorning353801
Hücre kültürü plakaları 12 kuyuluCorning3512
CFX96 Dokunmatik Gerçek Zamanlı PCR Tespit SistemiBiorad1855196
Tavuk serumuSigma-AldrichC5405
CHIR-99021 (CT99021) HClSelleckchemS2924
Kollajen I, Yüksek Konsantrasyon, Sıçan Kuyruğu, 100mgCorning354249
Kollajenaz ARoche10103586001
Konfokal Lazer Tarama Mikroskop, TCS SP5Leica
Kapak camları, 24 & kez; 50 mmVwr631-0146
DAPT γ? sekretaz inhibitörüSigma AldrichD5942
DC101 anti fare VEGFR-2 KlonBioXcellBP0060
DC101 izotip sıçan IgG1BioXcellBP0290
Dimetil sülfoksit (DMSO)Sigma-AldrichD2438-5Xkullanılırken yeterli güvenlik talimatları alınmalıdır
, kalsiyum yok, magnezyumGibco yok, Thermofisher scientific14200067
EDTA 40 mMGibco, Thermofisher scientific15575-038
Embriyonik kök hücre Fetal Sığır SerumuGibco, Thermofisher scientific16141-079Maksimum ES hücre canlılığı ve büyümesi için lot testine tabi tutulmalıdır. 60 ° C'de ısı inaktive edilir; C ve & eksi konumunda saklayın; 20 derece > 1 yıla kadar C
Eppendorf Microcentrifuge 5415REppendorf AG 
Eritropoietin, insan (hEPO), 250 U (2.5 & mikro; g) (1 mL)Roche11120166001
ESGRO Rekombinant Fare LIF Proteini (10? birim    1 mL)Milipore, MerckESG1107
Falcon tüpleri 15 mLGreiner Bio-One188271
Falcon tüpleri 50 mLGreiner Bio-0ne227270
Filtre ucu, şeffaf, steril F.Gilson, P-200Greiner Bio-One739288
Filtre ucu, şeffaf, steril F.Gilson, P10Greiner Bio-One771288
Filtre ucu, şeffaf, steril F.Gilson, P1000Greiner Bio-One740288
FITC konjuge anti-&alfa; Düz Kas Aktin (SMA) (klon 1A4)Sigma AldrichF3777
FITC konjuge sıçan anti-fare CD45 (klon 30-F11)Biolegend103107
FITC Sıçan IgG2b, κ Isotype Ctrl Antikor (klon RTK4530)Biolegend400605
Florsan montaj ortamıDAKOS3023
GascompressCutisoft45846
Gazlı Bez Cutisoft 10 x 10 cmBsn Medical45844_00
Jel kurutma kağıdı, Grade GB003WhatmanWHA10547922
Jelatin çözeltisi, tip BSigma-AldrichG1393-100 ml
Glasgow'un MEM (GMEM)Gibco, Thermofisher bilimsel21710082
IHC Çinko FiksatifBD Pharmigen550523
IncuSafe CO2 İnkübatörüPHCBiMCO-170AICUV-PE
Interlökin-6, insan (hIL-6)Roche11138600001
L-Glutamin 200 mMGibco, Thermofisher scientific25030-024
MEM Esansiyel Olmayan Amino Asit Çözeltisi (100x)Gibco, Thermofisher scientific11140035
Mikroskop slayt kutusuKartell Labware278
Mikroskop slaytı, StarfrostKnittel camVS113711FKB.0
Mm_Cdh5_1_SG QuantiTect Primer TahlilQiagenQT00110467
Mm_Eng_1_SG QuantiTect Astar TestiQiagenQT00148981
Mm_Epha4_1_SG QuantiTect Astar TestiQiagenQT00093576
Mm_Ephb2_1_SG QuantiTect Astar TestiQiagenQT00154014
Mm_Flt1_1_SG QuantiTect Astar TestiQiagenQT00096292
Mm_Flt4_1_SG QuantiTect Astar TestiQiagen
Mm_Gapdh_3_SG QuantiTect Astar DeneyiQiagenQT01658692
Mm_Kdr_1_SG QuantiTect Astar TestiQiagenQT00097020
Mm_Nr2f2_1_SG QuantiTect Astar TestiQiagenQT00153104
Mm_Pecam1_1_SG QuantiTect AstarQiagenQT01052044
Mm_Tek_1_SG QuantiTect Primer TestiQiagenQT00114576
Fare (ICR) İnaktive Embriyonik Fibroblastlar  (2 MILYON)Gibco, Thermofisher scientificA24903Şişeleri sıvı nitrojen içinde saklayın (195.79 &derece; C) süresiz olarak
Fare embriyonik kök hücre hattı 7AC5 / EYFP (ATCC SCRC-1033)ATCCSCRC-1033Dr A Nagy, Samuel Lunenfeld Araştırma Enstitüsü, Mount Sinai Hastanesi, 600 University Ave, Toronto, Ontario, M5G 1X5, Kanada tarafından üretilmiştir. [Hadjantonakis, A. K., et al. Mechanisms of Development. 76 (1– 2), 79– 90 (1998)].
Fare embriyonik kök hücre hatları Acvrl1 +/- ve Acvrl1 +/+Thalgott, J.H. et al. Circulation. 138 (23), 2698– 2712 (2018)].
Fare embriyonik kök hücreleri hattı E14M Letarte laboratuvarı tarafından sağlanan ve Cho, SK, et al. Blood. 98 (13), 3635– 3642 (2001).
Fare embriyonik kök hücre hattı R1 (ATCC SCRC-1011)ATCCSCRC-1011Dr A Nagy, Samuel Lunenfeld Araştırma Enstitüsü, Mount Sinai Hastanesi, 600 University Ave, Toronto, Ontario, M5G 1X5, Kanada tarafından üretilmiştir. [Nagy, A., et al. Procedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 90 (18), 8424– 8428 (1993)].
Fare embriyonik kök hücre hattı Z/Kırmızı (suş 129/Ola)Dr A Nagy, Samuel Lunenfeld Araştırma Enstitüsü, Mount Sinai Hastanesi, 600 University Ave, Toronto, Ontario, M5G 1X5, Kanada tarafından üretilmiştir [Vintersten, K., et al. Genesis. 40 (4), 241– 246 (2004)].
NanoDrop 1000 UV/VIS SpektrofotometreThermo Fischer ScientificND-1000
PD0325901SelleckchemS1036
PDGF-BB, Rekombinant İnsanPeprotech100-14B
Pecam-1 antikoru, Sıçan Anti-FareBD Biosciences550274
Penisilin-streptomisin (10.000 U/mL)Gibco, Thermofisher bilimsel
Petri kabı, PS, 94/16 mm, standart, havalandırma delikleri ile, sterilGreiner Bio-One633181
Pipetboy acu 2Integra-Biosciences155 019
Pipetman G Çok Kanallı P8 x 200GGilsonF144072
Pipetman G Başlangıç Kiti, 4 Pipet Kiti, P2G, P20G, P200G, P1000GGilsonF167360
Rekombinant İnsan BMP-4 Protein Ar-Ge D Systems314-BP
RNeasy Plus mini KitQIAGEN74134
Serolojik pipetler, 10 mLGreiner Bio-One607 180
Serolojik pipetler, 25 mLGreiner Bio-One760 180
Serolojik pipetler, 5 mLGreiner Bio-One606 180
Sodyum hidroksit (NaOH)Merck106498
Sodyum piruvat 100 mMGibco, Thermofisher bilimsel11360039
Test tüpleri 5 ml yuvarlak tabanlı, hücre süzgeç kapaklıCorning352235
Termal döngüleyici, T100Biorad1861096
Triton X-100 (BioXtra)Sigma AldrichT9284
Tripan Mavisi Çözeltisi, %0.4Gibco, Thermofisher scientific
Tripsin (% 2.5)Gibco, Thermofisher scientific15090046
Vakum Filtresi / Saklama Şişesi Sistemi, 500 mLCorning430758
VEGFA165< / sup>, rekombinant murinPeprotech450-32
Su, SterilFresenius-KabiB230531
Su Banyosu, Lab-Line DijitalTermo Fischer Bilimsel18052A
Biyolojik tehlike: DPBS (10x) Z605212QT00099064 Mm_Notch1_1_SG QuantiTect Astar Qiagen QT00156982 Leiden Üniversitesi Tıp Merkezi'nde Üretilen [1514012215250061

Kaynaklar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Moffat, J. G., Vincent, F., Lee, J. A., Eder, J., Prunotto, M. Opportunities and challenges in phenotypic drug discovery: an industry perspective. Nature Reviews Drug Discovery. 16 (8), 531-543 (2017).
  2. Horvath, P., et al. Screening out irrelevant cell-based models of disease. Nature Reviews. Drug Discovery. 15 (11), 751-769 (2016).
  3. Low, L. A., Mummery, C., Berridge, B. R., Austin, C. P., Tagle, D. A. Organs-on-chips: into the next decade. Nature Reviews. Drug Discovery. , (2020).
  4. Ma, C., Peng, Y., Li, H., Chen, W. Organ-on-a-Chip: A new paradigm for drug development. Trends in Pharmacological Sciences. 42 (2), 119-133 (2021).
  5. Swinney, D. C., Anthony, J. How were new medicines discovered. Nature Reviews Drug Discovery. 10 (7), 507-519 (2011).
  6. Hussain, S., et al. High-content image generation for drug discovery using generative adversarial networks. Neural Networks: The Official Journal of the INternational Neural Network Society. 132, 353-363 (2020).
  7. Scheeder, C., Heigwer, F., Boutros, M. Machine learning and image-based profiling in drug discovery. Current Opinion in Systems Biology. 10, 43-52 (2018).
  8. Wagner, B. K., Schreiber, S. L. The power of sophisticated phenotypic screening and modern mechanism-of-action methods. Cell Chemical Biology. 23 (1), 3-9 (2016).
  9. Scannell, J. W., Bosley, J. When quality beats quantity: Decision theory, drug discovery, and the reproducibility crisis. PLoS One. 11 (2), 0147215(2016).
  10. Webster, J. D., Santagostino, S. F., Foreman, O. Applications and considerations for the use of genetically engineered mouse models in drug development. Cell and Tissue Research. 380 (2), 325-340 (2020).
  11. Howland, D. S., Munoz-Sanjuan, I. Mind the gap: models in multiple species needed for therapeutic development in Huntington's disease. Movement Disorders: Official Journal of the Movement Disorder Scoiety. 29 (11), 1397-1403 (2014).
  12. Galaris, G., Thalgott, J. H., Lebrin, F. P. G. Pericytes in hereditary hemorrhagic telangiectasia. Advances in Experimental Medicine and Biology. 1147, 215-246 (2019).
  13. Thalgott, J. H., et al. Decreased expression of vascular endothelial growth factor receptor 1 contributes to the pathogenesis of hereditary hemorrhagic telangiectasia type 2. Circulation. 138 (23), 2698-2712 (2018).
  14. Lebrin, F., et al. Thalidomide stimulates vessel maturation and reduces epistaxis in individuals with hereditary hemorrhagic telangiectasia. Nature Medicine. 16 (4), 420-428 (2010).
  15. Czechanski, A., et al. Derivation and characterization of mouse embryonic stem cells from permissive and nonpermissive strains. Nature Protocols. 9 (3), 559-574 (2014).
  16. Elling, U., et al. A reversible haploid mouse embryonic stem cell biobank resource for functional genomics. Nature. 550 (7674), 114-118 (2017).
  17. Cheng, J., et al. Targeting pericytes for therapeutic approaches to neurological disorders. Acta Neuropathologica. 136 (4), 507-523 (2018).
  18. Chade, A. R. Small vessels, big role: Renal microcirculation and progression of renal injury. Hypertension. 69 (4), 551-563 (2017).
  19. Jourde-Chiche, N., et al. Endothelium structure and function in kidney health and disease. Nature Reviews. Nephrology. 15 (2), 87-108 (2019).
  20. van Duinen, V., et al. Standardized and scalable assay to study perfused 3D angiogenic sprouting of iPSC-derived endothelial cells in vitro. Journal of Visualized Experiment: JoVE. (153), e59678(2019).
  21. Chappell, J. C., Taylor, S. M., Ferrara, N., Bautch, V. L. Local guidance of emerging vessel sprouts requires soluble Flt-1. Developmental Cell. 17 (3), 377-386 (2009).
  22. Sato, Y., Rifkin, D. B. Inhibition of endothelial cell movement by pericytes and smooth muscle cells: activation of a latent transforming growth factor-beta 1-like molecule by plasmin during co-culture. Journal of Cell Biology. 109 (1), 309-315 (1989).
  23. Tchaikovski, V., Olieslagers, S., Bohmer, F. D., Waltenberger, J. Diabetes mellitus activates signal transduction pathways resulting in vascular endothelial growth factor resistance of human monocytes. Circulation. 120 (2), 150-159 (2009).
  24. Staton, C. A., Reed, M. W., Brown, N. J. A critical analysis of current in vitro and in vivo angiogenesis assays. International Journal of Experimental Pathology. 90 (3), 195-221 (2009).
  25. Herbert, S. P., Stainier, D. Y. Molecular control of endothelial cell behaviour during blood vessel morphogenesis. Nature Reviews Molecular Cell Biology. 12 (9), 551-564 (2011).
  26. Nakatsu, M. N., Hughes, C. C. An optimized three-dimensional in vitro model for the analysis of angiogenesis. Methods in Enzymology. 443, 65-82 (2008).
  27. Nakatsu, M. N., Davis, J., Hughes, C. C. Optimized fibrin gel bead assay for the study of angiogenesis. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (186), (2007).
  28. Gau, D., et al. Pharmacological intervention of MKL/SRF signaling by CCG-1423 impedes endothelial cell migration and angiogenesis. Angiogenesis. 20 (4), 663-672 (2017).
  29. Torres-Estay, V., et al. Androgens modulate male-derived endothelial cell homeostasis using androgen receptor-dependent and receptor-independent mechanisms. Angiogenesis. 20 (1), 25-38 (2017).
  30. Merjaneh, M., et al. Pro-angiogenic capacities of microvesicles produced by skin wound myofibroblasts. Angiogenesis. 20 (3), 385-398 (2017).
  31. Rezzola, S., et al. In vitro and ex vivo retina angiogenesis assays. Angiogenesis. 17 (3), 429-442 (2014).
  32. Wang, X., Phan, D. T. T., George, S. C., Hughes, C. C. W., Lee, A. P. 3D Anastomosed microvascular network model with living capillary networks and endothelial cell-lined microfluidic channels. Methods in Molecular Biology. 1612, Clifton, N.J. 325-344 (2017).
  33. Nicosia, R. F., Ottinetti, A. Growth of microvessels in serum-free matrix culture of rat aorta. A quantitative assay of angiogenesis in vitro. Laboratory Investigation; A Journal of Technical Methods and Pathology. 63 (1), 115-122 (1990).
  34. Nicosia, R. F. The aortic ring model of angiogenesis: a quarter century of search and discovery. Journal of Cellular and Molecular Medicine. 13 (10), 4113-4136 (2009).
  35. Nowak-Sliwinska, P., et al. Consensus guidelines for the use and interpretation of angiogenesis assays. Angiogenesis. 21 (3), 425(2018).
  36. Belair, D. G., Schwartz, M. P., Knudsen, T., Murphy, W. L. Human iPSC-derived endothelial cell sprouting assay in synthetic hydrogel arrays. Acta Biomaterialia. 39, 12-24 (2016).
  37. Bezenah, J. R., Kong, Y. P., Putnam, A. J. Evaluating the potential of endothelial cells derived from human induced pluripotent stem cells to form microvascular networks in 3D cultures. Scientific Reports. 8 (1), 2671(2018).
  38. Henderson, A. R., Choi, H., Lee, E. Blood and lymphatic vasculatures on-chip platforms and their applications for organ-specific in vitro modeling. Micromachines (Basel). 11 (2), 147(2020).
  39. Lin, D. S. Y., Guo, F., Zhang, B. Modeling organ-specific vasculature with organ-on-a-chip devices. Nanotechnology. 30 (2), 024002(2019).
  40. Pollet, A., den Toonder, J. M. J. Recapitulating the vasculature using organ-on-chip technology. Bioengineering. 7 (1), Basel, Switzerland. 17(2020).
  41. Cochrane, A., et al. Advanced in vitro models of vascular biology: Human induced pluripotent stem cells and organ-on-chip technology. Advanced Drug Delivery Reviews. 140, 68-77 (2019).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya şekillerini yeniden kullanmak için izin iste

İzin iste

Etiketler

Sprouting AngiogenesisThree Dimensional AssayEmbryoid BodiesCollagen Gel CultureEndothelial Tip CellsDrug Testing AssayGenetic ScreeningMural Cell Recruitment

İlgili makaleler