Yöntem makalesi

Sıçanda Dinlenme Durumu Fonksiyonel Manyetik Rezonans Görüntüleme Verilerinin Alınması

DOI:

10.3791/62596

⸱

28 Ağustos 2021

 ,  ,  ,  ,  , 
1Dartmouth-Hitchcock Medical Center, 2Geisel School of Medicine at Dartmouth, 3National Institute on Drug Abuse, National Institutes of Health, 4University of Guelph

* These authors contributed equally

Bu makalede

Özet

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Bu protokol, düşük doz deksmedetomidin ile birlikte düşük doz izofluran kullanan bir sıçandan kararlı istirahat durumu fonksiyonel manyetik rezonans görüntüleme (rs-fMRI) verilerini elde etmek için bir yöntem açıklar.

Özet

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Dinlenme durumu fonksiyonel manyetik rezonans görüntüleme (rs-fMRI), dinlenme, görev dışı bir durumda beyin fonksiyonlarını incelemek için giderek daha popüler bir yöntem haline gelmiştir. Bu protokol, rs-fMRI verilerini elde etmek için klinik öncesi bir sağkalım yöntemini açıklar. Düşük doz izofluran ile α sürekli infüzyonubirleştirildiğinde, 2 adrenerjik reseptör agonist dekmedetomidinin beyin ağı fonksiyonunu korurken istikrarlı, yüksek kaliteli veri toplama için sağlam bir seçenek sağlar. Ayrıca, bu prosedür sıçanda spontan solunuma ve normale yakın fizyolojiye izin verir. Ek görüntüleme dizileri, bu yöntem kullanılarak 5 saate kadar anestezik stabiliteye sahip deneysel protokoller oluşturan dinlenme durumu kazanımı ile birleştirilebilir. Bu protokol, ekipmanın kurulumunu, anestezinin dört farklı aşamasında sıçan fizyolojisinin izlenmesini, dinlenme durumu taramalarının edinimini, verilerin kalite değerlendirmesini, hayvanın kurtarılmasını ve işlem sonrası veri analizinin kısa bir tartışmasını açıklar. Bu protokol, istirahatte meydana gelen beyin ağı değişikliklerini ortaya çıkarmak için çok çeşitli preklinik kemirgen modellerinde kullanılabilir.

Giriş

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Dinlenme durumu fonksiyonel manyetik rezonans görüntüleme (rs-fMRI), beyin dinlendiğinde ve belirli bir görevle meşgul olmadığında kan-oksijen seviyesine bağımlı (BOLD) sinyalin bir ölçüsüdür. Bu sinyaller, sinir ağları içindeki işlevsel bağlantıyı belirlemek için beyin bölgeleri arasındaki korelasyonları ölçmek için kullanılabilir. rs-fMRI, invazivliği ve hastaların ihtiyaç duyduğu düşük efor miktarı nedeniyle klinik çalışmalarda yaygın olarak kullanılmaktadır (görev tabanlı fMRI ile karşılaştırıldığında) çeşitli hasta popülasyonları için en uygun hale getirmektedir1.

Teknolojik gelişmeler, rs-fMRI'nın hastalık durumlarının altında yatan mekanizmaları ortaya çıkarmak için kemirgen modellerinde kullanılmak üzere uyarlanmasına izin verdi (bkz. gözden geçirme için referans2). Hastalık veya nakavt modelleri de dahil olmak üzere preklinik hayvan modelleri, insanlarda geçerli olmayan çok çeşitli deneysel manipülasyonlara izin verir ve çalışmalar ayrıca deneyleri daha da geliştirmek için ölüm sonrası örneklerden yararlanabilir2. Bununla birlikte, hem hareketi sınırlama hem de stresi azaltmadaki zorluk nedeniyle, kemirgenlerde MRI alımı geleneksel olarak anestezi altında gerçekleştirilir. Anestezik ajanlar, farmakokinetiklerine, farmakodinamiklerine ve moleküler hedeflerine bağlı olarak beyin kan akışını, beyin metabolizmasını etkiler ve potansiyel olarak nörovasküler bağlantı yollarını etkiler.

Nörovasküler kavramayı ve beyin ağı fonksiyonu 3 , 4,5,6,7,8'ikoruyan anestezik protokoller geliştirmek için çok sayıda çaba olmuştur. Daha önce düşük dozda izofluran ve düşük dozda α2 adrenerjik reseptör agonist deksmedetomidin uygulanan bir anestezi rejimi bildirdik9. Bu anestezi yöntemi kapsamındaki sıçanlar, yerleşik projeksiyon yollarıyla (ventrolateral ve ventromedial talamik nüklei, birincil ve ikincil somatosensör korteks) tutarlı bölgelerde bıyık stimülasyonuna sağlam BOLD yanıtları gösterdi; varsayılan mod ağı10 , 11ve salience network12 de dahil olmak üzere büyük ölçekli dinlenme durumu beyin ağları da sürekli olarak algılanmıştır. Ayrıca, bu anestezik protokol, hastalığın ilerlemesini ve deneysel manipülasyonların etkisini uzunlamasına izlemek için önemli olan aynı hayvan üzerinde tekrarlanan görüntülemeye izin verir.

Bu çalışmada, ilgili deneysel kurulum, hayvan hazırlama ve fizyolojik izleme prosedürlerini detaylandırıyoruz. Özellikle, her aşamada spesifik anestezik evreleri ve taramaların alımını açıklıyoruz. Veri kalitesi, her dinlenme durumu taramasından sonra değerlendirilir. Tarama sonrası analizin kısa bir özeti de tartışmaya dahildir. Sıçanlarda rs-fMRI kullanma potansiyelini ortaya çıkarmakla ilgilenen laboratuvarlar bu protokolü yararlı bulacaktır.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Protokol

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Tüm deneyler 9.4 T MRI tarayıcıda yapıldı ve Dartmouth Koleji Kurumsal Hayvan Bakım ve Kullanım Komitesi tarafından onaylandı. Aşağıdaki video ve rakamlarda kullanılan hayvanları kaydetmek ve göstermek için ek onay alındı.

1. Taramadan önce hazırlıklar

  1. Deri altı infüzyon hattı
    1. İğne noktasının steril kalması için paketinden 23 G'lık bir iğneyi kısmen çıkarın.
    2. İğnenin göbeğini güvenli bir şekilde tutun ve iğne milinin göbekle buluştuğu yeri puanlamak için bir jilet kullanın.
    3. Bir iğne tutucuyu, puanlamanın hemen altındaki şaftın etrafına sıkıştırın ve şaftı merkezden hafifçe kırın.
    4. İğne milinin 1/3'ü (künt uç) daha önce sterilize edilmiş PE50 hattına, ilaç pompasından mıknatıs deliğinin içindeki hayvana uzanacak kadar hat uzunluğu ile yerleştirin.
  2. Deksmedetomidin ve atipamezol seyreltilmesi
    1. Açık, steril bir cam şişede 9,5 mL steril salin ile karıştırılmış 0,5 mL 0,5 mg/mL stok kullanarak seyreltilmiş dekmedetomidin hidroklorür çözeltisi hazırlayın (seyreltilmiş konsantrasyon = 0,025 mg/mL).
    2. Açık, steril bir cam şişede (seyreltilmiş konsantrasyon = 0,05 mg/mL) 9,9 mL steril salin ile karıştırılmış 0,1 mL 5 mg/mL stok kullanarak seyreltilmiş atipamezole çözeltisi hazırlayın.
  3. Parametreleri tarama
    1. Tarama dizileri hazırlamak için Tablo 1'de sunulan parametreleri kullanın.

2. Faz 1 anestezi: Hayvan indüksiyonu ve hazırlanması

  1. Kurulum
    1. Oksijen ve hava karıştırıcı, ısıtma yastığı ve aktif çöp atma sistemi de dahil olmak üzere tüm ekipmanların açık olduğundan ve düzgün çalıştığından emin olun (bkz. Şekil 1).
    2. Isıtma sisteminin sıcaklık ayar noktasını 37,5 °C olarak ayarlayın.
  2. Hayvan indüksiyonu
    1. Hayvanı (90 günlük, erkek Sprague Dawley sıçanı) indüksiyon odasına yerleştirin ve% 30 oksijenle zenginleştirilmiş havada% 2.5 izofluran ile anesteziye neden edin.
      NOT: Çok çeşitli hayvan yaşları ve her iki cinsiyet de kullanılabilir.
    2. Hayvan uyuşturulduktan sonra, odadan çıkarın, hayvanı tartın ve hazırlık alanında ısıtma yastığının üzerine burun konisine (% 2.5 izoflurane) yerleştirin.
  3. Hayvan hazırlığı
    1. Kurumasını önlemek için her göze oftalmik yağlama merhem uygulayın.
    2. Anestezinin derinliğini parmak sıkışması tepkisi eksikliği ile onaylayın.
    3. Hayvanın sırtının alt bel bölgesinde (yani kuyruğun hemen üstünde) 2" ile 2" kare alanı tıraş etmek için makas kullanın.
    4. Deksmedetomidin çözeltisinin 0.015 mg/kg'ını intraperitoneal (i.p.) enjeksiyonu ile (örneğin, 300 g sıçan 0.18 mL alır) 25 G iğne kullanarak karnın sağ alt çeyreğine sürün.
    5. Hazırlık alanından hayvan beşiğine izoflurane akışını değiştirin.
    6. Hayvanı hayvan beşiğine taşıyın. Sıçanın ön dişlerini ısırık çubuğuna güvenli bir şekilde yerleştirin. Sıkı bir uyum sağlamak için burun konisini burnun üzerine itin.
      NOT: Burun konisi alt çeneyi kapatmazsa, burun konisinin etrafını kapatırken çeneyi hafifçe kapalı tutmak için bir parafin filmi kullanın.
    7. Solunum pedini sıçanın karnının altına göğüs kafesinin altına yerleştirin ve solunum dalga formu her nefeste ortalanmış derin bir oluk gösterene kadar yeniden konumlandırın (Şekil 2'dekisolunum dalga formuna bakın).
    8. Fizyoloji izleme yazılımını kullanarak hayvanın nefes alışını izleyin. Solunum 40 nefes/dk'dan az olduğunda anestezinin bir sonraki aşamasına geçin (bpm; dekmedetomidin enjeksiyonundan yaklaşık 5 dk sonra).

3. Faz 2 anestezi: Hayvan kurulumu

  1. Sıçanın kafasını hayvan beşiğinde stabilize etmek için kulak çubuğuna kulak çubukları yerleştirin. Bir kez konumlandıktan sonra, ısırık çubuğunu öne çekin ve başın hareket etmediğini onaylayın. Burun konisini ve parafin filmini gerektiği gibi yeniden ayarlayın (bkz. Şekil 3a).
  2. Sıcaklık probını önceden yağlanmış, tek kullanımlık bir prob kapağına yerleştirin. Sıcaklık probunu rektuma yaklaşık 1/2" hafifçe yerleştirin ve tıbbi bantla kuyruğun tabanına bantlayın.
  3. Nabız oksimetre klipsini arka ayağın metatarsal bölgesine yerleştirin ve ışık kaynağının ayağın dibinde (avuç içi) olmasını sağlayın.
    NOT: Klibin dönüşü sinyali etkileyebilir; böylece, pençeyi ve klibi dik tutmak için bir tutucu oluşturmak daha fazla stabiliteye yol açacaktır. Ayrıca, sıçan normal vücut sıcaklığına gelene kadar oksijen doygunluğunun düşük olabileceğini unutmayın (%<95).
  4. Deksmedetomidinin 0.015 mg/ kg / s'sini çıkarmak için infüzyon oranını hesaplamak için sıçanın ağırlığını kullanın (300 g sıçan 0.18 mL / s alır).
  5. İlaç pompasını hesaplanan infüzyon oranını dışarı atacak şekilde ayarlayın.
  6. 3 mL'lik bir şırıngayı steril, seyreltilmiş dekmedetomidin çözeltisi ile doldurun ve iğnenin ucunu sterilize edilmiş infüzyon hattının açık ucuna yerleştirin (daha önce takılı olan deri altı iğnesi ile ilaç pompasından hayvan beşiğine kadar uzanır). Hattı doldurun ve şırınnayı ilaç pompasının şırınna tutucusuna sabitleyin.
  7. Pistona dokunana kadar itici bloğu ileriye doğru hareket ettirin ve ilaç iğneden dışarı atılır ve infüzyon hattının tamamen doldurulmasını sağlayın.
  8. Alkol mendili kullanarak, başıboş tüyleri çıkarmak için tıraş edilen bölgeyi temizleyin.
  9. Cildi kuyruğun tabanından yaklaşık iki parmak genişliğinde kıstırın. Infüzyon hattı iğnesinin 1/3'ü çadırlı cilde yerleştirin.
  10. İğneyi 3" geniş tıbbi bant parçasıyla cilde sabitleyin. İlkinin üzerine, sıçanın üzerine ve hayvan beşiğinin her iki tarafına bağlı ikinci bir geniş tıbbi bant yerleştirin (bkz. Şekil 4).
    NOT: Tarama sırasında hareketi önlemek için ferromanyetik iğnenin iyi sabitlenerek sabitlenmeleri kritik öneme sahiptir.
  11. Deri altı deksmedetomidinin infüzyonunu başlatın.
  12. Bobin için seviyeli bir yüzey oluşturmak için sıçanın burnunun köprüsüne bir parça gazlı bez yerleştirin. Bobini farenin kafasına sabitlemek için MRI sinyalini engellemeyen kağıt bant kullanın ve beynin üzerine ortaleyin (bkz. Şekil 3b,c).
  13. Hayvan beşiği içindeki tüm hatları ve kabloları laboratuvar bandı ile sabitleyin ve tüm fizyoloji sinyallerinin kararlı olup olmadığını kontrol edin (bkz. Şekil 2).
  14. Kağıt havluları hayvanın üzerine yerleştirin, laboratuvar bandı ile hayvan beşiğine sabitleyin. Bir hava ısıtma sistemi kullanıyorsanız, sıcak havayı içermesi için tüm beşiğin etrafına plastik bir tabaka sarın.
  15. Hayvanı deliğe taşıyın ve mıknatısı ayarlayın.

4. Faz 3 anestezi: Anatomik tarama alımı

  1. Izoflurane%1,5'e düşürün, bu da solunumda yaklaşık 45-50 bpm'ye doğru sürekli bir artışa neden olabilir. Anatomik tarama süresince bu seviyede kalır.
  2. Beynin mıknatıs izomerkeziyle hizalı olduğundan emin olmak için FLASH yerelleştirici taramasını kullanın (Şekil 5a). Hayvanı yeniden konumlandırın ve gerekirse tekrarlayın.
  3. Daha yüksek çözünürlüklü RARE yerelleştirici taramasını çalıştırın ve beyinde ortalanmış 15 sagittal dilimi hizalamak için bu tarama çıktısını kullanın (soldan sağa, Şekil 5b).
  4. Orta sagittal dilimi kullanarak, orta eksenel dilimi koyu bir nokta olarak görünen ön komiserin deküsyona hizalayın (Şekil 5c). Daha sonra dinlenme durumu taramalarında kullanılacak dilim uzaklığını not edin.
  5. Tarama sonrası analiz sırasında ortak bir alana kaydolmaya yardımcı olmak için hem FLASH hem de RARE eksenel protokollerini kullanarak 23 dilim alıp alın.
  6. PRESS dizisini kullanarak tüm beyinde shim.

5. Aşama 4: Dinlenme durumu tarama alımı

  1. Anatomik taramaları tamamladıktan sonra, izofluranları% 0.5 ila% 0.75'e düşürün, hayvanın solunumu dakikada 60-65 nefes olacak şekilde ayarlayın. Stabiliteyi sağlamak için dinlenme durumu taramasına başlamadan önce en az 10 dakika bu seviyede kal.
  2. Fizyoloji kararlı olduğunda (solunum aralığı nefes nefese veya düzensizlik olmadan 60-75 bpm, çekirdek vücut sıcaklığı 37,5 ± 1,0 °C ve oksijen doygunluğu% 95 veya daha büyük) anatomik eksenel seri ile aynı dilim ofsetini kullanarak 15 dilim EPI taraması alın.
  3. Her dinlenme durumu taraması tamamlandıktan sonra, verileri uzamsal ve zamansal bileşenlere ayrıştırmak için bağımsız bir bileşen analizi (ICA) kullanarak kaliteyi kontrol edin.
  4. En az üç yüksek kaliteli dinlenme durumu taraması alın.

6. Tarama sonrası kurtarma

  1. Tarama tamamlandığında, izofluranları% 2'ye çıkarın ve deri altı dekmedetomidin infüzyonunu durdurun.
  2. Hayvan beşiğini mıknatıs denden çıkarın, hayvanı çözün ve kulak çubuklarını, sıcaklık probunu, nabız oksimetre klipsini ve deksmedetomidin iğnesini çıkarın.
  3. Seyreltilmiş atipamezole çözeltisinin 0.015 mg/kg'ını 25 G iğneli 1 mL şırınga kullanarak sıçanın arka bacak kasına enjekte edin (yani, 300 g'lık bir sıçan 0.09 mL alır).
  4. Sıçanı ev kafesine bir ısıtma yastığının üzerine geri yerleştirin ve hayvan ambülatör olana kadar izleyin.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Her dinlenme durumu taramasından sonra, kararlılık bağımsız bir bileşen analizi (ICA; Tamamlayıcı Dosyalar'dabulunan örnek komut dosyası) kullanılarak değerlendirilir. Şekil 6, dinlenme durumu taramalarından elde edilen bileşen çıkışlarına örnekler gösterir. Şekil 6a, yüksek stabiliteye sahip bir taramadan bir sinyal bileşeni gösterir. Mekansal olarak, bileşenin yüksek bölgeselliğe sahip olduğunu unutmayın. Uzaysal bileşenin altındaki zaman dili...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Hayvanın hem fiziksel hem de fizyolojik olarak stabilitesi, yüksek kaliteli dinlenme durumu verileri elde etmenin anahtarıdır. Bu protokol anestezinin dört farklı aşamasında ilerleyerek stabiliteyi elde eder. Hayvanın anestezinin bir sonraki aşamasına geçmeden önce belirlenen fizyolojik eşikleri karşılamış olması zorunludur; Bu yöntem fizyolojik otoregülatör mekanizmalara dayandığından, bireysel hayvanlar her anestezi aşamasında biraz farklı miktarlarda zaman gerektirebilir. Deneyimlerimize göre, her aşamada daha fazla z...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Yazarların açıklayacak bir şeyi yok.

Teşekkürler

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Bu çalışma, Ulusal Sağlık Enstitüsü'nün (NIH) Ulusal Uyuşturucu Bağımlılığı Enstitüsü'nün (NIDA) [DJW, EDKS ve EMB, Alan I. Green'e verilen Grant R21DA044501 tarafından desteklendi ve DJW, Alan J. Budney'e Grant T32DA037202 ve Ulusal Alkol Bağımlılığı ve Alkolizm Enstitüsü (NIAAA) [Emily D. K. Sullivan'a Grant F31AA028413] tarafından desteklendi. Dartmouth'taki Raymond Sobel Psikiyatri Profesörü olarak Alan I. Green'in bağışlanan fonu aracılığıyla ek destek sağlandı.

Hanbing Lu, Nih Ulusal Uyuşturucu Bağımlılığı Enstitüsü Intramural Araştırma Programı tarafından desteklenmektedir.

Yazarlar merhum Alan I. Green'e teşekkür etmek ve teşekkür etmek istiyor. Birlikte ortaya çıkan bozukluklar alanına olan sarsılmaz bağlılığı, yazarlar arasında işbirliğinin kurulmasına yardımcı oldu. Kendisine büyük özlenecek olan akıl hocalığı ve rehberliği için teşekkür ederiz.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
9.4T MRIVarian/BrukerVarian, Paravision 6.0.1 yazılımını çalıştıran Bruker konsolu ile yükseltildi
Hava-Oksijen KarıştırıcıSechristModel 3500CP-G
Fonksiyonel NöroGörüntülerin Analizi (AFNI)NIMH/NIHSürüm AFNI_18.3.03Ücretsiz olarak şu adresten edinilebilir: https://afni.nimh.nih.gov/
Hayvan BeşiğiHIZLIBiyomedikal LHRXGS-00563ısırma çubuğu, burun konisi ve kulak çubukları ile sıçan tutucu
Hayvan Fizyolojisi İzleme ve Geçit SistemiSAIIModel 1025Oksijen doygunluğu, sıcaklık, solunum ve fiber optik nabız oksimetresi eklentisi dahil MR uyumlu sistem
Antisedan (atipamezol hidroklorür)Patterson Veterinary07-867-7097Zoetis, Üretici Ürün #10000449
MT-6003Clippers
Patterson VeterinerMRIequip.com Seramik MRG Güvenli Makas07-882-1032Wahl rötuş düzeltici combo kiti, Üretici Ürün #09990-1201
Deksmedesed (deksmedetomidin hidroklorür)Patterson Veterinary07-893-1801Dechra Veterinerlik Ürünleri, Üretici Ürün # 17033-005-10
Dijital Rektal Termometre MedlineMDS9608
Kapakları FMRIB Yazılım KütüphanesiFMRIBMELODIC Sürüm 3.15Ücretsiz olarak şu adreste mevcuttur: https://fsl.fmrib.ox.ac.uk/fsl/fslwiki
Isıtma Yastığı CaraInc.Model 50
Hemostat forseps, düzKent ScientificINS750451-2
İzofluranPatterson Veteriner07-893-1389Patterson Private Label, Üretici Ürün #14043-0704-06
İzofluran BuharlaştırıcıVetEquip Inc.
Laboratuvar Bandı, 3/4 "VWR International89097-990
İğneler, 23 gaugeBD305145plastik göbek çıkarıldı
Parafilm Laboratuvar FilmiPatterson Veteriner07-893-0260Medline Industries Inc., Üretici Ürün #HSFHS234526A
Düzlemsel YüzeyBobini BrukerT126092cm
Polietilen BoruBraintree ScientificPE50 50FT0.023 "(iç çap), 0.038 "(dış çap)
Puralube Oftalmik MerhemPatterson Veteriner07-888-2572Dechra Veteriner Ürünleri, Üretici Ürün #211-38
Sprague Dawley SıçanlarCharles River400 SAS SD
Steril% 0.9 TuzluÇözelti Patterson Veteriner07-892-4348Aspen Vet, Üretici Ürün #14208186
Steril Alkol Hazırlama PedleriMedlineMDS090735
Cerrahi Bant, 1" (3M Durapore)MedlineMMM15381Z3M Healthcare, "geniş tıbbi bant"
Cerrahi Beyaz Kağıt Bant, 1/2" (3M Mikro Gözenek)MedlineMMM153003M Sağlık
Şırıngaları, 1 mL, 25 gauge iğneliBD309626
Şırıngalar, 3 mLBD309657
Bacalı indüksiyon ve süpürme sistemiVetEquip Inc.942102Aktif süpürme
411724omega akış ölçerli
931600süpürme küpü, "vakum"
921616burun konisi, yeniden nefes almayan
911103 2 litrelik indüksiyon haznesi

Kaynaklar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Smitha, K. A., et al. Resting state fMRI: A review on methods in resting state connectivity analysis and resting state networks. The Neuroradiology Journal. 30 (4), 305-317 (2017).
  2. Gorges, M., et al. Functional connectivity mapping in the animal model: Principles and applications of resting-state fMRI. Frontiers in Neurology. 8, (2017).
  3. Paasonen, J., Stenroos, P., Salo, R. A., Kiviniemi, V., Gröhn, O. Functional connectivity under six anesthesia protocols and the awake condition in rat brain. NeuroImage. 172, 9-20 (2018).
  4. Pawela, C. P., et al. A protocol for use of medetomidine anesthesia in rats for extended studies using task-induced BOLD contrast and resting-state functional connectivity. NeuroImage. 46 (4), 1137-1147 (2009).
  5. Jonckers, E., et al. Different anesthesia regimes modulate the functional connectivity outcome in mice. Magnetic Resonance in Medicine. 72 (4), 1103-1112 (2014).
  6. Williams, K. A., et al. Comparison of alpha-chloralose, medetomidine and isoflurane anesthesia for functional connectivity mapping in the rat. Magnetic Resonance Imaging. 28 (7), 995-1003 (2010).
  7. Zhurakovskaya, E., et al. Global functional connectivity differences between sleep-like states in urethane anesthetized rats measured by fMRI. PloS One. 11 (5), 0155343(2016).
  8. Fukuda, M., Vazquez, A. L., Zong, X., Kim, S. -G. Effects of the α2-adrenergic receptor agonist dexmedetomidine on neural, vascular and BOLD fMRI responses in the somatosensory cortex. The European Journal of Neuroscience. 37 (1), 80-95 (2013).
  9. Brynildsen, J. K., et al. Physiological characterization of a robust survival rodent fMRI method. Magnetic Resonance Imaging. 35, 54-60 (2017).
  10. Lu, H., et al. Rat brains also have a default mode network. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 109 (10), 3979-3984 (2012).
  11. Lu, H., et al. Low- but not high-frequency LFP correlates with spontaneous BOLD fluctuations in rat whisker barrel cortex. Cerebral Cortex. 26 (2), 683-694 (2016).
  12. Tsai, P. -J., et al. Converging structural and functional evidence for a rat salience network. Biological Psychiatry. 88 (11), 867-878 (2020).
  13. Murphy, K., Bodurka, J., Bandettini, P. A. How long to scan? The relationship between fMRI temporal signal to noise ratio and necessary scan duration. NeuroImage. 34 (2), 565-574 (2007).
  14. Birn, R. M., et al. The effect of scan length on the reliability of resting-state fMRI connectivity estimates. NeuroImage. 83, 550-558 (2013).
  15. Lu, H., et al. Synchronized delta oscillations correlate with the resting-state functional MRI signal. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 104 (46), 18265-18269 (2007).
  16. Lu, H., et al. Registering and analyzing rat fMRI data in the stereotaxic framework by exploiting intrinsic anatomical features. Magnetic Resonance Imaging. 28 (1), 146-152 (2010).
  17. Cox, R. W. AFNI: software for analysis and visualization of functional magnetic resonance neuroimages. Computers and Biomedical Research. 29 (3), 162-173 (1996).
  18. Ash, J. A., et al. Functional connectivity with the retrosplenial cortex predicts cognitive aging in rats. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 113 (43), 12286-12291 (2016).
  19. Hsu, L. -M., et al. Intrinsic insular-frontal networks predict future nicotine dependence severity. The Journal of Neuroscience. 39 (25), 5028-5037 (2019).
  20. Li, Q., et al. Resting-state functional MRI reveals altered brain connectivity and its correlation with motor dysfunction in a mouse model of Huntington's disease. Scientific Reports. 7, (2017).
  21. Lu, H., et al. Abstinence from cocaine and sucrose self-administration reveals altered mesocorticolimbic circuit connectivity by resting state MRI. Brain Connectivity. 4 (7), 499-510 (2014).
  22. Seewoo, B. J., Joos, A. C., Feindel, K. W. An analytical workflow for seed-based correlation and independent component analysis in interventional resting-state fMRI studies. Neuroscience Research. 165, 26-37 (2021).
  23. Broadwater, M. A., et al. Adolescent alcohol exposure decreases frontostriatal resting-state functional connectivity in adulthood. Addiction Biology. 23 (2), 810-823 (2018).
  24. Jaime, S., Cavazos, J. E., Yang, Y., Lu, H. Longitudinal observations using simultaneous fMRI, multiple channel electrophysiology recording, and chemical microiontophoresis in the rat brain. Journal of Neuroscience Methods. 306, 68-76 (2018).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya şekillerini yeniden kullanmak için izin iste

İzin iste

Etiketler

Dinlenme Durumu fMRIS an Beyin G r nt lemeKemirgen fMRIDeksmedetomidin Anestezisizofluran AnestezisiBeyin ebekesi FonksiyonuSa kal m G r nt leme ProtokolFizyolojik zlemeBa ms z Bile en Analizi

İlgili makaleler