Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliğiniz gereklidir. Giriş yapın veya ücretsiz denemenizi bugün başlatın.

Yöntem makalesi

Ex Utero Pregastrülasyondan İleri Organogenez'e Fare Embriyolarının Kültürü

7.6K görüntülenme

⸱

DOI:

10.3791/63160

⸱

19 Ekim 2021

 , 
1Department of Molecular Genetics, Weizmann Institute of Science

Bu makalede

Özet

Tam embriyo kültürü için geliştirilmiş bir platform, pregastrülasyon aşamalarından ileri organogenezine kadar altı güne kadar postimplantasyon fare embriyolarının sürekli ve sağlam ekstre gelişimini sağlar. Bu protokolde statik plakalar ve dönen şişe sistemleri kullanılarak başarılı embriyo kültürü için standart prosedürü detaylandırıyoruz.

Özet

Postimplantasyon memeli embriyo kültürü yöntemleri genellikle verimsiz ve rahim dışı diseksiyon sonrası kısa sürelerle sınırlı olmuştur. Platformlar son zamanlarda yumurta silindir aşamalarından ileri organogenez kadar fare embriyolarının son derece sağlam ve uzun süreli ex utero kültürü için geliştirilmiştir. Bu platformlar, öngaztasyon embriyolarının (E5.5) arka ekstremite oluşum aşamasına (E11) kadar uygun ve sadık gelişimini sağlar. Geç gastrulating embriyoları (E7.5) bu ortamlarda dönen şişelerde yetiştirilirken, pregastrülasyon aşamalarından (E5.5 veya E6.5) genişletilmiş kültür statik ve dönen şişe kültürlerinin bir kombinasyonunu gerektirir. Ek olarak, O2 ve CO2 konsantrasyonunun hassas düzenlenmesi, gaz basıncı, glikoz seviyeleri ve belirli bir ex utero kültür ortamının kullanımı uygun embriyo gelişimi için kritik öneme sahiptir. Burada, genişletilmiş ex utero fare embriyo kültürü için ayrıntılı bir adım adım protokol sağlanmaktadır. Normal fare embriyolarının gastrülasyondan organogeneze kadar ekstresini yetiştirme yeteneği, embriyonik gelişim sırasında farklı deneysel pertürbasyonların etkisini karakterize etmek için değerli bir aracı temsil eder.

Giriş

Memeli embriyosunun intrauterin gelişimi postimplantasyon gelişiminin erken evrelerinin incelenmesini sınırlamıştır1,2. Gelişmekte olan embriyonun erişilemezliği, embriyo uterusa implante ettikten sonra meydana gelen hayvan vücut planının oluşturulması, mikrop katmanlarının belirtimi veya doku ve organların oluşumu gibi temel gelişimsel süreçlerin anlaşılmasını engeller. Ayrıca erken postimplane embriyonun çok küçük olması E103 öncesi rahim içi görüntüleme ile gözlem yapmayı zorlaştırır. Bu aşamalarda canlı embriyoların gözlemlenememesi ve manipüle edilmesi, erken postimplantasyon embriyogenezinin çalışmasını gelişim sırasında anlık görüntülerle kısıtlamıştır.

Preimplantasyon memeli embriyolarının in vitro kültürü için protokoller iyi kurulmuş, güvenilir ve düzenli olarak kullanılmaktadır4. Bununla birlikte, uygun memeli postimplantasyon embriyo büyümesini destekleyebilen ex utero kültür sistemleri kurma girişimleri sınırlı başarıya sahipti5. Bir asırdan fazla bir süredir, embriyoların geleneksel statik plakalarda 6,7,8 veya dönen şişelerde (silindir kültürleri)5,9,10 kült haline getirildiği için çeşitli kültür teknikleri önerilmiştir. Bu platformlar, normal embriyo sağkalımında oldukça verimsiz olmasına ve kısa sürelerle sınırlı olmasına rağmen, implantasyondan sonra memeli gelişimi hakkındaki bilginin genişletilmesinde yardımcı olduğunu kanıtladı11,12. Embriyolar kültüre başladıktan sonra 24-48 saat gibi erken bir sürede gelişim geriliği ve morfolojik anomaliler göstermeye başladı.

Bu çalışma, pregastrülasyondan ileri organogenez evrelerine kadar altı güne kadar postimplantasyon gelişimine kadar sürekli gelişime izin veren ex utero embriyo kültür sistemini kurmak için ayrıntılı bir açıklama sunmaktadır13. Bu makalede, E7.5 embriyolarının (sinir plakası ve baş kat aşaması) arka ekskülasyon aşamasına (~E11) kadar büyümesini destekleyen geliştirilmiş silindir kültürü protokolü ve kültürü statik plakalar ve silindir kültürü platformlarında birleştirerek E5.5/E6.5'ten genişletilmiş kültür açıklanmaktadır.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Protokol

Tüm hayvan deneyleri Weizmann Bilim Enstitüsü Hayvan Koruma Yönergelerine göre gerçeklendi ve ilgili Weizmann Enstitüsü IACUC tarafından onaylandı (#01390120-1, 01330120-2, 33520117-2). Sağlıklı hamile kadınlardan, Rambam Tıp Merkezi Helsinki Komitesi (#RMB-0452-15) tarafından onaylandığı gibi göbek kordonlarından kan toplamak için bilgilendirilmiş onay vermeleri istendi. Sağlıklı yetişkinlerden, Weizmann Bilim Enstitüsü Helsinki Komitesi'nin (#1566-3) yönergelerine göre kan toplanması için bilgilendirilmiş onayları istendi.

1. Medya hazırlığı

  1. Diseksiyon ortamını, %10 fetal sığır serumu, 5 mL penisilin/streptomisin ile desteklenmiş fenol kırmızısı ve L-glutamin içermeyen 500 mL Dulbecco Modifiye Kartal Ortamı (DMEM) kullanarak hazırlayın ve 0,22 μm filtre kullanarak filtre sterilize edin.
    NOT: Diseksiyon ortamını 1 aya kadar 4 °C'de tutun.
  2. Embriyonik ortamın %25'ini artı %50'sini sıçan serumu ve %25'ini insan göbek kordonu kan serumu (HCS) veya insan yetişkin kan serumu (HBS) kullanarak biyolojik bir davlumbazın içinde her kültür gününde ex utero embriyo kültürü ortamını (EUCM) taze olarak hazırlayın.
  3. Embriyonik ortamı hazırlamak için fenol kırmızısı ve L-glutamin olmadan 500 mL DMEM'de 5 mL glutamin, 5 mL HEPES ve 5 mL penisilin/streptomisin ekleyin. 10-15 mL aliquots hazırlayın ve iki aya kadar 4 °C'de saklayın.
    NOT: Herhangi bir kirlenme yaşıyorsanız antibiyotik konsantrasyonu iki katına çıkarın.
  4. Sıçan serumu 56 °C'de 30-45 dakika ısı inaktive edin ve 0,22 μm polivinylidene difluorid filtreden filtreleyin. Serumu aynı inaktivasyon gününde kültür için kullanın. HCS veya HBS'yi çözün ve deneyler için hemen kullanın.
    NOT: Ticari sıçan serumu tutarlı sonuçlar sağlar (belirgin bir varyasyon olmadan en az 4 lot test edilmiştir). Alternatif olarak, daha önce açıklandığı gibi şirket içinde yüksek kaliteli sıçan serumu elde edilebilir8,14. HCS kullanılamıyorsa, şirket içinde toplanan HBS ile değiştirin. Sıçan serumu, HCS ve HBS bir kez refrozen edilebilir ve farklı bir günde kullanılmak üzere -20 °C'de tutulabilir. Refrozen serumu daha büyük hacimli taze çözülmüş serumla çözün ve birleştirin ve yeniden çözmeyin.

2. İnsan göbek kordonu kan serumu ve insan yetişkin kan serumu koleksiyonu

  1. HCS'yi izole etmek için, planlanan sezaryen doğum gününde sağlıklı hamile kadınlardan göbek kordonu kanı toplayın.
    1. Göbek kordonu umbilicus'tan 5-7 cm uzakta çift kelepçeleyin ve bebeğin doğumundan hemen sonra kelepçeler arasında transect.
    2. Plasenta hemoliz izlerini önlemek için yerinde kalırken, büyük delikli 14 G iğne ve 50 mL şırıngayı doğrudan göbek damarından kullanarak manuel olarak kan çekin.
      NOT: Bebek ameliyat alanından çıkarıldıktan sonra kan toplayın ve klinik testler için göbek kanı çekilmiştir.
  2. Toplanan kanı 5 mL prokoagülan steril test tüplerine dağıtın ve tam pıhtılaşmaya izin vermek için hemen 15 dakika boyunca 4 °C'ye aktarın. Pıhtılaşmış test tüplerini 2.500 × g'da 4 °C'de 10 dakika santrifüj edin.
  3. Hemoliz belirtileri gösteren tüpleri atın (pembe-kırmızı serum). Serumu (sarı renk) 5 mL pipet kullanarak toplayın ve 0,22 μm filtreden geçirin. Serumu 56 °C'lik bir su banyosunda 45 dakika boyunca hemen ısı inaktive edin.
  4. Inaktive serumun 1-1,5 mL aliquots'larını hazırlayın ve altı aya kadar -80 °C'de saklayın. Gerekirse kuru buz kullanarak -70 °C'de sevk edin.
  5. Yetişkin insan kanı serumu toplanması için, sağlıklı yetişkinlerden kan alıp göbek kordonu kan serumu için açıklanan aynı protokole uyarak serumu hemen izole edin. HBS'yi altı aya kadar -80 °C'de ısı inaktive edilmiş ve filtrelenmiş aliquots olarak saklayın.
    NOT: Yeni olarak şirket içinde hazırlanan insan göbek kordonu serumu ve yetişkin insan serumu, piyasada bulunan seruma üstün sonuçlar verdi. Sezaryen doğum için planlanan 18 yaş üstü ve 40 yaşın altındaki sağlıklı kadınlardan HCS toplayın. Vajinal doğum yapan kadınları ve gestasyonel diyabet veya hipertansiyon da dahil olmak üzere herhangi bir kronik hastalığı veya aktif tıbbi durumu olan kadınları hariç tutun.

3. E7.5'ten E11'e kadar embriyoların ex utero silindir kültürü

  1. Silindir kültürü inkübatörü ve gaz regülatörü kuruluyor
    1. Silindir kültürü inkübatör sistemini kullanarak Kültür E7.5 veya daha ileri embriyolar. Embriyo diseksiyonlarından önce rotator'ı ve ısıtma ünitesini 37 °C'de en az 1 saat açın. Gaz giriş şişesine ve çıkış test tüpüne otomatik olarak kapatılmış su ekleyin.
      NOT: Dönen tamburun bitişiğinde bir termometre yerleştirin ve sık sık inkübatörün içindeki sıcaklığın kararlılığını kontrol edin. İnkübatörü mümkün olduğunca çabuk açın, uzun açılış süresi sıcaklığı artıracak ve embriyo gelişimini etkileyecektir. Gerektiğinde, kültür sırasında minimum yarı kapasitede tutmak için gaz giriş şişesine ve çıkış test tüpüne daha fazla otoklavlı su ekleyin. Kuluçka makinesinin içindeki embriyoları bir bezle kaplayarak ışıktan koruyun.
    2. Ana anahtara basarak ve daha sonra Oksijen/Nitrojen ve CO2 kontrolörlerini açarak gaz regülatör modülünü açın (Şekil 1A). İlgili kontrolörleri kullanarak oksijen ve CO2 değerlerini %5 olarak ayarlayın. Gaz regülatörünü açın ve basınç vericislerindeki voltaj anahtarını hareket ettirerek gaz basıncını inç kare başına ~6,5-7 pound (psi) olarak ayarlayın (Şekil 1B). Dijital basınç göstergesi kullanarak gaz basıncı değerini onaylayın.
    3. Hassas inkübatörün içine tahsis edilen çıkış suyu dolu test tüpünün içinde oluşturulan kabarcıkların oranını kontrol ederek gaz akışını izleyin. Su şişesinin kapağındaki gaz akış vanasını kapatarak/açarak uygun kabarcık oranını ayarlayın. Gaz akışının saniyede 2-4 kabarcık hızında kabarcık oluşumuna izin verdiğinden emin olun veya kabarcık akışını kabarcıklanmanın su dolu çıkış tüpüne çıktığı ilk noktada ayarlayın.
    4. Kültür şişelerini 2 mL kültür ortamı ile doldurun ve 1 saat önkoşul için oyulmuş dönen tambura takın. Şişeleri tambura kapatmak için oyulmuş silikon bung'ları kullanın. Katı maşaları kullanarak dönen tamburdaki boş alanları kapalı tutun.
      NOT: Çıkış tüpünde kabarcık olmaması (sistemden gaz gelmemesi) veya son derece yüksek bir gaz akışı embriyo gelişimini etkileyebilir. Çıkış test tüpüne kabarcık akışının olmaması durumunda, tüm silikon bungların dönen tamburda ve sızdırmazlık sisteminde düzgün bir şekilde konumlandırılıp konumlandırılmadığını kontrol edin ve su şişesinin düzgün bir şekilde kapatıldığını ve tüm borunun doğru bağlandığını kontrol edin. Su şişesine gelen kabarcıklanma eksikliği, gaz regülatöründeki bir arızaya işaret edebilir.
  2. Fare embriyolarının hamile farelerden diseksiyonu
    1. Diseksiyon ortamını 37 °C'de bir inkübatörün içinde ve % 5 CO2'de en az 1 saat boyunca önkoşul haline sokun. Gaz değişimine izin vermek için kapağı hafifçe açık bırakın.
    2. Hamile dişiyi servikal çıkık ile kurban edin, dişinin karnını% 70 etanol ile temizleyin ve cildi ve karın duvarını makasla kesin. Uterusun bir ucunun yerini bulun ve yumurtalık ile rahim arasındaki kavşakta kesin. Daha sonra, uterus boyunca diğer uca kadar kesin ve oda sıcaklığı Dulbecco'nun fosfat tamponlu salin (DPBS) ile dolu 100 mm Petri kabına aktarın.
      NOT: Hormon astarlı olmayan, doğal olarak çiftleştirilmiş kadınların kullanılması önerilir.
    3. Kavramları DPBS'de hızlı bir şekilde yıkayın ve embriyo kullanımını kolaylaştırmak için çiftler halinde kesin. Tüm kavramsal çiftleri 60 mm Petri kabında önceden belirlenmiş diseksiyon ortamına taşıyın ve bireysel kavramlar halinde kesin.
    4. Bir çift brüt kümes gücü kullanarak uterus dokusunu yırtarak kavramüslerin rahim duvarını çıkarın. Armut şeklindeki yaprak dökenin ucunu kesmek için ince mikrocerrahi tokmaklar kullanın. Uzun eksenine paralel olarak embriyonun yanına tokaları yerleştirin ve yaprak dökenleri yarıya bölmek için tokaları açın.
    5. Son olarak, embriyoyu yaprak dökenden kavrayarak ve ince tokalar kullanarak parietal yumurta sarısı kesesini embriyodan soyarak yumurta silindirine bağlı sağlam ektoplacental koniyi bırakın.
      NOT: Embriyoyu etkilememek için, maksimum 30-40 dakika içinde 37 °C'de bir ısıtma plakası ile donatılmış bir mikroskopta diseksiyonlar gerçekleştirin. Bir seferde bir çöp embriyo dozhele.
    6. Diseksiyondan hemen sonra, embriyoların doku kalıntılarına yapışmasını önlemek için bir cam Pasteur pipet kullanarak embriyoları eşkenel diseksiyon ortamı ile dolu yeni bir plakaya aktarın.
    7. Epiblastta hasar göstermeyen sinir plakası/erken kafa katlama aşamasındaki embriyoları seçin ve şişe başına 5-6 embriyoyu önkoşulu cam kültür şişelerine aktarın.
      NOT: Cam Pasteur pipeti hazırlamak için pipet açıklığı bir cam kesici kullanarak embriyolara uyacak kadar yeterli bir boyuta kesin ve kirlenmeyi önlemek için etanolde tutun. Embriyoları aktarmadan önce cam pipeti PBS ile yıkayın. Embriyoları kültür şişesine aktarırken, EUCM'nin seyreltilmesini önlemek için diseksiyon ortamının mümkün olduğunca az hacmini taşıdığından emin olun.
    8. Şişeleri 37 °C'de dönen kültür sistemine% 5 O2 ve% 5 CO2 atmosferine yerleştirin.
    9. Kültürün her günü, embriyo gelişimini stereomikroskop altında değerlendirmek için şişeleri inkübatörden tek tek çıkarın. Bir şişeyi çıkarırken tamburdaki boş deliği katı bir bung ile kapattığınızdan emin olun. Embriyo boyutuna uyacak şekilde steril bir plastik Pasteur pipet ucunu kesin ve gözlemi kolaylaştırmak için embriyoları bir Petri kabına taşıyın. Embriyoların her zaman orta ile kaplı olduğundan emin olun.
      NOT: Vücut ısısındaki düşüş nedeniyle embriyolarda zararlı etkilerden kaçınmak için embriyoların inkübatör dışında olduğu süreyi en aza indirin. Embriyo sağkalımını etkileyen yumurta sarısı kesesi kan damarlarının yırtılmasını önlemek için embriyoları dikkatlice ele alın.
    10. Kültür 1. gününde (E8.5'e eşdeğer), 3 embriyodan oluşan grupları, ekstra 3 mg/mL D-glikoz ve %13 O2, %5 CO2 gaz karışımı içeren 2 mL taze ve önkoşullu EUCM içeren yeni bir şişeye aktarın.
    11. 48 saat sonra (E9.5'e eşdeğer), iki embriyodan oluşan grupları taze önceden ısıtılmış EUCM artı% 18 O2 ve% 5 CO2 gaz atmosferinde 3.5 mg / mL glikoz ile yeni bir şişeye aktarın.
    12. 72 saatlik kültürde (E10.5'e eşdeğer), her embriyonun 4 mg/ mL glikoz ve% 21 O2 ve% 5 CO2 gaz kaynağı ile desteklenmiş 1.5-2 mL taze ortam içeren ayrı bir şişeye taşıyın.
      NOT: Embriyolar, 4.
    13. Yumurta sarısı kesesini ve amnionunu çıkarmak için ince forseps kullanın ve embriyo morfolojisinin uygun şekilde gözlemlenmesi için göbek kordonunu ayırın. Gaz düzenleme modülunu ve hassas inkübatörü kapatın.
      NOT: Embriyo aşamasına göre yeterli gaz atmosferine sahip silindir kültüründe bir cam şişenin içinde kuluçka yaparak kültür ortamını 1 saat önceden kesinleştirin. Kültür şişelerini ve tüm inkübatör cam eşyaları her kullanımdan sonra akan damıtılmış su ile üç yıkama ve ardından% 70 etanol içine batırılmış bir gece yıkama yaparak temizleyin. Damıtılmış su ile üç kez yeniden yıkayın, şişelerin bir gecede kurumasına izin verin ve otoklavla sterilize edin. Aynı şekilde, silikon fişleri düzenli olarak otoklavleyin. Tüm diseksiyon aletlerini% 70 etanol ile iyice temizleyin ve kuru sterilize edin.

4. Genişletilmiş embriyo kültürü E5.5/E6.5'ten E11'e

  1. Statik plakalarda erken somit evresine (E8.5) kadar kültür pregastrülasyonu (E5.5) ve erken gastrülasyon (E6.5) embriyoları.
  2. Diseksiyon ortamını 37 °C'de %5 CO2'ye sahip bir inkübatörde 1 saat boyunca önkoşul haline sokun.
    NOT: Gaz değişimine izin vermek için tüpün kapağını tamamen kapatmayın.
  3. Her kuyuya 250 μL taze hazırlanmış EUCM ekleyerek kültür plakalarını hazırlayın. Plakaları önkoşasyon için 37 °C'de bir CO2 inkübatörünün içine yerleştirin.
    NOT: Embriyo büyümesi için 8 kuyu plakası çok uygun olsa da, plakanın büyüklüğüne göre ortamın hacmi ayarlanarak başka bir tabakta kültür yapılabilir.
  4. Yumurta silindir embriyolarını E7.5 için açıklanan tekniği izleyerek rahim dışına serkt. Embriyonun parietal yumurta sarısı kesesini çıkarın ve sağlam ektoplacental koniyi yumurta silindirine bağlı bırakın.
  5. Bir mikropipette kullanarak 8 kuyulu plakanın her kuyusuna ayrı embriyoları aktarın ve plakayı 37 °C'de% 5 CO2 ile inkübatörün içine yerleştirin.
  6. Embriyoları stereomikroskop altında görüntüleyin ve kültür için sadece iyi biçimlendirilmiş amniyotik boşluğa sahip olanları, belirgin bir hasar olmadan ve Reichert'in zarı olmadan seçin.
    NOT: E5.5 embriyolarını transfer etmek için 20 μL pipet ucu ve E6.5 embriyoları transfer etmek için 200 μL uç kullanın. E6.5'ten başlayan kültürler söz konusu olduğunda, HCS yeni toplanan HBS ile değiştirilebilir.
  7. Ortamın yarısını çıkarın ve 24 saat kültürden sonra 250 μL taze hazırlanmış önceden hazırlanmış EUCM ekleyin, embriyoların her zaman kültür ortamına daldırılmasını sağlayın. E5.5'ten başlayan kültürler söz konusu olduğunda, iki günlük kültürden sonra (E7.5'e eşdeğer), 200 μL'yi çıkarın ve 250 μL yeni EUCM ekleyin.
    NOT: Statik kültür sırasında embriyolar plakaya (esas olarak plastik plakalar kullanırken) bağlanabilir ve bu da embriyo gelişimini ciddi şekilde tehlikeye atacaktır. Embriyonun plakaya bağlanması, E5.5 embriyolarının kültlemesinin ilk gününde daha sık görülür. Bağlanmayı önlemek için, ince, steril tokmaklar kullanarak embriyoları plaka yüzeyinden dikkatlice uzaklaştırın. Plakanın yüzeyine sadece ektoplacental koninin bağlı kaldığını doğrulayın.
  8. Embriyoları erken somit aşamasında silindir kültürüne aktarın (4-7 somit; E5.5'te ekilen embriyolar için üç günlük kültürden sonra ve kültürler için iki gün E6.5'te başladı), daha önce E8.5 evre embriyolar için açıklanan endikasyonları takip edin.
    NOT: Embriyoların yukarıda belirtilenden farklı somite aşamalarında silindir kültürüne aktarılması, daha fazla gelişmenin başarısız olmasına neden olur. E7.5 ex utero kültürlerinin aksine, embriyoları% 21 oksijen ve% 5 CO2 sabit bir atmosferde tutmak mümkündür, bu da dinamik oksijen konsantrasyonuna sahip atmosferlere göre embriyo gelişiminde biraz daha yüksek bir verimlilik sağlar.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

E7.5 embriyoları için tanımlanan silindir kültürü koşulları (geç gastrülasyon evresi) 4 kültür gününden sonra ortalama u'e yakın verimle sabit ve normal embriyo büyümesini destekler (Şekil 2 ve Tablo 1). Embriyo gelişiminin verimliliği çeşitli fare genetik geçmişlerine göre değişebilir, ancak sürekli olarak sağlamdır (Şekil 2C). HCS yerine HBS ile takviye, farelerin genetik arka planına bağlı olarak 4 günlük ex utero kültüründen sonra ~...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

Burada sunulan kültür protokolü, E5.5'ten E11'e kadar altı güne kadar uygun ve sürekli fare embriyosu geliştirme ex uterosunu sürdürebilir. Daha önce, bu gelişim aşamalarında embriyolar kültürde sadece kısa süreler için (48 saate kadar) normal olarak gelişebilirdi 15. Gaz regülasyon modülünün oksijen konsantrasyonunun ve hiperbarik gaz basıncının hassas kontrolü için silindir kültürü inkübatörüne kaplanması, burada açıklanan uygun fare embriyo kültürü için kritik öneme sahiptir. Gaz basın...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

J.H.H, Biological Industries Ltd'nin danışmanıdır ve burada açıklanan silindir ve statik kültür koşullarını kapsayan bir patent başvurusunda bulunmuştur (J.H.H. ve Weizmann Bilim Enstitüsü tarafından yapılmıştır). Diğer yazarlar rakip çıkarlar beyan etmemektedir.

Teşekkürler

Bu çalışma Pascal ve Ilana Mantoux tarafından finanse edildi; Avrupa Araştırma Konseyi (ERC-CoG-2016 726497-Cellnaivety); Uçuş Görevlisi Tıbbi Araştırma Konseyi (FAMRI); İsrail Kanser Araştırma Fonu (ICRF) profesörlüğü, BSF, Helen ve Martin Kimmel Kök Hücre Araştırmaları Enstitüsü, Helen ve Martin Kimmel Yenilikçi Araştırma Ödülü; İsrail Bilim Vakfı (ISF), Minerva, Sherman Tıbbi Kimya Enstitüsü, Nella ve Leon Benoziyo Nörolojik Hastalıklar Merkezi, David ve Fela Shapell Genetik Bozukluklar Araştırma Merkezi, Kekst Aile Tıbbi Genetik Enstitüsü, Dr. Beth Rom-Rymer Kök Hücre Araştırma Fonu, Edmond de Rothschild Vakıfları, Zantker Hayır Kurumu, Zvia Zeroni Mülkü.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
0.22 ve mikro; m gözenek boyutu filtresi (250 mL)JetBiofilFCA-206-250
0.22 & mikro; m gözenek boyutu şırınga PVDF filtresiMilliporeSLGV033RS
8 kuyulu ve mikro;-plakalar cam alt/ibiTreatiBidi80827/80826
Gaz girişi için adaptör kapaklı şişeArad Technologies
Bungs (Delik)B.T.C. Mühendislik, Cullum Starr Hassas MühendislikBTC 06Şişeleri tambura kapatmak için kullanılır
Bungs (Katı)B.T.C. Mühendislik, Cullum Starr Hassas MühendislikBTC 07Dönen tamburu kapatmak için kullanılır
Kültür şişeleriB.T.C. Mühendislik, Cullum Starr Hassas MühendislikBTC 03/BTC 04Cam Şişeler (Küçük) BTC 03 veya Cam Şişeler (Büyük) BTC 04
D (+) - glikoz MonohidratJ.T. Baker
Elmas bıçakGüzel Bilim Araçları10100-30/45
Dijital Basınç GöstergesiŞangay Benxu Elektronik Teknolojisi co. LtdBX-DPG80
DMEMGIBCO11880
Dulbecco'nun Fosfat Tamponlu TuzluSuyu Biyolojik endüstriler02-020-1A
Fetal Sığır SerumuBiyolojik endüstriler04-013-1A
Gaz düzenleme modülüArad TechnologiesHannaLab1
GlutamaxGIBCO35050061glutamin
Graefe forsepsGüzel Bilim Araçları11052-10
HEPESGIBCO15630056
Mikrocerrahi forseps (Dumont #5, #55)Güzel Bilim Araçları11255-20
Pasteur pipetleri (cam)Hilgenberg3150102
Pasteur pipetleri (plastik)AlexredSO P12201
Penisilin / StreptomisinBiyolojik endüstriler03-031-1B
Petri Kapları (60 mm ve 100 mm)Falcon351007/351029
Hassas inkübatör sistemiB.T.C. Mühendislik, Cullum Starr Hassas MühendislikBTC01gaz fıskiye kitli BTC01 modeli
Pro-koagülan steril test tüpleri (5 mL)Greiner Bio-One#456005
Sıçan tüm embriyo kültürü serumuENVIGO BioproductsB-4520
Isıtma plakası ile donatılmış stereoskopik mikroskopNikonSMZ18
Sera filtrasyonu için steril şırıngalar (5, 10 ml)Pic Solution
Cerrahi makasGüzel Bilim Araçları14094-11

Kaynaklar

  1. New, D. A. Whole-embryo culture and the study of mammalian embryos during organogenesis. Biological Reviews of the Cambridge Philosophical Society. 53 (1), 81-122 (1978).
  2. Tam, P. P., Behringer, R. R. Mouse gastrulation: the formation of a mammalian body plan. Mechanisms of Development. 68 (1-2), 3-25 (1997).
  3. Huang, Q., et al. Intravital imaging of mouse embryos. Science. 368 (6487), 181-186 (2020).
  4. White, M. D., et al. Long-lived binding of Sox2 to DNA predicts cell fate in the four-cell mouse embryo. Cell. 165 (1), 75-87 (2016).
  5. Tam, P. P. Postimplantation mouse development: whole embryo culture and micro-manipulation. International Journal of Developmental Biology. 42 (7), 895-902 (1998).
  6. Nicholas, J. S., Rudnick, D. The development of rat embryos in tissue culture. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 20 (12), 656-658 (1934).
  7. New, D. A., Stein, K. F. Cultivation of mouse embryos in vitro. Nature. 199, 297-299 (1963).
  8. Rivera-Pérez, J. A., Jones, V., Tam, P. P. L. Culture of whole mouse embryos at early postimplantation to organogenesis stages: developmental staging and methods. Methods in Enzymology. 476, 185-203 (2010).
  9. New, D. A. T., Coppola, P. T., Terry, S. Culture of explanted rat embryos in rotating tubes. Journal of Reproduction and Fertility. 35 (1), 135-138 (1973).
  10. Cockroft, D. L. A comparative and historical review of culture methods for vertebrates. International Journal of Developmental Biology. 41 (12), 127-137 (1997).
  11. Parameswaran, M., Tam, P. P. L. Regionalisation of cell fate and morphogenetic movement of the mesoderm during mouse gastrulation. Developmental Genetics. 17 (1), 16-28 (1995).
  12. Beddington, R. S. Induction of a second neural axis by the mouse node. Development. 120 (3), 613-620 (1994).
  13. Aguilera-Castrejon, A., et al. Ex utero mouse embryogenesis from pre-gastrulation to late organogenesis. Nature. 593 (7857), 119-124 (2021).
  14. Takahashi, M., Makino, S., Kikkawa, T., Osumi, N. Preparation of rat serum suitable for mammalian whole embryo culture. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (90), e51969(2014).
  15. Behringer, R., Gertsenstein, M., Nagy, K. V., Nagy, A. Isolation, culture and manipulation of postimplantation embryos. Manipulating the Mouse Embryo: a Laboratory Manual. , Cold Spring Harbor Laboratory Press. Cold Spring Harbor, New York. 149-193 (2014).
  16. Takahashi, M., Nomura, T., Osumi, N. Transferring genes into cultured mammalian embryos by electroporation. Development, Growth and Differentiation. 50 (6), 485-497 (2008).
  17. Mathieu, J., Ruohola-Baker, H. Metabolic remodeling during the loss and acquisition of pluripotency. Development. 144 (4), 541-551 (2017).
  18. Sturm, K., Tam, P. P. L. Isolation and culture of whole postimplantation embryos and germ layer derivatives. Methods in Enzymology. 225, 164-190 (1993).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Etiketler

Fare Embriyo KültürüEmbriyo DiseksiyonuDöner Şişe KültürüStatik Plak KültürüEmbriyonik GelişimGastrülasyon EvresiKültür BesiyeriEmbriyo Manipülasyonu
Ex Utero Pregastrülasyondan İleri Organogenez'e Fare Embriyolarının Kültürü
Bize Ulaşın
Kütüphaneye Öner

Gizlilik

Kullanım Koşulları

Politikalar

Telif Hakkı © 2026 MyJoVE Corporation. Tüm hakları saklıdır.