Yöntem makalesi

Maternal Crispantlarla Erken Gelişimde Annelik İfade Edilen Genlerin Rolünün Belirlenmesi

DOI:

10.3791/63177

21 Aralık 2021

Bu makalede

Özet

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Erken gelişim, maternal kalıtsal ürünlere bağlıdır ve bu ürünlerin çoğunun rolü şu anda bilinmemektedir. Burada, tek bir nesilde anne-etki fenotiplerini tanımlamak için CRISPR-Cas9 kullanan bir protokol tanımladık.

Özet

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Erken gelişim, zigotik genom aktivasyonuna kadar gelişim için gerekli tüm hücresel fonksiyonları yerine getiren oogenez sırasında matür oosite dahil edilen maternal faktörlerin bir havuzuna bağlıdır. Tipik olarak, bu maternal faktörlerin genetik olarak hedeflenmesi, annelik etkisi fenotiplerini tanımlamak için ek bir nesil gerektirir ve bu da gelişim sırasında maternal olarak eksprese edilen genlerin rolünü belirleme yeteneğini engeller. CRISPR-Cas9'un bialelik düzenleme yeteneklerinin keşfi, enjekte edilen embriyoların veya "gevreklerin" somatik dokularındaki embriyonik fenotiplerin taranmasına izin vererek, zigotik olarak eksprese edilen genlerin gelişim programlarında oynadığı rolün anlaşılmasını arttırmıştır. Bu makalede, crispant yönteminin bir uzantısı olan bir protokol açıklanır. Bu yöntemde, germ hücrelerinin bialelik düzenlenmesi, tek bir nesilde veya "maternal gevrekler" de maternal etkili bir fenotipin izolasyonuna izin verir. RNA'ları tek bir hedefe multipleks etmek, maternal gevreklerin verimli üretimini teşvik ederken, maternal gevrek haploidlerin sekans analizi, maternal etkili bir fenotip üreten genetik lezyonları doğrulamak için basit bir yöntem sağlar. Maternal gevreklerin kullanımı, annelik tarafından ifade edilen temel genlerin hızlı bir şekilde tanımlanmasını destekler, böylece erken gelişimin anlaşılmasını kolaylaştırır.

Giriş

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Maternal olarak biriken ürünlerden oluşan bir havuz (örneğin, RNA'lar, proteinler ve diğer biyomoleküller), embriyonun zigotik genomu aktive edilene kadar tüm erken hücresel süreçler için gereklidir1. Bu ürünlerin oositten erken tükenmesi tipik olarak embriyonik öldürücüdür. Bu genlerin gelişimdeki önemine rağmen, annelik tarafından ifade edilen birçok genin rolü şu anda bilinmemektedir. Zebra balıklarında CRISPR-Cas9 gibi gen düzenleme teknolojisindeki ilerleme, anne tarafından eksprese edilen genlerinhedeflenmesini sağlar 2,3,4. Bununla birlikte, bir anne-etki fenotipinin tanımlanması, zigotik bir fenotiple karşılaştırıldığında ekstra bir nesil gerektirir, bu nedenle daha fazla kaynak gerektirir. Son zamanlarda, CRISPR-Cas9'un bialelik düzenleme yeteneği, "gevrekler" olarak bilinen enjekte edilen (F0) embriyoların somatik dokularındaki embriyonik fenotipleri taramak için kullanılmıştır5,6,7,8,9,10. Crispant tekniği, somatik hücrelerdeki aday genlerin kaynak verimli bir şekilde taranmasına izin verir ve gelişimdeki belirli yönlerin anlaşılmasını kolaylaştırır. Bu yazıda açıklanan protokol, anne-etki fenotiplerinin veya "maternal gevreklerin" tek bir nesil11'de tanımlanmasına izin vermektedir. Bu şema, kılavuz RNA'ları tek bir gene çoklayarak ve germ hattındaki bialelik düzenleme olaylarını teşvik ederek elde edilebilir. Bu maternal gevrek embriyolar brüt morfolojik fenotiplerle tanımlanabilir ve hücre sınırları için etiketleme ve DNA modellemesi11 gibi birincil karakterizasyona tabi tutulur. Gözlemlenebilir fenotipin ve indüklenen INDELL'lerin temel moleküler karakterizasyonunun kombine analizi, hedeflenen genin erken gelişimdeki rolünün tahmin edilmesini sağlar.

Zebra balığında, döllenme sonrası ilk 24 saat (hpf) sırasında, küçük bir hücre grubu, germ hattı12,13,14,15'in öncüsü olan ilkel germ hücrelerine dönüşür. F0 dişileri tarafından yerleştirilen debriyajlarda, geri kazanılan maternal gevrek embriyoların oranı, hedeflenen gende kaç germ hücresinin bialelik bir düzenleme olayı içerdiğine bağlıdır. Genel olarak, embriyoda düzenleme olayı ne kadar erken gerçekleşirse, germ hattında CRISPR-Cas9 mutasyonlarının gözlenme olasılığı o kadar yüksek olur. Çoğu durumda, maternal gevrek embriyoların fenotipleri, gelişmekte olan oositte bulunan iki maternal aleldeki fonksiyon kaybından kaynaklanır. Oosit mayozu bitirdiğinde, maternal alellerden biri embriyodan polar cisim yoluyla ekstrüde edilirken, diğer alel maternal pronükleusa dahil edilir. Çoklu maternal gevrek haploidlerin dizilimi, fenotip-11'e katkıda bulunan germ hattında bulunan mutasyonların (eklemeler ve / veya delesyonlar (INDEL'ler)) bir karışımını temsil edecektir.

Aşağıdaki protokol, maternal etki genlerinde CRISPR-Cas9 mutasyonları oluşturmak ve maternal crispant yaklaşımı kullanarak karşılık gelen fenotipi tanımlamak için gerekli adımları açıklamaktadır (Şekil 1). Birinci bölüm, kılavuz RNA'ların etkili bir şekilde nasıl tasarlanacağını ve oluşturulacağını açıklarken, ikinci ve üçüncü bölümler mikroenjeksiyonla maternal gevreklikler oluşturmak için kritik adımlar içermektedir. CRISPR-Cas9 karışımı enjekte edildikten sonra, enjekte edilen embriyolar PCR (bölüm dört) aracılığıyla somatik düzenlemeler için taranır. Enjekte edilen F0 embriyoları geliştikten ve cinsel olgunluğa ulaştığında, F0 dişileri vahşi tip erkeklere geçirilir ve yavruları annelik etkisi fenotipleri için taranır (beşinci bölüm). Altıncı bölüm, CRISPR-Cas9 kaynaklı INDEL'leri tanımlamak için Sanger dizilimi ile birleştirilebilen maternal gevrek haploidlerin yapımına ilişkin talimatları içermektedir. Ek olarak, Tartışma, bu yöntemin duyarlılığını ve gücünü artırmak için protokolde yapılabilecek değişiklikler içerir.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Protokol

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Bu protokolün geliştirilmesine yol açan çalışmalarda, tüm zebra balığı barınma ve deneyleri Wisconsin-Madison Üniversitesi Kurumsal Hayvan Bakımı ve Kullanımı Komitesi (IACUC-M005268-R2) tarafından onaylanmıştır.

1. Kılavuz RNA'ların Sentezi

NOT: Zigotik gevrekler, tek bir kılavuz RNA kullanılarak veya çoklu kılavuz RNA'ları tek bir hedefe 5,6,7,8,9,10 olarak çoğaltarak oluşturulmuştur. Kılavuz RNA'ların çoklanması, zigotik gevrek fenotip10 gösteren embriyoların yüzdesini arttırır. Fenotip sergileyen embriyoların bu artan sıklığı nedeniyle, maternal gevrekler, dört kılavuz RNA'nın tek bir gene kopyalanmasıyla oluşturulur. Kılavuz RNA'ları tasarlamak için CHOPCHOP'u kullanma konusunda daha ayrıntılı bir protokol ve zebra balığı için kılavuz RNA'ları sentezlemek için bir tavlama yöntemi16,17,18,19,20 başka bir yerde bulunabilir.

  1. Hedeflenecek anne tarafından eksprese edilen bir geni tanımlamak için, gelişim sırasında mRNA transkript seviyelerini, zigottan 5 gün21'e kadar transkriptom bilgisi sağlayan bir RNA dizisi veritabanı aracılığıyla tespit edin. Genel olarak, anneye özgü genler erken embriyoda yüksek oranda eksprese edilir ve zigotik genom aktive edildikten sonra parçalanır22.
  2. Anne tarafından ifade edilen bir hedef gen tanımlandıktan sonra, Ensembl genom tarayıcısı23'te bulunan "etki alanları ve özellikler" bölümünü kullanarak ilk tahmin edilen protein alanını belirleyin. Bu etki alanını dört kılavuz RNA için hedef bölge olarak kullanın.
  3. İlk aktif alandaki dört kılavuz RNA hedef bölgesini tanımlamak için kılavuz RNA seçim programı CHOPCHOP'u kullanın. Her hedef bölge için aşağıda gösterildiği gibi gene özgü oligonükleotidler tasarlayın. Gen-spesifik oligonükleotidde, N20 bölümü, CHOPCHOP'dan PAM bölgesi (NGG) eksi hedef diziye karşılık gelir. Bu gen-spesifik oligonükleotidleri ve standart tuzdan arındırma saflaştırmasını kullanarak sabit oligonükleotidi sipariş edin (bakınız Malzeme Tablosu).
    Gen-spesifik oligonükleotid:
    5' TAATACGACTCACTATA- N20 -GTTTTAGAGCTAGAAATAGCAAG 3'
  4. Her bir gen-spesifik oligonükleotid için bir kılavuz RNA şablonu oluşturmak için, onu sabit oligonükleotidi tavlayın ve çıkıntıları daha önce tarif edildiği gibi T4-DNA polimeraz ile doldurun16. Dört kılavuz RNA şablonu bir araya getirildikten sonra, üreticinin talimatlarına göre bir DNA temizleme ve yoğunlaştırıcı kiti kullanarak bunları saflaştırın ve konsantre edin (bkz.
  5. Bir in vitro T7 transkripsiyon kiti kullanarak havuzlanmış kılavuz RNA şablonundan sgRNA karışımını sentezleyin (bkz. İn-vitro transkripsiyonu üreticinin talimatlarına göre gerçekleştirin. T7 Transkripsiyon kitinin yarı reaksiyonlarının kullanılması, reaksiyon başına maliyeti azaltabilir.
  6. RNA sentezinden sonra, daha önce tarif edildiği gibi bir etanol / amonyum asetat protokolü kullanarak ortaya çıkan sgRNA havuzunu saflaştırın 16,20,24. RNA izole edildikten sonra, 20 μL nükleaz içermeyen suda tekrar askıya alın. T7 Transkripsiyon kitinin yarı reaksiyonları sgRNA havuzunu transkripte etmek için kullanılmışsa, saflaştırılmış RNA'yı 10-15 μL nükleaz içermeyen suya yeniden askıya alın.
  7. Bir spektrofotometre kullanılarak oluşturulan havuzlanmış sgRNA'ların miktarını ölçün. Nükleaz içermeyen sudaki sgRNA havuzunu 1500 ng / μL ± 500 ng / μL'lik bir seyreltmeye seyreltin. tipik olarak, çalışma seyreltmesinin son hacmi 30-50 μL arasında değişir.
  8. SgRNA havuzunun konsantrasyonunu belirledikten sonra,% 1'lik bir agaroz jeli üzerindeki sgRNA'ların bütünlüğünü doğrulayın.
    1. % 1 agaroz / 0.5 μg / mL ethidyum bromür / TBE jeli dökün. Jel katılaştıktan sonra, TBE çalışma tamponuna yerleştirin.
    2. 1 μL sgRNA karışımı ve 1 μL RNA jel yükleme tamponu karıştırın (bkz. Bu numuneyi jele yükleyin ve jeli 5 dakika boyunca 100 V'ta çalıştırın.
  9. Ultraviyole (UV) ışık kullanarak bantları görselleştirin. SgRNA havuzu tek bir bant olarak görünmelidir. Bir yayma gözlenirse, RNA bozulması muhtemelen meydana gelmiştir.
  10. SgRNA havuzunu -80 °C dondurucudaki nükleaz içermeyen PCR şerit tüplerinde tek kullanımlık 1 μL alikotlarda saklayın. Büyük hacimli sgRNA karışımı (30 μL veya daha fazla) için, hacmin yarısını nükleaz içermeyen PCR şerit tüplerine aliquot edin ve diğer yarısını nükleaz içermeyen bir mikrosantrifüj tüpünde daha büyük bir hacim olarak saklayın. Gerektiğinde çözülün ve aliquot.
  11. RNA bozulmasını önlemek için, mikrosantrifüj tüpündeki numunelerin ikiden fazla donma-çözülme döngüsüne maruz kalmadığından emin olun.

2. Mikroenjeksiyon için reaktiflerin ve malzemelerin hazırlanması

NOT: Zebra balığında, Cas9 mRNA enjeksiyonu zigotik gevrekler oluşturabilir. Bununla birlikte, çalışmalar Cas9 proteininin enjekte edilen embriyolarda INDEL oluşturmada daha etkili olduğunu göstermiştir16,25. Bu protokol, maternal gevrekler üretmek için Cas9 proteinini kullanır, çünkü bu protein enjekte edilen Cas9 mRNA ile aktivitede aynı gecikmeyi yaşamaz. Teorik olarak, bu, gelişimin erken dönemlerinde bialelik bir mutasyon olasılığını arttırmalı, bu da germline'ın daha geniş bir bölümünün etkilenme şansının artmasına neden olmalıdır. Mikroenjeksiyonlara nasıl hazırlanılacağını detaylandıran diğer protokoller ve kaynaklar başka bir yerde bulunabilir24,26.

  1. Cas9 proteini satın alın veya üretin (bkz. Cas9 proteinini nükleaz içermeyen suda yeniden askıya alarak 2 mg/mL'lik bir çözelti ve RNaz içermeyen polipropilen mikrosantrifüj tüplerine 1 μL alikot yapın. Bunları -80 °C'de tek kullanımlık tüpler olarak saklayın.
  2. Enjeksiyondan önceki öğleden sonra, bir cam kılcal damarı çekmek ve bir enjeksiyon iğnesi oluşturmak için bir mikropipet çektirici kullanın. Kırılmamış iğneyi, mikroenjeksiyon sabahına kadar kapalı bir iğne tutucuda saklayın.
  3. Bir enjeksiyon plakası oluşturmak için, 100 mm X 15 mm Petri kabının yarısını doldurmak için20mL% 1,5 agaroz / steril H 2 O dökün ve katılaşmasını bekleyin. Agaroz çözeltisi ayarlandıktan sonra, Petri kabına 20 mL% 1.5 agaroz / steril H2O ekleyin ve plastik kalıbı ( Malzeme Tablosuna bakınız) sıvı agarozun içine yerleştirin ve sertleşmesine izin verin.
  4. Agaroz sertleştikten sonra, plastik kalıbı çıkarın ve enjeksiyon plakasını enjeksiyon sabahına kadar buzdolabında baş aşağı saklayın. Kuyular bütünlüklerini koruduğu sürece çoklu enjeksiyonlar için tek bir plaka kullanılabilir.

3. Maternal gevrekler üretmek için CRISPR-Cas9 kokteylinin tek hücreli zebra balığı embriyosuna mikroenjeksiyonu

NOT: Zebra balığı embriyolarına mikroenjeksiyon için daha fazla kaynak başka bir yerde bulunabilir24,26,27. CRISPR-Cas9 karışımının tek hücreli embriyoların gelişmekte olan blastodiskine enjekte edilmesi, maternal gevrekler oluşturma olasılığını artırabilir. Karışım ayrıca 2 hücreli aşamaya kadar yumurta sarısı kesesine enjekte edilebilir. Bununla birlikte, yumurta sarısına enjekte edilen karışımlar, blastodiske ulaşmak için ooplazmik akışa bağlıdır, bu nedenle yumurta sarısına enjekte edilen CRISPR-Cas9, CRISPR-Cas928'in kesme verimliliğini azaltabilir.

  1. Mikroenjeksiyonlardan önceki öğleden sonra, zebra balığı çiftleşme kutularında vahşi tip haçlar kurun. Hem erkek hem de dişi balıkları aynı tankta tutun, ancak bir çiftleşme kutusu bölücüsü ile ayırın veya dişiyi yumurtlayan bir ekin içine yerleştirin.
  2. Deneyin sabahında, Cas9 proteininden bir adet 2 mg/mL aliquot ve sgRNA havuzundan bir aliquot alın. Cas9 proteinini içeren RNaz içermeyen polipropilen mikrosantrifüj tüpünde, sgRNA havuzunu, 1 μL% 0.5 fenol kırmızı çözeltisini ve nükleaz içermeyen suyu içeren 5 μL'lik bir enjeksiyon karışımı oluşturun. RNaz içermeyen suda 400 ng / μL Cas9 proteininin ve 200 ng / μL'lik havuzlanmış sgRNA'ların nihai konsantrasyonunu veya enjekte edilen embriyodaki Cas9 proteininin sgRNA'lara 2: 1 oranını hedefleyin. Bu enjeksiyon karışımı, enjeksiyon sabahı için buz üzerinde saklanabilir.
  3. Bir enjeksiyon plakasını buzdolabından çıkarın ve en az 20 dakika boyunca oda sıcaklığına (RT) ısınmasına izin verin.
  4. Enjeksiyon kokteyli monte edildikten sonra, erkek ve dişinin çiftleşmesine izin verin, örneğin, çiftleşme kutusu bölücüsünü çıkararak veya erkeği dişiyle aynı yumurtlama ekine yerleştirerek, uygun şekilde.
  5. Balıklar serildikten sonra, ancak embriyolar toplanmadan önce, embriyo hasarını önlemek için yeterince küçük bir deliğe sahip ancak enjeksiyon karışımı ile tıkanmayacak kadar geniş bir iğne oluşturmak için yeni bir tıraş bıçağı veya ince forseps kullanarak kırılmamış bir iğnenin ucunu kesin. İğne kesildikten sonra, kılcal damarın arka ucuna yerleştirilmiş bir mikro yükleyici pipet ucu kullanarak iğneyi enjeksiyon karışımıyla yükleyin (bkz.
  6. İğne doldurulduktan sonra, Cas9-sgRNA komplekslerini birleştirmek için iğneyi RT'de 5 dakika inkübe edin.
  7. Mikroenjektörü açın ve iğneyi mikromanipülatöre yerleştirin. Bir mikrometre sürgüsüne bir damla mineral yağ yerleştirin ve iğne mineral yağa 1 nL'lik bir bolus çıkarana kadar enjeksiyon basıncını ayarlayarak iğneyi kalibre edin.
    NOT: Mineral yağa enjekte edilirken, 1 nL'lik bir bolus, mikrometre kızağı ile ölçüldüğü gibi yaklaşık 0,125 mm (veya 0,062 mm yarıçap) çapa sahip olacaktır.
  8. Embriyoları senkronize etmek için, plastik bir süzgeç kullanarak 10 dakika sonra toplayın ve 1x E3 ortamı (5 mM NaCl, 0.17 mM KCl, 0.33 mM CaCl2, 0.33 mM MgSO4) kullanarak bir Petri kabında durulayın ve 1 L'lik 1x E3 başına 20 μL 0.03 M Metilen Mavisi ekleyin. 10-15 embriyoyu çıkarın ve enjekte edilmemiş kontroller olarak tutulmak üzere ayrı bir Petri kabına yerleştirin.
  9. Gelişmekte olan embriyoların geri kalanını enjeksiyon plakasının kuyucuklarına aktarın.
  10. Tek hücreli bir embriyonun gelişmekte olan blastodiskine 1 nL çözelti (toplam 400 pg Cas9 proteini ve 200 pg sgRNA) enjekte edin. İğnenin ucu tıkanırsa, ucu geri kırmak için forseps kullanın ve 1 nL'lik bir bolusu çıkarmak için iğneyi yeniden kalibre edin. Döllenmeden sonraki gelişimin ilk 40 dakikasında tüm embriyoları enjekte ettiğinizden emin olun.
  11. Enjeksiyon tamamlandıktan sonra, enjekte edilen embriyoları 1x E3 ortamı içeren etiketli bir Petri kabına geri koyun ve gün boyunca gelişmelerine izin verin. Zebra balığı evreleme serisi29'a göre döllenmemiş veya normal şekilde gelişmemiş embriyoları çıkarın.

4. F0 enjekte edilen embriyolarda somatik INDEL taraması

NOT: T7 endonükleaz I testi veya yüksek çözünürlüklü erime analizi gibi INDEL'leri tanımlamak için diğer yöntemler, embriyoların somatik INDEL 30 içerip içermediğini belirlerken kullanılabilir.

  1. Enjeksiyonlardan sonraki ertesi gün, Petri kabından kusurlu ve lize olmuş embriyoları çıkarın ve embriyo sağlığını korumak için 1x E3 ortamını değiştirin.
  2. Çanağı temizledikten sonra, enjekte edilmemiş plakadan altı sağlıklı enjeksiyonlu embriyo ve iki kontrol embriyosu toplayın. Her embriyoyu ayrı ayrı bir PCR şerit tüpünün tek bir kuyucuğuna yerleştirin ve tüplerin üstünü etiketleyin.
  3. Tek tek embriyoların genomik DNA'sını çıkarmak için, fazla E3 ortamını şerit tüpünün kuyucuklarından çıkarın ve kuyu başına 100 μL 50 mM NaOH ekleyin.
  4. Embriyoları 20 dakika boyunca 95 ° C'de inkübe edin. Daha sonra numuneleri 4 °C'ye kadar soğutun, 10 μL 1 M Tris HCL (pH 7.5) ekleyin ve 5 ila 10 sn boyunca vorteks yapın. Bu ekstrakte edilen DNA, önemli DNA bozulması olmadan en az 6 ay boyunca -20 ° C'de saklanabilir.
  5. CRISPR-Cas9 hedef bölgesini içeren 100-110 bp DNA parçasını yükseltmek için her kılavuz site için benzersiz tarama primerleri tasarlayın. Mümkünse, hedef siteyi güçlendirilmiş parçanın ortasına yerleştirin ve daha büyük silmelerin tanımlanmasına izin verin.
  6. Dört kılavuz hedef bölgenin her biri için, hazırlanan tek embriyolu genomik DNA'nın 5 μL'sini, PCR karışımını ve hedef bölgedeki somatik mutasyonları tanımlamak için kılavuza özgü tarama primerlerini kullanarak sekiz adet 25 μL PCR reaksiyonu ayarlayın (Tablo 1).
  7. Yaklaşık 0,625 cm genişliğinde kuyucuklar oluşturan taraklar kullanarak %2,5 agaroz/0,5 μg/mL ethidyum bromür/TBE jeli dökün. Bu geniş tarak, genomik dizideki boyut değişikliklerini tespit ederken daha iyi çözünürlük sağlar. Jel katılaştıktan sonra, TBE çalışma tamponu içeren bir elektroforez odasına yerleştirin.
  8. PCR ürününe 5 μL 6x yükleme boyası ekleyin ve bu karışımın 25 μL'sini jele yükleyin. Enjekte edilen ve kontrol edilen numunelerin jelin aynı sırası üzerinde çalıştırıldığından emin olun. Tüm numuneler yüklendikten sonra, jel kutusunun pozitif ucuna 1 L TBE çalışma tamponu başına 5 μL ethidyum bromür ekleyin.
  9. DNA bantları çözülene veya DNA şeridin sonuna yaklaşana kadar jeli 120 V'ta çalıştırın. Cas9 hedef bölgede INDEL oluşturduysa, enjekte edilen numunelerde tipik olarak bir yayma gözlenir, ancak kontrollerde gözlenmez.
  10. Dört kılavuz RNA ile enjekte edilen embriyolardaki dört kılavuz bölgeden en az üçünde smear gözlenirse, kardeş enjekte edilen embriyoları büyütün.
  11. Enjekte edilen numuneler gerekli sayıda kılavuz bölgesinde yayma içermediğinde, çalışmayanların yerini almak için yeni kılavuz RNA'lar tasarlayın ve işe yarayanları ve yeni tasarlananları içeren yeni bir kılavuz RNA havuzu oluşturun. Yeni havuzu yukarıda açıklandığı gibi somatik INDEL'ler için enjekte edin ve test edin.

5. Maternal gevrek embriyolarda maternal etki fenotiplerinin tanımlanması

NOT: Enjekte edilen F0 dişileri cinsel olgunluğa ulaştıktan sonra, germline hücreleri maternal gevrek ve vahşi tip embriyoların bir karışımını üretme potansiyeline sahiptir. Bu karışım döllenme ve gelişimsel zamanlama için iç kontrollere izin verse de, F0 dişisinden bir debriyajın sadece maternal gevrek embriyolar içermesi durumunda harici bir kontrol olarak vahşi tipte bir çaprazlama kurmak hala faydalıdır.

  1. Deneyden önceki öğleden sonra, F0 enjekte edilen dişileri vahşi tip erkeklere karşı ayarlayın ve standart zebra balığı çiftleşme kutularında vahşi tip haçları kontrol edin. Hem erkek hem de dişi balıkları aynı tanka yerleştirin, ancak çiftleşme kutusu bölücüsü ile ayırın veya dişiyi yumurtlayan bir ekin içine yerleştirin.
  2. Deneyin sabahında, erkek ve dişinin çiftleşmeye başlamasına izin verin, örneğin çiftleşme kutusu bölücüsünü çıkararak veya erkeği dişi ile aynı yumurtlama ekine yerleştirerek.
  3. Yumurtlama ekini taze sistem suyu içeren yeni bir çiftleşme tankı tabanına hareket ettirerek embriyoları her 10 dakikada bir toplayın ve tankı bireysel F0 dişisini tanımlayan bir etiketle etiketleyin. Eski çiftleşme tankını alın ve embriyoları 10 dakikalık bir debriyajdan toplamak için suyu bir çay süzgecinden dökün.
  4. Tek bir 10 dakikalık debriyajdan elde edilen embriyolar süzgeçte toplandıktan sonra, bunları 1x E3 ortamı içeren bir Petri kabına aktarın. Petri kabını toplama zamanı ve balık bilgileriyle etiketleyin.
  5. İletilen bir ışık kaynağı ile diseksiyon yapan bir mikroskop altında, ilk 6-8 saat boyunca her saat başı ve sonraki 5 gün boyunca günlük olarak gelişim gösteren embriyoları gözlemleyin.
  6. Potansiyel maternal gevrek embriyoları, zaman uyumlu vahşi tip kontrollere kıyasla gelişimlerindeki brüt morfolojik değişikliklerle tanımlayın29.
  7. Potansiyel maternal gevrek embriyoları, 1x E3 ortamı ve 24 hpf'de morfolojik fenotip ve döllenmeden sonraki 5 günde canlılık (örneğin, yüzme mesanesi şişirmesi) için tahlil içeren bir Petri kabına taşıyın.

6. Maternal gevrek haploidlerde dizileme alelleri

NOT: Maternal gevrek haploidler, hedeflenen lokusta tek bir alel içerir ve Sanger dizilimi yoluyla hedef gendeki INDEL'lerin tanımlanmasına izin verir. Maternal gevrek haploid embriyoları da yeni nesil dizileme testleri kullanılarak analiz edilebilir. Maternal gevrek fenotip gösteren embriyoların dört hedef bölgeden en az birinde lezyon taşıması beklenmektedir (Bkz. Tartışma).

  1. Deneyden önceki öğleden sonra, maternal gevrek embriyolar ürettiği bilinen F0 dişi çiftlerinin çiftleşmesi, vahşi tip erkeklere geçti. Vahşi tip erkekleri bir çiftleşme kutusu bölücü kullanarak dişilerden fiziksel olarak ayrı tutun veya dişi yumurtlama ekine yerleştirin.
  2. Deneyin sabahında, fiziksel bölümü çıkarın veya çiftleşmeyi başlatmak için hem erkekleri hem de dişileri yumurtlama ekinin içine yerleştirin. Yumurtlamanın ilk belirtisinde, erkek ve F0 dişilerini ayırarak üremeyi kesin. Her ayrılmış F0 dişisini ayrı ayrı çiftleşme kutularında saklayın.
  3. Dahaönce tarif edildiği gibi bir dişiden ekstrüde yumurtaları döllemek için yeterli olan Hank çözeltisinin her 100 μL'si için bir vahşi tip erkekten testisler kullanarak UV ile muamele edilmiş sperm çözeltisi hazırlayın (Tablo 2).
  4. Önceden seçilmiş F0 dişilerinden olgun yumurtaları manuel olarak ekstrüzyon yapın ve UV ile tedavi edilmiş sperm31'i kullanarak in vitro fertilizasyon (IVF) gerçekleştirin.
  5. İn vitro fertilizasyondan sonra, maternal gevrek fenotip gözlenene kadar haploid embriyoların gelişmesine izin verin ve bu embriyoları farklı bir Petri kabına yerleştirin.
  6. Maternal gevrek haploid embriyolar tanımlandıktan sonra, döllenme sonrası en az 6 saat boyunca gelişmelerine izin verin.
  7. Genomik DNA'yı en az on maternal gevrek haploid embriyodan çıkarmak için, tek bir haploid embriyoyu bir PCR şerit tüpünün bireysel bir kuyucuğuna yerleştirin, fazla E3 ortamını kuyudan çıkarın ve 50 μL 50 mM NaOH ekleyin.
  8. Embriyoları 20 dakika boyunca 95 ° C'de inkübe edin. Daha sonra numuneleri 4 °C'ye kadar soğutun, 5 μL 1 M Tris HCL (pH 7.5) ekleyin ve 5-10 sn vorteks ekleyin. Ekstrakte edilen DNA, 6 aya kadar -20 ° C'de saklanabilir.
  9. Hangi kılavuz bölgelerinin INDEL içerdiğini belirlemek için, dört CRISPR-Cas9 hedef bölgesinin tümünü içeren bir DNA parçasını yükseltmek için dizileme primerleri tasarlayın. Bu sıralama primerleri, birden fazla kılavuz alanına yayılan INDEL'lerin tanımlanmasına izin verir.
  10. Hazırlanan genomik DNA'nın 5 μL'sini ve dizileme primerlerini kullanarak embriyo başına iki adet 25 μL PCR reaksiyonu ayarlayın.
  11. PCR bittikten sonra, bir DNA temizleme ve yoğunlaştırıcı kiti kullanarak iki numuneyi saflaştırın ve konsantre edin (bkz. Daha sonra DNA fragmanını hem ileri hem de geri dizileme primerlerini kullanarak Sanger dizilimine gönderin.
  12. Haploid maternal gevrek parça sıralandıktan sonra, onu vahşi tip diziye hizalayın ve bir dizi hizalama programı kullanarak hedef bölgelerdeki INDEL'leri tanımlayın.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Bu protokolde açıklanan deneysel yaklaşım, maternal etki fenotiplerinin hızlı, kaynak verimli bir şekilde tanımlanmasını sağlar (Şekil 1).

Maternal gevrekliklerin üretilmesi:
Dört kılavuz RNA'yı tek bir aday anne-etki genini hedefleyecek şekilde tasarlarken, kılavuz RNA'ların DNA'ya bağlanacağı yere özel dikkat gösterilmelidir. Genel olarak, hepsi ilk tahmin edilen protein alanının başlangıcında kılavuz RNA'lar arasında en az örtüşen bölgeler v...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Bu makalede sunulan protokol, hem ileri hem de geri genetik teknikler için gerekli olan çoklu nesiller yerine, tek bir nesilde bir anne-etkili fenotipin tanımlanmasına ve birincil moleküler karakterizasyonuna izin vermektedir. Şu anda, annelik tarafından ifade edilen birçok genin rolü bilinmemektedir. Bu bilgi eksikliği kısmen, anne-etki genlerini tanımlarken bir fenotipi görselleştirmek için gereken ekstra üretimden kaynaklanmaktadır. Geçmişte, zebra balığında anne-etkisi genlerinin hızlı bir şekilde tanımlanması, trans...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Yazarlar rakip finansal çıkarlar olmadığını beyan ederler.

Teşekkürler

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Geçmişteki ve şu anki Pelegri laboratuvarı hayvancılık personeline su tesislerine gösterdikleri özen için teşekkür ederiz. Ayrıca Ryan Trevena ve Diane Hanson tarafından el yazması hakkındaki yorumlar ve içgörüler için minnettarız. Finansman F.P.'ye NIH hibesi ile sağlandı (GM065303)

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
1 M Tris-HCl (pH 8.4)Invirogen15568025PCR karışımı için
1.5 mL Eppendorf TüpleriHerhangi Bir Yapıcı
10 mM dNTP'lerThermo Fischer Bilimsel18427013gRNA
100 BP merdiveniJel elektroforezi içinHerhangi Bir Yapıcı
%100 RNAse içermeyen etanolHerhangi Bir Yapıcı
%100 RNAse ücretsiz etanolHerhangi Bir Yapıcı
100ml BeherIVF içinHerhangi Bir Yapıcı
5 M Amonyum AccetateThermo Fischer BilimselMEGAshortscript T7 Transkripsiyon Kitinde BulundugRNA Sentezi
% 70 etanolgRNA sentezi (70 mL etanol + 30 mL   nükleaz içermeyen su)
Borosil 1.0 mm OD x 0.5 mm IDFHC INC27-30-1Mikroenjeksiyon
Toplu İlaç için Sodyum Bikarbonat 35 poundToplu Resif Kaynağı255Balık malzemeleri
CaCl2MiliporeSigmaC7902
Cas9 Proteini, NLS'liPNABioCP01
ChopChophttps://chopchop.cbu.uib.no/
Sabit oligonükleotidEntegre DNA Teknolojiler (IDT)AAAAGCACCGACTCGGTGCCAC
TTTTTCAAGTTGATAACGGACTA
GCCTTATTTTAACTTGCTATTTC
Tüp
içinDepresyon CamPlaka Thermo Fischer Scientific13-748B
Tüp Bebek Diseksiyon ForsepsDumontSS
Tüp
Bebek için Diseksiyon Makası Güzel Bilim Araçları 14091-09Diseksiyon Steroskopu (iletilen ışık kaynağı ile)IVFHerhangi Bir Yapıcı
Yoğunlaştırıcı -5Zymo ResearchD4014gRNA DNA Jel Yükleme Boyasının Sentezi
(6x)Jel elektroforezi içinHerhangi Bir Yapıcı
EconoTaq DNA PolimerazLucigen30032-1PCR karışımı için
Elektroferez Güç KaynağıJel elektroforezi içinHerhangi Bir Yapıcı
Toplulukhttps://useast.ensembl.org/index.html
Eppendorf  Femtojet Mikroenjektör için Femtotips Mikro Yükleyici İpuçlarıThermo Fischer Mikroenjeksiyon
için Bilimsel E5242956003 Etanol (200 geçirmez, nükleaz içermez)Any Maker
FemtoJet 4iEppendorf5252000021Mikroenjeksiyon
Balık AğıHerhangi Bir MakerBalık malzemeleri
Dondurulmuş Salamura KaridesSalamura Karides DoğrudanBalık malzemeleri
Genel Çok Amaçlı AgarozJel elektroforezi içinHerhangi Bir Yapıcı
Gene Spesifik oligonükleotidEntegre DNA Teknolojileri (IDT)TAATACGACTCACTATA- N20 -GTTTTAGAGCTAGAAATAGCAAG
EldivenHerhangi Bir Yapıcı
Buz KovasıHerhangi Bir Yapıcı
Anında Okyanus tuzuHerhangi Bir YapıcıBalık malzemeleri
Invitrogen UltraPure Etidyum Bromür, 10 mg / mLThermo Fischer Scientific15-585-011
KClMiliporeSigmaP5405
KH2< / sub>PO4< / sub>MiliporeSigma7778-77-0
KimwipesThermo Fischer Scientific06-666
Erkek & Dişi zebra balığı
MEGAshortscript T7 Transkripsiyon KitiThermo Fischer ScientificAM1354gRNA
Metilen MavisiThermo Fischer BilimselAC414240250
2< / sub>MiliporeSigma7791-18-6PCR karışımı için
MgSO2· 7H2OMiliporeSigmaM2773
Mikroenjeksiyon plastik kalıpDünyası Hassas AletlerMikroenjeksiyonZ-Kalıpları
Mikroenjeksiyon için Herhangi Bir YapıcıMikropipetleyiciler için
Herhangi Bir Maker
Mikropipet ÇektirmeSutterP-87
Filtreli mikropipetleyici uçları (tüm boyutlar)Filtresiz herhangi bir Maker
Micropippetter uçları (tüm boyutlar)Mikroenjeksiyon
Maker
Mikrodalga Mineral YağMiliporeSigmam5904-5ml
(Trikain-D)Herhangi bir MakerFDA onaylı
Na2 HPO4>MiliporeSigmaS3264
NaClMiliporeSigmaS5886
NaHC03MiliporeSigmaS5761
NanodropHerhangi Bir Yapıcı
NaOHMiliporeSigma567530
Yapışmaz, RNaz İçermeyen Mikrofüj Tüpleri, 1.5 mLAmbionAM12450gRNA
nükleaz içermeyen suHerhangi Bir Yapıcı
KağıtHavlu Herhangi Bir Yapıcı
Pastro PipetlerHerhangi Bir Yapıcı
PCR Şerit TüpleriHerhangi Bir Yapıcı
Petri Plakaları 100 mm çapHerhangi Bir Yapıcı
Fenol Kırmızısı çözeltisiMiliporeSigmaP0290Mikroenjeksiyon
Plastik HaşerelerVWR47747-358Tüp Bebek
Plastik KaşıkHerhangi Bir YapıcıIVF
Premium Sınıf Salamura Karides YumurtalarıSalamura Karides Doğrudanİnce Mesh
RNA Jel Yükleme BoyasıMEGAshortscript T7 Transkripsiyon Kitinde bulunduJel elektroforezi
için RNAse AWAYThermo Fischer Scientific21-402-178
ÖlçekHerhangi Bir
Maker SharpieHerhangi Bir Maker
  SpatulaHerhangi Bir Yapıcı
Steril H2OPCR karışımı içinHerhangi Bir Yapıcı
T4 DNA PolimerazNEBM0203gRNA Sentezi
BantHerhangi Bir Yapıcı
TBE (Tris-Borat-EDTA) 10xJel elektroforezi içinHerhangi Bir Yapıcı
Çay LekeleyiciAmazonIMU-71133WBalık malzemeleri
Thermo Scientific Owl 12 Dişli Tarak, 1.0/1.5 mm Kalınlık, B2 için Çift TaraflıThermo Fischer ScientificB2-12Jel elektroforezi için
Thermo Scientific  Owl EasyCast B2 Mini Jel Elektroforez SistemleriThermo Fischer Scientific09-528-110BJel elektroforezi için
ThermocyclerAny Maker
ThermocyclerAny Maker
TransilluminatorAny Maker
UV lambasıUVPModel XX-15 (Cat NO. UVP18006201)IVF
UV güvenlik gözlükleriTüpHerhangi Bir Yapıcı
Thermo Fischer ScientificS39015Balık malzemeleri
Zebra balığı çiftleşme kutularıAqua SchwarzSpawningBox1Balık malzemeleri
1.5ml Eppendorf TüpleriFisher Scientific05-402-11
10 Molar dNTPThermo Fischer Scientific18427013
100 BP merdivenThermo Fischer Scientific15628019
%100 RNAse içermeyen etanolherhangi bir yapıcı
5m Amonyum AccetateThermo Fischer Scientific
%70 Etanol70ml etanol ve 30 ml nükleaz içermeyen su
Yatay Jel Kutusu için AksesuarlarFisher Scientific0.625 mm
Agarozherhangi bir yapıcı
CaCl2Sigma10043-52-4
CaCl2, dihidratSigma10035-04-8E3 Orta Kılcal
BoruCole-ParmerUX-03010-68enjeksiyon iğneleri için
Cas9 ProteinThermo Fischer ScientificA36496
ChopChophttps://chopchop.cbu.uib.no/
Bilgisayarherhangi bir yapımcı
Diseksiyon Forceptsherhangi bir maker
Diseksiyon Mikroskobuherhangi bir maker
Diseksiyon Makasıherhangi bir maker
DNA Temiz & Yoğunlaştırıcı -5Zymo ResearchD4014
DNA Jel Yükleme Boyası (6X)Thermo Fischer ScientificR0611
EconoTaq DNA PolimerazLucigen30032-1
Ensemblehttps://useast.ensembl.org/index.html
Eppendorf Microloader Pipet UçlarıFischer Scientific1028965120 mikrolitre
Etanol (200 geçirmez, nükleaz içermez)herhangi bir yapımcı
Etidyum BromürThermo Fischer Scientific15585011
Balık Ağıherhangi bir yapımcıince örgü
Dondurulmuş Salamura KaridesLiveAquariaCD-12018balık yemi
Jel Tarak (0.625mm)herhangi bir yapımcı
Jel Elektroferez Sistemiherhangi bir yapımcı
Gen Spesifik OligonükleotidEntegre DNA Teknolojileri (IDT)
Cam Kapiller İğneGrainger21TZ99https://www.grainger.com/product/21TZ99?ef_id=Cj0KCQjw8Ia
GBhCHARIsAGIRRYpqsyA3-LUXbpZVq7thnRbroBqQTbrZ_a88
VVcI964LtOC6SFLz4ZYaAhZzEAL
w_wcB:G:s& s_kwcid=AL!2966!3!
264955916096!!! g!438976
780705!& gucid=N:N:PS:Ödenen
:GGL:CSM-2295:4P7A1P:20501
231& gclid=Cj0KCQjw8IaGBh
CHARIsAGIRRYpqsyA3-LUXbp
ZVq7thnRbroBqQTbrZ_a88VVcI
964LtOC6SFLz4ZYaAhZzEALw
_wcB& gclsrc=aw.ds
Cam Tabaklarherhangi bir yapıcı
Eldivenherhangi bir yapımcı
Hank'in Son Çalışma Çözümü9.9 ml Hank's Premix'i 0.1 ml HS Stock #6 ile birleştirin
Hank's Premixaşağıdakileri sırayla birleştirin: (1) 10.0 ml HS #1, (2) 1.0 ml HS#2, (3) 1.0 ml HS#4, (4) 86 ml ddH2O, (5) 1.0 ml HS#5. Tüm HS Solosyonlarını 4C'de saklayın
Hanks Çözümü
Hank'in Çözümühttps://www.jove.com/pdf-materials/51708/jove-materials-51708-production-of-haploid-zebrafish-embryos-by-in-vitro-fertilization
Hank'in Stok Çözümü #18.0 g NaCl, 0.4 g KCl 100 ml ddH2O
içinde Hank'in Stok Çözümü #20.358 g Na2HPO4 susuz; 0.60 g K2H2PO4 içinde 100 ml ddH2O
Hank'in Stok Çözeltisi #40.72 g CaCl2 içinde 50 ml ddH2O
Hank'in Stok Çözeltisi #51.23 g MgSO47H2O 50 ml ddH20
içinde Hank'in Stok Çözümü #610.0 ml ddH20 içinde 0.35g NaHCO3; taze bir gün kullanın
HClSigma7647-01-0
Buz Kovasıherhangi bir yapıcı
Anında Okyanus tuzubalık suyu içinherhangi bir üretici
In-Vitro Transkripsiyon Kiti, Mega Kısa SenaryoThermo Fischer, ScientificAM1354
Invitrojen ve ticaret; UltraPure ve ticaret; DNase / RNaz İçermeyen Damıtılmış SuFisher Scientific10-977-023
KClSigma7447-40-7E3 Orta
KH2PO4Sigma7778-77-0
KimwipesFisher Scientific06-666
Erkek ve Dişi Zebra Balığı
Mega Kısa Senaryo T7 İletim KitiThermo Fischer ScientificAM1354
metilen mavisiFisher ScientificAC414240250E3 Orta
MgSO2-7H2OSigmaM2773
Mikromikromanipülatör
Mikroenjeksiyon plastik kalıpDünyası Hassas AletlerZ-Kalıpları
Mikroenjektör
Mikroiğne Slayt
Mikropipetleyici (1-10) uçluherhangi bir üreticininfiltrelenmiş p10 uçlara ihtiyacı vardır
Mikropipetleyici (20-200) uçluherhangi bir yapıcı
Micropippetter (100-1000) uçluherhangi bir yapıcı
Mikroplastik kaydırak
Mikrodalgaherhangi bir yapıcı
MiliQ Suherhangi bir Maker
mineral yağsigma-aldrichm5904-5ml
Na2HPO4Sigma
NaClSigmaS9888
NaHC02Sigma223441
Nanodrop
NaOHSigma567530
Dar Spatulaherhangi bir yapıcı
İğne ÇektirmeSutterP-97
Kağıt Havluherhangi bir yapıcı
Pastro PipetlerFisher Scientific13-678-20A
PCR astar yan kılavuz sitesiEntegre DNA Teknolojileri (IDT)
PCR primerleri yan kılavuz RNA kesim bölgesiEntegre DNA Teknolojileri (IDT)Standart tuzdan arındırılmış
PCR Şerit TüpleriThermo Fischer ScientificAB0771W
Petri KaplarıFisher ScientificFB087571410 cm çap 100mm x 15mm
Fenol RedFisher ScienceS25464https://www.fishersci.com/shop/products/phenol-red-indicator-solution-0-02-w-v-2/S25464
Pipet UçlarıHerhangi bir yapımcı10ul, 200ul ve 1000ul uçlar
Plastik HaşerelerFisher Scientific12-141-364
Plastik Kaşıkherhangi bir yapıcı
Astar Kılavuzu SiteEntegre DNA Teknolojileri (IDT)
Tıraş BıçağıUlineH-595B
RNA jelMegashort script kitinde Boya Yükleme (in vitro transciption kiti)
RNAseaway Fisher21-402-178
RNAse içermeyen polipropilen mikrosantrifüj tüpleriThermo Fischer ScientificAM12400
https://www.thermofisher.com/order/catalog/product/AM12400#/AM12400 RNAse içermeyen suFisher Scientific10-977-023
Herhangibir yapıcıyı
Sharpieherhangi bir yapıcı
Sodyum bikarbonat (hücre kültür test edildi)SigmaS5761balık suyu
Sodyum Bromür SolotionSigmaE1510
Sanger dizileme yazılımı Analiz
Spektrofotometre
Steril H2Oherhangi bir marka
T4 DNA PolimerazNEBM0203Shttps://www.neb.com/products/m0203-t4-dna-polymerase#Product%20Information
Herhangibir marka
TBE (Tris-Borat-EDTA) 10XThermo Fischer ScientificB52https://www.thermofisher.com/order/catalog/product/B52#/B52
Çay LekeleyiciamazonIMU-71133Wçoğu mutfak mağazasında mevcuttur
Thermocycler
Transfer PipetiUline S-24320
Transilluminatör
Trikainfisher bilimselNC0872873
Tris HCl 7.5Thermo Fischer Scientific15567027
Evrensel PrimerEntegre DNA Teknolojileri (IDT)AAAAGCACCGACTCGGTGCCAC
TTTTTCAAGTTGATAACGGACTAG
CCTTATTTTAACTTGCTATTTCTA
GCTCTAAAAC
UV lambasıUVP
UV güvenlik gözlükleriherhangi bir yapımcı
Yıkama Şişesifisher scientificS39015
Zebra balığı çiftleşme kutularıherhangi bir yapımcı
PCR Tampon Tarifi171.12 mL steril H20 ekleyin; 0.393 mL 1M MgCl2; 2.616 mL 1M MgCl2; 2.618 mL, 1M, Tris-HCl (pH 8.4), 13.092mL, 1M KCl; 0.262 mL %1 Jelatin. 20 dakika otoklavlayın, ardından soloyu buz üzerinde soğutun. Daha sonra 3.468 mL 100mg / mL BSA ekleyin; 0.262 mL dATP (100mM), 0.262mL dCTP (100mM); 0.262 mL dGTP (100mM);   0.262 mL dTTP (100 mL). Alliquote steril eppendorf tüplerine
sentezi Bebek DNA Temiz ve İçin için E3 MgCl için Sentezi Mikromanipülatör için MS-222 için Herhangi bir sentezi için İçin içinBebek Yıkama Şişesi İçin , , , , ölçeklendirin

Kaynaklar

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Pelegri, F. Maternal factors in zebrafish development. Developmental Dynamics. 228 (3), 535-554 (2003).
  2. Campbell, P. D., Heim, A. E., Smith, M. Z., Marlow, F. L. Kinesin-1 interacts with Bucky ball to form germ cells and is required to pattern the zebrafish body axis. Development. 142 (17), Cambridge, England. 2996-3008 (2015).
  3. Eno, C., Solanki, B., Pelegri, F. aura (mid1ip1l) regulates the cytoskeleton at the zebrafish egg-to-embryo transition. Development. 143 (9), Cambridge, England. 1585-1599 (2016).
  4. He, W. -X., et al. Oocyte-specific maternal Slbp2 is required for replication-dependent histone storage and early nuclear cleavage in zebrafish oogenesis and embryogenesis. RNA. 24 (12), RNA. New York, N.Y. 1738-1748 (2018).
  5. Burger, A., et al. Maximizing mutagenesis with solubilized CRISPR-Cas9 ribonucleoprotein complexes. Development. 143 (11), Cambridge, England. 2025-2037 (2016).
  6. Jao, L. -E., Wente, S. R., Chen, W. Efficient multiplex biallelic zebrafish genome editing using a CRISPR nuclease system. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 110 (34), 13904-13909 (2013).
  7. Shah, A. N., Davey, C. F., Whitebirch, A. C., Miller, A. C., Moens, C. B. Rapid reverse genetic screening using CRISPR in zebrafish. Nature Methods. 12 (6), 535-540 (2015).
  8. Shankaran, S. S., Dahlem, T. J., Bisgrove, B. W., Yost, H. J., Tristani-Firouzi, M. CRISPR/Cas9-directed gene editing for the generation of loss-of-function mutants in high-throughput zebrafish F0 screens. Current Protocols in Molecular Biology. 119 (1), 1-22 (2017).
  9. Trubiroha, A., et al. A Rapid CRISPR/Cas-based mutagenesis assay in zebrafish for identification of genes involved in thyroid morphogenesis and function. Scientific Reports. 8 (1), 5647(2018).
  10. Wu, R. S., Lam, I. I., Clay, H., Duong, D. N., Deo, R. C., Coughlin, S. R. A Rapid method for directed gene knockout for screening in G0 zebrafish. Developmental Cell. 46 (1), 112-125 (2018).
  11. Moravec, C. E., Voit, G. C., Otterlee, J., Pelegri, F. Identification of maternal-effect genes in zebrafish using maternal crispants. Development. 148 (19), Cambridge, England. 199536(2021).
  12. Braat, A. K., Zandbergen, T., van de Water, S., Goos, H. J., Zivkovic, D. Characterization of zebrafish primordial germ cells: morphology and early distribution of vasa RNA. Developmental Dynamics: An Official Publication of the American Association of Anatomists. 216 (2), 153-167 (1999).
  13. Eno, C., Hansen, C. L., Pelegri, F. Aggregation, segregation, and dispersal of homotypic germ plasm RNPs in the early zebrafish embryo. Developmental Dynamics. 248 (4), 306-318 (2019).
  14. Knaut, H., Steinbeisser, H., Schwarz, H., Nüsslein-Volhard, C. An evolutionary conserved region in the vasa 3'UTR targets RNA translation to the germ cells in the zebrafish. Current biology: CB. 12 (6), 454-466 (2002).
  15. Yoon, C., Kawakami, K., Hopkins, N. Zebrafish vasa homologue RNA is localized to the cleavage planes of 2- and 4-cell-stage embryos and is expressed in the primordial germ cells. Development. 124 (16), Cambridge, England. 3157-3165 (1997).
  16. Gagnon, J. A., et al. Efficient mutagenesis by Cas9 protein-mediated oligonucleotide insertion and large-scale assessment of single-guide RNAs. PLoS ONE. 9 (5), 98186(2014).
  17. Labun, K., Montague, T. G., Gagnon, J. A., Thyme, S. B., Valen, E. CHOPCHOP v2: a web tool for the next generation of CRISPR genome engineering. Nucleic Acids Research. 44, 272-276 (2016).
  18. Labun, K., Montague, T. G., Krause, M., Torres Cleuren, Y. N., Tjeldnes, H., Valen, E. CHOPCHOP v3: expanding the CRISPR web toolbox beyond genome editing. Nucleic Acids Research. 47, 171-174 (2019).
  19. Montague, T. G., Cruz, J. M., Gagnon, J. A., Church, G. M., Valen, E. CHOPCHOP: a CRISPR/Cas9 and TALEN web tool for genome editing. Nucleic Acids Research. 42, 401-407 (2014).
  20. Moravec, C. E., Pelegri, F. J. An accessible protocol for the generation of CRISPR-Cas9 knockouts using INDELs in zebrafish. Methods in Molecular Biology. 1920, Clifton, N.J. 377-392 (2019).
  21. White, R. J., et al. A high-resolution mRNA expression time course of embryonic development in zebrafish. eLife. 6, 30860(2017).
  22. Aanes, H., et al. Zebrafish mRNA sequencing deciphers novelties in transcriptome dynamics during maternal to zygotic transition. Genome Research. 21 (8), 1328-1338 (2011).
  23. Aken, B. L., et al. The Ensembl gene annotation system. Database: The Journal of Biological Databases and Curation. 2016, (2016).
  24. Sorlien, E. L., Witucki, M. A., Ogas, J. Efficient production and identification of CRISPR/Cas9-generated gene knockouts in the model system Danio rerio. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (138), e56969(2018).
  25. Kotani, H., Taimatsu, K., Ohga, R., Ota, S., Kawahara, A. efficient multiple genome modifications induced by the crRNAs, tracrRNA and Cas9 protein complex in zebrafish. PloS One. 10 (5), 0128319(2015).
  26. Rosen, J. N., Sweeney, M. F., Mably, J. D. Microinjection of zebrafish embryos to analyze gene function. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (25), e1115(2009).
  27. Xu, Q. Microinjection into zebrafish embryos. Methods in Molecular Biology. 127, Clifton, N.J. 125-132 (1999).
  28. Biology Mouse,, Zebrafish,, Chick, JoVE. Biology: Mouse, Zebrafish, and Chick. Zebrafish Microinjection Techniques. JoVE Science Education Database. , Cambridge, MA. (2021).
  29. Kimmel, C. B., Ballard, W. W., Kimmel, S. R., Ullmann, B., Schilling, T. F. Stages of embryonic development of the zebrafish. Developmental Dynamics: An Official Publication of the American Association of Anatomists. 203 (3), 253-310 (1995).
  30. D'Agostino, Y., et al. A rapid and cheap methodology for CRISPR/Cas9 zebrafish mutant screening. Molecular Biotechnology. 58 (1), 73-78 (2016).
  31. Baars, D. L., Takle, K. A., Heier, J., Pelegri, F. Ploidy manipulation of zebrafish embryos with Heat Shock 2 treatment. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (118), e54492(2016).
  32. Nair, S., Lindeman, R. E., Pelegri, F. In vitro oocyte culture-based manipulation of zebrafish maternal genes. Developmental Dynamics: An Official Publication of the American Association of Anatomists. 242 (1), 44-52 (2013).
  33. Kushawah, G., et al. CRISPR-Cas13d induces efficient mRNA knockdown in animal embryos. Developmental Cell. 54 (6), 805-817 (2020).
  34. Kroeger, P. T., Poureetezadi, S. J., McKee, R., Jou, J., Miceli, R., Wingert, R. A. Production of haploid zebrafish embryos by in vitro fertilization. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (89), e51708(2014).
  35. Xiao, T., Roeser, T., Staub, W., Baier, H. A GFP-based genetic screen reveals mutations that disrupt the architecture of the zebrafish retinotectal projection. Development. 132 (13), Cambridge, England. 2955-2967 (2005).
  36. Riemer, S., Bontems, F., Krishnakumar, P., Gömann, J., Dosch, R. A functional Bucky ball-GFP transgene visualizes germ plasm in living zebrafish. Gene Expression Patterns: GEP. 18 (1-2), 44-52 (2015).
  37. Moreno-Mateos, M. A., et al. CRISPRscan: designing highly efficient sgRNAs for CRISPR-Cas9 targeting in vivo. Nature Methods. 12 (10), 982-988 (2015).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya şekillerini yeniden kullanmak için izin iste

İzin iste

Etiketler

Maternal Etki GenleriCRISPR Cas9 D zenlemeRehber RNA o ullamaZebrafish EmbriyogeneziSomatik MutasyonlarSanger DizilemeHaploid EmbriyolarMaternal Etki Fenotipi

İlgili makaleler