Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliğiniz gereklidir. Giriş yapın veya ücretsiz denemenizi bugün başlatın.

Yöntem makalesi

İn vivo Sıçanlarda Derin Beyin Stimülasyonunun İndüklediği Aktivite Kalıplarını Ortaya Çıkarmak için Pozitron Emisyon Tomografisi

2.4K görüntülenme

⸱

DOI:

10.3791/63478

⸱

23 Mart 2022

 ,  ,  ,  , 
1Centro Nacional de Investigaciones Cardiovasculares (CNIC), 2Laboratorio de Imagen Médica, Instituto de Investigación Sanitaria Gregorio Marañón, 3Departamento de Bioingeniería e Ingeniería Aeroespacial, Universidad Carlos III de Madrid, 4CIBER de Salud Mental (CIBERSAM), 5High Performance Research Group in Physiopathology and Pharmacology of the Digestive System (NeuGut), Universidad Rey Juan Carlos

Bu makalede

Özet

Bu çalışmada, in vivo FDG-PET ile akut derin beyin stimülasyonunun neden olduğu metabolik nöromodülasyonu değerlendirmek için klinik öncesi deneysel bir yöntem tanımlanmıştır. Bu makale, stereotaksik cerrahiden stimülasyon tedavisinin uygulanmasına ve PET görüntülerinin elde edilmesi, işlenmesi ve analizine kadar tüm deneysel adımları içermektedir.

Özet

Derin beyin stimülasyonu (DBS), elektriksel darbelerin hastanın patofizyolojisinde rol oynayan beyin yapılarına uygulanmasına dayanan invaziv bir nöroşirürji tekniğidir. DBS'nin uzun geçmişine rağmen, etki mekanizması ve uygun protokolleri belirsizliğini koruyarak bu gizemleri çözmeyi amaçlayan araştırmalara duyulan ihtiyacı vurgulamaktadır. Bu anlamda, fonksiyonel görüntüleme teknikleri kullanılarak DBS'nin in vivo etkilerinin değerlendirilmesi, stimülasyonun beyin dinamiği üzerindeki etkisini belirlemek için güçlü bir stratejiyi temsil eder. Burada, DBS'nin beyin metabolizması üzerindeki akut sonuçlarını değerlendirmek için uzunlamasına bir çalışma [18F]-florodeoksikloklokoz pozitron emisyon tomografisi (FDG-PET) ile birlikte preklinik modeller (Wistar sıçanları) için deneysel bir protokol tanımlanmıştır. İlk olarak, hayvanlara elektrotların prefrontal kortekse bilateral implantasyonu için stereotaktik cerrahi uygulandı. Elektrot yerleşimini doğrulamak için her hayvanın cerrahi sonrası bilgisayarlı tomografi (BT) taraması yapıldı. İyileşmeden bir hafta sonra, stimülasyon olmadan ameliyat edilen her hayvanın ilk statik FDG-PET'i (D1) edinildi ve iki gün sonra (D2), hayvanlar uyarılırken ikinci bir FDG-PET edinildi. Bunun için elektrotlar, hayvanlara FDG uygulandıktan sonra izole bir uyarıcıya bağlandı. Böylece, FDG alım döneminde (45 dakika) hayvanlar uyarıldı ve DBS'nin beyin metabolizması üzerindeki akut etkileri kaydedildi. Bu çalışmanın keşifsel doğası göz önüne alındığında, FDG-PET görüntüleri, D1 ve D2 çalışmaları arasında eşleştirilmiş bir T-testine dayanan voksel tabanlı bir yaklaşımla analiz edilmiştir. Genel olarak, DBS ve görüntüleme çalışmalarının kombinasyonu, sinir ağları üzerindeki nöromodülasyon sonuçlarının tanımlanmasına izin verir ve sonuçta DBS'yi çevreleyen bilmecelerin çözülmesine yardımcı olur.

Giriş

Nörostimülasyon terimi, sinir sistemini terapötik bir amaçla uyarmayı amaçlayan bir dizi farklı tekniği kapsar1. Bunlar arasında, derin beyin stimülasyonu (DBS), klinik pratikte en yaygın nörostimülasyon stratejilerinden biri olarak öne çıkmaktadır. DBS, derin beyin çekirdeklerinin, stereotaktik cerrahi ile modüle edilmek üzere beyin hedefine yerleştirilen elektrotlar aracılığıyla, doğrudan hastanın vücuduna implante edilen bir nörostimülatör tarafından verilen elektriksel darbelerle uyarılmasından oluşur. Farklı nörolojik ve psikiyatrik bozukluklarda DBS uygulamasının fizibilitesini değerlendiren makalelerin sayısı sürekli artmaktadır2, ancak bunların sadece bir kısmı Gıda ve İlaç Birliği (FDA) tarafından onaylanmıştır (yani, esansiyel tremor, Parkinson hastalığı, distoni, obsesif-kompulsif bozukluk ve tıbbi olarak dirençli epilepsi)3 . Ayrıca, resmi olarak onaylanandan çok daha fazla patolojinin DBS tedavisi için çok sayıda beyin hedefi ve stimülasyon protokolü araştırılmaktadır, ancak bunların hiçbiri kesin olarak kabul edilmemektedir. DBS araştırması ve klinik prosedürlerdeki bu tutarsızlıklar kısmen etki mekanizmasının tam olarak anlaşılmamasından kaynaklanıyor olabilir4. Bu nedenle, DBS'nin beyin dinamikleri üzerindeki in vivo etkilerini deşifre etmek için büyük çabalar sarf edilmektedir, çünkü her ilerleme, ne kadar küçük olursa olsun, DBS protokollerini daha büyük terapötik başarı için rafine etmeye yardımcı olacaktır.

Bu bağlamda, moleküler görüntüleme teknikleri, DBS'nin in vivo nöromodülatör etkilerini gözlemlemek için doğrudan bir pencere açmaktadır. Bu yaklaşımlar, DBS'nin sadece uygulanırken etkisini belirleme fırsatı sunmakla kalmaz, aynı zamanda sonuçlarının doğasını çözme, istenmeyen yan etkileri ve klinik iyileşmeyi önleme ve hatta stimülasyon parametrelerini hastanın ihtiyaçlarına uyarlama fırsatı sunar5. Bu yöntemler arasında, 2-deoksi-2-[18F] floro-D-glukoz (FDG) kullanan pozitron emisyon tomografisi (PET), farklı beyin bölgelerinin aktivasyon durumu hakkında spesifik ve gerçek zamanlı bilgi sağladığı için özellikle ilgi çekicidir6. Spesifik olarak, FDG-PET görüntüleme, nöronlar ve glial hücreler arasındaki metabolik eşleşmenin fizyolojik prensibine dayanan nöral aktivasyonun dolaylı bir değerlendirmesini sağlar6. Bu anlamda, birkaç klinik çalışma FDG-PET kullanarak DBS modüle edilmiş beyin aktivite paternlerini bildirmiştir (inceleme için bkz.3 ). Bununla birlikte, klinik çalışmalar, hastalara odaklanırken, heterojenlik veya işe alım zorlukları gibi, araştırma potansiyellerini güçlü bir şekilde sınırlayan çeşitli dezavantajlara kolayca maruzkalmaktadır 6. Bu bağlam, araştırmacıları, biyomedikal yaklaşımları klinik çevirilerinden önce değerlendirmek veya klinik uygulamada zaten uygulanmışsa, terapötik faydaların veya yan etkilerin fizyolojik kökenini açıklamak için insan koşullarının hayvan modellerini kullanmaya yönlendirmektedir. Bu nedenle, insan patolojisi ile laboratuvar hayvanlarında modellenmiş durum arasındaki büyük mesafelere rağmen, bu klinik öncesi yaklaşımlar klinik uygulamaya güvenli ve etkili bir geçiş için gereklidir.

Bu makalede, DBS'nin beyin metabolizması üzerindeki akut sonuçlarını değerlendirmek için uzunlamasına bir FDG-PET çalışması ile birlikte murin modelleri için deneysel bir DBS protokolü açıklanmaktadır. Bu protokolle elde edilen sonuçlar, DBS tarafından beyin aktivitesinde indüklenen karmaşık modülatör kalıpların çözülmesine yardımcı olabilir. Bu nedenle, stimülasyonun sonuçlarını in vivo olarak incelemek için uygun bir deneysel strateji sağlanarak, klinisyenlerin belirli koşullar altında terapötik etkileri öngörmelerine ve daha sonra stimülasyon parametrelerini hastanın ihtiyaçlarına uyarlamalarına olanak tanır.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Protokol

Deneysel hayvan prosedürleri, Avrupa Toplulukları Konseyi Direktifi 2010/63/EU'ya göre yürütülmüş ve Gregorio Marañón Hastanesi Hayvan Deneyleri Etik Komitesi tarafından onaylanmıştır. Deneysel protokolün grafiksel bir özeti Şekil 1A'da gösterilmiştir.

1. İn vivo nörogörüntüleme ile beyin hedef lokalizasyonu

  1. Hayvan hazırlığı
    NOT: ~300 g'lık erkek Wistar sıçanları kullanılmıştır.
    1. Hayvanı bir anestezi indüksiyon kutusuna yerleştirin ve üstünü kapatın.
    2. Serofluran buharlaştırıcıyı açın (% 100O2'de indüksiyon için% 5). Sıçan anestezi uygulandığında, gaz akışını burun konisine geçirin. Sıçan pençesini sıkıştırarak anestezi durumunu onaylayın.
    3. Hayvan sırtüstü yatağını BT yatağına koyun, sevofluran anestezisini koruyun (% 100O2'de bakım için% 3).
  2. BT görüntüleme
    NOT: Amper, voltaj, projeksiyon sayısı, çekim sayısı ve voksel çözünürlüğü seçimi BT tarayıcısına bağlıdır. Burada şu parametreler kullanıldı: 340 mA, 40 KV, 360 projeksiyon, 8 çekim ve 200 μm çözünürlük 7,8,9.
    1. Yüz maskesini veya burun konisini sıçana sabitleyin.
    2. Sıçan gövdesini başına, omuzlarına, kalçalarına ve kuyruğuna zarar vermeden yeterli kısıtlama sağlamak için ipek bantla sabitleyin.
    3. Sıçanı sürekli izleyin.
    4. Kafayı BT tarayıcısının görüş alanının ortasına yerleştirin.
    5. Tarayıcının özelliklerine göre alma parametrelerini kullanarak BT görüntüsünü almaya devam edin.
    6. 10 dakika sonra, in vivo BT taraması tamamlandığında, sevofluran akışını durdurun ve sıçanı MRI tarayıcısına yerleştirin.
  3. MR görüntüleme
    NOT: Tarama alma özellikleri, farklı yazılım sistemleri ve daha da önemlisi, belirli araştırma sorusu dahil olmak üzere tarayıcılar arasında farklılık gösterir. Burada 7-Tesla'lık bir tarayıcı kullanıldı. TE = 33 ms, TR = 3732 ms ve 0,8 mm (34 dilim) dilim kalınlığında, 3,5 x 3,5cm2 FOV ile 256 x 256 piksel matris boyutunda T2 ağırlıklı spin-echo dizisi kullanıldı.
    1. Hayvan sırtüstü yatağını MRG yatağına koyun, sevofluran anestezisini koruyun (% 100O2'de bakım için% 3).
    2. MRG alımı sırasında baş hareketlerini önlemek için kafayı tarayıcı yatağına yerleştirilmiş stereotaktik bir çerçeveye sabitleyin. Ayrıca, sıçan gövdesinin geri kalanını ipek bantla sabitleyin.
    3. Kafayı MRI tarayıcısının görüş alanının ortasına yerleştirin.
    4. Pozisyon doğru olduğunda, MRI görüntüsünü almaya devam edin.
    5. İn vivo MRI taraması tamamlandığında, sevofluran akışını durdurun ve sıçanı kafesine yerleştirin.
    6. Kafesin yakınında bir ısıtma lambası bulun, çünkü sıçanlar genellikle tarama sırasında vücut ısılarını düşürür.
    7. Anesteziden iyileşene kadar sıçanı izleyin.
  4. Atlas ortak yerelleştirme ve hedef koordinatları hesaplama
    1. BT ve MRG görüntüleri alındıktan ve tarayıcının tavsiyelerine göre yeniden yapılandırıldıktan sonra, BT ve MRI görüntülerini birlikte kaydedin.
    2. Karşılıklı bilgilere dayalı otomatik bir katı kayıt algoritması kullanarak BT ve MRG'yi mekansal olarak normalleştirmek için bir görüntüleme işleme yazılımı kullanın10.
    3. Bregma hattını birlikte kayıtlı görüntüde lokalize edin ve Paxinos ve Watson sıçan beyin atlası11'e göre, Bregma'dan hedefe (yani, medial prefrontal korteks, mPFC) anterior/posterior (AP: +3.5 mm), orta hat / lateral (ML: +0.6 mm) ve dorsoventral (DV: -3.4 mm) eksendeki mesafeyi ölçün.
      NOT: Bregma'dan hedefe giden koordinatlar, ağırlık, boyut, cinsiyet ve cins farklı olduğunda sıçanlar arasında farklılık gösterebilir.

2. Stereotaksik cerrahi

DİKKAT: Kullanmadan önce tüm cerrahi materyalleri, implantları ve stereotaksik üniteleri otoklav edin ve hayvan refahını etkileyebilecek enfeksiyon ve komplikasyonları önlemek için cerrahi alanı dezenfekte edin. Steril cerrahi eldivenler kullanın ve kontaminasyonu önlemek için hayvanı yapışkan örtülerle örtün.

  1. Hayvan hazırlama ve anestezi
    1. Hayvanlara ameliyattan bir gün önce intraperitoneal olarak 0.1 mg/kg buprenorfin uygulandı. Hayvanı bir anestezi indüksiyon kutusu odasına yerleştirin ve üstünü kapatın.
    2. Serofluran buharlaştırıcıyı açın (% 100O2'de indüksiyon için% 5).
    3. Sıçan yaslandığında, sevofluran buharlaştırıcısını kapatın ve sıçanı kutu odasından çıkarın.
    4. Hayvanı anestezik hale getirmek için intraperitoneal olarak ketamin (100 mg / kg) ve ksilazin (10 mg / kg) karışımı uygulayın.
    5. Hayvan tamamen uyuşturulana kadar bekleyin. Interdigital alanı sıkıştırarak anestezi seviyesini kontrol edin.
    6. Kulaklar ve gözler arasındaki alanı tıraş edin.
  2. Stereotaktik çerçeveye yerleştirme ve kraniyotomi
    1. Hayvanı stereotaktik çerçeve üzerinde yüzüstü pozisyona yerleştirin ve ameliyat sırasında hayvanı doğru pozisyonda tutmak için sıçanlar için baş tutma adaptörünü kullanın.
    2. Sıçan kulak çubuklarını kullanarak başın hareketsizliğini sağlayın. Kulak çubuklarının takılmasına dikkat edin, çünkü çok derin bir yerleştirme kulak zarına zarar verebilir.
    3. Ameliyat sırasında kuruluğu önlemek için gözlere oftalmik yağlama jeli uygulayın ve steril gazlı bezle örtün.
    4. Kirlenmeyi önlemek için yapışkan örtüler kullanarak hayvanı örtün.
    5. Tıraş edilen bölgeye iyodopovidon çözeltisi uygulayın ve steril gazlı bezle temizleyin.
    6. Lokal bölgeyi uyuşturmak için traş edilen bölgeye jel içinde mepivakain uygulayın.
    7. Kulaklar arasındaki kafatasının üzerinde yer alan deride, lambda'dan Bregma'ya (yani kafatası köşesinden gözlere doğru) 1.5-2 cm uzanan uzunlamasına bir kesi yapın.
    8. Kafatasını 2 veya 3 kelepçe yardımıyla ortaya çıkarın. Periosteumu pamuklu bir tomurcukla çıkarın ve Bregma'yı ve sagital sütürleri açığa çıkarmak için kanı tuzlu su çözeltisiyle temizleyin. Fazla tuzlu su çözeltisini gazlı bezle çıkarın.
    9. Diş çimento yapışmasını iyileştirmek için kafatası yüzeyini bir neşterle çizin. Alanı hidrojen peroksite batırılmış bir pamuk tomurcuğuyla temizleyin.
  3. Elektrot yerleştirme ve kafatasına sabitleme
    1. Ameliyat sırasında doğru yerleşimi sağlamak için elektrotları plastik cımbızla düzeltin.
      NOT: Bu protokolde topraklı konsantrik bipolar platin-iridyum elektrotlar kullanılmaktadır.
    2. Stereotaktik çerçevenin sağ kolunun tutucusuna bir elektrot yerleştirin.
      NOT: Daha iyi sabitlemek için tutucuyu elektrota uyarlamak gerekebilir (bkz. Şekil 1B). Elektrotun tutucunun eksenine paralel olduğundan emin olun.
    3. Elektrodu tutan sağ kolu stereotaksik çerçeve boyunca hareket ettirin ve elektrotun ucunu tam olarak Bregma'nın üzerine yerleştirin. Elektrot ucunu kafatasına mümkün olduğunca yaklaştırmaya çalışın, ancak elektrotun deformasyonunu önlemek için dokunmadan ve stereotaksik çerçeve tarafından sağlanan Bregma için ortaya çıkan koordinatları not edin. Kafatasında, elektrotun ilk konumunu cerrahi bir kalemle gösteren bir işaret yapın.
    4. Tutucuyu adım 1.4.3'te elde edilen AP ve ML koordinatlarına taşıyın ve elektrot hedefinin konumunu gösteren cerrahi bir kalemle kafatası üzerinde bir işaret yapın.
    5. Elektrodu tutan stereotaktik çerçevenin sağ kolunu çıkarın. Elektrotla hiçbir şeye dokunmamaya dikkat edin.
    6. Dura görünene kadar hedef pozisyonda kafatasından (yaklaşık 1-1,5 mm çapında) bir delik açmak için küçük bir elektrikli matkap kullanın. Bir pamuk tomurcuğu kullanarak herhangi bir kanamayı durdurun.
    7. Diş çimentosunun yüzey alanını artırmak ve zemini bulmak için 4 vidayı (tercihen 2-3 mm uzunluğunda paslanmaz çelik vidalar) bulmak için kafatası boyunca 4 delik açın. 4 vidayı takın.
    8. Stereotaktik çerçevenin sağ kolunu sağ elektrotla bulun. Kolu, delikle çakışması gereken hesaplanan konuma getirin. Ardından, elektrodu dura mater'e dokunana kadar indirin. Bu pozisyon DV yönünde 0 seviyesi olarak hizmet edecektir.
    9. Adım 1.4.3'teki DV konumunu kullanarak elektrotun ucunu DV yönünde yerleştirin. Elektrot bölgesinin etrafındaki kan ve beyin omurilik sıvısını pamuk tomurcuğu ile temizleyin.
    10. Toprağı elektroda en yakın vidalardan birine takın.
    11. Elektrot ve vidaların etrafına diş çimentosu uygulayın, diş çimentosunu keskin kenarlardan kaçınarak şekillendirmeye özen gösterin, bu da hayvana zarar verebilir. Diş çimentosu, doku/kafatasında aşırı ısınma/termal hasarı önlemek için bir tabaka halinde uygulanır. Kalın katmanlar, ek katmanlar eklenmeden önce iyileşmek için daha fazla zaman gerektirir. Elektrodu tutucudan çıkarmadan önce diş çimentosunun tamamen sertleştiğinden emin olun.
      DİKKAT: Diş çimentosunun hazırlanması, çimentonun katılaşmasıyla biten karışımdan toksik buharların yayılmasını sağlar. Bu nedenle bu noktadan itibaren ve ameliyatın sonuna kadar kimyasal gazlara karşı etkili bir koruma maskesi takın.
    12. Aynı prosedürü beynin diğer yarımküresi için 2.3.2-2.3.11 adımlarından tekrarlayın.
    13. Elektrodu örtmeden bir kapak oluşturmak için daha fazla diş çimentosu uygulayın. Sertleşene kadar bekleyin.
    14. Kapağın önünde ve arkasında dikiş atmak için üçgen iğneli örgülü doğal ipek emilemeyen dikiş 1/0 kullanın. Gerekirse, emilemeyen dikişleri, bulundukları vücut bölgesine göre belirli bir zamanda çıkarın. Cerrahi alanı dezenfekte etmek için bir iyodopovidon çözeltisi kullanın.
    15. Sıçanı stereotaktik çerçeveden çıkarın.
  4. Elektrot yerleştirme onayı için BT görüntüleme
    1. 1.2.4-1.2.5 adımlarını uygulayın ve Şekil 1C'ye bakın.
    2. İn vivo BT taraması tamamlandıktan sonra, sıçanı kafesine yerleştirin.
    3. 1.3.6 numaralı adımları izleyin. ve 1.3.7.
  5. Postoperatif bakım
    1. Postoperatif bakım olarak 5 gün boyunca antibiyotik (seftriakson, 100 mg/kg, deri altı) ve 3 gün boyunca analjezik (buprenorfin, 0.1 mg/kg, intraperitoneal) uygulayın. Bu antibiyotik rejimi, kapağın etrafında herhangi bir enfeksiyon belirtisi (kızarıklık, şişlik ve eksüda) gözlenirse 5 gün uzatılabilir.
    2. Her hayvanın günlük olarak görsel bir incelemesini yapın, ağrı veya sıkıntı belirtileri arayın ve kapağı iyodopovidon çözeltisi ile temizleyin.
    3. Ameliyattan sonra 1 haftaya kadar yoğun bakım sağlayın.

3. PET/BT görüntüleme alımı

NOT: Her hayvan, elektriksel stimülasyonun neden olduğu akut etkileri değerlendirmek için inhale anestezi altında iki PET / BT çalışmasına (yani, yokluğunda ve DBS uygulaması sırasında) tabi tutulur. Her iki tarama seansı da aynı görüntüleme edinme protokolünü izler, ameliyattan 1 hafta sonra (D1, stimülasyon olmadan) ve 2 gün sonra (DBS sırasında D2) gerçekleştirilir.

  1. Hayvan hazırlama ve anestezi
    1. Her PET taramasından önce sıçanı 8-12 saat boyunca hızlandırarak beynin FDG'yi daha iyi almasını sağlayarak sinyal-gürültü oranını12 artırır.
    2. Hayvanı bir anestezi indüksiyon kutusuna yerleştirin ve üstünü kapatın.
    3. Serofluran buharlaştırıcıyı açın (% 100O2'de indüksiyon için% 5).
    4. Sıçan anestezi uygulandığında, gaz akısını burun konisine geçirin.
  2. FDG enjeksiyonu ve alım süresi
    DİKKAT: FDG bir radyotracer'dir, bu nedenle radyoaktiviteye maruz kalmayı önlemek için radyoproteksiyon önlemlerini göz önünde bulundurun. Kurumun radyoaktif bileşiklerle çalışmak için tüm izinlere sahip olduğunu onaylayın.
    1. FDG şişesini, istenmeyen radyoaktiviteye maruz kalmayı önlemek için kullanılana kadar kurşun kaplı bir kabinin içinde tutun.
    2. Küçük bir şırıngayı (~27G), bir aktivimetrede ölçüldüğü gibi, mümkün olan daha az hacimde ~37 MBq FDG çözeltisi ile doldurun.
    3. Hayvanın kuyruğunun altına bir ısıtma yastığı yerleştirin veya kuyruk damarlarını genişletmek için kızılötesi ışık kullanın.
    4. Yanal damarlar kuyruğun zirvesinde belirginleştiğinde, bölgeyi sıhhi alkolle temizleyin (% 96).
    5. FDG çözeltisini lateral kuyruk damarlarından birinden enjekte edin, damara yörüngesine paralel bir şırınga ile yaklaşın ve iğnenin eğimi yukarı bakacak şekilde yaklaşın.
    6. Anesteziyi kapatın ve bir ısıtma lambasının altında tamamen iyileşmek için hayvanı kafesine geri yerleştirin.
    7. Görüntü alma oturumuna başlamadan önce 45 dakikalık radyotracer alımına izin verin. Bu süre zarfında, hayvanı uyanık ve kurşun korumalı bir odanın içinde tutun.
    8. D2 çalışması durumunda, FDG alım süresi boyunca aşağıda bölüm 4'te (Elektriksel stimülasyon uygulaması) açıklandığı gibi DBS'yi teslim edin.
  3. PET edinimi ve görüntüleme rekonstrüksiyonu
    NOT: PET görüntü yakalama özellikleri tarayıcıya ve tarama süresine bağlıdır. Bu protokol için, 400-700 keV 7,8,9'luk bir enerji penceresi kullanılarak, küçük hayvan PET / BT tarayıcısı ile 45 dakika boyunca statik bir PET görüntüsü elde edildi. Satın alma protokolünü tasarlamadan önce PET/CT ekipmanının teknik özelliklerini gözden geçirin.
    1. FDG enjeksiyonundan 45 dakika sonra, hayvanı bir anestezi indüksiyon kutusuna yerleştirin ve üstünü kapatın.
    2. Serofluran buharlaştırıcıyı açın (% 100O2'de indüksiyon için% 5).
    3. Hayvanı PET / BT yatağına aktarın ve sırtüstü pozisyonda yatırın, burnu anestezi burun konisine sabitleyin ve sevofluran anestezisini koruyun (% 100O2'de bakım için% 3). Sıçan pençesini sıkıştırarak anestezi durumunu onaylayın.
    4. 1.2.2 ve 1.2.3 numaralı adımları yineleyin.
    5. Kafayı PET tarayıcının görüş alanının ortasına yerleştirin.
    6. Tarayıcının spesifikasyonlarına göre alma parametrelerini kullanarak statik PET görüntüsünü elde edin.
    7. Bir 2D-OSEM (sıralı alt küme beklenti maksimize etme algoritması) kullanarak görüntüyü yeniden oluşturmaya devam edin vebozulma ve ölü zaman düzeltmeleri 7,8,9'u uygulayın.
    8. İn vivo PET taraması tamamlandığında, hayvanın tarayıcı yatağındaki baş pozisyonunu değiştirmeden BT edinimine devam etmek için sevoflurane akışını sıçana tutun.
  4. BT edinimi
    1. Hayvanın önceki PET edinimine göre konumunu değiştirmeden, BT görüntüsünü almaya devam edin.
    2. 1.2.3-1.2.5 arasındaki adımları yineleyin.
    3. İn vivo BT taraması tamamlandıktan sonra, sevofluran akışını durdurun ve sıçanı iyileşme için ilgili kafesine yerleştirin.
    4. 1.3.6 numaralı adımları izleyin. ve 1.3.7.
    5. Tamamen radyoaktivite bozunana kadar hayvanı kurşun korumalı bir odaya koyun.

4. Elektriksel stimülasyon yönetimi

NOT: Elektriksel stimülasyon, D2 görüntüleme seansında FDG alım periyodu sırasında verilir. Bu protokol için, stimülasyon, sabit akım modunda yüksek frekanslı (130 Hz) bir elektriksel stimülasyon, 150 μA ve 100 μs 7,13,14 darbe genişliğinde izole bir uyarıcı ile verildi.

  1. DBS uyarıcı yapılandırması
    1. İzole edilmiş uyarıcıyı ve gerekli telleri, hayvan kafesleri için yeterli alana ve potansiyel olarak rahatsız edici uyaranların minimum etkisine sahip geniş ve sessiz bir odada hazırlayın.
    2. Hayvanların kafesleri içinde ve uyarıcıda serbestçe hareket etmelerini sağlamak için stimülasyon tellerini dönerlere bağlayın.
    3. Stimülasyon parametrelerini çalışmanın ihtiyaçlarına göre ayarlayın.
    4. Mevcut modu, frekansı ve darbe genişliğini kontrol etmek için bir osiloskop kullanın. Bifazik dalga formunu dikdörtgen darbe şekliyle onaylayın (Şekil 1D).
  2. DBS teslimi
    1. D1 görüntüleme seansından sonra ve D2 edinimine kadar, hayvanları stimülasyon sistemine ve operatörün kullanımına alıştırmak için günlük bir alışkanlık protokolüne (45 dakika / gün) maruz bırakın ve D2'de istenmeyen stres tepkilerini önleyin. Stimülasyon sistemini her hayvana bağlayın, ancak stimülasyonu açmadan.
    2. Stimülatör kurulduktan ve hayvana FDG enjekte edildikten sonra, döner elektrotlara bağlayın ve uyarıcıyı açın.
    3. 45 dakika sonra, uyarıcıyı kapatın, hayvanı dönme hareketinden ayırın ve adım 3.3'e başlamak için hızlı bir şekilde anestezi indüksiyon odasına aktarın.

figure-protocol-1
Şekil 1: Deneysel tasarım . (A) Bu protokolde izlenen deneysel adımların özeti. (B) Elektrotun daha iyi sabitlenmesi için bir tutucu adaptasyonunun temsili resimleri, (solda) ve (sağda) bir elektrot olmadan. (C) Bir MRG'nin ameliyat edilen bir hayvanın BT'si ile kaynaşmış görüntüsü, medial prefrontal kortekste (mPFC) doğru elektrot yerleşimini gösterir. (D) Bifazik stimülasyon dalga formunu gösteren osiloskop ekranının ekran görüntüsü. Bu şeklin daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.

5. PET görüntü işleme ve analizi

NOT: Sonraki voksel istatistiksel analiz için karşılaştırılabilir veriler elde etmek üzere D1 ve D2'den gelen görüntülerde aynı görüntü işlemeyi izleyin.

  1. PET görüntülerinin mekansal kaydı
    1. Özel görüntüleme işleme yazılımı kullanın. Tüm kayıt iş akışı Şekil 2'de gösterilmiştir.
    2. Her PET ve BT görüntüsünü görüş alanına ortalayın ve kırpın. Karşılıklı bilgilere dayanan otomatik bir katı kayıt algoritması kullanarak PET görüntüsünü BT'sine kaydedin15.
      NOT: Katı kayıt yöntemleri, yalnızca hayvanlar arasında vücut ağırlığı veya büyüklüğünde önemli bir fark olmamasına bakılmaksızın uygundur. Aksi takdirde, elastik yöntemler kullanmayı düşünün.
    3. Her BT görüntüsünü, adım 5.1.2'de olduğu gibi Paxinos ve Watson sıçan beyin atlası11'e uzamsal olarak kayıtlı bir referans BT'ye kaydedin. Elde edilen dönüştürme parametrelerini kaydedin.
    4. Adım 5.1.3'te elde edilen dönüşüm parametrelerini uygulayın. Referans BT görüntüsüne kayıtlı PET görüntüsünü elde eden her kayıtlı PET görüntüsüne.
    5. Tüm son PET görüntülerini Nifti formatında kaydedin.
  2. Yoğunluk normalizasyonu ve PET görüntülerinin yumuşatılması
    NOT: Yoğunluk normalleştirme ve yumuşatma, genel kullanıma açık kaynaklara dayalı farklı şirket içi komut dosyalarıyla gerçekleştirilir.
    1. Olası kayıt hatalarını düzeltmek için PET görüntülerini 2 mm Tam Genişlikte Yarım Maksimum (FWHM) izotropik Gauss çekirdeği ile pürüzsüzleştirin.
      NOT: Yumuşatma filtresinin boyutu, PET alımının çözünürlüğüne bağlı olacaktır, ancak FWHM'nin voksel boyutunun 2-3 katı kadar bir filtre kullanılması önerilir.
    2. Uygun bir referans kümesi normalleştirme yöntemi16 kullanarak PET voksel değerlerinin yoğunluğunu normalleştirin.
    3. Bir beyin maskesini, kayıtlı bir referans MRG'den referans BT görüntüsüne segmentlere ayırın.
    4. Beynin dışındaki vokselleri voksel analizinden dışlamak için beyin maskesini her PET görüntüsüne uygulayın.
  3. Voksel bazında analiz
    NOT: PET görüntü verilerinin voksel tabanlı analizinden oluşan istatistiksel analiz, özel görüntüleme analiz yazılımı17 kullanılarak gerçekleştirilmiştir.
    1. D1 ve D2 PET görüntülerini, eşleştirilmiş bir T-testi kullanarak karşılaştırın ve yeterli istatistiksel anlamlı eşikler belirleyin.
    2. Analizin kesin sonuçları olarak, tip I hatalarını azaltmak için yalnızca 50 bitişik vokselden daha büyük kümeleri düşünün.
    3. Sonuçları, DBS (FDG azaltımı için soğuk renkler ve FDG artışı için sıcak renkler) tarafından indüklenen glikoz beyin metabolizmasındaki değişiklikleri gösteren bir T2 MRG üzerine yerleştirilmiş T-haritalarında temsil edin.

figure-protocol-2
Şekil 2: Mikro PET/BT görüntüleme kayıt iş akışı. İstatistiksel Parametrik Haritalama (SPM) yazılımı ile sonraki voksel tabanlı analiz için PET görüntü uzamsal normalleştirme işlemenin ayrıntılı adımları. Bu şeklin daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

Hayvanlar, çalışmanın sonunda veya hayvanın refahı tehlikeye girdiğinde CO2 kullanılarak kurban edildi. Ameliyat edilen bir hayvandan tam bir PET/BT çalışması örneği Şekil 3'te gösterilmiştir. Böylece, sıçan beynine yerleştirilen elektrot, Şekil 3A'da gösterilen BT görüntüsünde açıkça gözlemlenebilir. Bu görüntüleme yöntemi, fonksiyonel modalitelerin yapısal görüntülerden daha bulanık olma eğiliminde olduğu göz önüne alındığında, iyi anatomik bilgiler...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

Beyin fonksiyonlarının ve nöropsikiyatrik bozuklukların patofizyolojisinde yer alan sinir ağlarının anlaşılmasındaki ilerlemeler göz önüne alındığında, giderek daha fazla araştırma, DBS'nin çok çeşitli nörolojik temelli patolojilerdeki potansiyelini kabul etmektedir2. Bununla birlikte, bu tedavinin etki mekanizması belirsizliğini korumaktadır. Çeşitli teoriler, spesifik patolojik ve stimülasyon koşullarında elde edilen etkileri açıklamaya çalışmıştır, ancak önerilen çalışmaların heterojenliği, kes...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

Yazarlar bu makale ile ilgili çıkar çatışması olmadığını beyan ederler.

Teşekkürler

Prof. Christine Winter, Julia Klein, Alexandra de Francisco ve Yolanda Sierra'ya burada açıklanan metodolojinin optimizasyonunda paha biçilmez destekleri için teşekkür ederiz. MLS, Avrupa Bölgesel Kalkınma Fonu (ERDF) tarafından ortaklaşa finanse edilen "Avrupa'yı Yapmanın Bir Yolu" olan Ministerio de Ciencia e Innovación, Instituto de Salud Carlos III (proje numarası PI17/01766 ve hibe numarası BA21/0030) tarafından desteklenmiştir; CIBERSAM (proje numarası CB07/09/0031); Delegación del Gobierno para el Plan Nacional sobre Drogas (proje numarası 2017/085); Fundación Mapfre; ve Fundación Alicia Koplowitz.  MCV, bu kurumun bursiyeri olarak Fundación Tatiana Pérez de Guzmán el Bueno ve AB Ortak Programı - Nörodejeneratif Hastalık Araştırması (JPND) tarafından desteklenmiştir. DRM, Consejería de Educación e Investigación, Comunidad de Madrid tarafından desteklendi ve Avrupa Sosyal Fonu "Geleceğinize Yatırım Yapmak" (hibe numarası PEJD-2018-PRE / BMD-7899) tarafından desteklendi. NLR, Instituto de Investigación Sanitaria Gregorio Marañón, "Programa Intramural de Impulso a la I+D+I 2019" tarafından desteklenmiştir. MD çalışmaları Ministerio de Ciencia e Innovación (MCIN) ve Instituto de Salud Carlos III (ISCIII) (PT20/00044) tarafından desteklenmiştir. CNIC, Instituto de Salud Carlos III (ISCIII), Ministerio de Ciencia e Innovación (MCIN) ve Pro CNIC Vakfı tarafından desteklenmektedir ve bir Severo Ochoa Mükemmeliyet Merkezidir (SEV-2015-0505).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
7-Tesla Biospec 70/20 tarayıcıBruker, AlmanyaSN0021Küçük hayvan görüntüleme için MRI tarayıcı
BetadineMeda Pharma S.L., İspanya644625.6İyot çözeltisi (iyodopovidon)
Beurer IL 11BeurerSN87318Kızılötesi ışık
Bipolar kablo 50 cm, 50 cm, 100 cm'ye kadar ağ kaplamasıile Plastics One, ABD305-305 (CM)
Bipolar kablo TT2  50 cm'den 100 cm'ye kadarPlastics One, ABD305-340/2Bipolar kablo TT2  50 cm'den 100 cm'ye kadar
BuprexSchering-Plough, S.A961425Buprenorfin (analjezik)
Ceftriaxona Reig Jofré 1g IMLaboratorio Reig Jofré S.A., İspanya624239.1Seftriakson (antibiyotik)
KomütatörPlastics One, ABDSL2 + 2Ciçin 4 Kanallı Komütatör
Plastics One, ABDMS303 / 8-AIU / SPCDBS Driller için Elektrotlar
BoshT58704Driller
FDGCurium Pharma Spain SA, İspanya-----2- [18F] floro-2-deoksi-D-glikoz (PET radyoizleyici)
Isıtma yastığıDAGA, İspanya23115Isıtma yastığı
KetolarPfizer SL, İspanya776211.9Ketamin (anestezik ilaç)
Lipolasik 2 mg / gBausch & Lomb SA, İspanya65277Oftalmik kayganlaştırıcı jel
MatLab R2021aMathWorks, IncSPM12
MRIcroMcCausland Beyin Görüntüleme Merkezi için destek yazılımı,  Güney Carolina Üniversitesi, ABDv2.1.58-0Görüntüleme ön işleme ve analizi için yazılım
Multimodalite İş İstasyonu (MMWKS)BiiG, İspanyaGörüntüleme işleme ve analiz için yazılım
Omicrom VISION VETRGB Tıbbi Cihazlar, İspanya731100 ReV BKüçük görüntüleme için kardiyorespiratuar monitör
Prevex Pamuk tomurcuklarıPrevex, Finlandiya-----Pamuk tomurcukları
SevoraneAbbVie İspanya, SLU, İspanya673186.4Sevofluran (inhalasyon anestezisi)
Küçük vidalarMax Witte GmbH1,2 x 2 DIN 84 A2Küçük vidalar
Sıçan için Standart U-Çerçeve Stereotaksik Alet, 18 derece; Kulak ÇubuğuHarvard Aparatı, ABD75-1801
İstatistiksel Parametrik Haritalama için İki Kollu Stereotaktik çerçeve (SPM12)İnsan Nörogörüntüleme için Wellcome Merkezi, UCL Queen Square Nöroloji Enstitüsü, İngiltereSPM12Voksel bazında görüntüleme analizi için yazılım
STG1004Multi Channel Systems GmbH, AlmanyaSTG1004İzole stimülatör
SuperArgus PET/CT tarayıcıSedecal, İspanyaS0026403Küçük hayvan görüntüleme için NanoPET/CT tarayıcı
İğneli sütür ipliği, 1/ºLorca Marí n S.A., İspanya55325Örgülü doğal ipek emilemeyen sütür 1/0, üçgen iğneli
Technovit 4004 (toz ve sıvı)Kulzer Tekniği, Almanya64708471; 64708474Kraniyotomi musluğu için akrilik diş çimentosu
Wistar sıçanları (Rattus norvergicus)Charles River, İspanyaHayvan tesisiKullanılan hayvan modeli
XylagesicLaboratorios Karizoo, A.A, İspanya572599-4Xylazine (anestezik ilaç)
Normon SA, İspanya602910Topikal kullanım için jel içinde Mepivakain
DBS Konsantrik bipolar platin-iridyum elektrotlar Sıçan

Kaynaklar

  1. Gildenberg, P. L. Neuromodulation: A historical perspective. Neuromodulation. 1, 9-20 (2009).
  2. Lee, D. J., Lozano, C. S., Dallapiazza, R. F., Lozano, A. M. Current and future directions of deep brain stimulation for neurological and psychiatric disorders. Journal of Neurosurgery. 131 (2), 333-342 (2019).
  3. Casquero-Veiga, M. Preclinical molecular neuroimaging in deep brain stimulation. Complutense University of Madrid. , Faculty of Medicine, Department of Pharmacology (2021).
  4. Blaha, C. D. Theories of deep brain stimulation mechanisms. Deep Brain Stimulation: Indictions and Applications. , Jenny Stanford Publishing. New York. 314-338 (2016).
  5. Fins, J. J. Deep brain stimulation: Ethical issues in clinical practice and neurosurgical research. Neuromodulation. 1, 81-91 (2009).
  6. Desmoulin-Canselier, S., Moutaud, B. Animal models and animal experimentation in the development of deep brain stimulation: From a specific controversy to a multidimensional debate. Frontiers in Neuroanatomy. 13, 51(2019).
  7. Casquero-Veiga, M., Hadar, R., Pascau, J., Winter, C., Desco, M., Soto-Montenegro, M. L. Response to deep brain stimulation in three brain targets with implications in mental disorders: A PET study in rats. PLOS One. 11 (12), 0168689(2016).
  8. Casquero-Veiga, M., García-García, D., Desco, M., Soto-Montenegro, M. L. Understanding deep brain stimulation: In vivo metabolic consequences of the electrode insertional effect. BioMed Research International. 2018, 1-6 (2018).
  9. Casquero-Veiga, M., García-García, D., Pascau, J., Desco, M., Soto-Montenegro, M. L. Stimulating the nucleus accumbens in obesity: A positron emission tomography study after deep brain stimulation in a rodent model. PLOS One. 13 (9), 0204740(2018).
  10. Pascau, J., Vaquero, J. J., Abella, M., Cacho, R., Lage, E., Desco, M. Multimodality workstation for small animal image visualization and analysis. Scientific Papers. Molecular Imaging and Biology. 8, 97-98 (2006).
  11. Paxinos, G., Watson, C. The Rat Brain in Stereotaxic Coordinates. , Academic Press. Sydney. (1998).
  12. Roy, M., et al. A dual tracer PET-MRI protocol for the quantitative measure of regional brain energy substrates uptake in the rat. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (82), e50761(2013).
  13. Klein, J., et al. A novel approach to investigate neuronal network activity patterns affected by deep brain stimulation in rats. Journal of Psychiatric Research. 45 (7), 927-930 (2011).
  14. Soto-Montenegro, M. L., Pascau, J., Desco, M. Response to deep brain stimulation in the lateral hypothalamic area in a rat model of obesity: In vivo assessment of brain glucose metabolism. Molecular Imaging and Biology. , 830-837 (2014).
  15. Pascau, J., et al. Automated method for small-animal PET image registration with intrinsic validation. Molecular Imaging and Biology. 11 (2), 107-113 (2009).
  16. Andersson, J. L. R. How to estimate global activity independent of changes in local activity. Neuroimage. 244 (60), 237-244 (1997).
  17. Wellcome Trust Centre for Neuroimaging SPM12-Statitstical Parametric Mapping. , Available from: https://www.fil.ion.ucl.ac.uk/spm/software/spm12/ (2022).
  18. Lozano, A. M., et al. Deep brain stimulation: current challenges and future directions. Nature Reviews Neurology. 15 (3), (2019).
  19. Boecker, H., Drzezga, A. A perspective on the future role of brain pet imaging in exercise science. NeuroImage. 131, (2016).
  20. Sprengers, M., et al. Deep brain stimulation reduces evoked potentials with a dual time course in freely moving rats: Potential neurophysiological basis for intermittent as an alternative to continuous stimulation. Epilepsia. 61 (5), 903-913 (2020).
  21. Middlebrooks, E. H., et al. Acute brain activation patterns of high- versus low-frequency stimulation of the anterior nucleus of the thalamus during deep brain stimulation for epilepsy. Neurosurgery. 89 (5), 901-908 (2021).
  22. Ashkan, K., Rogers, P., Bergman, H., Ughratdar, I. Insights into the mechanisms of deep brain stimulation. Nature Reviews Neurology. 13 (9), 548-554 (2017).
  23. Williams, N. R., Taylor, J. J., Lamb, K., Hanlon, C. A., Short, E. B., George, M. S. Role of functional imaging in the development and refinement of invasive neuromodulation for psychiatric disorders. World Journal of Radiology. 6 (10), 756-778 (2014).
  24. Rodman, A. M., Dougherty, D. D. Nuclear medicine in neuromodulation. Neuromodulation in Psychiatry. , John Wiley & Sons. West Sussex, UK. 81-99 (2016).
  25. Albaugh, D. L., Shih, Y. -Y. I. Neural circuit modulation during deep brain stimulation at the subthalamic nucleus for Parkinson's disease: what have we learned from neuroimaging studies. Brain Connectivity. 4 (1), 1-14 (2014).
  26. Mayberg, H. S., et al. Reciprocal limbic-cortical function and negative mood: Converging PET findings in depression and normal sadness. Neurology, and Radiology. 156 (5), 675-682 (1999).
  27. Kennedy, S. H., et al. Differences in brain glucose metabolism between responders to CBT and Venlafaxine in a 16-week randomized controlled trial. American Journal of Psychiatry. 164 (5), 778-788 (2007).
  28. Kennedy, S. H., et al. Changes in regional brain glucose metabolism measured with positron emission tomography after paroxetine treatment of major depression. American Journal of Psychiatry. 158 (6), 899-905 (2001).
  29. Brown, E. C., Clark, D. L., Forkert, N. D., Molnar, C. P., Kiss, Z. H. T., Ramasubbu, R. Metabolic activity in subcallosal cingulate predicts response to deep brain stimulation for depression. Neuropsychopharmacology. 45, 1681-1688 (2020).
  30. Klooster, D. C. W., et al. Technical aspects of neurostimulation: Focus on equipment, electric field modeling, and stimulation protocols. Neuroscience & Biobehavioral Reviews. 65, 113-141 (2016).
  31. Kasoff, W., Gross, R. E. Deep brain stimulation: Introduction and Technical Aspects. Neuromodulation in Psychiatry. , John Wiley & Sons. West Sussex, UK. 245-275 (2016).
  32. Perez-Caballero, L., et al. Early responses to deep brain stimulation in depression are modulated by anti-inflammatory drugs. Molecular Psychiatry. 19, 607-614 (2014).
  33. Solera Ruiz, I., UñaOrejón, R., Valero, I., Laroche, F. Craniotomy in the conscious patient. Considerations in special situations. Spanish Journal of Anesthesiology and Resuscitation. 60 (7), 392-398 (2013).
  34. Casali, M., et al. State of the art of 18F-FDG PET/CT application in inflammation and infection: a guide for image acquisition and interpretation. Clinical and Translational Imaging. 9 (4), 299-339 (2021).
  35. Gonzalez-Escamilla, G., Muthuraman, M., Ciolac, D., Coenen, V. A., Schnitzler, A., Groppa, S. Neuroimaging and electrophysiology meet invasive neurostimulation for causal interrogations and modulations of brain states. NeuroImage. 220, 117144(2020).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Etiketler

FDG PET G r nt lemeBeyin MetabolizmasStereotaktik CerrahiPrefrontal KorteksElektrot mplantasyonuSinir A AktivitesiS an Beyni G r nt lemeVoksel Tabanl Analiz
İn vivo Sıçanlarda Derin Beyin Stimülasyonunun İndüklediği Aktivite Kalıplarını Ortaya Çıkarmak için Pozitron Emisyon Tomografisi
Bize Ulaşın
Kütüphaneye Öner

Gizlilik

Kullanım Koşulları

Politikalar

Telif Hakkı © 2026 MyJoVE Corporation. Tüm hakları saklıdır.