Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliğiniz gereklidir. Giriş yapın veya ücretsiz denemenizi bugün başlatın.

Yöntem makalesi

Sıçanlarda Derin Hipotermik Dolaşım Tutuklamasının Kurulması

2.4K görüntülenme

⸱

DOI:

10.3791/63571

⸱

16 Aralık 2022

 , 
1Department of Cardiopulmonary Bypass, National Center for Cardiovascular Disease and Fuwai Hospital, State Key Laboratory of Cardiovascular Medicine, Chinese Academy of Medical Science, Peking Union Medical College

Bu makalede

Özet

Bu protokol, sıçanlarda sistemik inflamatuar yanıt sendromu, iskemi/reperfüzyon hasarı, oksidatif stres, nöroinflamasyon vb. araştırmaları için uygulanabilecek derin hipotermik dolaşım durmasının kurulmasını sağlar.

Özet

Derin hipotermik dolaşım durması (DHCA), kompleks konjenital kalp hastalığı ve aort ark hastalığı için ameliyatlar sırasında rutin olarak uygulanır. Bu çalışma, sıçanlarda DHCA kurulması için bir yöntem sağlamayı amaçlamaktadır. DHCA sürecinin vital bulgular üzerindeki etkisini değerlendirmek için, kontrol olarak dolaşım durması olmadan normal bir sıcaklık kardiyopulmoner bypass (CPB) sıçan modeli kullanılmıştır. Beklendiği gibi, DHCA vücut ısısında ve ortalama arteriyel kan basıncında önemli bir düşüşe neden oldu. Kan gazı analizi, DHCA'nın laktik asit seviyelerini arttırdığını, ancak kan pH'ını ve hemoglobin, hematokrit, Na +, Cl-, K + ve glikoz konsantrasyonlarını etkilemediğini göstermiştir. Ayrıca, normal sıcaklık CPB sıçanları ile karşılaştırıldığında, iletim elektron mikroskobunun sonuçları, DHCA sıçanlarında hipokampal otofagozomlarda hafif bir artış göstermiştir.

Giriş

Derin hipotermik dolaşım durması (DHCA) 1953 yılından beri kalp cerrahisinde kullanılmaktadır1. DHCA, vücuda kan akışını küresel olarak kesmeden önce hastanın çekirdek sıcaklığını derin hipotermik seviyelere (15-22 ° C) düşürmeyi içerir2. Dolaşım durması nispeten kansız bir çalışma alanı sağlayabilir. Derin hipotermi, özellikle beyinde ve miyokardda metabolizmayı azaltır, bu da iskemiye karşı etkili bir koruma yöntemidir3. DHCA, kompleks konjenital kalp hastalığı, aort ark hastalığı ve hatta vena kava trombüsü 4,5 olan böbrek veya adrenal tümörler için yapılan ameliyatlar sırasında yaygın olarak uygulanır. Bu nedenle, DHCA hayvan modellerinin oluşturulması, prosedürün iyileştirilmesi ve klinik ortamlarda komplikasyonların önlenmesi için önemli bir referans sağlar.

Modeller köpekler6, tavşanlar7 ve diğer hayvanlarla kurulabilse de, çalışabilirlikleri ve düşük maliyetleri nedeniyle sıçanların kullanılması tercih edilir. DHCA sıçan modeli ilk kez 2006 yılında Jungwirth ve ark.8 tarafından tanımlanmıştır. Dolaşım durması süresinin nörolojik sonuçlar üzerinde etkili olduğu bulundu. O zamandan beri, DHCA sıçan modelleri geniş çapta araştırılmıştır. DHCA'nın sistemik inflamatuar yanıt sendromunu (SIRS)9 tetikleyebileceği açıklığa kavuşturulmuştur. Daha sonraki çalışmalarda, farmakologlar, SIRS tarafından indüklenen DHCA ile ilişkili nöroinflamasyonun resveratrol10 ve triptolid11 ile zayıflatılabileceğini bulmuşlardır. Ekibimiz ayrıca, DHCA ile ilişkili nöroinflamasyonun, soğuk indüklenebilir RNA bağlayıcı protein12'yi inhibe ederek zayıflatılabileceğini bulmuştur. Kardiyovasküler sistemde, süperoksit dismutaz, DHCA13 sırasında iskemi / reperfüzyon (I / R) yaralanmaları üzerinde kardiyoprotektif bir etkiye sahiptir. Bu sonuçlar, DHCA ile ilişkili patofizyolojik süreçlerin anlaşılmasını genişletti ve DHCA'nın sonuçlarını iyileştirmek için yeni yönler sundu. Bununla birlikte, DHCA sonrası endotoksemi, oksidatif stres ve otofaji ile ilgili sonuçlar yetersizdir. DHCA, kardiyopulmoner bypass (CPB)14 ile aynı operasyonel teknolojiyi kullanır, ancak yönetim stratejisi farklıdır ve DHCA'yı üretme adımları çeşitli ekipler arasında farklılık gösterir 8,9,10,11. Bu çalışma, sıçanlarda DHCA prosedürünün oluşturulması için bir yöntem sağlamayı amaçlamaktadır.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Protokol

Protokoller kurumsal bir incelemeden geçti ve Kurumsal Hayvan Bakımı ve Kullanımı Komitesi, Fuwai Hastanesi, Çin Tıp Bilimleri Akademisi'nden (FW-2021-0005) onay aldı. Tüm deneysel prosedürler, Ulusal Sağlık Enstitüleri tarafından yayınlanan Laboratuvar Hayvanlarının Bakımı ve Kullanımı Kılavuzu'na uygun olarak gerçekleştirilmiştir.

NOT: Erkek Sprague-Dawley sıçanları (ağırlık: 500-600 g, yaş: 12-14 hafta) standart laboratuvar koşullarında yiyecek ve suya serbest erişimle tutulmuştur. Sıçanlar rastgele iki gruba ayrıldı (n = 6, her grup): DHCA grubu ve normal sıcaklık CPB grubu (NtCPB grubu).

1. Hazırlık çalışmaları

  1. Deneyden önce cerrahi aletleri (forseps, makas, mikro forseps, elektrokoagülatör, tıraş makinesi vb.) sterilize edin (Şekil 1).
  2. 2-0 ipek, 16 G kanül (endotrakeal kateter), 22 G kanül, ev yapımı 16 G kanül (multi-delikli intravenöz kateter), enjeksiyon şırıngaları, gazlı bez ve bant içeren sarf malzemelerinin kullanılabilirliğini sağlayın.
    NOT: Ev yapımı 16 G kanül için, kanülün ucunda 2 mm çapında iki veya üç deliği kesmek için bir neşter kullanın, bu da venöz drenajın daha pürüzsüz hale getirilmesine yardımcı olacaktır.
  3. Sevofolran,% 2 lidokain, salin, heparin (5 IU / mL, 250 IU / mL), epinefrin (40 μg / mL), norepinefrin (20 μg / mL), hidroksietil nişasta ve bikarbonat mevcudiyetini sağlayın.
  4. DHCA devrelerinin bir rezervuar (Murphy'nin damlalığından modifiye edilmiş), bir makaralı pompa, bir ısı eşanjörü, bir membran oksijenatör, bağlantı tüpleri ve bir su deposu içerdiğinden emin olun (Şekil 2). Devreyi bağlayın ve 12 mL hidroksietil nişastayı 1 mL heparin sodyum (250 IU) ve 1 mL salin ile karıştırın. Devreyi 14 mL astarlama çözeltisi ile makaralı pompa hafifçe dönerken (10-40 mL/dak) astarlayın.
    NOT: Rezervuar, Murphy'nin damlalığı ile bir kan transfüzyon cihazından yeniden kalıplanır. Damlalığın venöz giriş kısmı 10-15 cm'de kalır ve venöz çıkış kısmı 10 cm'de kalır.

2. Anestezi ve kanülasyon

  1. Sıçanları% 2-3% sevofluran ile anestezi altına alın ve daha sonra sıçan bilincini kaybettikten sonra konjonktival refleks ve kas gevşemesinin eksikliğini test edin.
    NOT: Konjonktival refleks, korneaya her dokunulduğunda göz kapağının anında kapanmasını ifade eder. Korneaya hafifçe dokunmak için pamuklu çubuk kullanın. Anestezi derinliği yeterli olduğunda göz kapakları kapanmayacaktır.
  2. Konjonktival refleks kaybolduktan ve kas direnci gözlenmedikten sonra 16 G kanül ile endotrakeal entübasyon yapın. Tüpü bir vantilatöre bağlayın ve ventilatör üzerindeki düğmelere tıklayarak parametreleri ayarlayın (gelgit hacmi: 1.0-1.2 mL / 100g, kalp atış hızı: dakikada 80 atım [bpm], I: E = 1: 1, ilham veren oksijen fraksiyonu: % 60).
  3. Sıçanın altına elektrikli bir ısıtma battaniyesi koyun ve sıçanı bantla sabitleyin. Kuruluğu önlemek için gözlere oftalmik merhem uygulayın. Sol kasık bölgesindeki, sağ servikal bölgedeki ve kuyruktaki saçları tıraş makinesi ile tıraş edin. Ardından, cildi iyot ve alkolle üç kez dezenfekte edin.
  4. Sonraki adımlara geçmeden önce anestezi derinliğini kontrol edin. Solunum hızı ventilatör tarafından ayarlanandan daha yüksekse (80 bpm) veya kas sertliği varsa, sevofluran çıkış konsantrasyonunu arttırın.
    NOT: Anestezi derinliği yeterli olduğunda, solunum ritmi ventilatör ile senkronize edilmeli ve kaslar gerginlik olmadan tamamen gevşetilmelidir. Sıçanın prosedür boyunca herhangi bir bilinç dönüşü yaşamadığından emin olmak için her 30 dakikada bir anestezi derinliğini kontrol edin.
  5. Sol kasık bölgesinde (yaklaşık 1 cm) cildi kesmek için bir neşter kullanın ve sol femoral ven ve arteri açığa çıkarmak için kas ve dokuyu yumuşak bir şekilde disseke edin. Arteri dikkatlice ayırın.
  6. Sol femoral artere 22 G intravenöz kateteri kanüle edin. Arteri ve kateteri 2-0 ipek ile (kanülasyon bölgesinde) bağlayın. Pıhtılaşmayı önlemek amacıyla kanülü yıkamak için salin içeren heparin (5 UI / mL) kullanın. Kan basıncını izlemek için kateteri basınç sensörüne bağlayın.
  7. Kuyruğun derisini (yaklaşık 1,5 cm) kesin ve daha sonra cerrahi alanın ortasında bulunan kuyruk arterini ortaya çıkarmak için kuyruk arterinin yüzeysel fasyasını kesmek için bir neşter kullanın.
  8. Kuyruk arterini 22 G intravenöz kateter ile kanüle edin. Arteri ve kateteri 2-0 ipek ile (kanülasyon bölgesinde) bağlayın. Pıhtılaşmayı önlemek için kateteri yıkamak için salin içeren heparin (5 UI / mL) kullanın.
    NOT: İntravenöz kateteri kanüle ederken, sol el forseps ile arteri / veni tutar ve sağ el kateterin içindeki iğne ile arteri / damarı delir ve daha sonra kanülü artere koyar.
  9. Sağ juguler vendeki cildi kesin (yaklaşık 2 cm) ve ardından damarı açığa çıkarmak için kas ve dokuyu ayırın. Sağ dış juguler ven içine 16 G ev yapımı çok delikli bir intravenöz kateter yerleştirin ve sağ inferior vena kavaya veya sağ atriyuma dikkatlice yerleştirin.
    NOT: Sol femoral ven ve arter sol kasık bölgesinin yüzeyinin altındadır. Damar arterden daha kalındır ve arterlerin kan rengi parlak kırmızıdır. Sağ juguler ven sağ servikal bölgenin ortasındadır; cilt kesildiğinde ve kaslar ayrıldığında, damar görülebilir (yaklaşık 0.3-0.4 cm genişliğinde). Kateterin ucu sağ atriyuma dokunduğunda, kan basıncı dalgası dalgalanacaktır. Daha sonra kateteri biraz geriye çektikten sonra kateterin ucu superior vena kavada olacaktır.
  10. Heparin sodyumu (500 IU / kg) sağ dış damardan uygulayın. Kirlenmeyi önlemek için her bir kanül bölgesini nemli gazlı bezle örtün.
    NOT: Yaklaşık 40 cm yükseltmek için ameliyat masasının altına bir kutu koyun.

3. DHCA başlatma

  1. DHCA devresini önce kuyruk arterindeki kateterle bağlayın ve pompa akış hızını 1-2 mL / dak'da tutun. Ardından, rezervuarı sağ dış juguler vendeki kateter ile bağlayın. Rezervuarda her zaman yaklaşık 1 cm'lik bir kan seviyesi olduğundan emin olun.
  2. Su deposunu açın ve önce su sıcaklığını 37 ° C'ye ayarlayın.
  3. Kan basıncı stabil hale geldikten sonra, kanı pompalamak için pompa akışını yavaşça 80-100 mL / kg / dak'ya kadar artırın.

4. Soğutma

  1. Oda sıcaklığını yaklaşık 20 °C olarak ayarlayın. Buz küplerini tek kullanımlık eldivenlere koyun ve ardından sıçanın kafasına ve yanlarına yerleştirin. Tankın sıcaklığını, sıçanların rektal sıcaklığına göre gerçek zamanlı olarak ayarlayın.
  2. Sol femoral arterden 0.1 mL kan toplayın ve kan gazı analizi için kan gazı makinesine yerleştirin. Ventilatörün ilgili parametrelerini kan gazı analizi sonuçlarına göre uygun şekilde değiştirin (örneğin, PaCO2).
    NOT: Kalp atış hızı ve kan basıncı değişebilir ve pompa akış hızı buna göre ayarlanmalıdır. Su deposu ile sıçan arasındaki sıcaklık gradyanı 10 ° C'den az olmalıdır. Sıcaklığın 30 dakika içinde 15-20 ° C'ye düşürülebildiğinden emin olun. PaCO2'nin normal aralığı 35-45 mmHg'dir. Kan gazı sonuçları daha düşük bir PaCO2 gösteriyorsa, gelgit hacmini azaltabilir ve bunun tersi de geçerlidir.

5. Derin hipotermik dolaşım durması

  1. Rektal sıcaklık 15-20 ° C'ye düştüğünde, dolaşım durması sırasında derin hipoterminin korunmasını sağlamak için tek kullanımlık eldivenleri (buz içeren) değiştirin.
  2. Makaralı pompayı durdurun, rezervuarı çevre ile temas halinde tutun ve kanı yavaşça dış juguler damardan rezervuara boşaltın.
  3. Kan basıncı dalga formuna dikkat edin. Kan basıncı ve kalp atış hızı 0 olduğunda, drenajı durdurun ve rezervuarı kapalı tutun. Vantilatörünü kapatın.
    NOT: Dolaşım durmasının süresi, deneyin amacına göre değişir.

6. Isınma ve reperfüzyon

  1. Tüm tek kullanımlık eldivenleri çıkarın ve oda sıcaklığını 25 ° C'ye yükseltin. Venöz drenaj tüpünün kesilmesini sürdürürken membran oksijenatör ventilasyonunu geri yükleyin. Rezervuardaki kanın yavaşça sıçanın vücuduna geri döndüğünden emin olmak için makaralı pompayı açın.
  2. Vantilatörünü açın. Rezervuardaki kan seviyesi 1 cm'de kaldığında, drenaj tüpünü gevşetin ve kanı sağ atriyumdan rezervuara yavaşça boşaltın.
  3. Isıtma lambasını, ısıtma yastığını ve su deposunu açın. Öncelikle su tankının sıcaklığını 25 ° C'ye ayarlayın ve ardından çıkış sıcaklığını sıçanın rektal sıcaklığına göre zamanında ayarlayın.
    NOT: Isıtma lambası, sıçan göğüs boşluğundaki büyük kan damarlarına yönlendirilmeli ve dokuların yanmasını önlemek için belirli bir mesafede tutulmalıdır. Çıkış sıcaklığı ile sıçanın rektal sıcaklığı (<10 ° C) arasındaki sıcaklık farkına dikkat edin. Gerekirse, kan gazını test edin ve ardından ventilatör parametrelerini buna göre ayarlayın ve bikarbonat, elektrolitler vb. Uygulayın.
  4. Rektal sıcaklık 34 °C'ye döndükten sonra ısıtma lambasını çıkarın.
    NOT: Bu adım, hızlı yeniden ısınma sürecinin bir devamı olarak, yavaş olmalıdır. Bu aşamada, sevofluran buharlaştırıcının, mekanik vantilatörün ve makaralı pompanın ekipman parametreleri, CPB'nin başlangıcındaki seviyelere geri yüklenebilir.

7. CPB'den vazgeçmek

  1. Makaralı pompa akış hızını yavaşça ve kademeli olarak azaltın ve akış hızı 1 mL / dak'ya düşene kadar venöz drenaj hızını ayarlayın.
    NOT: Her akış hızı ayarı 3-5 dakika boyunca gözlemlenmelidir.
  2. Rezervuarı çevre ile temas halinde tutun (rezervuar kapağını çıkararak). Devrede kalan kanı 1 mL/dak akış hızıyla aşılayın.
  3. Membran oksijenasyonunu ve makaralı pompayı durdurun.
  4. Derin anestezi altında bir süre mekanik ventilasyondan sonra sıçanı ötenazileştirin.
    NOT: Bu bir terminal yordamıdır. CPB'den ayrılma ve ötenazi arasındaki süre, farklı çalışma protokollerine göre değişir. Yaraları iyot ve alkolle dezenfekte etmeyi ve ardından ötenaziden önce kontaminasyonu önlemek için her kanüllenmiş bölgeyi nemli gazlı bezle örtmeyi unutmayın. Anestezi derinliğini arttırmak için sevoflurane çıkış konsantrasyonunu arttırın.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

Kontrol grubu olarak, dolaşım durması olmayan normal sıcaklıktaki CPB (NtCPB) sıçanları, tüm prosedür boyunca stabil bir ortalama arteriyel kan basıncı (MAP) ve vücut ısısı gösterirken, DHCA sıçanlarının MAP'si kalp durması sırasında azalmıştır (p < 0.01, Şekil 3A). DHCA sıçanlarının sıcaklığı soğutma aşamasında hızla düştü ve yeniden ısınma aşamasında kademeli olarak iyileşti. Sıçanları DHCA devrelerinden ayırırken, DHCA sıçanlarının sıcaklığı normale döndü (

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

Kanülasyon, sıçanlarda DHCA oluşturmak için en temel prosedürdür. Kanülasyondan önce, arteri 0.5 mL% 2 lidokain ile ıslatmak kanülasyonu kolaylaştıracaktır. Kanülasyondan sonra, mikrotrombüs oluşumunu önlemek için eksternal juguler ven yoluyla 500 IU/kg heparin ile heparinizasyon gereklidir17. Bu heparin dozunun aktif pıhtılaşma süresi (ACT) hedefine >480 sn ulaşabileceğini defalarca bulduk. Yeniden ısınma dönemi en zor kısımdır. Deneyimizde sıcaklığın 18 ° C'den 34 ° C'ye yükselmesi 60 d...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

Yazarların açıklayacak hiçbir şeyleri yoktur.

Teşekkürler

Yazarlar, deney sırasında video verilerinin toplanmasına yardımcı olduğu için Liang Zhang'a teşekkür ediyor. Bu çalışma, Çin Ulusal Doğa Bilimleri Vakfı (Hibe numarası: 82070479) ve Merkezi Üniversiteler için Temel Araştırma Fonları (Hibe numarası: 3332022128) tarafından desteklenmiştir.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
Isı EşanjörüXi' bir Xijing Tıbbi Cihaz Co, LtdHayvan-M
Membran OksijenatörDongguan Kewei Tıbbi Alet Co, LtdMicro-M Monitör
Chengdu Techman Co., LtdBL-420s
Makaralı PompaChangzhou Prefluid Technology Co., LtdBL100
SD SıçanHFK Bioscience Co., Ltd./
SevofluraneMaruishi İlaç Co, LtdH20150020
Tıraş MakinesiHangzhou Huayuan Pet Products Co., Ltd./
BuharlaştırıcıSPACECABS/
VantilatörŞangay Alcott Biotech Co., LtdALC-V8S
Su DeposuMaquet Kritik Bakım ABJostra HCU20-600

Kaynaklar

  1. Lewis, F. J., Taufic, M. Closure of atrial septal defects with the aid of hypothermia; experimental accomplishments and the report of one successful case. Surgery. 33 (1), 52-59 (1953).
  2. Miler, R. D., et al. Miller's Anesthesia., eighth edition. , Saunders. Philadephia, US. (2015).
  3. Gocoł, R., et al. The role of deep hypothermia in cardiac surgery. International Journal of Environmental Research and Public Health. 18 (13), 7061(2021).
  4. Zhu, P., et al. The role of deep hypothermic circulatory arrest in surgery for renal or adrenal tumor with vena cava thrombus: A single-institution experience. Journal of Cardiothoracic Surgery. 13 (1), 85(2018).
  5. Poon, S. S., Estrera, A., Oo, A., Field, M. Is moderate hypothermic circulatory arrest with selective antegrade cerebral perfusion superior to deep hypothermic circulatory arrest in elective aortic arch surgery. Interactive Cardiovascular and Thoracic Surgery. 23 (3), 462-468 (2016).
  6. Giuliano, K., et al. Inflammatory profile in a canine model of hypothermic circulatory arrest. Journal of Surgical Research. 264, 260-273 (2021).
  7. Wang, Q., et al. Hyperoxia management during deep hypothermia for cerebral protection in circulatory arrest rabbit model. ASAIO Journal. 58 (4), 330-336 (2012).
  8. Jungwirth, B., et al. Neurologic outcome after cardiopulmonary bypass with deep hypothermic circulatory arrest in rats: Description of a new model. Journal of Thoracic and Cardiovascular Surgery. 131 (4), 805-812 (2006).
  9. Engels, M., et al. A cardiopulmonary bypass with deep hypothermic circulatory arrest rat model for the investigation of the systemic inflammation response and induced organ damage. Journal of Inflammation. 11, 26(2014).
  10. Chen, Q., Sun, K. P., Huang, J. S., Wang, Z. C., Hong, Z. N. Resveratrol attenuates neuroinflammation after deep hypothermia with circulatory arrest in rats. Brain Research Bulletin. 155, 145-154 (2020).
  11. Chen, Q., Lei, Y. Q., Liu, J. F., Wang, Z. C., Cao, H. Triptolide improves neurobehavioral functions, inflammation, and oxidative stress in rats under deep hypothermic circulatory arrest. Aging. 13 (2), 3031-3044 (2021).
  12. Liu, M., et al. A novel target to reduce microglial inflammation and neuronal damage after deep hypothermic circulatory arrest. Journal of Thoracic and Cardiovascular Surgery. 159 (6), 2431-2444 (2020).
  13. Pinto, A., et al. The extracellular isoform of superoxide dismutase has a significant impact on cardiovascular ischaemia and reperfusion injury during cardiopulmonary bypass. European Journal of Cardio-Thoracic Surgery. 50 (6), 1035-1044 (2016).
  14. Hirao, S., Masumoto, H., Itonaga, T., Minatoya, K. A recovery cardiopulmonary bypass model without transfusion or inotropic agents in rats. Journal of Visualized Experiments. (133), e56986(2018).
  15. Ha, J. Y., Kim, J. S., Kim, S. E., Son, J. H. Simultaneous activation of mitophagy and autophagy by staurosporine protects against dopaminergic neuronal cell death. Neuroscience Letters. 561, 101-106 (2014).
  16. Yamamoto, A., Yue, Z. Autophagy and its normal and pathogenic states in the brain. Annual Review of Neuroscience. 37, 55-78 (2014).
  17. You, X. M., et al. Rat cardiopulmonary bypass model: Application of a miniature extracorporeal circuit composed of asanguinous prime. Journal of Extra-Corporeal Technology. 37 (1), 60-65 (2005).
  18. Chen, Q., Lei, Y. Q., Liu, J. F., Wang, Z. C., Cao, H. Beneficial effects of chlorogenic acid treatment on neuroinflammation after deep hypothermic circulatory arrest may be mediated through CYLD/NF-κB signaling. Brain Research. 1767, 147572(2021).
  19. Li, Y. A., et al. Differential expression profiles of circular RNAs in the rat hippocampus after deep hypothermic circulatory arrest. Artificial Organs. 45 (8), 866-880 (2021).
  20. Linardi, D., et al. Slow versus fast rewarming after hypothermic circulatory arrest: effects on neuroinflammation and cerebral oedema. European Journal of Cardiothoracic Surgery. 58 (4), 792-780 (2020).
  21. Engelman, R., et al. The Society of Thoracic Surgeons, The Society of Cardiovascular Anesthesiologists, and The American Society of ExtraCorporeal Technology: Clinical practice guidelines for cardiopulmonary bypass--Temperature management during cardiopulmonary bypass. Annals of Thoracic Surgery. 100 (2), 748-757 (2015).
  22. Jenke, A., et al. AdipoRon attenuates inflammation and impairment of cardiac function associated with cardiopulmonary bypass-induced systemic inflammatory response syndrome. Journal of the American Heart Association. 10 (6), 018097(2021).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Etiketler

Kardiyopulmoner BypassSıçan ModeliKan Gazı AnaliziOrtalama Arteriyel BasınçHipokampal OtofazozomlarTransmisyon Elektron MikroskobuNöroinflamasyonSistemik İnflamatuar YanıtVücut Sıcaklığı
Sıçanlarda Derin Hipotermik Dolaşım Tutuklamasının Kurulması
Bize Ulaşın
Kütüphaneye Öner

Gizlilik

Kullanım Koşulları

Politikalar

Telif Hakkı © 2026 MyJoVE Corporation. Tüm hakları saklıdır.