Mevcut protokol, aynı anda birden fazla beyin yapısından in vivo olarak yerel alan potansiyellerini kaydetmek için özel yapım mikroelektrot dizilerinin yapımını açıklamaktadır.
Araştırmacıların genellikle birkaç beyin yapısından aynı anda yerel alan potansiyellerini (LFP’ler) kaydetmeleri gerekir. İstenilen birden fazla beyin bölgesinden kayıt yapmak farklı mikroelektrot tasarımları gerektirir, ancak ticari olarak temin edilebilen mikroelektrot dizileri genellikle böyle bir esneklik sunmaz. Burada, mevcut protokol, LFP’leri aynı anda farklı derinliklerde birden fazla beyin yapısından kaydetmek için özel yapım mikroelektrot dizilerinin basit tasarımını özetlemektedir. Bu çalışmada bilateral kortikal, striatal, ventrolateral talamik ve nigral mikroelektrotların yapımına örnek olarak anlatılmaktadır. Özetlenen tasarım prensibi esneklik sunar ve mikroelektrotlar, stereotaksik koordinatları hesaplayarak ve yapıyı serbestçe hareket eden veya anestezi uygulanan farelerde farklı beyin bölgelerini hedeflemek için buna göre hızlı bir şekilde değiştirerek LFP’leri herhangi bir yapıdan kaydetmek için değiştirilebilir ve özelleştirilebilir. Mikroelektrot tertibatı standart alet ve sarf malzemeleri gerektirir. Bu özel mikroelektrot dizileri, araştırmacıların nöronal aktiviteyi izlemek için herhangi bir konfigürasyonda mikroelektrot dizilerini kolayca tasarlamalarına olanak tanır ve LFP kayıtlarını milisaniye çözünürlükte sağlar.
Yerel alan potansiyelleri (LFP’ler), beyindeki hücre dışı alandan kaydedilen elektrik potansiyelleridir. Nöronların dışındaki iyon konsantrasyonu dengesizlikleri tarafından üretilirler ve küçük, lokalize bir nöron popülasyonunun aktivitesini temsil ederler ve makro ölçekli EEG kayıtlarına kıyasla belirli bir beyin bölgesinin aktivitesini tam olarak izlemeye izin verirler1. Bir tahmin olarak, 1 mm ile ayrılmış LFP mikroelektrotları, tamamen farklı iki nöron popülasyonuna karşılık gelir. EEG sinyali beyin dokusu, beyin omurilik sıvısı, kafatası, kas ve cilt tarafından filtrelenirken, LFP sinyali lokal nöronal aktivitenin güvenilir bir belirtecidir1.
Araştırmacıların genellikle LFP’leri birkaç beyin yapısından aynı anda kaydetmeleri gerekir, ancak ticari olarak temin edilebilen mikroelektrot dizileri genellikle böyle bir esneklik sunmaz. Burada, mevcut protokol, LFP’leri istenen herhangi bir beyin bölgesinden farklı derinliklerde aynı anda kaydetmek için tamamen özelleştirilebilir, kolayca oluşturulmuş mikroelektrotları tanımlamaktadır. LFP’ler, belirli bir beyin bölgesinin nöronal aktivitesini kaydetmek için yaygın olarak kullanılmasına rağmen 2,3,4,5,6,7,8,9, mevcut kolay özelleştirilebilir tasarım, LFP’lerin herhangi bir çoklu yüzeysel veya derin beyin bölgesinden kaydedilmesine izin verir 11,12 . Protokol ayrıca, beyin bölgelerinin stereotaksik koordinatlarını belirleyerek ve diziyi buna göre monte ederek istenen herhangi bir mikroelektrot dizisini oluşturmak için değiştirilebilir. 10 kHz örnekleme hızına ve 60-70 kΩ dirence (2 cm uzunluk) sahip bu mikroelektrotlar, LFP’leri milisaniye hassasiyetiyle kaydetmemizi sağlar. Veriler daha sonra 16 kanallı bir amplifikatör ile güçlendirilebilir, filtrelenebilir (düşük geçişli 1 Hz, yüksek geçişli 5 kHz) ve sayısallaştırılabilir.
Mevcut çalışma Virginia Üniversitesi Hayvan Bakım ve Kullanım Komitesi tarafından onaylanmıştır. Deneyler için her iki cinsiyetten (7-12 hafta) C57Bl / 6 fareler kullanıldı. Hayvanlar 12 saat ışık / 12 saat karanlık döngüde tutuldu ve yiyecek ve suya ad libitum erişimi vardı.
1. Mikroelektrot yapımı
Resim 1: Mikroelektrot yapısının şeması . (A) Tellerin altında gergi çubukları bulunan platform üzerinde tellerin kurulması. (B) Teller arasındaki boşluk. (C) Tellere dört parça plastik yapıştırılır. Bu şeklin daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.
Arjantin | Sokaklar | VL | SNR | |
AP (Anterior/Posterior) | 2.2 | 1.2 | -1.3 | -3.3 |
ML (Medial/Yanal) | 1.8 | 1.5 | 1 | 1.5 |
DV (Dorsal/Ventral) | 0.5 | 3.5 | 4 | 4.75 |
Elektrot uzunluğu | 4 | 4.75 | 5.25 | 6 |
Tablo 1: Stereotaksik implantasyon koordinatları ve mikroelektrotların boyutları.
2. Mikroelektrot dizisi montajı
Şekil 2: Mikroelektrot yapısı ve boyutları. (A) Şekil 1C’de belirtildiği gibi, teller makasla kesildikten sonra oluşan dört çift elektrot (2 çift Ctx-VL elektrot ve 2 çift Str-SNR elektrot). Cam tüplere derin yapı elektrotları (VL ve SNR) yerleştirin ve tabanlarını plastiğe (kırmızı noktalar) yapıştırın. (B) Üstten görünüm: (A)’dan gelen elektrot çiftleri, mikroelektrot çekirdeğini oluşturmak için bir yığına yapıştırılır. Kırmızı çizgiler tutkal çizgilerini gösterir. (C) (B)’nin önden görünümü. (D) Kalın tel mikroelektrotlara bağlandı. (E) Teller belirtildiği gibi gruplandırılmıştır ve izole uçlar kazınarak 2 cm’ye kesilir.
3. Kulaklığa mikroelektrot bağlantısı
Şekil 3: Mikroelektrot implantasyonu . (A) Kortikal elektrotlar belirtildiği gibi bükülür. (B) Teller, uçlarda ilmekler oluşturacak şekilde ayrılır. (C) Akı (kırmızı noktalarda) ve döngülü teller 10 pimli kulaklığa lehimlenir ve her telin uygun pime gitmesi sağlanır. (D) Kulaklık, LFP’leri kaydetmek için implante edilmiştir. Bu rakamın daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.
4. Kayıtlardan sonra elektrot konumunu işaretleme
5. Elektrot direncinin ölçülmesi
Tarihsel olarak, mikroelektrot dizileri, 2,3,4,5,6,7,8,9,13 ile ilgilenilen belirli bir beyin bölgesinden nöronal aktiviteyi kaydetmek için yaygın olarak kullanılmıştır. Bununla birlikte, kolay mikroelektrot tasarımımız aynı anda birden fazla yapıdan kayıt yapılmasına izin verir11,12. Burada, kortikal, talamik, striatal ve nigral mikroelektrotların yapısı örnek olarak açıklanmaktadır. Araştırmacılar, gerekli stereotaksik mesafeleri hesaplayarak ve konstrüksiyonu buna göre ayarlayarak mikroelektrot tasarımını istenen herhangi bir yapıya uyacak şekilde değiştirebilirler.
Örneğin, daha önce bu mikroelektrot dizilerinin tasarımını, hipokampus12’deki lameller ve septotemporal yönde LFP’leri kaydetmek için değiştirdik. 50 μm’lik bir aralık teli, sinyalin çapraz kontaminasyonunu önlemek için hipokampal lamina boyunca kaydedilen dört mikroelektrot olarak bitişik elektrotları ayırdı. Bunlar tek birimli kayıtlar olmasa da, her elektrot, hücre gövdesinden uzaklığın bir fonksiyonu olarak bir başak dalga formunun değişkenliği ile gösterildiği gibi küçük bir nöron grubunu temsil ediyordu.
İnşaat sırasında, talamik ve nigral mikroelektrot tellerinin cam tüplere sokulması, bu derin yapıları hedeflemek için implantasyon cerrahisi sırasında stabilite sağlamak için gerekliydi. Sekiz bilateral mikroelektrot vardı, bunlardan dördü cam tüplere (2 VL ve 2 SNR) sahipti ve bunlar kafa içi basıncı yükseltmeden ve mortaliteyi arttırmadan önce bir sınırdı. Genel olarak, istenen yerleştirme derinliği en az 2 mm olduğunda cam tüplere ihtiyaç duyulur.
Ayrıca, elektrotlar arasındaki minimum mesafe ayrımını 0,5 mm ile sınırlayan 0,5 mm kalınlığında plastiğe ihtiyaç vardı, ancak diğer plastikler kullanılabilirdi. Mevcut durumda, plastikler kulaklığın ana ekseni boyunca yerleştirildi. Plastikler, birkaç elektrotun aynı ön-arka (AP) ancak farklı medial-lateral (ML) koordinatlara sahip olduğu kulaklık ekseni boyunca da yerleştirilebilir. Bu yöntem, belirli beyin bölgeleri için çok çeşitli olası konfigürasyonlar sunar.
Bir kulaklıktaki pim sayısı, mikroelektrot sayısını sınırlar. 12 pim içeren bir kulaklık, yetişkin bir fare kafasının ön-arka boyutunu tamamen kaplar. Lehimleme sırasında her pim diğer pimlerden izole edilmelidir. Her bir elektrot terminali çiftinin elektriksel izolasyonunu test etmek için bir ohmmetre ve% 0.9 tuzlu suya ihtiyaç vardı. 12 pimli kulaklık, kaydı 10 bölgeyle sınırlar (2 tanesi zemin ve referans için ayrılmıştır).
The authors have nothing to disclose.
Amplifier 16-Channel | A-M Systems | Model 3600 | Amplifier |
Cranioplasty cement | Coltene | Perm Reeline/Repair Resin Type II Class I Shade – Clear | Cement to hold microelectrodes |
Cryostat Microtome | Precisionary | CF-6100 | To slice brain |
Diamel-coatednickel-chromium wire | Johnson Matthey Inc. | 50 µm | Microelectrode wire |
Dremel | Dremel | 300 Series | To drill holes in mouse skull |
Epoxy | CEC Corp | C-POXY 5 | Fast setting adhesive |
Hemostat | Any | To hold the headset | |
Forceps | Any | To hold microelectrodes | |
Light microscope | Nikon | SMZ-10 | To see alignment |
Ohmmeter | Any | To measurre resistance | |
Pins (Headers and matching Sockets) | Mill-Max | Interconnects, 833 series, 2 mm grid gull wing surface mount headers and sockets | To attach microelectrodes to |
Polymicro Tubing Kit | Neuralynx | ID 100 ± 04 µm, OD 164 ± 06 µm, coating thickness 12 µm | Glass tubes |
Pulse Stimulator | A-M Systems | Model 2100 | To mark the microelectrode location at the end of the recordings |
Scissors | Any | To cut microelectrodes | |
Superglue | Gorilla | Adhesive | |
Thick wire 0.008 in. – 0.011 in. | A-M Systems | 791900 | Tick wire to hold the microelectrode array |
Thin wire 0.005 in. – 0.008 in. | A-M Systems | 791400 | Thin wire for reference and ground |