Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliğiniz gereklidir. Giriş yapın veya ücretsiz denemenizi bugün başlatın.

Yöntem makalesi

Yetişkin Bir Koyun Modelinde Otolog Perikarddan Transkateter Pulmoner Kapak Replasmanı

2.9K görüntülenme

⸱

DOI:

10.3791/63661

⸱

8 Haziran 2022

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Pediatric Cardiology and Congenital Heart Disease, Charité University Medicine Berlin, 2Department of Pediatric Cardiology and Congenital Heart Disease, Deutsches Herzzentrum Berlin, 3DZHK (German Centre for Cardiovascular Research) and BMBF (German Ministry of Education and Research), 4BIH (Berlin Institute of Health), 5BCRT (BIH Center of Regenerative Therapies)

Bu makalede

Özet

Bu çalışma, yetişkin bir koyun modelinde kendiliğinden genişleyen bir Nitinol stent kullanılarak doğal pulmoner kapak pozisyonunda implantasyon için otolog bir pulmoner kapak geliştirilmesinin fizibilitesini ve güvenliğini göstermektedir. Bu, sağ ventrikül çıkış yolu disfonksiyonu olan hastalarda transkateter pulmoner kapak replasmanı geliştirmeye yönelik bir adımdır.

Özet

Transkateter pulmoner kapak replasmanı, sağ ventrikül çıkış yolu veya biyoprotez kapak disfonksiyonu olan ve mükemmel erken ve geç klinik sonuçları olan hastalar için uygulanabilir bir alternatif yaklaşım olarak kurulmuştur. Bununla birlikte, özellikle pediatrik hastalarda stent kalp kapağı bozulması, koroner oklüzyon, endokardit ve diğer komplikasyonlar gibi klinik zorluklar yaşam boyu uygulama için ele alınmalıdır. Hastalar için yaşam boyu sürecek bir çözümün geliştirilmesini kolaylaştırmak için, yetişkin bir koyun modelinde transkateter otolog pulmoner kapak replasmanı yapıldı. Otolog perikard, ventilasyon ile genel anestezi altında sol anterolateral minitorakotomi ile koyunlardan toplandı. Perikard, 2 gün ve 21 saat boyunca toksik olmayan çapraz bağlama için 3D şekillendirici kalp kapağı modeline yerleştirildi. İntrakardiyak ekokardiyografi (ICE) ve anjiyografi, doğal pulmoner kapağın (NPV) pozisyonunu, morfolojisini, fonksiyonunu ve boyutlarını değerlendirmek için yapıldı. Kırpmadan sonra, çapraz bağlı perikard, kendiliğinden genişleyen bir Nitinol stent üzerine dikildi ve kendi kendine tasarlanmış bir dağıtım sistemine kıvrıldı. Otolog pulmoner kapak (APV) sol juguler ven kateterizasyonu ile NPV pozisyonunda implante edildi. APV'nin pozisyonunu, morfolojisini, fonksiyonunu ve boyutlarını değerlendirmek için ICE ve anjiyografi tekrarlandı. Bir APV koyun J'ye başarıyla implante edildi. Bu yazıda temsili sonuçlar elde etmek için koyun J seçilmiştir. Nitinol stentli 30 mm'lik bir APV, önemli bir hemodinamik değişiklik olmaksızın NPV pozisyonuna doğru bir şekilde implante edildi. Paravalvüler kaçak, yeni pulmoner kapak yetmezliği veya stent pulmoner kapak migrasyonu yoktu. Bu çalışma, yetişkin bir koyun modelinde juguler ven kateterizasyonu yoluyla kendiliğinden genişleyen bir Nitinol stent ile NPV pozisyonunda implantasyon için bir APV geliştirilmesinin fizibilitesini ve güvenliğini uzun süreli bir takipte göstermiştir.

Giriş

Bonhoeffer ve ark.1, 2000 yılında transkateter pulmoner kapak replasmanının (TPVR) başlangıcını, komplikasyonları en aza indirmeye ve alternatif bir terapötik yaklaşım sağlamaya yönelik önemli ilerlemelerle hızlı bir yenilik olarak işaretlemiştir. O zamandan beri, sağ ventrikül çıkış yolu (RVOT) veya biyoprotez kapak disfonksiyonunun tedavisinde TPVR kullanımı hızla artmıştır 2,3. Bugüne kadar, şu anda piyasada bulunan TPVR cihazları, RVOT disfonksiyonu 4,5,6 olan hastalar için tatmin edici uzun vadeli ve kısa vadeli sonuçlar sağlamıştır. Ayrıca, desellülerize kalp kapakları ve kök hücre tahrikli kalp kapakları dahil olmak üzere çeşitli TPVR kapak tipleri geliştirilmekte ve değerlendirilmekte ve bunların fizibilitesi klinik öncesi büyük hayvan modellerinde gösterilmiştir 7,8. Otolog perikard kullanılarak aort kapak rekonstrüksiyonu ilk olarak Dr. Duran tarafından bildirilmiş, bunun için perikardın aort anulusunun boyutlarına göre şekillendirilmesine rehberlik etmek için şablon olarak farklı boyutlarda üç ardışık çıkıntı kullanılmış ve 60 aylık takipte sağkalım oranı %84.53 olmuştur9. Bir kapak değiştirme prosedüründen ziyade bir kapak onarım prosedürü olarak kabul edilen Ozaki prosedürü, aort kapak broşürlerinin glutaraldehit ile muamele edilmiş otolog perikard ile değiştirilmesini içerir; Bununla birlikte, Dr. Duran'ın prosedürü ile karşılaştırıldığında, hastalıklı kapağın sabit perikard10'u kesmek için bir şablonla ölçülmesinde önemli ölçüde iyileşmiş ve sadece yetişkin vakalardan değil, aynı zamanda pediatrik vakalardan da tatmin edici sonuçlar elde edilmiştir11. Şu anda, sadece Ross prosedürü, uzun süreli antikoagülasyon, büyüme potansiyeli ve düşük endokardit riskinden kaçınma açısından belirgin avantajlara sahip hastalıklı bir aort kapağı olan hasta için canlı bir kapak ikamesi sağlayabilir12. Ancak böyle karmaşık bir cerrahi işlemden sonra pulmoner otogreft ve sağ ventrikülden pulmoner arter kanalına yeniden müdahale gerekebilir.

Klinik kullanıma açık olan mevcut biyoprotez kapaklar, ksenojenik domuz veya sığır dokularına greft-versus-host reaksiyonları nedeniyle zamanla kaçınılmaz olarak bozulur13. Kapakla ilişkili kalsifikasyon, bozulma ve yetmezlik, özellikle kapakların büyümemesi nedeniyle yaşamları boyunca çoklu pulmoner kapak replasmanı geçirmesi gereken genç hastalarda, mevcut biyoprotez materyallerine özgü bir özellik olan birkaç yıl sonra tekrarlanan müdahaleleri gerektirebilir14. Ayrıca, halihazırda mevcut olan, esasen rejeneratif olmayan TPVR kapaklar, tromboembolik ve kanama komplikasyonları gibi önemli sınırlamaların yanı sıra, broşür retraksiyonuna ve evrensel kapak disfonksiyonuna yol açabilecek olumsuz doku yeniden şekillenmesi nedeniyle sınırlı dayanıklılığa sahiptir15,16.

TPVR için kendi kendini onarma, rejenerasyon ve büyüme kapasitesi özelliklerine sahip kendiliğinden genişleyen bir Nitinol stent üzerine monte edilmiş doğal benzeri bir otolog pulmoner kapak (APV) geliştirmenin fizyolojik performans ve uzun vadeli işlevsellik sağlayacağı varsayılmıştır. Ve toksik olmayan çapraz bağlayıcı ile muamele edilen otolog perikard, hasat ve üretim prosedürlerinden uyanabilir. Bu amaçla, bu preklinik çalışma, RVOT disfonksiyonunun transkateter tedavisini iyileştirmek için ideal girişimsel kapak ikameleri ve düşük riskli bir prosedürel metodoloji geliştirmek amacıyla yetişkin bir koyun modeline stentli otolog pulmoner kapak implante etmek için yapılmıştır. Bu yazıda, otolog kalp kapağının perikardiektomi ve trans juguler ven implantasyonunu içeren kapsamlı TPVR prosedürünü göstermek için koyun J seçilmiştir.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Protokol

Bu klinik öncesi çalışma, Berlin Sağlık ve Sosyal İşler Bölge Ofisi'nin (LAGeSo) yasal ve etik komitesi tarafından onaylanmıştır. Tüm hayvanlar (Yumurtalık Koçları), Avrupa ve Alman Laboratuvar Hayvanları Bilim Derneklerinin (FELASA, GV-SOLAS) yönergelerine uygun olarak insancıl bakım aldı. Prosedür, 3 yaşında, 47 kg, dişi koyun J'de otolog pulmoner kapak replasmanı yapılarak gösterilmiştir.

1. Preoperatif yönetim

  1. Sosyal arkadaşlığı sürdürmek için tüm deneysel koyunları varış gününden perikardiektomi gününe kadar 1 hafta boyunca saman içeren aynı odada barındırın (Şekil 1A).
  2. Koyunları yiyecekten mahrum bırakın, ancak perikardiektomi ve implantasyondan önce 12 saat boyunca sudan mahrum bırakın.
  3. Entübasyondan 20 dakika önce midazolam (0.4 mg / kg), butorphanol (0.4 mg / kg) ve glikopirolat (0.011 mg / kg veya 200 mcg) intramüsküler enjeksiyonu ile koyunlara ön ilaç verin.

2. Genel anestezi indüksiyonu

  1. Sefalik ven içine aseptik olarak 18 G güvenli intravenöz (IV) kateter, bir enjeksiyon portu ve bir T portu yerleştirin (Şekil 1B).
  2. Propofol (20 mg / mL, 1-2.5 mg / kg) ve fentanil (0.01 mg / kg) intravenöz enjeksiyonu ile anesteziyi indükleyin.
  3. Yeterli düzeyde sedasyon belirtileri arasında çene gevşemesi, yutma kaybı ve papiller refleks bulunur. Sedasyondan sonra, koyunları uygun büyüklükte bir endotrakeal tüp ile entübe edin (Şekil 1C). Koyunları tıraş edin ve ardından ameliyathaneye (OR) aktarın.

3. Perikardiektomi ve implantasyon için intraoperatif anestezi yönetimi

  1. Ameliyathanede %100 oksijenli aralıklı pozitif basınçlı ventilasyonu (IPPV) başlatmak için basınç döngülü mekanik ventilatör kullanın.
  2. Koyunları anestezik cihaz platformuna bağlayın ve koyunları anestezi boyunca basınç modunda havalandırın (gelgit hacmi (TV) = 8-12 mL / kg, solunum frekansı (RF) = 12-14 nefes / dak). TV ve RF'yi, gelgit sonu karbondioksitini (EtCO 2) 35-45 mmHg arasında ve CO2'nin (PaCO2) arteriyel kısmi basıncını 50 mmHg'nin altında tutacak şekilde ayarlayın.
  3. İzofluran ile kombine anesteziyi (etkili olmak için, önerilen idame konsantrasyonu% 1.5 -% 2.5) oksijen akış hızına sahip oksijende 1 L / dak (FiO 2) =% 75), sürekli bir fentanil infüzyonu (CRI) (5-15 mcg / kg / s) ve midazolam (0.2-0.5 mg / kg / s) ile birlikte sürdürün.
  4. İnvaziv kan basıncının (IBP) ölçümü için auriküler artere 18 G güvenlik IV kateter yerleştirin.
  5. Koyunları, auriküler arterdeki invaziv kan basıncının (IBP) (kalp seviyesinde sıfırlanmış), rektal prob ile vücut ısısının, kurşun-IV elektrokardiyogramın, pletismografik oksijen doygunluğunun (SpO 2), TV, RF, EtCO 2, kalp atış hızının (HR) veFiO 2'nin doğrudan ölçümünü gösteren hemodinamik izleme için çok fonksiyonlu anestezi platformuna bağlayın.
  6. Perikardiektomiye hazırlık olarak retikülorumdan fazla gaz ve sıvıları tahliye etmek için bir gastrik tüp yerleştirin. Gastrik tüpü, implantasyon için referans olarak bir işaretleyici kılavuz tel ile donatın.
  7. Bir idrar torbasına bağlı mesanenin içindeki üretra yoluyla bir foley idrar kateteri yerleştirin. Foley balonunu en az 5 mL tuzlu su çözeltisi (% 0.9 NaCl) ile boşaltın.
  8. İmplantasyondan önce yeterli heparinizasyonu ve implantasyondan sonra antagonizasyonu doğrulamak için implantasyondan 30 dakika önce aktif bir pıhtılaşma testi (ACT: 240-300 s) yapın. Perikardiektomi ve implantasyondan 30 dakika önce ve iki prosedür sırasında her saat başı iç ortamı analiz etmek için arteriyel kan gazı analizi (ABG'ler) yapın.
  9. Aşağıdaki antibiyotikleri, yani perikardiektomi ve implantasyondan önce intravenöz damla yoluyla sulbaktam / ampisilin (20mg / kg) 30 dakika uygulayın. Perikardiektomi ve implantasyon boyunca kristaloidlerin (5 mL/kg/s, izotonik dengeli elektrolit çözeltisi) ve hidroksietil nişastanın (HES, 30 mL/h) sürekli infüzyonunu sağlayın.

4. Perikardiektomi

  1. Perikardiektomi için hazırlık
    1. Koyunları ameliyat masasına sol tarafta 30° yükseklikte sağ yanal yaslanmış pozisyonda yerleştirin ve ardından uzuvlarını koşum takımı ve kayışlarla sabitleyin.
    2. Minitorakotomi yapmadan önce cerrahi bölgeyi (perikardiektomi: üstün olarak sol klavikulaya, ön taraftan sternuma, diyafram seviyesinden daha düşük ve arka olarak sol orta klaviküler çizgiye) klorheksidin-alkol ile sterilize edin. Kalan alanları steril örtü ile örtün (Şekil 2A).
    3. Genel anestezi altında #10 cerrahi bıçak kullanarak dördüncü interkostal parasternal pozisyonda 5 cm'lik bir cilt kesisi yapın.
    4. İdeal maruziyet için pektoralis major-pektoralis minor- anterior serratus-interkostal kası sol lateral minitorakotomi (m-LLT) yoluyla üçüncü ve dördüncü interkostal boşlukta ardışık ve ayrı ayrı 5 cm insizyonlara diseke edin (Şekil 2B).
    5. Sol internal torasik arter ve damarların yaralanmasını önlemek için insizyonu sternumdan en az 2 cm ofset yapın. Toraksı açmadan önce akciğer hasarını önlemek için ventilatörü 10 s durdurun.
    6. Bir kaburga yayıcı yerleştirdikten sonra cerrahi alanın daha iyi maruz kalması için sol akciğeri sıkıştırmak için birkaç steril gazlı bez kullanın (Şekil 2C). Cerrahi alanda perikard ve timüsü görselleştirin (Şekil 2D).
  2. Perikard ve diyaframın bağlanma noktasında perikardiektomiye başlayın ve iki frenik sinir arasındaki perikardiyal dokuyu, aday damarlara kadar, diyaframa kadar toplayın.
    1. Diyafram-perikard-mediastinal plevranın bağlanmasını ortaya çıkarmak için sol akciğeri adım 4.1.5'te belirtildiği gibi sıkıştırın. Diyafram-perikard-mediastinal plevranın ataşmanındaki sol mediastinal plevrayı cerrahi makas kullanılarak 1 cm uzunluğunda bir kesi yaparak kesin. Kesiyonu sol frenik sinirden 1 cm ofset olan hat boyunca innominat damarlara doğru yukarı doğru uzatın (Şekil 2E).
    2. Parmaklarınızı kullanarak tepeyi sola kaldırarak perikardın sağ kısmı için prosedürü tekrarlayın. Timik ve perikardiyal yağları sternumdan diseke edin.
    3. Perikardın iki insizyonunu aortun önünde karşılayın. Perikard ve timüsün kesişimini, aortun önündeki iki perikardiyal kesiden sıkıca yerinde tutarak ve 4-0 emilemeyen bir sütür kullanarak altı cerrahi düğümü manuel olarak bağlayarak çapraz kelepçeleyin.
    4. Perikard toplanırken frenik sinirin ve altta yatan vasküler yapıların yaralanmasından kaçının. Perikardiektomi sırasında timus da dahil olmak üzere yağ dokusunu perikard yüzeyinden diseke edin. Hemostaz için bir koter aleti (yani elektrotom, Bovie) kullanın.
  3. Hasat edilen perikard, ekstra yağ dokusunu çıkarmak için steril plakaya santimetre ölçeğinde yerleştirin ve% 0.9 NaCl'de iki kez yıkayın (Şekil 2F). Hemostaz için tüm cerrahi alanları iki kez kontrol edin.
  4. Açılan sağ mediastinal plevrayı rezidüel sağ perikardiyal kenara 3-0 polidioksanon ile iki kez koşu şeklinde dikiştirin. Bir solunum torbası kullanarak sağ akciğeri manuel olarak en büyük hacme kadar şişirin ve sağ toraksı kapatmadan önce 10 s tutun. Açılan sol mediastinal plevrayı rezidüel sol perikardiyal kenara 3-0 polidioksanon ile iki kez koşu şeklinde dikiştirin.
  5. Sol torasik insizyonları aşağıda açıklandığı gibi dört kat halinde kapatın.
    1. Interkostal kasları ve anterior serratusları basit bir kesilmiş veya çapraz şekilde 2-0 polidioksanon ile, pectoralis major-pektoralis minor ile 3-0 polidioksanon ile koşu şeklinde, subkutis 3-0 polidioksanon ile çapraz bir şekilde ve cildi 3-0 naylon ile basit bir şekilde kesilmiş bir şekilde dikin. Tüm dikişleri 1 cm aralıklarla yerleştirin.
    2. Bir solunum balonu kullanarak sol akciğeri manuel olarak en büyük hacme şişirin ve interkostal kasları kapatmadan önce 10 s tutun.
  6. Kesiyeri steril gazlı bezle örtün ve yeni kalp kapağı implantasyonu için heparinizasyondan sonra kanamayı önlemek için 5 dakika boyunca manuel olarak sıkıştırın. Daha sonra cerrahi bölgeyi bandajlayın.
  7. Sedasyon derinliğini azaltmak için cilt sütürünü gerçekleştirirken intravenöz anestezikleri ve izofluranı durdurun.
  8. Spontan solunum geri döndükten sonra mide tüpünü ve idrar kateterini çıkarın. Daha sonra nabız oksimetreli koyunları sedyedeki iyileşme odasına aktarın.
  9. Yutma refleksi, papiller refleks ve normal spontan solunum iyileştiğinde endotrakeal tüpü çıkarın. İmplantasyondan önce günde bir kez 0.5 mg / kg meloksikamı deri altından uygulayın.
  10. Anestezi tamamen tersine çevrildiğinde (yani, koyun bağımsız olarak ayakta durabildiğinde), koyunlara yiyecek ve suya erişim izni verilebilir.

5. Üç boyutlu otolog kalp kapağının hazırlanması

  1. Yağ dokusunu çıkararak perikardı kesin (Şekil 3A, B, C) ve ardından 3D şekillendirici kalp kapağı kalıbına yerleştirin. (Bekleyen bir patent başvurusu nedeniyle, bu adımda rakamlar verilemez.)
  2. Perikard ve 3D şekillendirici kalp kapağı modelini 2 gün ve 21 saat boyunca toksik olmayan bir çapraz bağlayıcılı (30 mL) bir inkübatöre koyun (Şekil 3D; bekleyen patent başvurusu nedeniyle, toksik olmayan çapraz bağlayıcının rakamları ve ayrıntılı bilgileri bu adımda sağlanamaz).

6. APV'nin hazırlanması

  1. Çapraz bağlı kalp kapağını iki kez% 0.9 NaCl ile yıkayın ve 2 gün ve 21 saat sonra süreksiz bir şekilde bir Nitinol stent (30 mm çapında, 29.4 mm yüksekliğinde, 48 eşkenar dörtgen hücre) içine dikin. Kalp kapağı ve stent arasındaki bağlantı noktalarını hizalamak için altı ila sekiz düğüm kullanarak kalp kapağını yerinde dikmek için 5-0 polipropilen kullanın. (Patent başvurusu nedeniyle bu adımda rakamlar verilemez.)
  2. Otolog pulmoner kapağın üç serbest kenarını 15 numaralı cerrahi bıçakla kesin (Şekil 4A,B). Stentli pulmoner kapağı cerrahi bir cımbızla tutun, APV'yi kaldırıp %0,9 NaCl'de bırakarak açılıp kapanmasını test edin ve deliğin daha büyük bir açılmasını sağlamak için üç komissürün daha fazla kesime ihtiyaç duyup duymadığını değerlendirin.
  3. % 0.8 amfoterisin B (0.4 mL) ve% 4.0 penisilin / streptomisin (2 mL) ile 47.6 mL PBS'de sterilizasyon için APV'yi bir inkübatörde 30 dakika boyunca inkübe edin. Stentlenmiş kalp kapağını, iki katlı test için ticari bir kıpkırmızı kullanarak bir dağıtım sisteminin (DS) kafasına sıkıştırın (Şekil 4C-D) ve dağıtım sistemine takın (Şekil 4E).

7. Sol juguler ven yoluyla transkateter otolog pulmoner kapak implantasyonu

  1. APV implantasyonu için koyunları adım 1'den 3'e kadar gösterildiği gibi anestezi altına alın.
  2. Damar erişimi: Koyunları tıraş edin ve implantasyonu gerçekleştirmeden önce bir povidon-iyot antiseptiği kullanarak mandibulanın alt sınırına, ön medyan hattına, ön medyan hattına ve posteriorda posterior medyan hattına üstün olarak dahil olan cerrahi alanı sterilize edin. Kalan tıraşsız ve sterilize edilmemiş alanları steril örtü ile örtün.
    1. Sol juguler veni boyunda işaretleyin ve Seldinger tekniğini kullanarak kılavuz teli sol juguler ven içine yerleştirin. Delinme noktasını 10 numaralı bir bıçakla büyütün, ICE probu ve dağıtım sistemi için sol juguler ven içine 11 F'lik bir kılıf yerleştirin (Şekil 5A, B). Kılıf tanıtıcısının etrafına 4-0 emilemeyen bir sütür ile bir çanta ipi dikişi yerleştirin.
  3. İntrakardiyak ekokardiyografi (ICE)17
    1. İmplantasyondan önce ve hemen sonra 10 Fr ultrason kateteri kullanarak ICE uygulayın (Şekil 5C). NPV, APV ve triküspid valfin boyut ve fonksiyonlarını içeren parametreleri kısa ve uzun eksende 2D, renk, darbeli dalga ve sürekli Doppler ile değerlendirir.
    2. Vena kontraktasındaki kapak yetersizliğinin derecesini ICE ile yarı kantitatif değerlendirme18ile değerlendirin (Şekil 6). 
  4. Anjiyografi19: RVOT, NPV, pulmoner ampul ve supravalvüler pulmoner arterin çaplarını ölçerek implantasyonu yönlendirmek ve implantasyon sonrası APV'yi değerlendirmek için portatif bir C-kolu ve fonksiyonel bir ekran kullanarak anjiyografi yapın (Şekil 7A-D).
  5. Hemodinamik20: İmplantasyondan önce ve sonra 5.2 F 145 ° pigtail kateter kullanarak sağ ventrikül ve pulmoner arter basıncını ölçün ve kaydedin. Auriküler arter yoluyla sistemik arteriyel basıncı ölçün.
  6. Implantasyonu
    1. TPVR yolunun kurulması: Floroskopi rehberliğinde sağ pulmoner artere 0.035 inç açılı bir kılavuz tel yerleştirin. Daha sonra, sol juguler venin içine 5.2 Fr pigtail kateteri yerleştirin ve floroskopi altında daha önce yerleştirilmiş kılavuz telin rehberliğinde sağ pulmoner artere ilerletin.
    2. Açılı kılavuz teli sol juguler damardan çıkarın. Sol juguler venin içine 5 Fr Berman anjiyografik balon kateteri yerleştirin ve kılavuz telin rehberliğini kullanarak sağ pulmoner artere ilerletin.
    3. 0.035 inçlik ultra sert kılavuz telini, floroskopi ölçümüne göre triküspid kapağın merkezi noktasından pulmoner kapağın merkezi noktasına kadar olan mesafeye eşit bir çapa sahip yaklaşık 8-10 cm uzunluğunda bir daire içine önceden şekillendirin ve balon kateterinin rehberliğinde sağ pulmoner artere ilerletin (Şekil 8A). Telin triküspid valf chordae ile etkileşime girmediğinden emin olun.
    4. Cildi 11 numaralı bir bıçakla genişletin ve ticari dilatörler kullanarak sol juguler veni sırasıyla 16 Fr'den 22 Fr'ye kadar genişletin (Şekil 8B). Dilatasyondan sonra insizyonu 3-0 polidioksanon kese ipi sütürü ile kapatın (Şekil 8C). DS'nin stent taşıyan kısmının19'da açıklandığı gibi istenen pozisyonunu sağlamak için anjiyografi yapın.
    5. Pulmoner anjiyografi sırasında pulmoner kapağın sinotübüler bileşkesini sistolik ve diyastolik sonu kardiyak fazlarda iniş bölgesinin distal sınırı ve pulmoner kapağın bazal düzlemini iniş bölgesinin proksimal sınırı olarak işaretleyin.
    6. Stentlenmiş otolog valfi yeniden açın ve sıkma kaynaklı hasar açısından kontrol edin. APV'yi yeniden sıkın ve DS'nin kafasına takın (Şekil 8D). Yüklü DS'yi önceden şekillendirilmiş kılavuz tel üzerinden sağ ventrikül giriş yolundan (RVIT) ve RVOT'tan NPV pozisyonuna ilerletin (Şekil 8E, F ve Şekil 9A).
    7. DS'nin kapak tüpünü geri çekin ve APV'yi floroskopik rehberlik altında diyastolik fazın sonundaki iniş bölgesindeki NPV üzerinde yavaşça ve doğrudan dağıtın (Şekil 9A-C). Yüklü DS, miyokard yaralanmasını ve ventriküler fibrilasyonu önlemek için RVIT ve RVOT arasındaki kavşağı geçerken dikkatli olun. APV için en uygun pozisyon, stentin orta kısmının NPV'ye yerleştirilmesidir.
    8. DS'nin ucunu konuşlandırıldıktan sonra dikkatlice kapak tüpüne geri çekin ve DS'yi koyunlardan alın (Şekil 9D). İmplante edilen APV'nin boyut ve fonksiyonlarının incelenmesi sonrası için ICE (Şekil 6D-F), anjiyografi (Şekil 7C-D) ve hemodinamik ölçümleri tekrarlayın. Boynun sol tarafındaki kesiyi önceden yerleştirilmiş kese ipi dikişi ile kapatın ve manuel olarak sıkıştırın.

8. Peri-implantasyon ilaçları

  1. İmplantasyondan önce, 240-300 s'lik aktif bir pıhtılaşma süresini (ACT) korumak için koyunları 5000 IU'luk bir dozda heparin ile uygulayın. Prosedür boyunca ACT testlerini kullanın. İmplantasyondan önce hem de sonrasında antagonizasyonu doğrulamak için prosedürün başlamasından sonra her 30 dakikada bir ACT testlerini tekrarlayın.
  2. APV implantasyonundan önce, kardiyak aritmileri önlemek için 0.02 mol / L'lik bir dozda% 10 magnezyum ve 3-5 mg / kg'lık bir dozda amiodaron uygulayın.
  3. Perikardiektomi ve implantasyon prosedürünün başlangıcında enfeksiyon ve endokarditleri önlemek için sulbaktam/ampisilin (20 mg/kg) intravenöz olarak uygulanır.

9. Postoperatif yönetim

  1. Koyunların genel durumunu kalp atış hızı ve ritmi, solunum derinliği, solunum ritmi ve nefes sesi (postoperatif pnömoni kontrolü için), ağrı belirtileri ve diğer anormallikler açısından kontrol ederek 5 gün boyunca günlük bir postoperatif takip yapın. Ameliyat sonrası şişlik, iltihap, kızarıklık, kanama ve sekresyon için yarayı kontrol edin.
  2. Dalteparin 5000 IU veya günde bir kez deri altından uygulanan başka bir düşük moleküler ağırlıklı heparin ile 5 gün boyunca antikoagülasyona devam edin. Postoperatif analjezi için subkutan enjeksiyon ile 5 gün boyunca 1 mg / kg meloksikam uygulayın.
  3. Koyunların fiziksel durumunu değerlendirmek için hematoloji, karaciğer fonksiyonu, böbrek fonksiyonu ve serum kimyası dahil olmak üzere bir laboratuvar kan testi yapın.

10. Takip

  1. ICE, kardiyak manyetik rezonans görüntüleme (cMRI), anjiyografi yapın ve implantasyondan sonra her 3-6 ayda bir hemodinamiği 21 aya kadar kaydedin. Yukarıda gösterildiği gibi ICE ve anjiyografi yapın.
  2. Standart bir elektrokardiyogram kapılı sine-MRI yöntemi21 kullanarak 3.0 T MRI tarayıcısında yetersizlik fraksiyonunu (RF) değerlendirmek için cMRI gerçekleştirin. Önceki çalışmamızda gösterildiği gibi stent pozisyonunu ve sağ kalbin deformasyonunu tüm kardiyak siklus boyunca değerlendirmek için son kardiyak bilgisayarlı tomografi (BT) yapın22.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

Koyun J'de, APV (30 mm çapında) RVOT'un "iniş bölgesine" başarıyla implante edildi.

Koyun J'de hemodinamik, ventilasyon ile genel anestezi altında sol anterolateral minitorakotomi boyunca, takip MRG ve ICE'de stabil kalmıştır (Tablo 1, Tablo 2 ve Tablo 3). 9 cm x 9 cm ölçülerindeki otolog perikard toplandı ve ekstra doku çıkarılarak kesildi (Şekil 3A-C). Otolog perikard, 3D şekill...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

Bu çalışma, TPVR için canlı bir pulmoner kapak geliştirmede ileriye doğru atılmış önemli bir adımı temsil etmektedir. Yetişkin bir koyun modelinde, yöntem, koyunların kendi perikardından türetilen bir APV'nin, juguler ven kateterizasyonu yoluyla kendiliğinden genişleyen bir Nitinol stent ile implante edilebileceğini gösterebildi. Koyun J'de, stentli otolog pulmoner kapak, kendi kendine tasarlanmış bir üniversal dağıtım sistemi kullanılarak doğru pulmoner pozisyonda başarıyla implante edildi. İmplantasyondan sonr...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

Yazarların açıklanacak finansal çıkar çatışmaları yoktur.

Teşekkürler

Bu çalışmaya katkıda bulunan herkese, hem geçmiş hem de şimdiki üyelerimize yürekten minnettarlığımızı sunuyoruz. Bu çalışma, Alman Federal Ekonomi ve Enerji Bakanlığı, EXIST - Araştırma Transferi (03EFIBE103) tarafından sağlanan hibelerle desteklenmiştir. Yimeng Hao, Çin Burs Konseyi (CSC: 202008450028) tarafından desteklenmektedir.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
%10 MagnezyumInresa Arzneimittel GmbHPZN: 000911260,02 mol/ L, 10X10 ml
10 Fr Ultrason kateteriSiemens Healthcare GmbHSKU   10043342RHACUSON AcuNav™ ultrason kateter
3D DilimleyiciDilimleyiciDilimleyici 4.13.0-2021-08-13Yazılım: 3D Dilimleyici görüntü hesaplama platformu
Adobe IllustratorAdobe Adobe Illustrator 2021Yazılımı
AmiodaroneSanofi-Aventis Deutschland GmbHPZN: 45993823- 5 mg / kg, 150 mg / 3 ml
Amplatz ultra sert kılavuz telPİŞİRME MEDICAL LLC, ABDReferans Parça Numarası: THSF-35-145-AUS0.035 inç, 145 cm
Anestezik cihaz platformuDrä gerwerk AG & Co. KGaA8621500Drä ger Atlan A350
OK Berman Anjiyografik Balon KateterTeleflex Medical Europe LtdLOT: 16F16M00705Fr, 80cm (X)
ButorphanolRichter Pharma AGVnr5319430.4mg/kg
C-ArmBV Pulsera, Philips Heathcare, Eindhoven, HollandaCAN/CSA-C22.2 NO.601.1-M90Tıbbi elektrik kıvırma
aletiEdwards Lifesciences, Irvine, CA, ABD9600CRCrimper
CTSiemens Healthcare GmbH&eksi;Bilgisayarlı tomografi platformu
DilatörEdwards Yaşam Bilimleri, Irvine, CA, ABD9100DKSA14- 22 Fr
Ethicon SütürEthiconLOT:MKH2594- 0 pürüzsüz monofilik iplik, emilmeyen
Ethicon SütürEthicon LOT:DEE2743-0, 45 cm
Hızlı kateter hemostazı tanıtıcıST. JUDE MEDICAL Minnetonka MNLOT Numarası: 345829711
Fr FentanilJanssen-Cilag Pharma GmbHDE/H/1047/001-0020.01mg/kg
FragminPfizer Pharma GmbH, Berlin, AlmanyaPZN: 5746520Dalteparin 5000 IU/ d
Fonksiyonel ekranBV Pulsera, Philips Heathcare, Eindhoven, HollandaSistem ID: 44350921Tıbbi elektrik donanımı
GlycopyrroniumbromidAccord Healthcare BVPZN116491230.011mg/kg
Kılavuz Tel MTERUMO COPORATION JAPANREF*0,89 mm, 180 cm
Hemochron Celite ACTInternational Technidyne Corporation, Edison, ABDNJ 08820-2419ACT
HeparinMerckle GmbHPZN: 3190573Heparin-Natrium 5.000  I.E./0,2  ml
Hidroksietil nişasta (Haes-steril %10)Fresenius Kabi Deutschland GmbHATC Kodu: B05A500 ml, 30 ml/saat
Imeron 400 MCTBracco GörüntülemePZN002299782.0– 2.5 ml / kg, Kontrast madde
İzofluranCP-Pharma Handelsges. GmbHATCvet Kodu: QN01AB06250 ml, MAC: %1
Jonosteril İnfüzyon Kodu; sungFresenius Kabi Deutschland GmbHPZN: 5416121000 ml
KetaminActavis Group PTC EHFART.-Nr. 799-7622– 5 mg/kg/saat
MeloxicamBoehringer Ingelheim Vetmedica GmbHM21020A-0920 mg/mL, 50 ml
MidazolamHameln pharma plus GMBHMIDAZ501000.4mg/kg
MRGPhilips Healthcare&eksi;Ingenia Elition X, 3.0T
Natriumklorür (NaCl)B. Braun Melsungen AGPZN /EAN:04499344 / 4030539077361%0.9, 500 ml
Pigtail kateterCordis, Miami Lakes, FL, ABDREF: 533-534A5.2 Fr 145 °, 110 cm
PropofolB. Braun Melsungen AGPZN 1116449520mg / ml, 1– 2.5 mg / kg
PropofolB. Braun Melsungen AGPZN 1116444310mg / ml, 2.5 > 8.0 mg/kg/h
Enjeksiyon portlu Güvenlik IV KateterB. Braun Melsungen AGLOT: 20D03G834618 G Enjeksiyon portlu kateter
Sulbaktam-ampisilinPfizer Pharma GmbH, Berlin, AlmanyaPZN: 48431323 g, 2.000 mg/ 1.000 mg
Sulbaktam/ ampisilinInstituto Biochimico Italiano G Lorenzini S.p.A. – Via Fossignano 2, Aprilia (LT) – ItalienATC Kodu: J01CR0120 mg/kg, 2 g/1 g
Cerrahi BıçakBrinkmann Medical ein Unternehmen der Dr. Junghans Medical GmbHPZN: 35484415 #
Cerrahi BıçakBrinkmann Medical ein Unternehmen der Dr. Junghans Medical GmbHPZN: 35484411 #
SutureJohnson & JohnsonHersteller Artikel Nr. EH7284H5-0 polipropilen
GA35183M

Kaynaklar

  1. Bonhoeffer, P., et al. Percutaneous replacement of pulmonary valve in a right-ventricle to pulmonary-artery prosthetic conduit with valve dysfunction. Lancet. 356 (9239), 1403-1405 (2000).
  2. Georgiev, S., et al. Munich comparative study: Prospective long-term outcome of the transcatheter melody valve versus surgical pulmonary bioprosthesis with up to 12 years of follow-up. Circulation. Cardiovascualar Interventions. 13 (7), 008963(2020).
  3. Plessis, J., et al. Edwards SAPIEN transcatheter pulmonary valve implantation: Results from a French registry. JACC. Cardiovascular Interventions. 11 (19), 1909-1916 (2018).
  4. Bergersen, L., et al. Harmony feasibility trial: Acute and short-term outcomes with a self-expanding transcatheter pulmonary valve. JACC. Cardiovascular Interventions. 10 (17), 1763-1773 (2017).
  5. Cabalka, A. K., et al. Transcatheter pulmonary valve replacement using the melody valve for treatment of dysfunctional surgical bioprostheses: A multicenter study. The Journal of Thoracic and Cardiovascular Surgery. 155 (4), 1712-1724 (2018).
  6. Shahanavaz, S., et al. Transcatheter pulmonary valve replacement with the sapien prosthesis. Journal of the American College of Cardiology. 76 (24), 2847-2858 (2020).
  7. Motta, S. E., et al. Human cell-derived tissue-engineered heart valve with integrated Valsalva sinuses: towards native-like transcatheter pulmonary valve replacements. NPJ Regenerative Medicine. 4, 14(2019).
  8. Uiterwijk, M., Vis, A., de Brouwer, I., van Urk, D., Kluin, J. A systematic evaluation on reporting quality of modern studies on pulmonary heart valve implantation in large animals. Interactive Cardiovascular Thoracic Surgery. 31 (4), 437-445 (2020).
  9. Duran, C. M., Gallo, R., Kumar, N. Aortic valve replacement with autologous pericardium: surgical technique. Journal of Cardiac Surgery. 10 (1), 1-9 (1995).
  10. Sá, M., et al. Aortic valve neocuspidization with glutaraldehyde-treated autologous pericardium (Ozaki Procedure) - A promising surgical technique. Brazilian Journal of Cardiovascular Surgery. 34 (5), 610-614 (2019).
  11. Karamlou, T., Pettersson, G., Nigro, J. J. Commentary: A pediatric perspective on the Ozaki procedure. The Journal of Thoracic and Cardiovascular Surgery. 161 (5), 1582-1583 (2021).
  12. Mazine, A., et al. Ross procedure in adults for cardiologists and cardiac surgeons: JACC state-of-the-art review. Journal of the American College of Cardiology. 72 (22), 2761-2777 (2018).
  13. Kwak, J. G., et al. Long-term durability of bioprosthetic valves in pulmonary position: Pericardial versus porcine valves. The Journal of Thoracic and Cardiovascular Surgery. 160 (2), 476-484 (2020).
  14. Ou-Yang, W. B., et al. Multicenter comparison of percutaneous and surgical pulmonary valve replacement in large RVOT. The Annals of Thoracic Surgery. 110 (3), 980-987 (2020).
  15. Reimer, J., et al. Implantation of a tissue-engineered tubular heart valve in growing lambs. Annals of Biomedical Engineering. 45 (2), 439-451 (2017).
  16. Schmitt, B., et al. Percutaneous pulmonary valve replacement using completely tissue-engineered off-the-shelf heart valves: six-month in vivo functionality and matrix remodelling in sheep. EuroIntervention. 12 (1), 62-70 (2016).
  17. Whiteside, W., et al. The utility of intracardiac echocardiography following melody transcatheter pulmonary valve implantation. Pediatric Cardiology. 36 (8), 1754-1760 (2015).
  18. Lancellotti, P., et al. Recommendations for the echocardiographic assessment of native valvular regurgitation: an executive summary from the European Association of Cardiovascular Imaging. European Heart Journal. Cardiovascular Imaging. 14 (7), 611-644 (2013).
  19. Kuang, D., Lei, Y., Yang, L., Wang, Y. Preclinical study of a self-expanding pulmonary valve for the treatment of pulmonary valve disease. Regenerative Biomaterials. 7 (6), 609-618 (2020).
  20. Arboleda Salazar, R., et al. Anesthesia for percutaneous pulmonary valve implantation: A case series. Anesthesia and Analgesia. 127 (1), 39-45 (2018).
  21. Cho, S. K. S., et al. Feasibility of ventricular volumetry by cardiovascular MRI to assess cardiac function in the fetal sheep. The Journal of Physiology. 598 (13), 2557-2573 (2020).
  22. Sun, X., et al. Four-dimensional computed tomography-guided valve sizing for transcatheter pulmonary valve replacement. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (179), e63367(2022).
  23. Knirsch, W., et al. Establishing a pre-clinical growing animal model to test a tissue engineered valved pulmonary conduit. Journal of Thoracic Disease. 12 (3), 1070-1078 (2020).
  24. Zhang, X., et al. Tissue engineered transcatheter pulmonary valved stent implantation: current state and future prospect. International Journal of Molecular Sciences. 23 (2), 723(2022).
  25. Al Hussein, H., et al. Challenges in perioperative animal care for orthotopic implantation of tissue-engineered pulmonary valves in the ovine model. Tissue Engineering and Regenerative Medicine. 17 (6), 847-862 (2020).
  26. Emmert, M. Y., et al. Computational modeling guides tissue-engineered heart valve design for long-term in vivo performance in a translational sheep model. Science Translational Medicine. 10 (440), (2018).
  27. Schmidt, D., et al. Minimally-invasive implantation of living tissue engineered heart valves: . a comprehensive approach from autologous vascular cells to stem cells. Journal of the American College of Cardiology. 56 (6), 510-520 (2010).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Etiketler

Otolog Perikard KapağıNitinol Stent İmplantasyonuKoyun Kalp ModeliSağ Ventrikül Çıkış Yoluİntrakardiyak EkokardiyografiAnjiyografik DeğerlendirmeKardiyak Bilgisayarlı TomografiRejeneratif Kalp Kapağı
Yetişkin Bir Koyun Modelinde Otolog Perikarddan Transkateter Pulmoner Kapak Replasmanı
Bize Ulaşın
Kütüphaneye Öner

Gizlilik

Kullanım Koşulları

Politikalar

Telif Hakkı © 2026 MyJoVE Corporation. Tüm hakları saklıdır.