Yöntem makalesi

Bacillus cereus Uygulamasının Kolit Üzerindeki Hafifletici Etkilerinin Bağırsak Mikrobiyota Modülasyonu ile Araştırılması

DOI:

10.3791/63707

27 Temmuz 2022

Bu makalede

Özet

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Burada, Bacillus cereus'un kolit üzerindeki olumlu etkilerini düzenlemede bağırsak mikrobiyotasının rolünü araştırmak için antibiyotik kaynaklı yalancı mikrop içermeyen dekstran sülfat sodyum kaynaklı kolit fare modelini oluşturmak için bir protokol sunuyoruz.

Özet

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Bağırsak mikrobiyotası disbiyozisinin kolitin ilerlemesinde rol oynadığı düşünülmektedir. Bununla birlikte, kolitin hafifletilmesinde probiyotik uygulaması için kesin standartlar tanımlanmamıştır. Çoğu analiz yöntemi, bağırsak mikroorganizmalarının sınırlı çeşitliliğine ve bolluğuna dayanır. Bu nedenle, gözlemsel çalışmalar nedensellik kuramaz. Bu çalışmada, farelerde dekstran sülfat sodyum ( DSS) ile indüklenen kolit üzerindeki probiyotik etkilerini düzenlemede bağırsak mikrobiyotasının rolünü araştırmak için antibiyotik kaynaklı psödo-mikropsuz fareler uyguladık. Bu süreç , B. cereus takviyesinin sağlık üzerindeki çift yönlü düzenleyici etkisinin değerlendirilmesine olanak tanır ve stabil ve tekrarlanabilir sonuçlar sağlar. Burada, kolit farelerinde B. cereus yetiştiriciliği, gavaj operasyonu, dışkı toplama ve antibiyotik temizleme tedavisi için ayrıntılı protokoller sağlanmaktadır. Optimizasyon yöntemleri, diğer kronik inflamatuar ilişkili bozukluklar için de geçerlidir. Sonuçlar, B. cereus uygulamasının vücut ağırlığı kaybını, kolon uzunluğunun kısalmasını, hastalık aktivite indeksini ve histopatolojik skorları azalttığını gösterdi. Bununla birlikte, antibiyotiklerle tedavi, B. cereus'un kolit üzerindeki olumlu etkisini baskılamıştır. Bu sonuçlar, B. cereus'un kolit üzerindeki etkilerini hafifletmek için bağırsak mikrobiyotasına ihtiyaç olduğunu göstermektedir. Bu nedenle, bu araştırmada probiyotiklerin yararlı etkilerini araştırmak, kronik inflamatuar ilişkili bozuklukların semptomlarını hafifletmek için yeni tedavi stratejileri geliştirmek için umut verici bir yaklaşımdır.

Giriş

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

İnflamatuar bağırsak hastalıkları (IBD'ler), Crohn hastalığı ve ülseratif kolit (UC) dahil olmak üzere yaygın kronik gastrointestinal inflamatuar bozukluklardır1. İnflamatuar kolit için mevcut terapötik yollar 5-aminosalisilatlar, kortikosteroidler, azatioprin ve antibiyotiklerdir2. Ayrıca, bu ilaçların önemli yan etkileri vardır3. Bu nedenle probiyotiklerin kolit tedavisindeki etkisine daha fazla dikkat etmeliyiz.

Alternatif terapötik yaklaşımlar, hayvan modellerinde ve klinik çalışmalarda kullanılan probiyotik uygulamasını içerir. Önceki çalışmalar, Bacillus cereus veya Bifidobacterium infantis gibi farklı probiyotik uygulamalarının koliti hafifletebileceğini göstermiştir 4,5. Klinik öncesi çalışmalarda, probiyotiklerin etkinliği ve güvenliği hayvan modellerinde araştırılmalıdır.

Dekstran sülfat sodyum (DSS) kolit fare modelleri, kolitin mekanizmalarını keşfetmeye ve probiyotiklerin olumlu etkilerini değerlendirmeye yardımcı olabilir. DSS indüksiyonu, bağırsak mukozasının erozyonlarına, bağırsak bariyeri disfonksiyonuna ve bağırsak epitel geçirgenliğinde bir artışa neden olur6. Probiyotikler için çoğu fare modeli esas olarak biyolojik etkileri vurgulamıştır. Bununla birlikte, probiyotikler ile kolitin hafifletilmesi arasındaki nedensel ilişkinin daha fazla doğrulanmasındaki sınırlama göz önüne alındığında, bu probiyotiğin uygulanmasının arkasındaki mekanizmanın araştırılması zordur. Bu nedenle, probiyotiklerin mekanizmasını araştırmak için standart bir yöntem geliştirmeye ihtiyaç vardır.

Geleneksel olarak, bu çalışmalar belirli probiyotiklerin mikropsuz farelereaşılanmasını gerektirir 7. Bununla birlikte, mikropsuz farelerin probiyotikler için reseptör olarak kullanılmasında, düşük bağışıklık kapasitesi ve pahalı mikropsuz tesisler gibi bazı laboratuvar sınırlamaları vardır8. Bu sınırlamalardan kaçınmak için, yalancı mikropsuz fareler kullanılarak alternatif bir DSS kaynaklı kolit modeli oluşturulmuştur. Yalancı mikropsuz fare modeli, daha önce tarif edildiği gibi antibiyotiklerin uygulanmasıyla oluşturulmuştur 9,10.

Bu yazıda, bir antibiyotik kokteyli ile sahte mikropsuz fareler kuruyoruz. Ayrıca, fare kolit modellerinin oluşturulması ve değerlendirilmesi için metodolojiyi ayrıntılı olarak açıklıyoruz ve probiyotiklerin kolit semptomlarını hafifletme üzerindeki etkilerini araştırıyoruz. Aşağıdaki protokol ayrıca gavaj yoluyla probiyotik verme yöntemlerini de sağlar.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Protokol

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Tüm prosedürler, Çin Anhui Üniversitesi Laboratuvar Hayvanlarının Bakımı ve Kullanımı Yönergelerine uygun olarak gerçekleştirildi ve tüm prosedürler Çin Anhui Üniversitesi Hayvan Etik Komitesi tarafından onaylandı (No. IACUC (AHU) -2020-014).

1. Antibiyotiklerin uygulanması

  1. Ampisilin (1 g / L), neomisin sülfat (1 g / L), metronidazol (0.5 g / L) ve vankomisin (0.5 g / L) 1 L içme suyunda5 çözerek bir antibiyotik kokteyli hazırlayın.
  2. Tamamen çözündükten sonra, çözeltileri 4 °C'de saklayın.
  3. Antibiyotik kokteyl solüsyonlarını bir su şişesine koyun. Şişeyi fare kafesinin üzerine yerleştirin.
    NOT: Antibiyotik solüsyonlarını ışıktan korumak için kahverengi şişeler kullandığınızdan veya şişeleri alüminyum folyo ile sardığınızdan emin olun.
  4. Antibiyotik kokteylini haftada 2 kez taze solüsyonlarla değiştirin.
  5. Farelerin antibiyotik kokteyl solüsyonlarını 4 hafta boyunca serbestçe içmelerine izin verin.

2. DSS içme suyunun hazırlanması ve kolit indüksiyonu

  1. % 2.5'lik bir dekstran sülfat sodyum (DSS) çözeltisi yapmak için, 2.5 g DSS'yi 100 mL damıtılmış suda11 çözün.
  2. İçme suyunu, kolit model fare grubundaki% 2.5 DSS çözeltisi ile değiştirin. Kolit grubundaki farelerin diğer içme suyuna erişimi olmadığından emin olun. Bu arada, kontrol farelerini DSS olmadan damıtılmış su ile muamele edin.
  3. Ev erkek C57BL / 6J fareleri (ortalama vücut ağırlığı, 20 g ± 2 g; 7 haftalık) patojen içermeyen koşullar altında, standart yiyecek ve suya ücretsiz erişim.
    NOT: Patojen içermeyen koşullar altında kafes başına toplam beş fare barındırın.
  4. Deney tasarımı
    NOT: Hayvan deneyleri iki aşamalı olarak tasarlanmıştır. Her grup için beş fare dahil edildi.
    1. İlk aşama: B. cereus'un koliti hafifletme üzerindeki olumlu etkisini değerlendirmek için, fareleri rastgele olarak aşağıdaki üç gruba atayın: kontrol grubu (kontrol), DSS'nin neden olduğu kolit modeli (DSS), DSS'nin neden olduğu fareler için probiyotik B. cereus takviyesi (B. cereus).
    2. İkinci aşama: B. cereus'un DSS'nin neden olduğu kolit üzerindeki probiyotik etkilerini düzenlemede bağırsak mikrobiyotasının rolünü araştırmak için, fareleri rastgele olarak aşağıdaki üç gruba ayırın: ABX (kontrol), ABX (DSS) ve ABX (B. cereus + DSS).
      1. ABX (kontrol) grubundaki fareleri fizyolojik tuzlu su ile tedavi edin.
      2. 4 hafta boyunca antibiyotik kokteyl solüsyonları ile tedaviden sonra, ABX (DSS) grubundaki farelerin 1 hafta boyunca% 2.5 DSS içeren su ve 2 hafta boyunca normal fizyolojik salin almasına izin verin.
      3. Antibiyotik kokteyl solüsyonları ve DSS suyu ile tedaviden sonra, ABX (B. cereus + DSS) grubu fareleri 2 hafta boyunca intragastrik kanül kullanarak 200 μL fizyolojik salin içinde B. cereus (2 x 108 hücreli) ile tedavi edin.
  5. Antibiyotik kokteylinin uygulanmasından sonra, erkek C57BL / 6 farelerini hemen 7 gün boyunca içme suyunda% 2.5 DSS çözeltisi ile tedavi edin.
  6. DSS müdahalesinden önce farelerin vücut ağırlığını temel ağırlık olarak kaydedin.

3. B. cereus'un miktar tayini

  1. 900 μL steril normal salin ile doldurulmuş sekiz adet 1.5 mL mikrosantrifüj tüpü hazırlayın.
  2. 100 μL logaritmik büyüme B. cereus pipetleyin ve 900 μL steril normal salin içinde çözün.
  3. Tüpleri kullanarak B. cereus'u seri olarak seyreltin.
  4. Her seyreltmeden 40 μL'lik plaka, seyreltme oranı ile etiketlenmiş ilgili LB agar plakası üzerine. Her seyreltme oranı için 3x tekrarlayın.
  5. Plakaları 37 °C sabit sıcaklıktaki bir inkübatörde 16 saat boyunca kültürleyin.
  6. Saymak için ~ 20-70 kolonili plakaları seçin. Seçilen plakaların seyreltme katına göre ortalama bakteri konsantrasyonunu hesaplayın.

4. B. cereus'un gavaj için hazırlanması

  1. B. cereus'un miktar tayininden sonra, 1 x 109 CFU içeren 1 mL B. cereus ortamı toplayın ve 10 dakika boyunca 8.000 x g'da santrifüjleyin. Daha sonra bakteri hücrelerini 2x steril su ile 8.000 x g'da 10 dakika santrifüj ederek yıkayın ve süpernatanı çıkarın.
  2. Konsantre B. cereus'u steril normal tuzlu su ile 2 x 108 CFU / 200 μL4 nihai konsantrasyona seyreltin.
  3. Dağılmış bir B. cereus süspansiyonu elde etmek için seyreltmeyi tekrar tekrar yukarı ve aşağı pipetleyin.
  4. Gavaj yönteminin tamamlanmasından önce plaka sayımı tekniği ile B. cereus konsantrasyonunun miktar tayinini gerçekleştirin.

5. B. cereus takviyelerinin gavaj ile uygulanması

  1. Müdahaleleri (200 μL normal salin içinde 2 x 108 CFU probiyotikler) farelere sabit bir zamanda oral gavaj yoluyla uygulayın.
  2. B. cereus'u uygulamak için, 1 mL'lik bir şırıngaya bir gavaj iğnesi (besleme iğnesi boyutu: 20 G, 38 mm) bağlayın. Gavaj iğnesinin dışını fareler arasında% 70 etanol ile silin ve uygun doz uygulamasını sürdürün.
  3. Fareleri dizginlemek için, onları kuyruklarından alın ve kuyruğun ucu işleyicinin son iki parmağı arasına sabitlenmiş olarak sırtın gevşek derisini sıkıca kavrayın.
  4. Fareleri dikey konumda tutun. Ardından, gavaj iğnesini ağızdan dikkatlice ve nazikçe yemek borusuna sokun. Bu adımda herhangi bir dirençle karşılaşılmazsa, iğneyi yavaşça mideye itin.
    NOT: İlaç uygulamasından önce farelerin düzenli ve engelsiz nefes aldığını onaylayın.
  5. İğneyi yavaşça ilerletin ve B. cereus solüsyonunu uygulayın. Gavaj tamamlandıktan sonra iğneyi yavaşça geri çekin. Fareyi serbest bırakın ve kafesine geri koyun.

6. Hastalık aktivite indeksinin belirlenmesi

NOT: Hastalık aktivite indeksi (DAI), farelerin vücut ağırlığı kaybı, dışkıda gizli kan ve dışkı kıvamı ile günlük olarak hesaplanmıştır.

  1. Farelerin vücut ağırlığını günlük olarak ölçün. Vücut ağırlığı kaybı yüzdesine göre her fareye 0-4 arasında bir puan atayın (0: %0, 1: %1-%5, 2: %6-%10, 3: %11-%18 ve 4: %>18).
  2. Her fareden taze dışkı örnekleri toplayın. Dışkılamayı teşvik etmek için anüsün kasılmasını uyarmak için pamuklu çubuk kullanın. Ardından, dışkılamadan hemen sonra dışkı örneklerini sterilize edilmiş bir santrifüj tüpünde toplayın.
  3. Dışkıda gizli kan testi kağıdı ile dışkıda gizli kanı belirleyin. Bir aplikatör çubuğunda 10 mg dışkı örneği toplayın.
  4. Numuneyi test kartına koyun ve karta ince bir smear uygulayın. Arka kapağı açın ve lekenin üzerine geliştirici uygulayın.
  5. Ardından, 120 saniye içinde dışkıda gizli kan testi kağıdını kullanarak gizli kan için puan alın.
    NOT: Smear'ın üzerindeki veya kenarındaki herhangi bir mavi iz gizli kan için pozitiftir. Gaitada gizli skorlar şöyleydi: 0: Yok, 1: Hemokült pozitif, 2: Hafif, 3: Dışkıda kan izi ve 4: Brüt kanama.
  6. Dışkı örneğini tespit ederek dışkı kıvamını belirleyin11. 0-4 arasında bir puan verin (0: Normal, 1: Gevşek dışkı, 2: Yarı biçimli dışkı, 3: Sıvı dışkı ve 4: İshal).

7. Doku toplama

  1. Deneyin birinci ve ikinci aşamalarının sonunda% 10 kloral hidrat (10 mg / kg) enjekte ederek fareleri uyuşturun. Farelerde anestezi derinliğini tutam çekilme refleksi ile değerlendirin.
  2. Ardından, fareleri servikal çıkık ile ötenazi yapın.
  3. Fareleri ameliyat masasına sırtüstü yatırın ve periton boşluğunu açın.
  4. Tüm kolonu cerrahi olarak ayırın ve uzunluğu bir cetvelle ölçün.
  5. Ardından, kolonu önceden soğutulmuş PBS ile doldurulmuş 5 mL'lik bir şırınga ile nazikçe yıkayın.

8. Histolojik hasarın değerlendirilmesi

  1. Kolon dokusunu küçük parçalar halinde kesin,% 4 paraformaldehit içinde sabitleyin ve bir doku gömme makinesi kullanarak parafine gömün.
  2. Daha sonra, 4 μm kalınlığında kolon dokusu bölümleri hazırlamak için parafine gömülü dokuları bir mikrotom ile bölümlere ayırın. Kolon bölümlerini mumdan arındırın ve kurutun. Ardından, kolon bölümlerini hematoksilen ve eozin (H & E) ile boyayın.
    NOT: Lekeli kolon örnekleri, araştırmacı tarafından aşağıdaki önlemler için bir sistemle değerlendirilir: inflamatuar hücre infiltrasyonu derecesi (Yok: 0, Hafif: 1, Orta: 2, Şiddetli: 3), mukozal hasar (Yok: 0, Mukoza tabakası: 1, Submukoza: 2, Muscularis ve serosa: 3), kript hasarı (Yok: 0, 1/3: 1, 2/3: 2, bütün: 3, tüm + epitel kaybı: 4), lezyon aralığı (%) (%0: 0, %1-%25: 1, %26-%50: 2, %51-%75: 3, %76-%100: 4). Toplam histolojik hasar skoru, yukarıdaki önlemlerin her bir puanı için hesaplanır5.
  3. İki bağımsız deneycinin numunenin histolojik skorlarını bir ışık mikroskobu altında değerlendirmesine (kör etmesine) izin verin.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

B. cereus takviyesi ve kolit
Akut deneysel kolit modeli, içme suyuna DSS müdahalesi ile indüklenmiştir. Şekil 1A, kolit fare modeline B. cereus uygulaması için deneysel protokolü göstermektedir. DSS indüksiyonu açıkça vücut ağırlığını (Şekil 1B) ve kolon uzunluğunu azalttı. B. cereus'un oral gavaj yoluyla hafifletici etkisi, kolit model fareler üzerinde araştırıldı. DSS'nin neden olduğu kolit fareleri ile karşılaştı...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Probiyotiklerin klinik çalışmalarda kullanılabilmesi için hayvan modellerinde probiyotiklerin etkinliğinin ve güvenliğinin değerlendirilmesi gerekmektedir. Sağlanan protokoller daha önce kolit şiddetini değerlendirmek için optimize edilmiştir. DSS ile tedavi edilen fareler, ülseratif kolit12'nin karakteristik klinik ve histolojik özelliklerini taklit eden bir bağırsak iltihabı modelidir. Akut kolit model fareler vücut ağırlığı kaybı, ishal, dışkı kanaması ve infla...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Yazarların ifşa edecek hiçbir şeyi yok.

Teşekkürler

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Bu çalışma, en azından kısmen Çin Ulusal Doğa Bilimleri Vakfı (KS, hibe No. 32000081), Anhui Eyaleti Doğa Bilimleri Vakfı (KS, hibe No. 1908085QC120), Gıda Bilimi ve Teknolojisi Devlet Anahtar Laboratuvarı Açık Proje Programı, Jiangnan Üniversitesi (KS, hibe No.SKLF-KF-201920), Çin Anhui Yüksek Öğretim Kurumları Doğa Bilimleri Vakfı (KS, hibe No. KJ2019A0040), Anhui Üniversitesi Doktora Bilimsel Araştırma Vakfı (KS, hibe No. J01003316), Çin Ulusal Doğa Bilimleri Vakfı (YW, hibe No. 31770066, 31470218), Disiplin İnşaatı için Açık fon, Anhui Üniversitesi Fiziksel Bilimler ve Bilgi Teknolojileri Enstitüsü (YW) ve Anhui Üniversitesi, Çin (YW) Üstün Yetenekler Programı.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
0.01 M PBS (toz, pH7.2– 7.4)Güneş EnerjisiP1010-2L
Mutlak etil alkolHushi64-17-5
Asit alkol fsat farklılaştırma çözeltisiBeyotimeNo.C0163S
AgarSangon Biyoteknoloji9002-18-0
AmpisilinGüneş Enerjisi69-53-42&ndash'da saklayın; 8 &derece; C
Anaerobik inkübatörUzun YueLA1-3T
Dekstran sülfat sodyum tuzu kolit derecesiMP Biyomedikal160110
Elektrotermal inkübatörSANFAHP-050A
Genel amaçlı doku fiksatörüBiyokeskinBL539A
GliserinumHushi56-81-5
Hematoksilen ve eozin boyama kitiBeyotimeNo.C0105
Kisser'ın Montaj OrtamıBeyotimeNo.C0181
MetronidazolGüneş Enerjisi443-48-12&ndash'da saklayın; 8 &derece; C
Neomyein sülfatGüneş Enerjisi1405-10-32&ndash'da saklayın; 8 &derece; C
Salınımlı inkübatörŞanghay ZhichuZQLY-180'LER
Sodyum klorürSangon Biyoteknoloji7647-14-5
Dışkıda gizli kan test kağıdıBasoBA2020B
TriptonOKSOID2285856
VankomisinGüneş Enerjisi1404-93-92&ndash'da saklayın; 8 &derece; C
KsilenHushi1330-20-7
Maya özüSangon Biyoteknoloji8013-01-2

Kaynaklar

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Pittayanon, R., et al. Differences in gut microbiota in patients with vs without inflammatory bowel diseases: A systematic review. Gastroenterology. 158 (4), 960-946 (2020).
  2. Kuehn, F., Hodin, R. A. Impact of modern drug therapy on surgery: Ulcerative colitis. Visceral Medicine. 34 (6), 426-431 (2018).
  3. Harmand, P. -O., Solassol, J. Thiopurine drugs in the treatment of ulcerative colitis: Identification of a novel deleterious mutation in TPMT. Genes. 11 (10), 1212(2020).
  4. Sheng, K., et al. Synbiotic supplementation containing Bifidobacterium infantis and xylooligosaccharides alleviates dextran sulfate sodium-induced ulcerative colitis. Food & Function. 11 (5), 3964-3974 (2020).
  5. Sheng, K., et al. Probiotic Bacillus cereus alleviates dextran sulfate sodium-induced colitis in mice through improvement of the intestinal barrier function, anti-inflammation, and gut microbiota modulation. Journal of Agricultural and Food Chemistry. 69 (49), 14810-14823 (2021).
  6. Wei, L., et al. PRKAR2A deficiency protects mice from experimental colitis by increasing IFN-stimulated gene expression and modulating the intestinal microbiota. Mucosal Immunology. 14 (6), 1282-1294 (2021).
  7. Souza, E. L. S., et al. Beneficial effects resulting from oral administration of Escherichia coli Nissle 1917 on a chronic colitis model. Beneficial Microbes. 11 (8), 779-790 (2020).
  8. Trinder, M., Daisley, B. A., Dube, J. S., Reid, G. Drosophila melanogaster as a high-throughput model for host-microbiota interactions. Frontiers in Microbiology. 8, 751(2017).
  9. Liang, W., et al. Colonization potential to reconstitute a microbe community in pseudo germ-free mice after fecal microbe transplant from equol producer. Frontiers in Microbiology. 11, 1221(2020).
  10. Hernandez-Chirlaque, C., et al. Germ-free and antibiotic-treated mice are highly susceptible to epithelial injury in DSS colitis. Journal of Crohns & Colitis. 10 (11), 1324-1335 (2016).
  11. Sheng, K., et al. Grape seed proanthocyanidin extract ameliorates dextran sulfate sodium-induced colitis through intestinal barrier improvement, oxidative stress reduction, and inflammatory cytokines and gut microbiota modulation. Food & Function. 11 (9), 7817-7829 (2020).
  12. Xu, X., et al. Histological and ultrastructural changes of the colon in dextran sodium sulfate-induced mouse colitis. Experimental and Therapeutic Medicine. 20 (3), 1987-1994 (2020).
  13. Zheng, L., et al. Jianpi Qingchang decoction alleviates ulcerative colitis by inhibiting nuclear factor-kappa B activation. World Journal of Gastroenterology. 23 (7), 1180-1188 (2017).
  14. Gao, X., et al. Symptoms of anxiety/depression is associated with more aggressive inflammatory bowel disease. Scientific Reports. 11, 1440(2021).
  15. Thippeswamy, B. S., et al. Protective effect of embelin against acetic acid induced ulcerative colitis in rats. European Journal of Pharmacology. 654 (1), 100-105 (2011).
  16. Sakai, S., et al. Astaxanthin, a xanthophyll carotenoid, prevents development of dextran sulphate sodium-induced murine colitis. Journal of Clinical Biochemistry and Nutrition. 64 (1), 66-72 (2019).
  17. Li, S., et al. Role of gut microbiota in the anti-colitic effects of anthocyanin-containing potatoes. Molecular Nutrition & Food Research. 65 (24), 2100152(2021).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya şekillerini yeniden kullanmak için izin iste

İzin iste

Etiketler

Kolit ModeliProbiyotik TakviyesiDSS ile nd klenen KolitAntibiyotik TedavisiGavage UygulamasGaitada Gizli KanKolon Histopatolojisinflamatuar Bozukluklar

İlgili makaleler