Yöntem makalesi

Kıkırdak Rejenerasyonunu Teşvik Etmek için Katman Katman Janus Baz Nano-Matrisinin Üretimi ve Karakterizasyonu

DOI:

10.3791/63984

⸱

6 Temmuz 2022

 ,  , 
1Department of Biomedical Engineering, University of Connecticut

* These authors contributed equally

Bu makalede

Özet

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Bu protokol, Janus baz nanotüpleri (JBNt'ler), matrilin-3 ve Dönüştürücü Büyüme Faktörü Beta-1'i (TGF-β1) sırayla ekleyerek katman katman Janus baz nano-matris (JBNm) iskelesinin montajını açıklar. JBNm imal edildi ve karakterize edildi; Ek olarak, mükemmel biyoaktivite göstererek yapışma, çoğalma ve farklılaşma gibi hücre fonksiyonlarını teşvik etti.

Özet

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

İn vitro ve in vivo kullanımlar için spesifik fonksiyonları teşvik etme umuduyla hücre yapışmasını ve çoğalmasını yönlendirmek için çeşitli biyomalzeme iskeleleri geliştirilmiştir. Bu biyomalzeme iskelelerine büyüme faktörlerinin eklenmesi genellikle optimal bir hücre kültürü ortamı sağlamak, hücre farklılaşmasına ve sonraki işlevlerine aracılık etmek için yapılır. Bununla birlikte, geleneksel bir biyomateryal iskelesindeki büyüme faktörleri tipik olarak implantasyon üzerine salınmak üzere tasarlanmıştır, bu da çevredeki doku veya hücreler üzerinde istenmeyen yan etkilere neden olabilir. Burada, DNA'dan ilham alan Janus baz nano-matrisi (JBNm), kendi kendine sürdürülebilir kıkırdak doku yapıları için katman katman bir yapıya sahip oldukça lokalize bir mikro ortamı başarıyla elde etti. JBNm'ler, Janus baz nanotüplerinden (JBNts), matrilin-3'ten ve biyoafinite yoluyla dönüştürücü büyüme faktörü beta-1'den (TGF-β1) kendi kendine monte edilir. JBNm, TGF-β1: matrilin-3: JBNt oranında 1: 4: 10'da monte edildi, çünkü bu, katman katman yapıya uygun montajın gerçekleşebileceği belirlenmiş orandı. İlk olarak, TGF-β1 çözeltisi matrilin-3 çözeltisine eklendi. Daha sonra, JBNt çözeltisinin eklenmesinden önce yeterli homojenliği sağlamak için bu karışım birkaç kez pipetlendi. Bu, birkaç kez tekrar pipetlemeden sonra katman katman JBNm'yi oluşturdu. Katman katman JBNm yapısını, yalnızca JBNts'leri, tek başına matrilin-3'ü ve yalnızca TGF-β1'i karakterize etmek için çeşitli deneyler yapıldı. JBNm'nin oluşumu UV-Vis absorpsiyon spektrumları ile incelendi ve JBNm'nin yapısı transmisyon elektron mikroskobu (TEM) ile gözlendi. Yenilikçi katman katman JBNm iskelesi moleküler ölçekte oluşturulduğundan, floresan boya etiketli JBNm gözlemlenebilir. TGF-β1, enjekte edilebilir JBNm'nin iç tabakası içinde sınırlıdır, bu da büyüme faktörlerinin çevredeki alanlara salınmasını önleyebilir, lokalize kondrogenezi teşvik edebilir ve anti-hipertrofik bir mikro ortamı teşvik edebilir.

Giriş

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Doku mühendisliğindeki iskeleler, hücre bağlanması ve sonraki doku gelişimi için yapısal destek sağlamada hayati bir rol oynamaktadır1. Tipik olarak, herhangi bir iskele olmadan geleneksel doku yapıları, hücre kültürü ortamına dayanır ve hücre farklılaşmasına aracılık etmek için büyüme faktörleri ekler. Ayrıca, biyoaktif moleküllerin iskelelere eklenmesi, hücre farklılaşmasına ve fonksiyonuna rehberlik etmede sıklıkla tercih edilen yaklaşımdır 2,3. Bazı iskeleler, doğal dokuların biyokimyasal mikro ortamını bağımsız olarak taklit edebilirken, diğerleri büyüme faktörleri yoluyla hücre fonksiyonlarını doğrudan etkileyebilir. Bununla birlikte, araştırmacılar genellikle hücre yapışmasını, büyümesini ve farklılaşmasını olumlu yönde etkileyebilecek iskelelerin seçiminde zorluklarla karşılaşırken, uzun bir süre boyunca optimal yapısal destek ve stabilite sağlar 4,5. Biyoaktif moleküller genellikle iskeleye gevşek bir şekilde bağlanır ve implantasyon sırasında bu proteinlerin hızlı bir şekilde salınmasına neden olur ve bu da istenmeyen yerlerde salınımlarına neden olur. Bu, kasıtlı olarak hedeflenmeyen dokular veya hücreler üzerinde yan etkilerle sonuçlanır 6,7.

İskeleler tipik olarak polimerik malzemelerden yapılır. Janus baz nano-matrisi (JBNm), kendi kendine sürdürülebilir kıkırdak dokusu yapısı8 için yeni bir katman katman yöntemiyle oluşturulan biyomimetik bir iskele platformudur. Bu yeni DNA'dan ilham alan nanotüpler, hücre dışı matriste (ECM) bulunan kollajenin yapısını ve yüzey kimyasını düzgün bir şekilde taklit ettikleri için Janus baz nanotüpleri (JBNts) olarak adlandırılmıştır. Matrilin-3 ve Transforme Edici Büyüme Faktörü Beta-1 (TGF-β1) gibi biyoaktif moleküllerin eklenmesiyle, JBNm daha sonra istenen hücre ve doku işlevselliğini uyarabilen optimal bir mikro ortam yaratabilir9.

JBNt'ler, nükleobaz adenin ve timinin sentetik versiyonlarından türetilen yeni nanotüplerdir. JBNt'ler kendi kendine montaj10 ile oluşturulur; altı sentetik nükleobaz bir halka oluşturmak için bağlanır ve bu halkalar11 μm uzunluğunda 200-300 μm uzunluğunda bir nanotüp oluşturmak için π-π istifleme etkileşimine uğrar. Bu nanotüpler yapısal olarak kollajen proteinlerine benzer; Doğal kıkırdak mikro ortamının bir yönünü taklit ederek, JBNt'lerin kondrositler ve insan mezenkimal kök hücreleri (hMSC'ler) için uygun bir bağlanma bölgesi sağladığı gösterilmiştir 11,12,13,14. Nanotüpler kendi kendine montaja tabi tutuldukları ve herhangi bir başlatıcı (UV ışığı gibi) gerektirmedikleri için, ulaşılması zor kusur alanları için enjekte edilebilir bir iskele olarak heyecan verici bir potansiyel gösterirler15.

Matrilin-3, kıkırdakta bulunan yapısal bir hücre dışı matriks proteinidir. Bu protein kondrogenezde ve uygun kıkırdak fonksiyonunda önemli bir rol oynar16,17. Son zamanlarda, biyomateryal iskelelerine dahil edilmiş ve hipertrofi olmadan kondrogenezi teşvik etmiştir 9,18,19. Bu proteini JBNm'ye dahil ederek, kıkırdak hücreleri, doğal mikro ortamınınkine benzer bileşenler içeren bir iskeleye çekilir. Ek olarak, kondrositler20 içinde uygun TGF-β1 sinyalizasyonu için matrilin-3'ün gerekli olduğu gösterilmiştir. Büyüme faktörleri, belirli bir hücrenin veya dokunun spesifik büyümesine neden olan sinyal molekülleri olarak işlev görür. Bu nedenle, optimal kıkırdak rejenerasyonu elde etmek için, matrilin-3 ve TGF-β1, JBNm içindeki temel bileşenlerdir. TGF-β1'in katman katman iskeleye eklenmesi, bir doku yapısında kıkırdak rejenerasyonunu daha da destekleyebilir. TGF-β1, osteokondral defektlerin iyileşme sürecini teşvik etmek, kondrosit ve hMSC proliferasyonunu ve farklılaşmasını teşvik etmek için kullanılan bir büyüme faktörüdür21,22. Bu nedenle, TGF-β1, kıkırdak rejenerasyonu JBNm'de (J / T / M JBNm)23'te önemli bir rol oynar ve özellikle JBNm katmanları içinde lokalize olduğunda uygun büyümeyi teşvik eder.

Daha önce de belirtildiği gibi, büyüme faktörleri tipik olarak belirli bir kuruluş yöntemi olmadan iskelelerin dışına monte edilir. Burada, biyomalzemelerin hassas bir şekilde tasarlanmış nano-mimarisi ile JBNm, amaçlanan hücrelerin ve dokuların spesifik olarak hedeflenmesi için geliştirilmiştir. JBNm, iç katmandaki JBNt yüzeylerine yapıştırılan TGF-β1 ve dış katman24,25'teki JBNt yüzeylerine yapıştırılan matrilin-3'ten oluşur. TGF-β1'in katman katman yapının iç tabakasına dahil edilmesi, JBNm lifleri boyunca oldukça lokalize bir mikro çevreye izin verir ve protein12'nin çok daha yavaş salınımıyla homeostatik bir doku yapısı oluşturur. JBNm'nin enjekte edilebilirliği, onu gelecekteki çeşitli biyomateryal uygulamaları için ideal bir kıkırdak doku yapısı haline getirir26.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Protokol

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. JBNt'lerin sentezi

  1. JBNt monomerini, çeşitli bileşiklerin sentezini içeren daha önce yayınlanmış yöntemleri kullanarak hazırlayın12.
  2. Ham JBNt monomerini, ters fazlı bir kolon kullanılarak yüksek performanslı sıvı kromatografisi (HPLC) ile sentezlendikten sonra saflaştırın. Solvent A: %100 su, çözücü B: %100 asetonitril ve çözücü C: pH = 1 ile HCl su çözeltisi kullanın. 3 mL/dak akış hızı kullanın. HPLC'de elde edilen en büyük zirveyi 7,2 dakikada toplayın.

2. JBNt/Matn1/TGF-β1 için imalat (Video 1)

NOT: Video 1 , JBNm'nin fizyolojik bir ortamda (su çözeltisi, UV ışığı yok, kimyasal katkı maddesi yok ve ısıtma yok) oluşan enjekte edilebilir bir katı olduğunu ve biyolojik olarak da ilham aldığını göstermektedir.

  1. Bu proteinlerin uygun şekilde karıştırılmasını sağlamak için H2 O'da askıya alınmış 8 μL 1 mg/mL TGF-β1 ila H 2 O'da asılı 1 mg/mL matrilin-3'ün32μL'sine ilave edin.
  2. TGF-β1/matrilin-3 çözeltisineH2O'da asılı 80 μL 1 mg/mL JBNts ekleyin. Doğru karıştırmayı sağlamak için tekrar tekrar pipet. Beyaz topakların varlığı, JBNt'lerin eklenmesinden hemen sonra gözlemlenebilir ve bu da JBNm'nin oluşumunu gösterir (Video 1).

3. Ultraviyole görünür (UV-Vis) absorpsiyonlu örneklerin gözlemlenmesi

NOT: UV-Vis absorpsiyon spektrumları, JBNm'nin montajını karakterize etmek için incelenmiştir. Bu ölçüm dört kategori için analiz edildi: JBNts tek başına, matrilin-3 tek başına, TGF-β1 ve üç parçadan oluşan tam katman katman JBNm. Tüm başlangıç konsantrasyonlarıH2O'da askıya alınır.

  1. JBNt grubu için, 90.9 μg / mL'lik bir çözelti oluşturmak için 50 μL H2O'ya 5 μL 1 mg / mL JBNts ekleyin.
  2. Matrilin-3 grubu için, 7.3 μg / mL'lik bir çözelti oluşturmak için 40 μL 10 μg / mL matrilin-3 ila 15 μLH2O ekleyin.
  3. TGF-β1 grubu için, 1,8 μg/mL'lik bir çözelti oluşturmak üzere 10 μL 10 μg/mL TGF-β1 ila 45 μLH2O ekleyin.
  4. JBNm grubu için, 10 μg/mL matrilin-3'ün 40 μL'sini 10 μL'lik 10 μg/mL TGF-β1'e ekleyin. Doğru karıştırmayı sağlamak için çalkalayın ve ardından çözeltiye 5 μL 1 mg/mL JBNt ekleyerek numuneyi karıştırmak için tekrar tekrar pipetleyin.
  5. Bir spektrofotometre kullanarak, her grubun absorpsiyon spektrumunu ölçün.

4. Örneklerin Zeta-potansiyel ölçümü

NOT: Zeta potansiyeli, JBNm'nin in vivo doku ile nasıl etkileşime gireceğini daha iyi tahmin etmek için analiz edilmiştir. Üç grup ölçüldü: tek başına matrilin-3, TGF-β1 ile matrilin-3 ve katman katman JBNm.

  1. Matrilin-3 grubu için, 800 μL'lik bir çözelti oluşturmak için 160 μL 10 mg / mL matrilin-3 ila 640 μLH2O ekleyin.
  2. Matrilin-3/TGF-β1 bileşiği için, 10 μg/mL matrilin-3'ün 160 μL'sini 10 μg/mL TGF-β1'in 40 μL'sine ekleyin. Uygun homojenliği sağlamak için tekrar tekrar pipet. Daha sonra, 800 μL'lik bir çözelti ile sonuçlanan 600 μLH2O'ya ekleyin.
  3. JBNm grubu için, 10 μg/mL matrilin-3'ün 160 μL'sini 10 μg/mL TGF-β1'in 40 μL'sine ekleyin. Proteinleri karıştırmak için birkaç kez pipet kullanın. Ardından, homojenliği sağlamak için çözeltiye ve pipete 20 μL 1 mg/mL JBNt ekleyin. Son olarak, 800 μL'lik bir çözelti üretmek için JBNm çözümünü 580 μLH2O'ya ekleyin.
  4. Üç grup için zeta-potansiyel değerlerini ölçün.

5. Transmisyon elektron mikroskobu (TEM) için JBNt / matrilin-3 nano-matrisinin hazırlanması

NOT: JBNts ve JBNm'lerin morfolojisini karakterize etmek için TEM karakterizasyonu yapılır.

  1. JBNt'lerin ve JBNm'nin yayınlanan protokollere ve üreticinin protokollerine göre negatif boyanmasından önce ızgaraları düzgün bir şekilde temizlemek için iki ızgarayı bir plazma temizleyiciye yerleştirin12.
  2. 10 μL 1 mg/mL JBNt'yi 40 μL damıtılmış suyla karıştırarak 200 μg/mL JBNt çözeltisi oluşturun.
  3. 30 μL 100 μg/mL matrilin-3 ile 20 μL 100 μg/mL TGF-β1 ve pipeti birkaç kez karıştırın. JBNm örneğini hazırlamak için matrilin-3/TGF-β1 karışımına 10 μL 1 mg/mL JBNts ekleyin. Yine, tekrar tekrar pipet.
  4. Ayrı ızgaralara 3 μL JBNt çözeltisi (200 μg/mL) ve JBNm çözeltisinden 3 μL ekleyin ve bunları 2 dakika bekletin.
  5. Her ızgarayı 100 μL uranil asetat çözeltisi (% 0.5) ile durulayın. Fazla çözeltiyi çıkarmak ve ızgaraların hava ile kurumasını sağlamak için filtre kağıtları kullanın.
  6. Daha önce yayınlandığı gibi numuneleri düzgün bir şekilde gözlemlemek ve karakterize etmek için bir transmisyon elektron mikroskobu çalıştırın11,12.

6. Floresan etiketli proteinlerin absorpsiyon spektrumlarının ölçümü

NOT: JBNm'nin yapısı, absorpsiyon spektral analizi ile JBNm'nin yapıları gözlemlenerek doğrulanır.

  1. TGF-β1'i, üreticinin talimatlarını izleyerek bir protein etiketleme kiti kullanarak etiketleyin. 8,9 μg/mL'lik bir test çözeltisi oluşturmak için TGF-β1 etiketli 20 μL ila 25 μL H 2 O arasına20μL ekleyin.
  2. Matrilin-3'ü ayrı bir etiketleme kiti kullanarak etiketleyin. 36 μg/mL'lik bir test çözeltisi oluşturmak için 20 μL 80 μg/mL etiketli matrilin-3 ila25μL H 2 O ekleyin.
    NOT: TGF-β1'in floresan boya etiketlemesi 20 μg/mL'lik bir nihai konsantrasyonla sonuçlanırken, matrilin-3'ün etiketlenmesi 80 μg/mL'lik bir nihai konsantrasyonla sonuçlandı.
  3. 20 μL 80 μg/mL etiketli matrilin-3 ile 20 μL 20 μL etiketli TGF-β1 ve 5 μL H2O ile karıştırın ve etiketli TGF-β1/matrilin-3 bileşiği elde edin. Karıştırmak için karışımı birkaç kez pipetleyin.
  4. 40 μLH2O'ya 5 μL 1 mg/mL JBNts ekleyin, bu da 111 μg/mL'lik bir çözelti ile sonuçlanır.
  5. TGF-β1 etiketli 20 μg/mL'lik 20 μL ila 80 μg/mL'lik 20 μL'lik matrilin-3 etiketli matrilin-3 ve pipeti birkaç kez ekleyin. Etiketli TGF-β1/ matrilin-3 çözeltisine 5 μL 1 mg/mL JBNt ekleyin ve bileşiği düzgün bir şekilde karıştırmak için tekrar tekrar pipet ekleyin.
    NOT: TGF-β1 etiketli JBNt ve etiketli matrilin-3 numunelerinin nihai konsantrasyonları sırasıyla 111 μg / mL, 8.9 μg / mL ve 36 μg / mL idi.
  6. Her numune grubunu (yani, TGF-β1 (adım 6.1) etiketli, matrilin-3 etiketli (adım 6.2), TGF-β1/matrilin-3 etiketli (adım 6.3), JBNts (adım 6.4), JBNm (adım 6.5)) siyah 384 delikli bir plakanın kendi kuyusuna aktarın.
  7. Siyah 384 delikli plakayı çok modlu bir mikro plaka okuyucuya yükleyin ve üreticinin protokolünü izleyerek 488 nm ve 555 nm uyarma dalga boylarında ölçümler yapın.

7. In vitro biyolojik fonksiyon testi

  1. Önceden kaplanmış kapak camı odalarında hücre yapışma testi
    1. Her hücre tipi için bir kapak camı kullanıldığından, beş grup numune içeren iki odacıklı kapak camı hazırlayın.
    2. 198.75 μL damıtılmış suya 1.25 μL 1 mg/mL JBNts ekleyin ve 6.25 μg/mL'lik bir çözelti elde edin.
    3. 10 μL 10 μg / mL matrilin-3 ila 190 μL damıtılmış su ekleyin, bu da 0,5 μg / mLsolution ile sonuçlanır.
    4. 197,5 μg/mLof damıtılmış suya 2,5 μL 10 μg/mL TGF-β1 ekleyin ve 0,125 μg/mLsolution elde edin.
    5. JBNm grubu için 10 μL 10 μg/mL matrilin-3 ila 2,5 μL 10 μg/mLTGF-β1 ekleyin ve tekrar tekrar pipet ekleyin. Karışım çözeltisine ve pipete 1 mg/mL'lik bir konsantrasyonda 1.25 μL JBNt ekleyin. Son olarak, 200 μL JBNm çözeltisi elde etmek için 186.25 μL damıtılmış su ekleyin.
      1. Kontrol grubu için 200 μL damıtılmış su kullanın.
    6. Her numune grubunu 1,5 numaralı odacıklı bir kapak camının kendi kuyusuna ekleyin. Kapak camını 1 saat boyunca -80 °C'lik bir dondurucuya yerleştirin ve ardından bir liyofilizatör aletiyle dondurarak kurutun.
    7. İnsan mezenkimal kök hücrelerini (hMSC'ler) ve insan kondrosit hücrelerini (kuyu başına 10.000 hücre) hazırlanan odacıklı örtü camlarının her bir kuyucuğuna tohumlayın.
    8. İki kapak gözlüğünü 37 °C'lik bir inkübatörde 4 saat boyunca inkübe edin. Daha sonra, hücre kültürü ortamını aspire edin ve PBS ile iki kez durulayın.
    9. Hücreleri 5 dakika boyunca% 4 paraformaldehit ile sabitleyin ve ardından PBS ile numuneleri çıkarın ve durulayın. % 4'lük paraformaldehiti tamamen çıkarmak için numuneyi ikinci kez durulayın.
    10. 10 dakika boyunca 100 μL% 0.1 Triton-X içeren hücreleri inkübe edin ve PBS ile yıkayın. Her bir kuyucuğa 100 μL 0.165 μM rodamin-faloidin ekleyin. 30 dakika bekleyin ve ardından PBS ile tekrar yıkayın.
    11. Çekirdekleri boyamak için her bir oyuğa 0,1 μg / mL DAPI ekleyin. 5 dakika bekleyin ve kuyucukları PBS ile iki kez durulayın.
    12. Hücre morfolojisini gözlemlemek ve floresan görüntüleri yakalamak için spektral konfokal mikroskop kullanın.
    13. Ayrıca, görüntü işleme yazılımını kullanarak hücre sayısını ve morfolojisini analiz edin. Yazılımı açın ve görüntüleri yükleyin. Bir ölçek çubuğu ekleyin ve yazılımı kalibre edin. Her örnek için belirli bir alandaki hücre sayısını sayın. Ardından, her örnek için hücre morfolojisi hakkında veri toplamak üzere ölçüm aracını kullanın.
  2. Hücre çoğalması
    1. Her birine beş grup numune ekleyerek işlenmemiş üç adet 96 kuyucuklu plaka hazırlayın.
      1. JBNt grubu için, 596.25 μL damıtılmış suya 3.75 μL 1 mg / mL JBNts ekleyin, böylece 6.25 μg / mL konsantrasyonda 600 μL JBNt çözeltisi elde edilir.
      2. TGF-β1 grubu için, 7,5 μL 10 μg/mL TGF-β1 ila 592,5 μL damıtılmış su ilave edilerek 0,125 μg/mL test çözeltisi elde edilir.
      3. Matrilin-3 grubu için, 30 μL 10 μg / mL matrilin-3 ila 570 μL damıtılmış su ekleyin, bu da 0.5 μg / mL'lik bir test çözeltisi ile sonuçlanır.
      4. JBNm grubu için, 7,5 μL 10 μg/mL TGF-β1'i 30 μL 10 μg/mL matrilin-3 ve pipetle birkaç kez karıştırın, ardından çözeltiye 3,75 μL 1 mg/mL JBNt ekleyin.
      5. JBNt, TGF-β1 ve matrilin-3 numuneleri için sırasıyla 6,25 μg/mL, 0,125 μg/mL ve 0,5 μg/mL nihai konsantrasyonları elde etmek için JBNm çözeltisini 558,75 μL damıtılmış su ile seyreltin.
      6. Kontrol grubu için 600 μL damıtılmış su kullanın.
    2. Her numune grubunu altı kuyucuğa bölün (kuyu başına 100 μL numune).
    3. Tüm numuneleri içeren üç plakayı 1 saat boyunca -80 °C'lik bir dondurucuya yerleştirin ve ardından bir liyofilizasyon aleti ile dondurarak kurutun.
    4. Bu plakalara hMSC'leri tohumlayın, her biri 5.000 hücre içeren 100 μL hücre süspansiyonu (kuyu başına) alır. Üç plakayı 37 ° C'de 1 gün, 3 gün veya 5 gün% 5 CO2'de inkübe edin.
    5. Hücrelerle birlikte her bir oyuğa 10 μL CCK-8 çözeltisi ekleyin ve 37 ° C'de 2 saat daha inkübe edin.
    6. Her bir kuyucuğun absorpsiyon değerlerini, 450 nm'de çok modlu mikro plakalı okuyucularla ölçün.
    7. Bilinen bir hMSC gradyanını 96 kuyucuklu bir plakaya tohumlayın ve 4 saat boyunca kuluçkaya yatırın. Bilinen hücre sayısının absorpsiyon değerlerini ölçmek ve standart bir eğri oluşturmak için CCK-8 testini kullanın.
    8. Emilim standart eğrisini kullanarak hücre proliferasyonunu hesaplayın.
  3. Stabilite testi
    NOT: Bir insan TGF-β1 hedefli ELISA kiti, TGF-β1'in bir agaroz hidrojelinde JBNm'den yüzde salınımını belirlemek için kullanılmıştır.
    1. 20 mL PBS'ye 400 mg agaroz tozu ekleyerek ve agaroz tozunu tamamen çözmek için 100 ° C'ye kadar ısıtarak% 2 agaroz hazırlayın.
    2. JBNm'yi soğutulmuş% 2 agaroz hidrojeli içinde hazırlayın.
      1. 10 μL 10 μg/mL TGF-β1, 40 μL 10 μg/mL matrilin-3, 5 μL 1 mg/mL JBNts ve 195 μL PBS'yi birleştirin. Bu çözeltiyi 250 μL% 2 agaroz ile karıştırın ve JBNm hidrojelini oluşturun.
    3. Bir serbest bırakma çözümü olarak kullanarak 500 μL PBS ekleyin ve her 3 günde bir değiştirdiğinizden emin olun. Serbest bırakılan her çözeltiyi saklayın ve numuneyi 15 gün bekletin.
    4. Üreticinin talimatlarını izleyerek yakalanan serbest bırakma çözümlerinin her birini test etmek için bir ELISA kiti kullanın.
      NOT: PBS'de salınan TGF-β1 miktarının teorik yükleme değeri olan %100'den çıkarılmasıyla, kalan TGF-β1 miktarı belirlenebilir.
  4. PCR26 ile hücre farklılaşma analizi.
    1. Her numune 20 μL hücre süspansiyonu (4 x 104 hücre), spesifik çözeltinin 30 μL'si (veya numune grubuna bağlı olarak PBS) ve 50 μL ağırlıkça %2 agaroz içeren yedi numune grubu hazırlayın.
      1. TGF-β1 grubu için, 5 μL 10 μg / mL TGF-β1 ila 25 μL PBS ekleyin, bu da 1.6 μg / mL'lik bir çözelti ile sonuçlanır.
      2. Matrilin-3 grubu için, 20 μL 10 μg / mL matrilin-3 ila 10 μL PBS ekleyin, bu da 6.7 μg / mL'lik bir çözelti ile sonuçlanır.
      3. JBNt grubu için, 27,5 μL PBS'ye 2,5 μL 1 mg/mL JBNt ekleyin ve 83,3 μg/mL'lik bir çözelti elde edin.
      4. J/T/M JBNm grubu için, çözeltiyi karıştırmak üzere 10 μL 10 μg/mL matrilin-3 ila 5 μL 10 μg/mL TGF-β1 ve pipet yukarı ve aşağı ekleyin. Ardından, 2,5 μL 1 mg/mL JBNt ve pipeti tekrar ekleyin. Son olarak, 2.5 μL PBS ile seyreltin.
      5. Her kontrol grubu için örnek olarak 30 μL PBS kullanın.
    2. Her bir kuyucuğa 0,5 mL hücre kültürü ortamı ekleyin ve her 3 günde bir değiştirdiğinizden emin olun.
      1. Pozitif kontrol grubu için, ilave TGF-β1 içeren ticari olarak temin edilebilen bir hMSC kondrojenik ortam kullanın. Bu ek TGF-β1, hem TGF-β1 hem de J/T/M JBNm gruplarındaki miktara eşittir.
      2. Negatif kontrol gruplarından biri için, TGF-β1 içermeyen ticari bir hMSC kondrojenik ortam kullanın. Diğer negatif kontrol grubu için,% 10 fetal sığır serumu (FBS) içeren bir DMEM hücre kültürü ortamı kullanın.
      3. Diğer tüm gruplar için, TGF-β1 olmadan ticari bir hMSC kondrojenik hücre kültürü ortamı kullanın.
    3. Örnekleri 15 gün boyunca kültürleyin.
    4. Örneklerin RNA'sını çıkarın ve daha önce açıklandığı gibi örneklerin farklılaşmasını incelemek için PCR gerçekleştirin26.
  5. Tip X kollajen ekspresyon testi için immün boyama
    1. Yedi agaroz bazlı numuneyi, PCR yöntemi bölümü ile hücre farklılaşması ile aynı şekilde hazırlayın (adım 7.4).
    2. Örnekleri 15 gün boyunca kültürleyin.
    3. Numuneleri 1 gün boyunca% 4 formaldehit ile sabitleyin, gece boyunca% 30 sakkaroz çözeltisine batırın ve daha sonra sıvı azot ile -80 ° C'de gece boyunca dondurun. Numuneleri, suda çözünür glikoller ve reçinelerin bir karışımı olan optimum kesme sıcaklığı bileşik reaktifini (OCT) kullanarak -10 °C'de sabitleyin.
    4. Her numunenin 20 μm kalınlığında dondurulmuş bölümlerini elde etmek için bir kriyostat mikrotomu çalıştırın.
    5. Üreticinin protokollerine göre, her bölümü 1:800 seyreltme ile bir Anti-Collagen X antikoru ve PBS ile seyreltilmiş bir floresan etiketleme ikincil antikoru ile sabitleyin.
    6. Her bölümü, 488 nm'lik bir uyarım ve göz merceği üzerinde 40x büyütme kullanarak bir konfokal mikroskopla gözlemleyin.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Protokolü takiben, JBN'ler başarıyla sentezlendi ve UV-Vis absorpsiyonu ve TEM ile karakterize edildi. JBNm, hızlı bir biyomimetik işlemden geçen enjekte edilebilir katı bir iskeledir. JBNt'ler fizyolojik bir ortamda TGF-β1 / matrilin-3 çözeltisinin bir karışımına eklendikten sonra, Şekil 1'de görüldüğü gibi JBNm'nin başarılı bir şekilde monte edildiğini gösteren katı bir beyaz örgülü iskele oluşturuldu. Bu, karakterizasyon yöntemlerinde gösterilmiştir.

Fizyolojik...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Bu çalışmanın amacı, hücre farklılaşmasına aracılık etmek için hücre kültürü ortamlarına dayanan geleneksel doku yapılarının sınırlamalarının üstesinden gelmek için biyomimetik bir iskele platformu olan JBNm'yi geliştirmektir. JBNm, kendi kendine sürdürülebilir bir kıkırdak doku yapısı için katman katman bir yapı iskelesi. Yenilikçi tasarım, DNA'dan ilham alan yeni nanomalzemelere, JBNts'lere dayanmaktadır. JBNts30, TGF-β1 ve matrilin-3'ten oluşan JBNm, iskelenin kendi kendine montajının moleküler...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Dr. Yupeng Chen, Eascra Biotech, Inc. ve NanoDe Therapeutics, Inc.'in kurucu ortaklarından biridir.

Teşekkürler

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Bu çalışma, NIH hibeleri 7R01AR072027 ve 7R03AR069383, NSF Kariyer Ödülü 1905785, NSF 2025362 ve Connecticut Üniversitesi tarafından desteklenmektedir. Bu çalışma kısmen NIH hibesi S10OD016435 tarafından da desteklenmektedir.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
% 10 Normal Keçi SerumuThermo Fisher50062ZBoyama sırasında spesifik olmayan antikor bağlanma etkilerini bloke etmek için kullanılır.
24 oyuklu plakaCorning07-200-740Karşılaştırmalı hücre kültürü için kullanılan 24 oyuklu plaka.
384 Kuyulu Siyah İşlenmemişPlaka Thermo Fisher262260Absorpsiyon ölçümleri için kullanılan 384 kuyulu plaka.
8 kuyulu odacıklı kapak camıThermo Fisher155409PKKarşılaştırmalı hücre kültürü için kullanılan 8 kuyulu kapak camı.
96 oyuklu düz tabanlıCorning07-200-91Karşılaştırmalı hücre kültürü için kullanılan 96 oyuklu plaka.
96 Kuyulu Plaka, işlem görmemişThermo Fisher260895karşılaştırmalı hücre kültürü ve analizi için kullanılan 96 oyuklu plaka.
Hücre kültürü için kullanılanAgaroz JelSigma-AldrichA9539
Agaroz JelSigma AldrichA9539Hidrojel hücre kültürü için bir ortam olarak kullanılır.
Alexa Fluor Microscale Protein Etiketleme KitiThermo FisherA30006 (488) ve A30007 (555)Proteinleri etiketlemek için kullanılan floresan boya.
Anti-Kollajen X AntikoruThermo Fisher41-9771-82Kollajen-X'i boyamak için kullanılan antikor.
Bio-Rad PCR MakinesiNumuneler üzerinde PCR gerçekleştirmek için kullanılanBio-Rad
C28 / I2 Kondrosit Hücre HattıHücreleri, çeşitli örneklerin proliferatif yeteneklerini analiz etmek için kullanılır.
Hücre Sayma Kiti 8Milipore Sigma96992Hücre proliferasyon testi.
Cell ProfilerBroad InstituteHücre görüntülerini analiz etmek için kullanılan yazılım.
Kriyostat MikrotomBoyama ve mikroskopide kullanılmak üzere ince numune segmentleri üretmek için kullanılan ekipman.
DAPIInvitrogenD1306Adenin-timin DNA bölgelerine bağlanan mavi floresan boya.
Tek kullanımlık küvetlerFISHER Scientific14-955-128Spektrofotometri için kullanılan kap.
DMEM Hücre Kültürü OrtamıThermo Fisher10566032Hücresel büyümeyi desteklemek için kullanılan ortam.
Fetal Sığır SerumuGIBCOA4766801Hücre büyümesini desteklemek için hücre kültürü ortamında kullanılır.
Fluoromount-G Montaj OrtamıThermo Fisher00-4958-02İmmün boyama için slaytları monte etmek için kullanılan çözelti.
FormaldehitBileşiği, mikrotomlamadan önce numuneleri sabitlemek için kullanılır.
Keçi anti-Tavşan IgG (H + L) Yüksek Çapraz Adsorbe İkincil AntikorThermo FisherA16110Protein boyama için kullanılan antikor.
İnsan Mezenkimal Kök HücreleriLONZAPT-2501Çeşitli örneklerin farklılaşma yeteneklerini analiz etmek için kullanılan hücreler.
İnsan Mezenkimal Kök Kondrojenik OrtamLONZAPT-3003Kondrojenik farklılaşmayı teşvik etmek için kullanılan hücre ortamı.
ImageJUlusal SağlıkMikroskopi ile birlikte kullanılan görüntü analiz yazılımı.
itaq Evrensel SYBR Yeşil Tek Adımlı KitPCR için kullanılanBioRad1725150
Janus bazlı nanotüpler (JBNts)Hücre iskelesi aracı olarak işlev görmek için sentetik nükleobazlardan yapılmış nanotüp.
LaB6 20-120 kV İletim Elektronik MikroskobuTecnaiBir numune üzerinde transmisyon elektron mikroskobu yapmak için kullanılan ekipman.
MATLABMathWorksModelleme ve veri analizi için kullanılan istatistiksel yazılım.
Matrilin-3Fisher Scientific3017MN050Kondrositler için yapışma yeri olarak kullanılan yapısal protein.
NanoDrop SpektrofotometreThermo FisherBir numunenin absorpsiyon değerlerini ölçmek için kullanılan ekipman.
Nikon A1R Spektral Konfokal MikroskopNikonA1R HD25Numuneleri analiz etmek için kullanılan konfokal mikroskop.
1.5 Numara Hazneli CoverglassThermo Fisher152250Steril hücre kültürü ve görüntüleme ortamı.
Optimal Kesme Sıcaklığı Bileşiği ReaktifBileşiği, mikrotomlamadan önce hücreleri gömmek için kullanılır.
ParaformaldehitThermo ScientificAAJ19943K2Hücreleri sabitlemek için kullanılan bileşik.
PDC-32G Plazma TemizleyiciHarrick PlazmaTemizleyici, transmisyon elektron mikroskobundan önce ızgaraları hazırlamak için kullanılır.
penisilin-streptomisinGIBCO15-140-148Hücre kültürü sırasında bakteri üremesini caydırmak için kullanılan antibiyotik ajan.
Fosfat Tamponlu Tuzlu TermoFisher 10010023 Çözeltisi,hücre ortamını yıkamak ve deney sırasında bir tampon görevi görmek için kullanılır.
Rhodamine-phalloidinInvitrogenR415F-Aktin kırmızı floresan boya.
Rneasy Plant Mini KitQIAGEN74904Kit, RNA ekstraksiyonu sırasında numuneleri filtrelemek ve homojenize etmek için kullanılır.
Mikrotomlamadan önce numuneleri işlemek için kullanılansükroz çözeltisi
TGF beta-1 İnsan ELISA KitiInvitrogenBMS249-4TGF -&beta'nın varlığını belirlemek için kullanılan test kiti; Bir örnekte 1.
TGF-β 1PEPROTECH100-21CKondrojenik farklılaşma ve proliferasyonun uyarılması için kullanılan büyüme faktörü.
Triton-XInvitrogenHFH10Bileşiği: Boyama işlemi sırasında sabitlenmeyen hücreleri parçalamak için kullanılır.
TRIzol ReaktifiThermo Fisher15596026RNA'yı izole etmek için kullanılan reaktif.
Zetasizer Nano ZSMalvern PanalitikEkipmanı, bir numunenin zeta-potansiyel değerlerini ölçmek için kullanılır.
Hidrojel.: Ekipmanı. Enstitüleri Kiti. çözeltisi.

Kaynaklar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Chan, B. P., Leong, K. W. Scaffolding in tissue engineering: general approaches and tissue-specific considerations. European Spine Journal. 17, Suppl 4 467-479 (2008).
  2. Heo, D. N., et al. 3D bioprinting of carbohydrazide-modified gelatin into microparticle-suspended oxidized alginate for the fabrication of complex-shaped tissue constructs. ACS Applied Material Interfaces. 12 (18), 20295-20306 (2020).
  3. Almeida, H. V., et al. Anisotropic shape-memory alginate scaffolds functionalized with either type i or type ii collagen for cartilage tissue engineering. Tissue Engineering. Part A. 23 (1-2), 55-68 (2017).
  4. Vinatier, C., Guicheux, J. Cartilage tissue engineering: From biomaterials and stem cells to osteoarthritis treatments. Annals of Physical and Rehabilitation Medicine. 59 (3), 139-144 (2016).
  5. Filardo, G., Kon, E., Roffi, A., Di Martino, A., Marcacci, M. Scaffold-based repair for cartilage healing: a systematic review and technical note. Arthroscopy. 29 (1), 174-186 (2013).
  6. James, A. W., et al. A review of the clinical side effects of bone morphogenetic protein-2. Tissue Engineering. Part B, Reviews. 22 (4), 284-297 (2016).
  7. Blaney Davidson, E. N., vander Kraan, P. M., vanden Berg, W. B. TGF-beta and osteoarthritis. Osteoarthritis Cartilage. 15 (6), 597-604 (2007).
  8. Chen, Y., Yang, K. Intra-articular drug delivery systems for arthritis treatment. Rheumatology Current Research. 2, 106(2012).
  9. Liu, Q., et al. Suppressing mesenchymal stem cell hypertrophy and endochondral ossification in 3D cartilage regeneration with nanofibrous poly(l-lactic acid) scaffold and matrilin-3. Acta Biomaterialia. 76, 29-38 (2018).
  10. Song, S., Chen, Y., Yan, Z., Fenniri, H., Webster, T. J. Self-assembled rosette nanotubes for incorporating hydrophobic drugs in physiological environments. International Journal of Nanomedicine. 6, 101-107 (2011).
  11. Zhou, L., et al. Self-assembled biomimetic Nano-Matrix for stem cell anchorage. Journal of Biomedical Materials Research. Part A. 108 (4), 984-991 (2020).
  12. Zhou, L., Yau, A., Zhang, W., Chen, Y. Fabrication of a biomimetic nano-matrix with janus base nanotubes and fibronectin for stem cell adhesion. Journal of Visualized Experiments. (159), e61317(2020).
  13. Chen, Y., Song, S., Yan, Z., Fenniri, H., Webster, T. J. Self-assembled rosette nanotubes encapsulate and slowly release dexamethasone. International Journal of Nanomedicine. 6, 1035-1044 (2011).
  14. Chen, Y., et al. Self-assembled rosette nanotube/hydrogel composites for cartilage tissue engineering. Tissue Engineering. Part C, Methods. 16 (6), 1233-1243 (2010).
  15. Yu, H., Chen, Y. Advanced biomedical techniques for gene delivery. Recent Patents on Biomedical Engineering (Discontinued). 5 (1), 23-28 (2012).
  16. Muttigi, M. S., Han, I., Park, H. K., Park, H., Lee, S. H. Matrilin-3 role in cartilage development and osteoarthritis). International Journal of Molecular Sciences. 17 (4), 590(2016).
  17. Pei, M., Luo, J., Chen, Q. Enhancing and maintaining chondrogenesis of synovial fibroblasts by cartilage extracellular matrix protein matrilins. Osteoarthritis Cartilage. 16 (9), 1110-1117 (2008).
  18. Bello, A. B., et al. Matrilin3/TGFbeta3 gelatin microparticles promote chondrogenesis, prevent hypertrophy, and induce paracrine release in MSC spheroid for disc regeneration. NPJ Regenerative Medicine. 6 (1), 50(2021).
  19. Muttigi, M. S., et al. Matrilin-3 codelivery with adipose-derived mesenchymal stem cells promotes articular cartilage regeneration in a rat osteochondral defect model. Journal of Tissue Engineering and Regenerative Medicine. 12 (3), 667-675 (2018).
  20. Jayasuriya, C. T., et al. Matrilin-3 chondrodysplasia mutations cause attenuated chondrogenesis, premature hypertrophy and aberrant response to TGF-beta in chondroprogenitor cells. International Journal of Molecular Sciences. 15 (8), 14555-14573 (2014).
  21. Poniatowski, L. A., Wojdasiewicz, P., Gasik, R., Szukiewicz, D. Transforming growth factor Beta family: insight into the role of growth factors in regulation of fracture healing biology and potential clinical applications. Mediators of Inflammation. 2015, 137823(2015).
  22. Sun, Y., Lu, Y., Hu, Y., Ma, F., Chen, W. Induction of osteogenesis by bovine platelet transforming growth factor-beta (TGF-beta) in adult mouse femur. Chinese Medical Journal (English). 108 (12), 914-918 (1995).
  23. Sun, X., et al. Anti-miRNA oligonucleotide therapy for chondrosarcoma). Molecular Cancer Therapeutics. 18 (11), 2021-2029 (2019).
  24. Jayasuriya, C. T., Chen, Y., Liu, W., Chen, Q. The influence of tissue microenvironment on stem cell-based cartilage repair. Annals of the New York Academy of Sciences. 1383 (1), 21-33 (2016).
  25. Chen, Y., et al. Deficient mechanical activation of anabolic transcripts and post-traumatic cartilage degeneration in matrilin-1 knockout mice. PLoS One. 11 (6), 0156676(2016).
  26. Zhou, L., Zhang, W., Lee, J., Kuhn, L., Chen, Y. Controlled self-assembly of DNA-mimicking nanotubes to form a layer-by-layer scaffold for homeostatic tissue constructs. ACS Applied Material Interfaces. 13 (43), 51321-51332 (2021).
  27. Belluoccio, D., Schenker, T., Baici, A., Trueb, B. Characterization of human matrilin-3 (MATN3). Genomics. 53 (3), 391-394 (1998).
  28. Yau, A., Yu, H., Chen, Y. mRNA detection with fluorescence-base imaging techniques for arthritis diagnosis. Journal of Rheumatology Research. 1 (2), 39-46 (2019).
  29. Lee, J., Sands, I., Zhang, W., Zhou, L., Chen, Y. DNA-inspired nanomaterials for enhanced endosomal escape. Proceedings of the National Academy of Sciences. 118 (19), (2021).
  30. Zhang, W., Chen, Y. Molecular engineering of DNA-inspired Janus base nanomaterials. Juniper Online Journal Material Science. 5 (4), 555670(2019).
  31. Yau, A., Sands, I., Chen, Y. Nano-scale surface modifications to advance current treatment options for cervical degenerative disc disease (CDDD). Journal of Orthopedic Research and Therapy. 4 (9), 1147(2019).
  32. Mello, M. A., Tuan, R. S. Effects of TGF-beta1 and triiodothyronine on cartilage maturation: in vitro analysis using long-term high-density micromass cultures of chick embryonic limb mesenchymal cells. Journal of Orthopaedic Research. 24 (11), 2095-2105 (2006).
  33. Shi, Y., Massague, J. Mechanisms of TGF-beta signaling from cell membrane to the nucleus. Cell. 113 (6), 685-700 (2003).
  34. Sands, I., Lee, J., Zhang, W., Chen, Y. RNA delivery via DNA-inspired janus base nanotubes for extracellular matrix penetration. MRS Advances. 5 (16), 815-823 (2020).
  35. Zhou, L., Rubin, L. E., Liu, C., Chen, Y. Short interfering RNA (siRNA)-based therapeutics for cartilage diseases. Regenerative Engineering and Translational Medicine. 7 (3), 283-290 (2020).
  36. Bi, H., et al. Deposition of PEG onto PMMA microchannel surface to minimize nonspecific adsorption. Lab on a Chip. 6 (6), 769-775 (2006).
  37. Chen, Y., Webster, T. J. Increased osteoblast functions in the presence of BMP-7 short peptides for nanostructured biomaterial applications. Journal of Biomedical Materials Research. Part A. 91 (1), 296-304 (2009).
  38. Sun, M., Lee, J., Chen, Y., Hoshino, K. Studies of nanoparticle delivery with in vitro bio-engineered microtissues. Bioactive Materials. 5 (4), 924-937 (2020).
  39. Yau, A., Lee, J., Chen, Y. Nanomaterials for protein delivery in anticancer applications. Pharmaceutics. 13 (2), 155(2021).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya şekillerini yeniden kullanmak için izin iste

İzin iste

Etiketler

Katman Katman skeleB y me Fakt r Kaps llemeMatrilin 3 ProteiniTGF Beta1Janus Tabanl Nanot plerH cre AdhezyonuGe irimli Elektron MikroskobuFloresan Mikroskobu

İlgili makaleler